Archivo de la categoría: Microbiología de Alimentos

Optimización en los análisis microbiológicos de ALIMENTOS.
Nuevos métodos de análisis microbiológicos utilizados exitosamente en los laboratorios líderes

M17 Agar para detección y recuento de estreptococos lácticos

Detección y recuento de estreptococos lácticos: M17 Agar

Los estreptococos lácticos son bacterias clave para la elaboración de derivados lácteos, como el queso y el yogur

Aunque tradicionalmente se clasificaban dentro del género Streptococcus (Ej: Streptococcus thermophilus), muchas especies lácticas se han reclasificado en el género Lactococcus (Ej: Lactococcus lactis)

Son Gram positivos, anaerobios facultativos, que producen ácido láctico mediante la fermentación de azúcares, principalmente lactosa. Son bacterias catalasa negativas.

Se reconocen al microscopio por formar cadenas de cocos.

M-17 AGAR

Detección y enumeración de estreptococos lácticos

COMPOSICIÓN

Triptona 2,50 g
Digerido pépsico de carne 2,50 g
Digerido papaínico de soja 5,00 g
Extracto de levadura 2,50 g
Extracto de carne 5,00 g
Lactosa 5,00 g
Glicerofosfato sódico 19,00 g
Sulfato de Magnesio 0,25 g
Acido ascórbico 0,50 g
Agar-agar 15,00 g
(Fórmula por litro)
pH final: 7,1 ± 0,1

PREPARACIÓN

Disolver 57 g de medio en 1 litro de agua destilada.
Calentar agitando hasta ebullición para su completa disolución.
Repartir en tubos o frascos.
Autoclavar a 115 ºC durante 20 minutos.

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO.
MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y
OSCURO. AGITE EL BOTE ANTES DE USAR.

DESHIDRATADO CODIGO: DMT087

 

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio
siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar
laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque
no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)
DESHIDRATADO: Polvo grueso, crema
PREPARADO: Estéril, Crema
CONTROL DE CRECIMIENTO 24-48 h a 37°C aproximadamente:
Enterococcus faecalis WDCM00087, Correcto, Puntiforme.
Streptococcus uberis MKTC 994 T, Correcto.
Streptococcus mutans MKTA25175**, Correcto.
Lactobacillus delbruckii MKTA9649**, Escaso.
Escherichia coli WDCM00013. Correcto.
**Las colecciones TIPO prohíben el uso de su referencia por lo que indicamos
la nuestra, directamente trazable a la colección TIPO.

PRESENTACIÓN: MEDIO DESHIDRATADO

MODO DE EMPLEO E INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS

Sembrar en profundidad 1 ml de muestra y de su serie de diluciones decimales.
Incubar a 37 ºC aproximadamente, durante 48 horas para Str. thermophilus y a
30 ºC aproximadamente, durante 48-72 horas para los estreptococos mesófilos.
Los Streptococcus termófilos y mesófilos forman colonias de 1-2 mm, en
función de su densidad en la placa.Confirmar al microscopio que se trata de
diplococos o estreptococos Gram (+).

El usuario es el único responsable de la eliminación de los microorganismos
según la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la
basura.

https://www.microkit.es/fichas/M-17-STREPTOCOCCUS-AGAR.pdf

Consulte los precios actualizados del M17Agar de MICROKIT en pedidos@microkit.es

LENA CLOSTRIDIUM PERFRINGENS LACTOSE AGAR BASE

CLOSTRIDIUM PERFRINGENS LACTOSE AGAR BASE (LENA) para aislamiento selectivo de Clostridium perfringens en alimentos según ISO 15213-3:2024

Medio idéntico a lo indicado en esta Norma ISO:

COMPOSICION

Enzimatic digest of casein                  10,0 g

Meat extract                                        10,0 g

Sodium chloride NaCl                        5,0 g

Lactose C12H24O12                              10,0 g

Phenol Red C19H14O5S                       0,1 g

Agar-agar                                           15 g

(Fórmula en g/L)

Ajustar a pH final tras autoclavado: 7,3 ± 0,2

 

PREPARACION                    

1-Disolver 50,1 g  de medio en 1 litro de agua bidestilada. Calentar hasta ebullición, agitando para su total homogeneización. Dispensar en tubos o frascos herméticos y esterilizar en autoclave a 121ºC durante 15 min. No sobrecalentar. El color final del medio es  naranja. Se puede hacer stock de este LENA base esterilizado, manteniendo hasta 4 semanas a 5ºC.

 

2-Llevar hasta 44-47 ºC, 100 mL de LENA base DMT295 y añadir 1 mL de una solución de Neomycina sulfato (250 mg) SMT015 esterilizada por filtración (por 0,2 µ) en 10 mL de agua destilada estéril (para 1 L de LENA). Esta solución antibiótica se puede mantener a 5ºC hasta 4 semanas en tubos o frascos herméticos.

 

3-Añadir a los dos anteriores 5 mL de emulsión estéril de yema de huevo SBH010. Agitar hasta que los 3 ingredientes queden homogéneos

 

4-Dispensar en placas Petri estériles. Las placas así preparadas se pueden mantener en tuppers de cierre hermético (para que no pierdan humedad) hasta 4 semanas a 5ºC.

USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO. MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO, EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO. AGITAR ANTES DE USAR PARA ASEGURAR LA HOMOGENEIZACIÓN DE LOS eventuales gradientes de densidad de los COMPONENTES.

 

PRESENTACIÓN

-Medio deshidratado LENA BASE, botes 500 g, CÓDIGO: DMT295

-Emulsión de yema de huevo estéril CÓDIGO SBH010

-Neomycina NO estéril en viales de 250 mg, para añadir a 10 mL de agua destilada estéril/vial y elaborar 1 L de medio final/vial, Caja 40 viales CÓDIGO: SMT015. Si se usa SMT015 NO estéril:

-Agua destilada estéril en Tubos de 10 mL CÓDIGO: TPL001+

-Filtros estériles de carcasa para jeringa (lúer), 0,2 µm y 30 mm de diámetro, CÓDIGO: VHU237

-Jeringas estériles 20 mL para los filtros VHU237, CÓDIGO: VPL089

-Neomycina polvo estéril, para añadir a 10 mL de agua destilada estéril/vial y elaborar 1 L de medio final/vial ahorrando VHU237 y VPL090, CÓDIGO SMT015+I

 

CONTROL DE CALIDAD

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

DESHIDRATADO: Polvo de color rosado PREPARADO: Estéril, color rojo coral (foto página anterior).

CONTROL DE CRECIMIENTO CUANTITATIVO  24 horas a 46ºC aprox:

Clostridium perfringens WDCM00007 Colonias amarillas con halo amarillo  (ver foto)

E.coli WDCM00012      Completamente inhibido

Bacillus subtilis WDCM00003 Colonias amarillas sin halo de precipitación

 

MODO DE EMPLEO E INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS

Seguir las directrices de la Norma ISO 15213-3:2024

Emplear también el Rapid perfringens Medium BASE (RPM): Ver  DMT293

Tambien hay que emplear otros medios clásicos según ISO 15213-3:2024: TSC Agar DMT175 con su suplemento D-Cicloserina SMS252, Columbia Blood Agar DMT020 con suplemento de sangre, SIM Agar DMT112 y reactivos Indol Kovacs SBH056, fosfatasa ácida -cancerígena- la cual imaginamos permitirán sustituir por MUP SMT009 como en la búsqueda de C.perfringens en aguas, por demostrarse como método equivalente)

https://www.microkit.es/fichas/C-PERFRINGENS-LACTOSE-AGAR-BASE-LENA.pdf

Ver tambien el caldo C.PERFRINGENS RAPID MEDIUM BASE (RPM):

https://www.microkit.es/fichas/C-PERFRINGENS-RAPID-MEDIUM-BASE-RPM.pdf

Consulte precios actualizados en pedidos@microkit.es

MICROBIOLOGÍA DE ALIMENTOS: entrega 1 de 6 y la OPTIMIZACIÓN DE TIEMPOS Y DE TÉCNICAS.

CONTROL MICROBIOLÓGICO DE ALIMENTOS: OPTIMIZACIÓN DE TIEMPOS Y DE TÉCNICAS.

LA INNOVACIÓN TE LLEVA A UN NIVEL SUPERIOR

MAIL 1 ALIMENTOS:                                                   CERTEZA EN TUS RESULTADOS

 

La diferencia entre sólo analizar y vivir con certeza está en la forma en que trabajas

¿Alguna vez te has parado a pensar que muchas de las decisiones que tomas en tu laboratorio quizá no las estás tomando tú al 100%… sino ese “piloto automático” que todos tenemos?

Ese subconsciente no es otra cosa que la grabación que han ido escribiendo en tu mente —con su mejor intención, eso sí— padres, maestros, jefes, compañeros… e incluso la propia sociedad y normativa. Un auténtico “matrix comunitario” que, en realidad, no elegiste tú.

 

La gran pregunta es:

¿Quieres seguir conformándote con lo que hace la mayoría (ISO), aunque los resultados en tus análisis intercomparativos no siempre te convenzan?

¿O prefieres tener la máxima seguridad de que tus resultados son correctos?

A eso, en MICROKIT, lo llamamos “vivir con certeza”

 

 

Durante las próximas semanas vamos a publicar otras 5 entradas como ésta,

donde compartiremos los 5 problemas más habituales que hemos detectado en laboratorios de microbiología de alimentos…

y, lo más importante: las soluciones que mejor han funcionado en quienes ya los resolvieron.

Hablamos desde una posición privilegiada, porque en

MICROKIT llevamos años asumiendo esta triple faceta:

Dicho de otra manera: ¿los árboles no te dejan ver el bosque? En MICROKIT hemos trepado hasta más arriba de muchos árboles, y ahora tenemos la vista panorámica, como un águila, del bosque completo.

Queremos compartir contigo esta visión privilegiada para que, al final de este recorrido, seas tú quien decida:

¿Seguir como hasta ahora, o dar el paso hacia unos resultados analíticos optimizados?

 

Estos son los 5 problemas más comunes que abordaremos juntos:

  1. Efecto matriz en microbiología de alimentos ¿de verdad es tan importante que hasta provoca la mayoría de falsos negativos en el mundo?

 

  1. Staphylococcus aureus ¿Es el Baird Parker –o el rpf- la solución que necesito?

 

  1. ¿Por qué en el recuento de Enterobacterias a veces obtengo menor resultado que en el recuento de Coliformes, cuando eso es una incongruencia?

 

  1. ¿Por qué en el recuento de hongos se da la máxima dispersión de resultados entre los laboratorios participantes en los servicios intercomparativos?

 

  1. Servicios intercomparativos: ¿Por qué sigo con el de siempre, si no tiene en cuenta el efecto matriz, ni compara claramente los resultados según metodologías, ni compara medios de cultivo, ni mejora las herramientas estadísticas convencionales y hasta a veces me saca de z-scores cuando estoy convencido que soy el que mejor he enumerado (¿eso sucede?)?

 

El poder de la innovación

Muchos de los métodos oficiales que nos quieren imponer han sido redactados como si, durante los últimos 100 años, todo el esfuerzo de investigación para facilitar la vida a los laboratorios de microbiología de alimentos… no hubiera existido.

Nos quieren devolver al siglo XX

Y no son sólo palabras:

Aquí tienes los datos, tras más de 200 rondas intercomparativas y 25 años de experiencia, que demuestran cómo quienes aplican nuestra metodología obtienen los mejores resultados:

https://www.medioscultivo.com/mejora-tus-resultados-analiticos-gracias-a-nuestra-innovacion/

 

 

¿De verdad ya estás usando las herramientas adecuadas para tu trabajo actual?

Solicita la información que necesites en microkit@microkit.es

¡Hasta la próxima entrega en Abril-2026!

 

Cepas de acidolácticas

Cepa de Lactobacillus paracasei

Este microorganismo se encuentra de forma natural en la vagina humana.

Es una bacteria inocua (Riesgo Biológico Gr.1), es más: muy beneficiosa para todo ser humano

Su ingesta como probiótico restablece el equilibrio de la microbiota y activa naturalmente el sistema inmunológico.

También es un fermento láctico que proporciona al queso un aroma exquisito, mucho mejor que el de los fermentos industriales habituales

En MICROKIT lo ofrecemos en lentículas cuantitativas para QC de medios como MRS o Cromokit LAC Agar, y también lo incluimos en Seilalimentos para intercomparación de laboratorios

En la actualidad, mientras se redacta este artículo, disponemos de un lote de  lentículas con (7,68 ± 2,68) x 105  ufc/lentícula en MRS Agar y (7,78 ± 2,38) x 105  en Cromokit  LAC Agar

Su variabilidad dentro del lote es, en CV%: 23,31 % en MRS y 21,59 %  en Cromokit LAC Agar

Y su consumo preferente es 12-2026, por lo que se elaborará un nuevo lote hacia el verano, para que tenga una caducidad cercana a 7-2028.

Solicite precios, concentraciones y caducidades actualizados en microkit@microkit.es

De todos modos, si su uso es como cepa cualitativa, la caducidad suele poderse extender durante décadas mientras se mantenga congelada entre -5 y -20ºC

En la foto destacada resaltamos como su cultivo en tubo hermético proporciona mucho mejor crecimiento que la placa, ya que es microaerófilo

Puede ver el manejo de nuestras cepas en lentículas, en el folleto:

https://microkit.es/pdf/CEPAS-CUANTITATIVAS-2022.pdf

Y si lo prefiere, este es el video que lo explica todo mejor:

https://www.youtube.com/watch?v=4WJ8FQl6GIE&t=153s

Agradecemos sus likes y sus comentarios debajo del video, que ayudan de forma contundente a que más microbiólogos conozcan las ventajas de estas cepas y puedan ver todos los videos que les interesen y que hemos preparado para todos Uds.

Solicite el listado actualizado de cepas, donde podrá consultar la concentración y caducidad actualizadas de estas y otras cepas, así como los precios, en microkit@microkit.es

NUEVA WEB DE MICROKIT

WEB DE MICROKIT:

http://www.laboratoriosmicrokit.com

En MICROKIT estrenamos nueva web en Marzo de 2026, creada por nuestro equipo de marketing

Porque la innovación no puede limitarse a productos innovadores, también ha de afectar a la estructura de las empresas

En MICROKIT hemos apostado también por este segundo tipo de innovación:

-Entre 2025 y 2026 estamos creando decenas de videos sobre la utilidad y modo de empleo de los productos MICROKIT de máximo éxito, puede encontrar los que ya hemos terminado en nuestro canal de youtube:

https://youtube.com/@microkit1?si=oRcj96EHX5ZhtphB

-Seguimos introduciendo semanalmente artículos técnicos de microbiología de interés para todos los microbiólogos de la industria y el ambiente en nuestro blog:  https://www.medioscultivo.com/

-Empleamos la IA básicamente para mejorar la comprensión de los textos que escribimos

-Y ahora nuestra nueva web, que absorbe las dos anteriores en vez de sustituirlas (la clásica microkit.es y la más moderna del kit digital microkit.org) en nuestro dominio de hace décadas, recién recuperado (laboratoriosmicrokit.com en vez de microkit.es), con una visión más fácil sobre cual es nuestra motivación para estar aquí: ahorrar al laboratorio de microbiología tiempo, incertidumbre, puntos críticos y dinero: http://laboratoriosmicrokit.com

y nuestro nuevo lema:

«La innovación te lleva a un nivel superior. En MICROKIT hablamos de certeza en tus resultados.»

Con estas nuevas herramientas confiamos en que nuestros estimados clientes se sientan todavía mejor apoyados por nuestra innovación.

 

Yersinia enterocolitica, detección eficaz en alimentos

Método de detección de Yersinia enterocolitica en alimentos

Yersinia enterocolitica, método de detección en alimentos mediante CIN Agar y varias pruebas confirmativas, rápidas y definitivas

 

CIN YERSINIA AGAR (BASE)

Aislamiento de Yersinia enterocolitica s/ISO 10273:2003 tras enriquecer adecuadamente el alimento

 

COMPOSICIÓN

Extracto de carne                    20 g/L

Extracto de levadura                2 g/L

Mannitol                                  20 g/L

Piruvato sódico                        2 g/L

Cloruro sódico                         1 g/L

Sulfato magnésico                    0,010 g/L

Desoxicolato sódico                 0,5 g/L

Rojo neutro                              0,03 g/L

Cristal Violeta                          0,001 g/L

Agar‑agar                                 12 g/L

pH final: 7,4 ± 0,2

 

PREPARACIÓN

Disolver 28,75 g en 500 ml de agua destilada, calentando hasta hervir y agitando. NO AUTOCLAVAR.

Enfriar a 50 ºC y añadir 1 vial de Yersinia Supplement SBH021 (Cefsulodina 0,0015 g/l, Irgasan 0,004 g/l, Novobiocina 0,0025 g/l final de medio), reconstituido con 5 ml de agua destilada estéril.

Mezclar.

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO

AGITE EL BOTE ANTES DE USAR.

MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO

DESHIDRATADO CODIGO: DMT036

 

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

DESHIDRATADO: Polvo fino, Rosa   PREPARADO: Estéril, Rosado

EVALUACIÓN DEL RENDIMIENTO ISO/TS 11133-2 Aplicando el método ISO 10273 o el indicado en el Manual MICROKIT actualizado, 24 h a 30°C aprox:

Yersinia enterocolitica, MKTA27729**, Bueno, colonias translúcidas con centro  color rosa oscuro.

Escherichia coli WDCM00013, Inhibido total o parcialmente.

Staphylococcus aureus WDCM00034, Inhibido total o parcialmente.

Proteus mirabilis MKTA 43071**, Inhibido.

Pseudomonas aeruginosa WDCM00025, Inhibido.

Streptococcus faecalis WDCM00210, Inhibido.

**Las colecciones TIPO prohiben el uso de su referencia por lo que indicamos la nuestra, directamente trazable a la colección TIPO.

 

PRESENTACIÓN

MEDIO DESHIDRATADO BASE Y SUPLEMENTOS.

 

NOTA

El Cefsulodin Irgasan Novobiocin Agar (CIN) es un medio selectivo para aislamiento de Yersinia enterocolítica en muestras clínicas y alimentos. Es el más idóneo para aislamiento selectivo de Y. enterocolítica. Por el sodio desoxicolato, cristal violeta e Irgasan, son inhibidas las bacterias Gram (+), algunas Gram (‑) y las enterobacterias. Sólo algúnas cepas de Citrobacter freundii, Serratia liquefaciens y Enterobacter aglomerans pueden crecer sobre CIN Agar, con un aspecto similar al de Yersinia enterocolítica.

 

SIEMBRA

Sembrar en estría para conseguir colonias aisladas Incubar a 22‑25 ºC aproximadamente durante 48 horas. Si se desea enriquecer la muestra, incubarla previamente durante 28 días a 4 ºC aproximadamente en tubos de agua peptonada tamponada.

 

INTERPRETACIÓN

Yersinia enterocolítica crece con colonias rosa‑púrpura, rodeadas de un borde transparente (colonias en «ojo de buey»). El diámetro de la colonia varía de unas cepas a otras, pero permanece constante para cepas del mismo serotipo.

CONFIRMACIÓN      

Para confirmar en menos de 4 horas Yersinia enterocolitica desde las colonias en ojo de buey en el agar CIN:

  1. Oxidasa: Negativa (-). (Para diferenciar de Aeromonas, que también puede crecer en CIN y es Positiva).
  2. Urea (Test de ureasa rápido): Positivo (+). Yersinia es una productora potente de ureasa; el viraje a fucsia ocurre en 1-2 horas si sembramos varias colonias en un microtubo con 0,5 mL de caldo Urea.
  3. Ornitina (ODC): Positiva (+, violeta). Hacer caldo ODC con Extracto de levadura 5 g/L, L-Ornitina 10 g/L, Glucosa (como disparador del metabolismo) 0,5 g/L, y Púrpura de Bromocresol como indicador 0,01 g/L, ajustar a pH final 6,0. Inocular varias colonias en un microtubo (con 0.5 ml de caldo). Cubrir el caldo con 2 ó 3 gotas de Aceite de Vaselina o Parafina estéril (la descarboxilación de la ornitina requiere condiciones de anaerobiosis)
  4. Kligler (KIA) o TSI: Lectura A/A (Pico amarillo / Fondo amarillo) debido a la fermentación de sacarosa y glucosa, sin gas y sin H2S.

Solicite precios actualizados de todos estos productos en microkit@microkit.es

Cepas de Coliformes y de otras Enterobacterias

Cepas de Enterobacterias (incluidos coliformes)

Cepas de Coliformes y de otras Enterobacterias

En MICROKIT fabricamos cepas cuantitativas estabilizadas, para entrega inmediata, que sirven para sus controles de calidad de medios y de kits, para sus validaciones y para sus Challenge Test.

Las cepas más queridas por los laboratorios que las han probado.

Coliformes

Dentro de las coliformes (Galactosidasa positivas, o en su definición antigua, Enterobacterias que fermentan la lactosa con producción de gas), disponemos de:

Escherichia coli

 

 

 

 

 

Klebsiella pneumoniae

 

 

 

 

 

Enterobacter aerogenes

 

 

 

 

 

Pluralibacter gergoviae

 

 

 

 

 

 

Citrobacter freundii

Otras Enterobacterias

Salmonella enteritidis, S.typhimurium, S.abony

 

 

 

 

Proteus mirabilis

 

Shigella flexneri

 

 

 

 

Yersinia enterocolitica

 

 

 

 

 

Todas ellas al nivel de concentración que más nos piden los laboratorios acreditados por la ISO 17025 para ahorrarse hacer diluciones

 

Ventajas

La ventaja de las lentículas de MICROKIT sobre otros formatos son:

-estabilidad, de dos años desde fabricación en vez del 1 año típico de las cepas liofilizadas: en su elaboración las mimamos para que se desequen suavemente, sin estrés, por eso duran mucho más (cualitativamente, tenemos numerosas cepas congeladas fabricadas hace una década que siguen creciendo)

-precisión de cada lentícula dentro de su lote, muy a menudo inferior al 25%

-control de calidad en medio general TSA (o SDA si son hongos) y en medio selectivo, amenudo el más habitual ISO, y además el máas recomendado por MICROKIT (cromogénicos, actualizados…)

-Nomenclatura de la colección Universal WDCM; solicítenos en pdf el documento oficial de su conversión a las diferentes colecciones TIPO del mundo, en microkit@microkit.es

-ahorro de espacio en el congelador, menos de la mitad que otras marcas

-entrega inmediata

-posibilidad de fabricarle minilotes de sus propias cepas in house (salvajes)

-Pida una caja de 10 u y recibirá 12 (2 sin cargo, equivalente a un 20% de descuento)

para que pueda realizar su QC inicial una vez lleguen a su laboratorio

y otro QC de su concentración una vez rebasada su fecha de caducidad teórica

ya que, al ser seres vivos es variable y por eso lo marcamos como «consumo preferente».

 

¿Cómo adquirirlas?

Haga sus pedidos, una vez nos solicite el listado actualizado de cepas, concentraciones, caducidades y precios, en pedidos@microkit.es

 

¿Cómo se emplean? 

No se pierda su video en nuestro canal de youtube:

https://www.youtube.com/watch?v=4WJ8FQl6GIE&t=114s

Información y novedades sobre medios de cultivo para Staphylococcus aureus

Una nueva brisa de aire fresco para mejorar la detección de Staphylococcus aureus

Mejor medio para S.aureus: salto cuántico ante la incertidumbre del Baird Parker y del Mannitol Salt Agar para llegar a la certeza con BPMY Agar

Información y novedades sobre medios de cultivo: detectar con certeza Staphylococcus aureus

Puedes ver de forma más amena todo este artículo en el video de youtube:

https://youtu.be/2661zhu_IzQ?si=mUdCraVZ1iHtw8eA

 

Un problema que estaba eternizándose

Como vimos en la entrada sobre el medio Vogel Johnson Agar, hacía falta mejorar los medios clásicos para detección de Staphylococcus aureus, el parámetro microbiológico con resultados más inciertos de cuantos hay en alimentos y en cosméticos; al menos en los servicios intercomparativos.

Problema causado por dichos medios de cultivo (tan teóricos y tan poco acordes a la realidad) y por el polimorfismo colonial de este microorganismo

(que no sólo depende de la cepa concreta de S.aureus,

sino además de la muestra concreta de la que proceda).

Efectivamente, no es igual una colonia de  S.aureus WDCM 00032 que otra de S.aureus WDCM 00034 ni que otra de S.aureus WDCM 00131.

Ni es igual una colonia de S.aureus (por ejemplo WDCM 00032), que procede de anchoas, de lechuga, de queso o de hamburguesas; ni tampoco la que procede de gel de baño, de protector solar, de dentífrico o de acondicionador del pelo.

Hasta el punto de poder afirmar que la probabilidad de acertar usando medios como Baird Parker, Mannitol Salt Agar o Vogel Johnson es la misma que la de tirar un dado a pares o impares (no lo decimos nosotros, lo dice Staphylococcus aureus en intercomparación y en validación):

¡cerca del 50% de errores!

tanto falsos positivos como falsos negativos

falsos positivos de no sólo otros Gram positivos como Bacillus, Enterococcus o Listeria…

tambien crecen con colonias típicas de S.aureus numerosos Gram negativos, sean fermentadores como las Enterobacterias o no fermentadores como Pseudomonas o Burkholderia

e incluso falsos positivos de algunas levaduras que crecen en esos medios con colonias de aspecto muy similar al típico de las colonias de Staphylococcus aureus

En el día a día de los análisis, no se nota tanto porque muchas muestras están completamente ausentes de estos falsos positivos. Pero cuando se estudian muestras contaminadas con ellos (la validación requiere ponerse en el peor de los casos), los resultados son desalentadores.

 

Una solución a medias

El desarrollo desde hace más de una década de medios cromogénicos, basados todos ellos en la Fosfatasa Alcalina propia de St.aureus, no ha resuelto el problema de falsos positivos, aunque lo haya minimizado.

Porque a menudo las colonias adquieren un color que no es el típico (sino parecido) y no sabemos a priori si se trata o no de Staphylococcus aureus. En demasiadas ocasiones. Aparte del daltonismo más o menos potente que todos tenemos.

Y porque la Fosfatasa alcalina no es una prueba positiva, que sea exclusiva de Staphylococcus aureus, aunque los medios cromogénicos mejoran bastante la certeza en los resultados.

Da igual que los diferentes cromógenos de la Fosfatasa Alcalina tiñan la colonia de verde, de azul, de púrpura, de lila… la incertidumbre una vez obtenemos colonias coloreadas es excesiva y seguimos sin saber si se trata o no del microorganismo buscado.

 

Por fin llega la solución definitiva: Mucho mejor medio y confirmación inmediata para S.aureus  ¡y encima es una solución muy económica!

Una vez tuvimos claro que los medios cromogénicos eran un avance, pero no definitivo, indagamos en todas las pruebas que la ciencia conoce y son más típicas de Staphylococcus aureus.

No existe ninguna que sea específica sólo de este microorganismo, si no, no existiría este problema que hoy hemos abordado en este artículo.

Pero la idea inicial del Vogel Johnson (mezcla de Baird Parker con Mannitol Salt Agar), conjugando más pruebas típicas, nos pareció la más plausible.

Y variando adecuadamente las proporciones de las pruebas selectivas del Baird Parker (Piruvato, Glicina, Cloruro de Litio, Telurito Potásico, Lecitinasa)…

… del Mannitol Salt Agar (Fermentación del Mannitol sin la excesivamente selectiva sal)…

… y añadiendo la Fosfatasa Alcalina de los medios cromogénicos, ya no se podía hacer más.

Al menos con los conocimientos actuales de la ciencia.

Bueno sí se podía hacer algo más: abaratar el test de la Fosfatasa, en vez de añadiéndolo en el medio (y desperdiciando así este costoso reactivo en todas las placas, incluso en la mayoría de ellas, que luego salían negativas), añadiéndolo en formato gotero sólo a las colonias sospechosas que crecieran.

Decidimos probarlo en un sustrato fluorogénico en vez de cromogénico, para ahorrarnos la incertidumbre de los colores mixtos; así, simplemente la colonia da luz intensa (prueba positiva) o no da luz intensa (prueba negativa) tras añadirle una gota de lo que hemos llamado Reactivo FF (Fosfatasa Fluorescente)

https://microkit.org/wp-content/uploads/2026/02/Reactivo-FF-confirma-de-inmediato-colonias-de-S.aureus.pdf

Y así surgió el Baird Parker Mannitol (BPM) Agar y su versión enriquecida con emulsión de yema de huevo (más que por su halo de lecitinasa, que falla muchísimo según la muestra de la que provenga la cepa, por su enorme poder nutritivo, ya detectado en los medios cromogénicos): el Baird Parker Mannitol Yema (BPMY) Agar.

https://microkit.org/producto/baird-parker-mannitol-bpm-agar/

 

La teoría volvía a estar de nuestra parte, pero ¿y la práctica?

Dada la diferencia abismal entre la teoría y la práctica del Baird Parker, del Mannitol Salt Agar y del Vogel Johnson, hacía falta validar este nuevo medio BPM y su versión enriquecida con yema BPMY.

Y nos atrevimos a hacerlo conjuntamente tanto en alimentos como en cosméticos. De lo más variados: 

MUESTRAS COSMÉTICAS MUESTRAS DE ALIMENTOS
1 Toallitas impregnadas bebé 1 Queso cabra lonchas
2 Gel de baño argán 2 Yogur tipo kéfir
3 Crema antiarrugas 3 Carne ternera picada
4 Desodorante roll on 4 Carne ave pollo
5 Leche after Sun 5 Jamón york
6 Spray solar SPF50+ bifásico 6 Boquerones vinagre
7 Champú cabello graso 7 Salmón ahumado
8 Mascarilla capilar aguacate 8 Puré patatas
9 Crema para pies a la urea 9 Tarta de chocolate
10 Body lotion mandarina 10 Flan
11 Gel refrescante mentol 11 Huevos crudos
12 Dentífrico kids fresa 12 Mayonesa
13 Enjuague bucal gingival 13 Macarrones tomate
14 Serum facial exosomas 14 Macedonia frutas
15 Aceite floral 15 Pienso gatos
16 Loción anticaida cabello 16 Barrita vainilla-choco
17 Gel de ducha exfoliante 17 Cereales c/frutos rojos
18 Gel de Aloe vera puro 18 Infusión té
19 Acondic. cabello 19 Fabada c/Chorizo
20 Jabón íntimo manzanilla 20 Ensalada

Por otra parte había que usar cepas diana diversas y también interferentes y acompañantes lo más variadas posible:

DIANAS WDCM 00032 Staphylococcus aureus Farmacopea DIANA
WDCM 00034 Staphylococcus aureus.        DIANA
WDCM 00131 Staphylococcus aureus. DIANA
DIANA / INTERFERENTE PECJJT Staphylococcus hominis DIANA/INTERFERENTE, al ser tambien patógeno del Gr.2
OTROS ESTAFILOCOCOS INTERFERENTES salvaje Staphylococcus warneri Gr 1 salvaje secuenciada de gel baño INTERFERENTE
WDCM 00159 Staphylococcus saprophyticus Gr 2 INTERFERENTE
salvaje Staph. haemolyticus Gr 2 salvaje secuenciado de crema corporal INTERFERENTE
OTROS GRAM POSITIVOS WDCM 00001 Bacillus cereus, ACOMPAÑANTE e INTERFERENTE
WDCM 00087 Enterococcus faecalis ACOMPAÑANTE e INTERFERENTE
WDCM 00178 Enterococcus faecium ACOMPAÑANTE e INTERFERENTE
WDCM 00017 Listeria innocua ACOMPAÑANTE e INTERFERENTE
WDCM 00018 Listeria ivanovii ACOMPAÑANTE e INTERFERENTE
WDCM 00021 Listeria monocytogenes ACOMPAÑANTE e INTERFERENTE
CCCTM12 Micrococcus luteopaisa ACOMPAÑANTE
OTROS GRAM NEGATIVOS NO FERMENTADORES WDCM 00025 Pseudomonas aeruginosa ACOMPAÑANTE
WDCM 00117 Pseudomonas putida ACOMPAÑANTE
MKTA 25416 Burkholderia cepacia ACOMPAÑANTE
MKTA BAA-245/7 B.cenocepacia+ B.multivorans ACOMPAÑANTE
OTROS GRAM NEGATIVOS FERMENTADORES WDCM 00030 Salmonella enteritidis ACOMPAÑANTE e INTERFERENTE
WDCM 00031 Salmonella typhimurium ACOMPAÑANTE e INTERFERENTE
WDCM 00090 Escherichia coli ACOMPAÑANTE e INTERFERENTE
WDCM 00175 Enterobacter aerogenes ACOMPAÑANTE
MKTD-9245 Pluralibacter gergoviae ACOMPAÑANTE
WDCM 00206 Klebsiella pneumoniae (=K.aerogenes, = K.variicola) ACOMPAÑANTE
MKTS-SH01 Shigella flexneri ACOMPAÑANTE
WDCM 00023 Proteus mirabilis ACOMPAÑANTE
WDCM 00160 Yersinia enterocolitica ACOMPAÑANTE
LEVADURAS MKTS-KF Kluyveromyces marxianus Levadura salvaje del kéfir ACOMPAÑANTE
WDCM 00054 Candida albicans ACOMPAÑANTE

Así, mediante el método de pares (inóculos idénticos, en muestras idénticas, comparando estos dos nuevos medios BPM y BPMY con el clásico Baird Parker (con Mannitol Salt Agar no valía la pena, ya quedó demasiado invalidado en anteriores validaciones de los medios cromogénicos), los resultados no pudieron ser mejores, a favor sobre todo del BPMY Agar + FF:

 

Conclusiones de la validación en alimentos y en cosméticos

En cosméticos los falsos negativos en Baird Parker (BP) Agar son tremendamente frecuentes, en proporciones similares a como sucede en intercomparación; aqui han sido un 45% –> sensibilidad del 55%, frente a una sensibilidad del BPM Agar del 80%  y del BPMY Agar del 100% (ni un solo falso negativo).

Y en alimentos, BP obtiene 75%, mientras BPM alcanza un 95% y BPMY coincide con la cifra de cosméticos,  con otro inmejorable 100% de sensibilidad (ni un falso negativo).

Una subida del 45% de sensibilidad en BPMY (a una sensibilidad inmejorable del 100%) con respecto al método estándar con BP, es algo extraordinario nunca antes visto en microbiología de cosméticos.

Y una subida del 25% de sensibilidad en BPMY (a una sensibilidad infalible del 100%) con respecto al método estándar con BP, es algo extraordinario también en microbiología alimentaria.

Todos debemos saber aprovechar esta innovación sin esperar a que la burocracia nos diga dentro de 20 años que era verdad y que ya podemos hacerlo.

El Reactivo FF no presenta ni un solo falso negativo (sensibilidad del 100%) cuando se añade a las colonias de cualquiera de los St.aureus en cualquiera de los tres medios (BP, BPM, BPMY) y en cualquiera de las 40 matrices, generando antes de dos minutos una intensa luz azul cuando se observa en la oscuridad bajo luz UVA de 366 nm. Es infalible.

 

.

No sabemos en qué proporción se da todo esto en la vida real del día a día en los laboratorios con muestras naturales, pero ya hemos visto que en intercomparación y en esta validación, es decir, estando realmente presente Staphylococcus aureus, cerca de la mitad de las veces no éramos capaces de detectarlo con el método clásico con Baird Parker.

En cuanto a falsos positivos, los resultados no son tan espectaculares (ni en los medios ni en el Reactivo FF) y vamos a tener que seguir confirmando colonias sospechosas que sean FF+ (aunque muchas menos veces)

pero gracias al BMPY Agar, nos hemos quitado de encima el problema más terrible que teníamos hasta ahora:

liberar muestras que creíamos inocuas y en realidad tenían Staphylococcus aureus.

Volviendo a los falsos positivos, en cosméticos, la especificidad del BP ha sido del 50%, la del BPM mejora al 85% y la del BPMY es de sólo el 60% (al parecer la capacidad nutritiva de la yema de huevo disminuye la proporción de falsos negativos como vimos antes, pero aumenta la proporción falsos positivos).

Y en alimentos, BP 60% de falsos positivos (Especificidad nefasta del 40%). Tras confirmar con FF, la especificidad sube al 75%. BPM: 55% de falsos positivos (Especificidad inaceptable del 45%). Tras confirmar con FF, la especificidad sube al 80%. BPMY: 25% de falsos positivos (Especificidad muy mejorada del 75%). Tras confirmar con FF, la especificidad sube al 80%.

Empleando en alimentos  BPMY +FF, disminuimos un 40% la proporción de falsos positivos que se da actualmente con el método estándar del BP.

Empleando en cosméticos el BPM + FF, disminuimos un 35% la proporción de falsos positivos que se da actualmente con el método estándar del BP.

Adicionalmente, en TODOS los alimentos comparados, TODAS las cepas de Staphylococcus aureus crecen en BPMY Agar en sólo 24 horas, mientras en BP tardan siempre 48 h y en BPM, depende del alimento, tardan 24 ó 48 h.

En cosméticos, dada la letargia a la que les someten los pools conservantes, en todos los medios tardan todas 48 horas en crecer en casi todos los cosméticos

–> sólo en alimentos se pueden leer los resultados del BPMY Agar en sólo 24 horas.

El resto ha de seguir haciéndose en 48 horas, como sucede actualmente con Baird Parker.

La fermentación del Mannitol (medios BPM y BPMY virando de rojo a amarillo-naranja) sólo se da cuando los St.aureus no encuentran otra fuente de alimento más fácil en la muestra donde han crecido (sea de alimentos, sea de cosméticos), por lo que el amarilleamiento de la placa en BPM y en BPMY depende más de la muestra que de la cepa. Y no es una característica fiable. Aunque ayuda a decidir cuando en la muestra no existe una fuente nutritiva más adecuada para Staphylococcus aureus que el Mannitol.

En definitiva, el cambio del actual BP al nuevo método BPMY + FF (o al BPM +FF) supone una subida de sensibilidad del 25 % (alimentos) y del  45% (cosméticos), pasando a un extraordinario 100%: desaparición total de los falsos negativos.

Y supone una subida del 40% en la especificidad al cambiar de BP a BPMY + FF en alimentos (o una subida del 35% en la especificidad al cambiar de BP a BPM + FF en cosméticos), disminuyendo drásticamente la proporción de falsos positivos.

Consideramos inmejorables estos resultados e invitamos a todos los laboratorios que lean este artículo a colaborar en la validación final intercolaborativa para corroborar que podemos acabar de una vez con la tremenda incertidumbre en los resultados de Staphylococcus aureus en alimentos y cosméticos.

Si desea la validación completa (40 páginas), o si desea participar y lee esto antes de Julio de 2026, escríbanos a consultastecnicas@microkit.es

Si desea pedir BPM Agar (cosméticos), BPMY Agar (cosméticos o alimentos) y/o Reactivo FF, y acabar de una vez con la incertidumbre actual en la detección de Staphylococcus aureus, solicite los precios actualizados en pedidos@microkit.es

 

 

CANAL DE YOUTUBE DE MICROKIT

Videos de MICROKIT sobre nuestros productos más sorprendentes, en nuestro canal de youtube ¡No te los pierdas! 

Videos MICROKIT

¿Sabías que tenemos nuestro propio canal de youtube?

Así es: https://www.youtube.com/user/Microkit1/videos

Se trata de vídeos de entre 5 y 20 minutos que combinan divulgación y aplicación práctica.

En ellos descubrirá curiosidades y conceptos de microbiología que probablemente le sorprenderán.

Además de aprender a utilizar mejor estos productos tan especiales, adquirirá una visión mucho más amplia de la microbiología aplicada.

A la fecha de redacción de esta revisión de la entrada en el blog, tenemos ya disponibles los siguientes 30 vídeos:

 

Quanti P/A Clostricult para el recuento más eficaz de Clostridium perfringens en aguas. Hay 3 vídeos:

https://www.youtube.com/watch?v=A8WifR8mZ1k&t=10s

del entrañable primer cliente de este kit, que nos ayudó en su validación en aguas de consumo humano

https://www.youtube.com/watch?v=keVSi9E2uDg

un resumen rápido, y

https://www.youtube.com/watch?v=9ACxFVKJhrM

de otro gran cliente que nos ayudó a su validación en aguas envasadas

 

AIRESANO para desinfección del aire y Etanol 70º en spray para desinfectar superficies, ropa, manos… También hay 3 videos diferentes:

https://www.youtube.com/watch?v=FFxYkSf60cI

del fabricante de Airesano, Caramba

https://www.youtube.com/watch?v=7cJ5dxUF5LE

del fabricante del etanol de 790º en spray, Caramba

https://www.youtube.com/watch?v=rruGElrCBqk&t=7s

nuestra aportación en ambos temas

 

CRIOTECA, ANAEROTECA Y MPT-Vibrio cholerae PARA CONSERVAR CEPAS SALVAJES

para la conservación de cepas salvajes durante años

https://www.youtube.com/watch?v=Rau4mqTf3WE&t=59s

 

CEPAS CUANTITATIVAS ESTABLES

para control de calidad, validaciones, Challenge Test…

https://www.youtube.com/watch?v=4WJ8FQl6GIE&t=42s

 

VIALES P/A CON CALDOS PREPESADOS

Para detectar microorganismos del agua de la forma más sencilla y, a la vez, más certera 

https://www.youtube.com/watch?v=6OfsD7zU_8U&t=63s

 

LOS DIVERTIDOS FRIKIQUECOS

que puedes conseguir gratis con tus pedidos a MICROKIT ¡colecciónalos!

https://www.youtube.com/watch?v=T5wdFirBySE&t=111s

 

DRYPLATES: MÉTODO DEL PELLIZCO

Las placas deshidratadas que te ahorran 1 hora de trabajo en las  siembras en masa

https://www.youtube.com/watch?v=x_YkmBAxVEE

En este vídeo más completo de 9 minutos puedes entender mejor la hazaña de las DryPlates® y cómo usarlas:

https://www.youtube.com/watch?v=vkdRD5ulpSY&t=29s

 

ESPONJAS ABRASIVAS

para toma de muestras de superficies con la máxima eficacia

https://www.youtube.com/watch?v=TFT1VBA6IKY&t=44s

 

PREIDENTIFICACIÓN INSTANTÁNEA DE COLONIAS

para saber qué galerías debemos emplear cuando tenemos una colonia desconocida

https://www.youtube.com/watch?v=knxE5wH-kCI&t=29s

 

GALERÍAS DE IDENTIFICACIÓN

Las mejores galerías de identificación de colonias que puedes encontrar en el mercado          ¿por qué?

https://www.youtube.com/watch?v=9j4tbyghvZA

 

LAMINOCULTIVOS «DIPSLIDES» DESINFECTEST: DOS MÉTODOS EN UNO

para control de superficies y para screening semicuantitativo de líquidos sucios

https://www.youtube.com/watch?v=qJB0elPYvVU&t=6s

 

LISTERISWABBS GREEN Y OTROS ESCOBILLONES PARA SALMONELLA, E.COLI, HONGOS, ESTAFILOCOCOS, BACILLUS CEREUS…

para buscar microorganismos concretos en superficies

https://www.youtube.com/watch?v=gfGHksTSXCs&t=355s

 

DETECCIÓN DE MICROALGAS Y CIANOBACTERIAS

en aguas, para evitar envenenarse sin saberlo

https://www.youtube.com/watch?v=TZYC3ZKcSQM&t=257s

 

CONFIRMACIÓN ISO DE LISTERIA MONOCYTOGENES R/X

mediante el test de Rhamnosa/Xylosa

https://www.youtube.com/watch?v=ZHpWuUUWQFg&t=118s

 

PLAQUIS HERMÉTICAS: DE LA FILTRACIÓN DE MEMBRANA A LA ESTRÍA TRAS ENRIQUECIMIENTO

Las placas que ahorran espacio y recursos más valiosos que el mismo oro

https://www.youtube.com/watch?v=fS1ycmLpJ4Q&t=467s

 

MEDIOS CROMOGÉNICOS CROMOKIT ¿A QUE NO LO SABÍA?

las fama a veces se la llevan otros:

https://www.youtube.com/watch?v=-JVPVWxY8ZE&t=271s

 

DRYPLATES, DE LA MUESTRA A LA ESTUFA EN 10 SEGUNDOS

la revolución de la siembra en masa, también para siembra en estría

https://www.youtube.com/watch?v=vkdRD5ulpSY&t=331s

 

EL PROBLEMA DE LA CERTEZA EN LA DETECCIÓN DEL MAS ESQUIVO DE TODOS LOS MICROORGANISMOS: Staphylococcus aureus

Cómo un simple azúcar añadido al Baird Parker lo cambió todo en microbiología de alimentos y de cosméticos

https://www.youtube.com/watch?v=2661zhu_IzQ&t=637s

 

RECUENTO DE AEROBIOS Y DE HONGOS EN LA MITAD DE TIEMPO

¡en sólo 36 horas! Las fábricas de alimentos, bebidas y cosméticos pueden ahorrar ingentes cantidades de espacio y stock de producto en cuarentena

https://www.youtube.com/watch?v=qE2gNZH9KWQ&t=31s

 

MICROBIOLOGÍA DEL AIRE

cómo hacerla bien (remake del seminario/Jornada con más número de asistentes de la historia de MICROKIT, en México)

https://www.youtube.com/watch?v=JYcRtKbfvQI&t=91s

 

MINI-DRINKING-WATER

Laboratorio de bolsillo (KIT) para el más certero análisis de potabilidad del agua en tus viajes, cafetera, grifos privados, pozos y en el campo

https://www.youtube.com/watch?v=Y3dy5M0iJCQ&t=173s

 

DETECCIÓN MÁS CERTERA DE PSEUDOMONAS Y BURKHOLDERIA EN AGUAS FARMA-COSMÉTICAS: PSEUDOCULT P/A Y BURKHOCULT P/A

mediante los kits P/A ahorrará los falsos negativos propios de la filtración de membrana en estos microorganismos

https://www.youtube.com/watch?v=oLHcldiRG_s&t=299s

 

PLACAS RODAC ENVIROCOUNT

para control de superficies (y de aires por impacto)

https://www.youtube.com/watch?v=IpjOxjigyms&t=2s

 

EL FIN DE LA CONFUSIÓN EN MICROBIOLOGÍA COSMÉTICA: CUP12A

Un nuevo medio de cultivo resuelve la diversidad del ecosistema de los patógenos cosméticos

https://www.youtube.com/watch?v=vJdcR8hQrz8&

 

COLÍFAGOS SOMÁTICOS

el nuevo indicador en la nueva microbiología del agua

https://www.youtube.com/watch?v=cQNij-WXAYA

 

LA BACTERIA CARNÍVORA

de las costas y de la comida del mar, Vibrio vulnificus, ya se puede detectar mucho mejor

https://www.youtube.com/watch?v=nkpZSuHPXqA&

 

HONGOS DERMATOFITOS

un problema bien conocido pero con escasa prevención oficial

https://www.youtube.com/watch?v=CAm4BOehVQY&

 

KITPROPLUS

para detectar de inmediato la suciedad orgánica en superficies sin necesidad de aparatos

https://www.youtube.com/watch?v=gAh4isyUlRM&

 

MICROBIOLOGÍA DE COSMÉTICOS

cómo evitar las limitaciones de los métodos convencionales y realizar un control microbiológico más completo y acorde con el espíritu de la legislación. Incluso si todavía no dispone de su propio laboratorio de autocontrol: COSMETIKIT-EASYPLUS

https://www.youtube.com/watch?v=eQk0FO01hD4

 

EL EFECTO MATRIZ EN ALIMENTOS

conozca como reducir esta tremenda causa de falsos negativos, lo mismo que se hace desde hace décadas en microbiología de aguas y de cosméticos

https://www.youtube.com/watch?v=sSftQbDdG3s&

 

Y todavía nos queda crear más de 100 videos de otros temas de interés para el laboratorio de microbiología de alimentos, aguas, cosméticos, medicamentos, superficies, aire… aqui van unas cuantas ideas que ya tenemos en mente:

-MICROBIOLOGIA PARA QUÍMICOS E INGENIEROS

-AGUAS NATURALES NO TRATADAS Y COMO POTABILIZARLAS

-AGAR-AGAR, MUCHO MÁS QUE UN SOLIDIFICANTE

–¿CUAL ES LA MEJOR PEPTONA PARA CADA MEDIO DE CULTIVO? Del extracto de levadura a la polipeptona micológica

-Lo que un microbiólogo de 30 años no va a APRENDER en otros sitios

-¿0,1 mL o 1 mL? Diez veces más muestra puede cambiar un resultado — límite práctico de detección en recuentos.

-¿PCA, TSA o YEA? No todos los “recuentos totales” cuentan lo mismo

-¿Cuántos microorganismos respiramos en una habitación?

-¿Dónde colocar un muestreador de aire para que el resultado tenga sentido?

-Rosa Bengala vs Sabouraud: dos formas muy distintas de buscar hongos

-Candida albicans: ¿de verdad necesitamos microscopio para confirmarla?

-Las bacterias que no fermentan: el enorme cajón de sastre que esconde Pseudomonas, Burkholderia, Acinetobacter…

-Enterococos, estreptococos, Listeria, Pediococcus: parecidos que no son iguales — RAPID STR

-El cepario del laboratorio: 10 errores que acaban cambiando tus cepas.

-¿Cómo se valida de verdad un método microbiológico?

-¿Puede un laboratorio sacar sobresaliente en un intercomparativo y aun así tener un problema?

-Z-score: ¿dice realmente todo lo que creemos sobre la calidad de un laboratorio?

-27 años enviando microorganismos “a ciegas” a laboratorios: qué hemos aprendido.Los 10 errores que más hemos visto en 27 años de intercomparativos microbiológicos.

-Listeria monocytogenes: cómo encontrar una aguja microbiológica en un pajar alimentario.

-Salmonella: ¿por qué hacen falta enriquecimiento, aislamiento y confirmación?

-Chromosalm vs XLD: por qué usar dos placas para buscar la misma Salmonella

-¿Por qué Clostridium perfringens puede crecer sin una jarra de anaerobiosis?

-Corrosión microbiológica: bacterias capaces de comerse una instalación industrial.

Y también estos otros:

-Campylobacter: por qué una bacteria tan importante es tan incómoda de cultivar.

-Pluralibacter gergoviae, Pantoea agglomerans, Acinetobacter lwoffii: de bacteria casi desconocida a protagonista inesperada en cosméticos.

-Enterococos: por qué nos cuentan una historia diferente de la contaminación fecal.

-Lo que el Challenge Test NO te dice sobre la seguridad microbiológica de un cosmético.

-Antes de salir al mercado vs después de una retirada: dos fotografías microbiológicas muy diferentes.

-¿Qué nos enseñan las retiradas de cosméticos de Europa y Estados Unidos?

–BURKHOLDERIA CEPACIA COMPLEX, por qué está de moda en la industria farma-cosmética y cómo se detecta mejor?

–CLOSTRIDIOS, actualízate con las nuevas Normas ISO y con nuevos métodos más efectivos para su detección y recuento

–LACTOBACILOS, una nueva forma de enumerarlos sin los falsos positivos clásicos de los aerobios

–EL CALDO QUE LO CAMBIA TODO EN MICROBIOLOGÍA DE COSMÉTICOS, el realmente diseñado para los cosméticos actuales

–SALMONELLA, una revisión de los medios ISO para detección y aislamiento y sus mejoras

–SALMONELLA, confirmación más rápida y certera

–MEDIOS PREPARADOS PARA SIEMBRA EN MASA: tubos y frascos para stock de larga caducidad que permite hacerse placas cuando realmente las necesita

–¿IDENTIFICACIÓN O CONFIRMACIÓN DE LEVADURAS? Candida albicans

–UN INTERCOMPARATIVO DE ALIMENTOS DEBE TENER EN CUENTA EL EFECTO MATRIZ

–PRODUCTOS AUXILIARES PARA AUTOCLAVE

–¿ES NECESARIO UN ANTIBURBUJAS INERTE EN LOS AGARES DE CULTIVO?

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Vogel Johnson Agar, el gran olvidado para Staphylococcus aureus

Staphylococcus aureus y Vogel Johnson Agar

Vogel Johnson Agar, el gran olvidado para Staphylococcus aureus… ¡y puede ser la solución!

Medios más comúnmente usados para S.aureus

Si preguntamos en cualquier laboratorio qué medio usan para detectar Staphylococcus aureus, la mayoría dirán Baird Parker (industria alimentaria, cosmética y aguas) o Mannitol Salt Agar (industria farmacéutica).

Pocos emplean Vogel Johnson Agar, a pesar de ser un medio diferente a los otros dos, podría decirse que combina algo de ambos y puede ser un gran aliado.

El gran problema de S.aureus

El problema principal de los Staphylococcus aureus es su polimorfismo: que sus colonias son de aspecto muy diferente según la cepa y según crezcan desde diferentes muestras (matrices). Ya la ISO  6888 de alimentos lo reconoce y viene a decir algo así como: «las colonias típicas en Baird Parker son negras con reborde traslúcido y halo en el medio, pero… algunos S.aureus y en algunas muestras crecen sin halo, otros sin el reborde y otros de diferentes tonos de color gris en vez de negro»

De modo que el Baird Parker no sólo genera ingentes cantidades de falsos positivos a partir de cepas puras (no sólo de otros Gram positivos, también de Gram negativos e incluso de levaduras) sino que el efecto matriz tiene una influencia muy superior a la de cualquier otro medio de cultivo de los habituales para cualquier otro microorganismo: colonias diferentes según sea el producto en el que hemos aislado la cepa.

Hasta el punto que en los intercomparativos de alimentos, aguas y cosméticos,  según sea la cepa y la matriz elegidas, será más fácil acertar si está o no presente, jugando a pares y nones, que usando este medio de cultivo.

El rpf es una modificación del Baird Parker que todavía crea mayor confusión.

Selectividad de los diferentes medios de cultivo para S.aureus

El Baird Parker basa su supuesta selectividad en la glicina y el cloruro de Litio, por lo que es muy fácil encontrar falsos positivos:

https://www.microkit.es/fichas/BAIRD-PARKER-AGAR-polvo.pdf

El Mannitol Salt Agar basa su tremenda (excesiva) selectividad  en una gran proporción de cloruro sódico (75 g/L), por lo que en él, lo que es fácil encontrar son falsos negativos, aunque no faltan falsos positivos como Staphylococcus saprophyticus, que forma también colonias amarillas:

https://www.microkit.es/fichas/MANNITOL-SALT%20AGAR.pdf

Y el Vogel Johnson Agar basa su supuesta selectividad en los dos mismos ingredientes que el Baird Parker (la glicina a menor proporción y el cloruro de Litio a la misma proporción), por lo que también crecen en él muchos falsos positivos. Pero su gran ventaja es que combina la prueba del telurito potásico (colonias negras) del Baird Parker con la prueba de la fermentación del Mannitol (halo amarillo en medio rojo) del Mannitol Salt Agar, eliminando el exceso de selectividad de éste:

https://www.microkit.es/fichas/VOGEL-JOHNSON-AGAR.pdf

 

De modo que en este microorganismo, aparte del medio que usemos, hay que confirmar siempre cualquier colonia más o menos típica.

-Test de la Coagulasa

La prueba distintiva más habitual es la coagulasa (ej. látex MICROKIT KWD094), propia de S.aureus pero no de otros estafilococos.

Aunque no todas las colonias forman lo que deberían formar: grumos y fondo acuoso en S.aureus y aspecto lechoso sin grumos en los otros estafilococos.

Efectivamente, muchas veces encontramos grumos con fondo lechoso y la prueba no nos ha servido para nada.

Además hay otros microorganismos no estafilococos, que crecen falsamente positivos en Baird Parker, y que son coagulasa positivos, liando aun más el asunto.

Al menos la ventaja de la coagulasa es que es la única prueba de respuesta inmediata (30 segundos)

-Test de la DNA-asa y de la termonucleasa

Otra prueba supuestamente concluyente es la DNA-asa y la DNA-asa termoestable o termonucleasa, también propias de S.aureus pero no de otros estafilococos:

https://www.microkit.es/fichas/DNA-asa-TEST-AGAR.pdf

Pero lo mismo que sucede con la coagulasa, hay falsos positivos de microorganismos que no son estafilococos y son DNA-asa y/o termonucleasa positivas. Y en este caso, la prueba no es inmediata como el látex de la coagulasa, por lo que encima nos hace perder más tiempo.

-Otra prueba que supuestamente no debería fallar: la fosfatasa

Los medios cromogénicos para S.aureus se basan en esta prueba, y en función del sustrato cromogénico elegido, las colonias de S.aureus serán lilas, magenta, azul… mientras las de otros estafilococos y otros microorganismos serán de otros colores (sobre todo verdes y blancas)

Pero lo mismo que sucede en los medios clásicos, decepciona ver los resultados al emplear diferentes cepas de S.aureus… y sobre todo sin van combinadas con diferentes matrices (distintas muestras de alimentos, cosméticos…): el polimorfismo de S.aureus vuelve a despistarnos por completo, con placas multicolor: colonias lilas rodeadas de un potente verde que enmascara el lila, lilas sobre fondo verde, blanco-liláceas con halo verde y hasta hermosas «placas arco-iris» con toda la transición entre el lila y el verde…

-La solución: las galerías enzimáticas

La única solución que hemos encontrado hasta ahora es disponer de las galerías enzimáticas RAPID-STAPH (MICROKIT Ref: R8311009) y usarlas ante  cualquier colonia crecida en BPX19Y Agar (lo malo es si nos despistamos y se nos acaban, ya que al traerlas desde USA bajo pedido para dar su máxima caducidad, tardan varios días en llegar):

https://www.microkit.es/fichas/BAIRD%20PARKER%20BPX19%20CROMOGENIC%20AGAR%20polvo.pdf

https://www.microkit.es/fichas/Galer%C3%ADas%20RAPID.pdf

Cómo se usan estas galerías:

Lo bueno de estas galerías ante cualquier otra, es que sólo tardan 4 horas en darnos los resultados desde la colonia (esa misma tarde), y encima la mayoría de veces sale un código que sí que corresponde con una especie de estafilococo (no llega a resultados aberrantes o indeterminados). Lo cual no se puede decir de otras galerías.

 

Veamos este tercer medio tan olvidado y prometedor, más a fondo:

VOGEL-JOHNSON-AGAR

Agar para el aislamiento rápido de Staphylococcus aureus en medicamentos,
alimentos, muestras ambientales, manipuladores y muestras clínicas.
Pharmacopea USP XXI

COMPOSICIÓN

Glicina 10,0 g
Mannitol 10,0 g
Triptona 10,0 g
Fosfato dipotásico 5,0 g
Cloruro de Litio 5,0 g
Extracto de levadura 5,0 g
Rojo fenol 0,025 g
Agar-Agar 15,0 g
(Fórmula por litro)
pH final: 7,2 ± 0,2

PREPARACIÓN

Disolver 60 gramos en 1 litro de agua bidestilada. Agitar calentando hasta
ebullición, para la completa disolución. Autoclavar a 121°C durante 15
minutos. Enfriar a 45-50°C y añadir 6 ml de Telurito Potásico al 3,5%
(SPL016). Mezclar bien y verter en placas.

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO. AGITE EL BOTE ANTES DE USAR,
PARA ASEGURAR LA HOMOGENEIZACIÓN DE LOS EVENTUALES
GRADIENTES DE DENSIDAD DE LOS COMPONENTES. MANTENGA EL BOTE
BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO.

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO:

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio
siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar
laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque
no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…).

DESHIDRATADO: Polvo grueso, Rosado PREPARADO: Estéril, Rojizo
CONTROL DE CRECIMIENTO 24-48 horas a 35°C aproximadamente:
Staphylococcus aureus WDCM00034, Excelente, colonias negras con halo
amarillo (su gran ventaja: combina las propiedades del Mannitol Salt Agar con las del Baird Parker).  PR > 0,5, en concreto >50-150% de colonias respecto al número de ufc certificadas e inoculadas en TSA; esta variabilidad de la productividad depende de la composición y carga de la flora acompañante inoculada.
Staphylococcus epidermidis WDCM00036, Correcto, colonias traslúcidas o
negras, sin halo amarillo.
Salmonella typhimurium WDCM00031, Inhibido.
Escherichia coli WDCM00013, Inhibido.

PRESENTACIÓN: MEDIO DESHIDRATADO CODIGO: DMT343.

NOTA:

Este medio permite el rápido crecimiento de Staphylococcus aureus, de forma
diferencial, por lo que es ideal para control de manipuladores y para estudios
de microbiología farmacéutica, alimentaria y clínica donde se necesitan
resultados rápidos. Staphylococcus aureus reduce el telurito potásico a negro.
La fermentación del manitol queda indicada por un halo amarillo alrededor de
sus colonias negras. El telurito potásico, el cloruro de litio y la glicina inhiben
buena parte de la flora acompañante.

SIEMBRA E INTERPRETACIÓN

Sembrar en estría e incubar a 35°C aproximadamente, durante 24 y 48 horas.
En las primeras 24 horas, sólo los estafilococos coagulasa positivos son
capaces de crecer, con diminutas colonias negras rodeadas de un halo amarillo
que contrasta con el color rojo del medio. A las 48 aparecen los demás
estafilococos coagulasa negativos, sean manitol positivos o manitol negativos:
S.epidermidis, S.saprophiticus y S.intermedius crecen con colonias diminutas,
grises o negras, sin halo amarillo; otros estafilococos coagulasa positivos
forman colonias negras, con o sin halo amarillo según fermenten o no el
manitol. Existe una correlación entre fermentadores de manitol y patógenos.
Los S.aureus coagulasa positivos tienen a las 48 h grandes colonias negras
rodeadas de halo amarillo, que a menudo han virado todo el medio a amarillo.

Confirmar las colonias con el test de la coagulasa (KWD094) y con las galerías RAPID-STAPH (MICROKIT Ref: R8311009)

De modo que este medio puede ser la solución definitiva, dado que S.aureus crece con colonias negras (telurito potásico) con halo amarillo (fermentación del Mannitol) y sin las desventajas de la alta concentración de cloruro sódico (demasiado selectivo) propias del Mannitol Salt Agar; ni de la escasa selectividad + especificidad del Baird Parker.

Una vez estudiado su comportamiento, como siempre con los medios para Staphylococcus aureus, la teoría y la práctica distan demasiado. Ver la entrada de este newsletter:

https://www.medioscultivo.com/wp-admin/post.php?post=6639&action=edit&classic-editor

Para más información y precios actualizados consulte en microkit@microkit.es

Tras esta entrada y a la vista de los resultados, diseñamos otro medio de cultivo inspirado en el Vogel Johnson, que elimina de un plumazo los falsos negativos y biuenas parte de los falsos positivos del BP, del Mannitol y del VJ:

https://www.youtube.com/watch?v=2661zhu_IzQ&