MICROBIOLOGÍA DE ALIMENTOS 3 Y LOS PROBLEMAS DEL BAIRD PARKER

MAIL 3 ALIMENTOS Y LOS PROBLEMAS DEL BAIRD PARKER: FALSOS POSITIVOS, FALSOS NEGATIVOS, EFECTO MATRIZ EXAGERADO…

Staphylococcus aureus ¿Es el Baird Parker –o el rpf– la solución que necesito?

Detectar Staphylococcus aureus en alimentos: un reto pendiente

Si preguntas a cualquier profesional de microbiología qué medio utilizar para detectar Staphylococcus aureus en alimentos, la respuesta suele ser unánime: “Baird Parker”.

Pero lo más conocido no siempre es lo más eficaz. Como dijo Albert Einstein:

“Si estás haciendo las cosas igual que la mayoría, probablemente lo estés haciendo mal”.

Los resultados de los ensayos intercomparativos lo confirman. Los estafilococos dorados son el parámetro más crítico en microbiología de alimentos, el que más errores genera:

* Hasta la mitad de los laboratorios participantes en cada ronda fallan en este punto.

* Los falsos positivos y falsos negativos son demasiado habituales: se detecta Staphylococcus aureus cuando no está, o no se detecta cuando sí está presente.

¡Normal!

Si hasta la misma ISO 6888 pone al Baird Parker en su sitio:

“las colonias típicas son negras con reborde hialino y halo en el medio; pero hay cepas que crecen con colonias grises, en vez de negras, otras cepas no tienen reborde hialino y otras no provocan halo en el medio”.

Parece un chiste de mal gusto.

Pero es que, además, cada alimento interfiere de forma diferente en el aspecto de las colonias de Staphylococcus aureus ¡hasta las hay marrones!

Intentos de solución… sin éxito

* Algunas marcas añadieron fibrinógeno al medio para mejorar la detección. El resultado fue aún peor: la fiabilidad era comparable a tirar una moneda al aire.

* Más tarde surgieron los medios cromogénicos (incluido nuestro XStaph Agar y nuestra mejora BPX19 Agar).

Estos redujeron los falsos negativos, pero no solucionaron los falsos positivos, ya que estafilococos no-aureus y cepas de Bacillus spp. e incluso otros microorganismos,

según cual fuese la matriz alimentaria,

seguían creciendo con colonias típicas de S.aureus. Y éstos seguían con su polimorfismo colonial, aquí traducido a colores.

Era evidente que no podíamos seguir aceptando este nivel de incertidumbre en pleno siglo XXI.

La innovación de MICROKIT

Tras años de trabajo, en MICROKIT hemos conseguido dar el paso definitivo:

El medio de cultivo Baird Parker Mannitol Yema (BPMY), con los mismos componentes del Baird Parker clásico, pero también con Mannitol y el mismo suplemento de Yema de huevo con Telurito Potásico). Se trata de Staphylococcus aureus sólo si:

* Colonias negras, con medio alrededor a menudo virado del rojo al naranja o amarillo:

* Y además, las colonias emiten una intensa luz azul en máximo 2 minutos, tras añadirles una gota del reactivo Fosfatasa Fluorescente (FF), en la oscuridad, bajo luz UVA de 366 nm:

La fosfatasa alcalina es la prueba que usan los medios cromogénicos, pero en MICROKIT la hemos elaborado de forma que provoque fluorescencia (luz azul) en vez de color, lo que impide esas molestas transiciones púrpura-lila-verde que tanto confunden en los medios cromogénicos para este microorganismo. Aquí sólo hay dos opciones: Con o sin luz en dos minutos.

* Si busca “estafilococos coagulasa positivos” puede aplicar el test de látex (El mejor es el M-Ident coagulasa KWD094), aunque la correlación fosfatasa +/coagulasa + en Staphylococcus aureus es superior al 95%, lo que ahorra en 2 minutos la ambigüedad de resultados de los látex.

Recomendaciones de uso

Para obtener los resultados más fiables:

* Leer las placas en sólo 24 horas ¡en alimentos es un medio más rápido que el Baird Parker!

En cosméticos sí que hay que esperar las mismas 48 h que en el Baird Parker clásico

* Añadir una gota de reactivo FF, que haya hidratado hace menos de una semana, sobre colonias frescas (de 24h)

* Inclinar la placa para que el exceso de reactivo FF se escurra y no interfiera en la lectura

* Esperar dos minutos y ver bajo luz UVA de 366 nm como se va intensificando desde una luz azul tenue alrededor de la colonia, a una intensa luz azul en toda la colonia negra bañada con el reactivo FF

¡Por fin los laboratorios de microbiología alimentaria tienen a su alcance la máxima certeza en el microorganismo que más falsos positivos y falsos negativos genera cuando se trabaja con los medios tradicionales como Baird Parker o el rpf!

¡Hasta la próxima entrega a primeros de junio de 2026!

Puede conocer mejor este medio en:

https://microkit.org/producto/baird-parker-mannitol-bpm-agar/

Y entender mejor su manejo en el video:

https://www.youtube.com/watch?v=2661zhu_IzQ&t=4s

Consulta los precios actualizados de BPMY Agar (alimentos, con yema de huevo y telurito potásico) y BPM Agar (cosméticos, con sólo telurito potásico) en pedidos@microkit.es

Análisis patógenos cosméticos: seguir la legislación, o seguir las Normas técnicas?

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Análisis patógenos cosméticos: ¿seguir la Legislación, o seguir las Normas técnicas? El final de la confusión

Muchos laboratorios e industrias cosméticas cometen el gravísimo error de pensar que con analizar la ausencia de «los 4 patógenos ISO»…

ya están cumpliendo con la Legislación en materia de microbiología.

Algunos incluso se conforman con realizar los dos recuentos (bacterias aerobias y hongos),

imaginando, de forma terriblemente errónea, que si el recuento es cero, entonces no hay patógenos:

nada más lejos de la realidad, ya que los recuentos se hacen en una porción nada representativa de muestra: 0,1 g

y la muestra mínima en patógenos debería ser al menos 100 veces mayor: 10 g (en alimentos es de 25 g y en aguas de 100-250 mL,

incluso sólo 10 g se queda muy corto en un producto tan tremendamente inhibitorio como es un cosmético).

Confusión Normativa técnica/Legislación oficial

Esta confusión Normativa técnica/Legislación oficial, se debe a auditores ISO que están acostumbrados a otros sectores (alimentos, aguas…), donde ambos temas coinciden a la perfección:

la legislación de aguas y de alimentos indica cuáles son las Normas ISO que hay que seguir en cada parámetro microbiológico.

Y extrapolan que en cosmética será igual. Pero ¡Esto no es así!

Incluso los hay tan confundidos, que pretenden exigir a los laboratorios cosméticos el uso de medios con marcado ce

(el distintivo de los productos para diagnóstico, para analizar muestras humanas y animales, nada que ver con alimentos, aguas, ni cosméticos).

La legislación en cosméticos da libertad en el uso de métodos microbiológicos, siempre que estén validados.

Por cierto, ¿ha validado ya, en sus propias muestras, la metodología que emplea?

¿O cree que seguir las Normas ISO de microbiología de cosméticos, le exime de validarlas en sus muestras concretas?

Otra confusión o, llamémosle, ambigüedad

La legislación tampoco indica cuáles son los patógenos típicos en cosméticos, dejando el tema abierto, curándose en salud ante los nuevos y futuros patógenos emergentes.

La legislación lo que pide es la ausencia de patógenos (usando las palabras «inocuidad» y «seguridad»), no la ausencia de sólo 4 de ellos.

En Microkit como proveedor de medios de cultivo, kits y consultor en asesorías-auditorías específicas de microbiología,

y en KosmLab como laboratorio de análisis microbiológico de cosméticos,

llevamos ya demasiados años luchando contra esta confusión, en la que muchos laboratorios vuelven a caer tras las absurdas imposiciones de estos auditores sin razón.

Y la prueba de que no estamos equivocados, es que sigue habiendo 2-3 retiradas oficiales de mercado al año sólo en España por productos cosméticos de marcas importantes

que no cumplen el criterio oficial y han salido al mercado con algún patógeno que no es ninguno de «los 4 ISO»

En realidad hay una Norma ISO que arreglaría el tema, pero casi nadie la sigue porque supone mucho trabajo extra de confirmación de colonias tras enriquecimiento en medio general TSA.

La solución es mucho más fácil de lo que piensa

En Microkit, para laboratorios (de autocontrol y de externalización)

y en KosmLab, para industrias cosméticas sin laboratorio (o con laboratorio desbordado de trabajo),

arreglamos esta situación de la misma forma:

un solo medio de cultivo, una innovación que resonará en los libros de microbiología dentro de un siglo, que resuelve el problema de una vez:

CUP12A, en MICROKIT lo ofrecemos y en KosmLab lo empleamos en todos nuestros análisis.

Ya que detecta de forma sorprendente, y prácticamente sin falsos positivos, todos esos patógenos que no tienen Norma ISO en cosmética,

pero provocan retiradas de mercado porque las autoridades sanitarias sí que cumplen la legislación:

Estos son los patógenos, aparte de los 4 de siempre, que no debe contener ningún cosmético; ¿los está buscando su laboratorio?

-Aspergillus niger brasiliensis (moho patógeno Gr2 de transmisión por vía pulmonar) y otros muchos mohos alergénicos,

-Burkholderia cepacia complex, el patógeno emergente que es aún peor que Pseudomonas aeruginosa, y tan ubicuo como ésta en aguas de red; el emergente que más laboratorios buscan ya, pero olvidan todos los demás de esta lista

-Los frecuentes coliformes patógenos procedentes a menudo del agua de producción mal analizada (Pluralibacter gergoviae, Klebsiella spp, Enterobacter spp…),

-Enterobacterias patógenas (Proteus mirabilis, Salmonella spp, Serratia marcescens, Pantoea agglomerans…)

-Enterococos fecales, patógenos muy serios (el autor de esta entrada sufrió una septicemia con coma de 4 días en la UVI por culpa de ellos) de enorme resistencia a los conservantes

-Pseudomonas putida, la «prima» de P.aeruginosa que genera una fluorescencia muy tenue y pasa desapercibida en Agar Cetrimida

¡Siga la legislación! Continuar sin hacerlo es una temeridad inimaginable en otros sectores

Para poder seguir la legislación y olvidarse de lo que le aconsejen esos auditores tremendamente confundidos, puede:

1-si tiene laboratorio de autocontrol, pida el Agar CUP12A a Microkit y úselo en todos sus lotes, junto a los otros medios que ya emplea en la búsqueda de patógenos.

¡Hágalo ya, este medio está disponible desde hace ya más de 4 años (a la fecha de creación de esta entrada) y sólo lo emplea todavía un 10% de los laboratorios que deberían haberlo implementado ya de forma urgente!

¡Esto es una emergencia!

2-si no tiene laboratorio de autocontrol, externalice sus análisis en el primer laboratorio de España que usa dicho medio desde que nació (KosmLab), además de los de siempre,

y por ello en sus informes certifica la ausencia de patógenos en su cosmético, especificando cuáles son exactamente (los 12 que más retiradas de mercado han provocado en todo el mundo en los ultimos años)

¡Triplique la seguridad microbiológica de sus cosméticos con un solo medio de cultivo adicional!

Además KosmLab es el laboratorio élite de España, ronda tras ronda, en ensayos intercomparativos de microbiología cosmética,

obteniendo siempre las mejores calificaciones de excelencia (100% de rendimiento)

Lo que le permitirá seguir la idea legislativa:

«cuando se subcontrata con un tercero los ensayos microbiológicos, es la propia empresa que subcontrata quien debe evaluar la capacitación del subcontratado para la adecuada realización de los ensayos sobre las muestras que remite».

Y elegir un Laboratorio por ser ISO 17025, en vez de elegir el que mejores calificaciones intercomparativas obtiene,

es un gravísimo error en microbiología de cosméticos, lo hemos visto a lo largo de toda esta entrada.

Ellos están limitados por la Normativa en contra de la Legislación. Harán excelentemente el análisis de los 4 patógenos, pero olvidarán todos los demás.

Puede profundizar en los patógenos más habituales encontrados en cosméticos

(ya que si se saben buscar, se encuentran con una frecuencia muy superior a la que todos creen: 4 de cada 100 lotes antes de ponerlos en el mercado*)

en esta otra entrada:

https://www.medioscultivo.com/cosmeticos-seguros/

*lógicamente esta media depende de cada fabricante:

los hay que se acercan al 0% absoluto

y otros (incluidas grandes marcas) se alejan demasiado,

pero si no lo saben, no lo pueden solucionar,

de modo que dependen sólo de la suerte para que ninguno de sus cosméticos sea analizado en las campañas al azar que realizan las autoridades sanitarias,

y de donde salen la mayoría de las retiradas de mercado.

Y también dependen de la gran fortuna que tienen si, hasta ahora, ninguno de sus cosméticos problemáticos ha provocado problemas en la población que los usa,

aun conteniendo patógenos que no son «los 4 de siempre» porque nadie los buscó.

Pida su medio CUP12A en microkit@microkit.es, no es un medio costoso en absoluto, pero no usarlo si que lo puede acabar siendo

https://www.microkit.es/#gsc.tab=0

Externalice sus análisis de patógenos cosméticos en kosmlab@microkit.es, tanto si no tiene laboratorio de autocontrol, como si lo tiene y está saturado de muestras

https://cosmlab.wixsite.com/kosmlab

Citrato acelerado para confirmar E.coli el mismo día

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Confirmación de las colonias azules de presuntos E.coli en CCA, el mismo día, gracias al test del Citrato acelerado (Simmon´s Citrate Agar clásico)

Los test negativos suelen estar infravalorados, para el potencial que suponen a la hora de diferenciar positivos de falsos positivos.

Por ejemplo la catalasa es una prueba magnífica para confirmar sus negativos (Enterococos, Clostridios y Lactobacilos),

ya que son mucho más escasos que sus positivos que burbujean (casi todas las bacterias típicas de microbiología de alimentos, aguas, cosméticos, medicamentos… excepto las mencionadas arriba)

Lo mismo sucede con el test del Citrato de Simmon´s: E.coli es negativo;

y eso lo diferencia de los falsos positivos en, por ejemplo, el medio oficial de aguas CCA

que en MICROKIT llamamos MugPlus desde que lo creamos en 1995.

https://www.microkit.es/fichas/MUGPLUS%20COLIFORM-E.COLI%20AGAR%20CCA.pdf

Así, para confirmar las colonias azuladas de E.coli en CCA (MugPlus), el método ISO 9308-1, habla de realizar el test del indol.

De este modo, los falsos positivos, que crecen con colonias de colores cercanos al azul en CCA (MugPlus), si son indol negativos, quedan descartados, ya que E.coli es indol positivo.

En el CCA (MugPlus) de MICROKIT, el test del indol se puede realizar directo en las colonias que hayan crecido en tonos azules,

ya que nuestra peptona es muy rica en triptófano, lo que ahorra las 18-24 horas de incubación adicional en agua de triptona con triptófano:

https://www.microkit.es/fichas/TRYPTONE-TRYPTOPHAN-WATER-PEPTONE-WATER-polvo.pdf

Pero en realidad para hacer las cosas 100% bien, se tardan 24 horas adicionales, ya que para que sea realmente confirmativo, el test de indol debe realizarse reincubando a 44ºC:

dado que algunas Klebsiellas de colonias lila o violáceo, son indol positivas a 35-37ºC,

que es la temperatura a la que habremos incubado el CCA-(MugPlus) para detectar tambien los demás coliformes totales.

Existe otra prueba definitiva para descartar colonias azuladas en CCA (MugPlus) que no son E.coli, que se puede acelerar a sólo 4-6 horas con la técnica que explicamos a continuación:

El test del Citrato acelerado

https://www.microkit.es/fichas/SIMMONS-CITRATE-AGAR.pdf

Esta aceleración no es un invento de MICROKIT:

algunos microbiólogos veteranos lo hacen y nosotros sólo hemos tenido el privilegio de haberles escuchado antes de que se jubilaran,

y lo transmitimos aquí a todos los microbiólogos que nos sigan y no lo sepan.

Además, hemos dado un paso adicional y facilitamos su uso estandarizado en viales preparados de Simmon´s Citrate Agar,

con el volumen y pH ideales, viales que hemos bautizado con la referencia KV1CIT.

Izda: E.coli, tras 4-6 horas sigue verde lima;

Dcha: falso positivo (Klebsiella pneumoniae), tras 4-6 horas ha virado a verdeazulado

CÓMO USAR EL TRUCO DE LOS VIALES MICROKIT PARA ACELERACIÓN EN LA CONFIRMACIÓN DE E.coli

1-Diluir 5 (o más) colonias azuladas del mismo aspecto y tono (pedir opinión a los compañeros del laboratorio, ya que cada persona ve diferente los colores), crecidas en MugPlus CCA, en un tubo Eppendorf al que hayamos añadido 0,1-0,2 mL de solución salina o Ringer. ¡Agitar bien!

2-Añadir con una pipeta o jeringa todo el contenido mezclado, en un vial de Agar Citrato de Simmons acelerador (MICROKIT Ref: KV1CIT),

verificando que el inóculo se esparza por la superficie del medio. Cuantas más colonias se añadan en los 0,1-0,2 mL de salina, más rápida será la reacción.

3-Incubar 4-6 h a 35ºC.

4-Si a las 4 h ya hay viraje a verde-azulado, no hace falta seguir incubando otras 2 horas: las colonias NO son de E.coli; si no, seguir incubando 2 horas más.

5-Comparar con el color verde lima de un vial sin inocular y decidir:

6-Citrato Agar sigue de un color similar lima (y además es Indol + a 44ºC, las colonias no son mucosas): definitivamente es E.coli

7- Citrato Agar ha virado a verde azulado o azul, (y es indol – a 44ºC y/o las colonias son mucoides):

no es E.coli, puede ser alguna cepa de Klebsiella, o también de Enterobacter, Citrobacter, incluso de alguna Salmonella…

El color pistacho o azulado se mantiene durante al menos 48 horas adicionales:

si empieza a realizarlo tarde en su jornada laboral, también puede usar este test sin tener que quedarse más tiempo en el laboratorio,

y leerlo al día siguiente.

A veces la innovación no necesita un nuevo medio o kit, y simplemente es la forma en que se sabe utilizar mejor un medio de cultivo clásico.

Si desea información y precios actualizados de estos viales estandarizados para acelerar el test del Citrato,

y descartar falsos positivos de E.coli (en CCA-MugPlus o en el medio que sea),

consulte a: microkit@microkit.es

MICROBIOLOGÍA DE PRODUCTOS COSMÉTICOS-3 y el ahorro de tiempo

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MAIL 3 COSMÉTICA: CERTEZA EN TUS RESULTADOS y… El tiempo de incubación sí que importa, ni te quedes corto ni te pases

¿Ahorro de tiempo? ¿o falsos negativos?

En el afán de obtener resultados cuanto antes, muchos laboratorios incuban el caldo de enriquecimiento para detección de patógenos únicamente durante 18–24 horas.
El problema es que no todos los microorganismos crecen a ese ritmo.
Ejemplos claros:

-Candida albicans

-Burkholderia cepacia

-Salmonella spp.

Todos estos necesitan al menos 36 horas de enriquecimiento para ser detectados.

El riesgo de los análisis de jueves y viernes

Otro error frecuente ocurre cuando las muestras fabricadas los jueves o viernes se empiezan a analizar esos mismos días. ¿El resultado?
Al dejar el caldo de enriquecimiento, incubando más de 48 h (hasta el lunes), algunos microorganismos que habían crecido deja de ser viables: entran en letargia y no se detectan luego en placa.

Esto se debe a la propia curva de crecimiento microbiano: tras la fase exponencial, llega la fase de degeneración o “auto-suicidio” provocado por los metabolitos acumulados.

Ejemplos de microorganismos afectados:

-Pseudomonas aeruginosa

-E. coli

-Staphylococcus aureus

¿La consecuencia? Falsos negativos.

¿Qué alternativas tienes?

Venir al laboratorio los sábados o domingos a sembrar las placas en el momento adecuado.
O… dejar esas muestras para empezar a analizarlas los lunes.

Lo que no es aceptable es seguir iniciando análisis jueves y viernes, porque ahora ya sabes que eso aumenta muchísimo la probabilidad de falsos negativos.

Y, si además entran en juego festivos o puentes, el problema se multiplica. Calcular bien los tiempos es clave para que tus resultados sean fiables.

De la incertidumbre a la certeza

Ese clásico “nunca hay nada” es en realidad “nunca encuentro nada”.

Y lo que debería ser seguridad se convierte en incertidumbre y dudas en tus resultados, justo lo contrario a lo que buscamos: certeza y tranquilidad para ti y para tu laboratorio.

Evidencia publicada

Todo esto no es teoría.

¿Sabías que hay un estudio que demuestra todo lo que te estoy contando? Consulta la pag 6 de: https://microkit.es/fichas/LPT-NEUTRALIZINGBROTH-INCOLORO.pdf , donde verás esto referido a los patógenos en cosméticos:

Eso sí: este estudio sólo es válido para el caldo LPT Neutralizing Broth de MICROKIT, aunque otros intenten imitar su nombre. Nadie más ha publicado datos equivalentes con otros caldos, así que los resultados de esos… son, como poco, una incógnita.

¡Hasta la próxima entrega hacia finales de Mayo-2026!

No olvides visitar nuestro Canal de youtube para aprender muchas cosas interesantes de microbiología de cosméticos: https://www.youtube.com/user/Microkit1/videos

MICROBIOLOGÍA DE AGUAS ENVASADAS-3 y Pseudomonas aeruginosa ¿de verdad hacen falta 48 horas de incubación y otras 24 horas de confirmación?

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MICROBIOLOGÍA DE AGUAS ENVASADAS-3 y Pseudomonas aeruginosa:

Detección confirmativa de Pseudomonas aeruginosa en sólo 24 h

La ciencia avanza, mientras la Normativa nos estanca

En nuestro mensaje anterior ya esbozamos que todos los parámetros microbiológicos en aguas envasadas pueden detectarse y cuantificarse en tan sólo 18-24 horas.

Sin embargo, la legislación actual sigue anclada en métodos tradicionales arcaicos que requieren al menos 48 horas para obtener resultados,

debido al desconocimiento o a la lenta adopción de los avances tecnológicos del siglo XXI (sólo implantada en el CCA de E.coli-Coliformes

que nosotros diseñamos en 1995 como el original Agar MUGPLUS).

Un ejemplo muy ilustrativo es el que vimos en nuestra anterior misiva sobre los Enterococos fecales, cuya detección puede resolverse en sólo 18-24h

(y la confirmación en 5 segundos con el test de catalasa ϴ MICROKIT KMT299, algo que olvidamos recalcar allí) en todas las muestras, tanto positivas como negativas.

Algo similar ocurre con Pseudomonas aeruginosa, donde, aunque la confirmación si aparecen presuntos positivos,

requiera otras 4-24 horas más, todas las muestras negativas pueden liberarse también en sólo 18-24 horas.

Para este parámetro contamos con el Rapid Cetrimida CN Agar, un medio idéntico al ISO CN Agar, pero con un cromógeno añadido…

…que permite visualizar colonias rojas de presuntas Pseudomonas aeruginosa en sólo 18-24 horas.

* A las 18-24 horas, todas las muestras negativas (sin crecimiento de colonias rojas) pueden liberarse con total seguridad.

* A las 48 horas, en caso de colonias presuntivas, se confirma cada colonia roja gracias a la fluorescencia azulada bajo luz UVA (366 nm) que desarrolla alrededor.

Pseudomonas aeruginosa en Rapid CN: colonias rojas en 18h y fluorescentes en 36-48 h

Además, dado que a las 18 horas ya contamos con una alerta temprana,

es posible confirmar las colonias sospechosas que obtengamos, en sólo otras 24 horas mediante una prueba definitiva MICROKIT:

Tubos de caldo Acetamida (TPL113) + Reactivo Nessler (SMT007): P.aeruginosa vira el caldo a marrón-ladrillo, las demás cepas no lo hacen.

Así, en la mayoría de muestras, las negativas, se pueden liberar los lotes en 18-24 h;

y sólo cuando aparezcan colonias presuntamente positivas, sólo en esos casos, volvemos a tardar las 48 h del método clásico.

**Eliminación de falsos positivos (incluso los “hermanos” de P.aeruginosa) ¡en sólo 2 horas!**

Incluso en el medio más selectivo presente o futuro, pueden darse falsos positivos por la presencia de 4 “primos” como P. putida, P.fluorescens, Ralstonia pickettii o Achromobacter xylosoxidans

e incluso por la presencia de 5 falsos positivos “hermanos”, no diferenciables en ningún medio de cultivo presente o futuro,

pero sí confirmando después: P.stutzeri, P.mendocina P.balearica, P.monteilii y Burkholderia cepacia.

Estos 9 falsos positivos, en algunos manantiales, prolongan los análisis 24 horas adicionales (Acetamida + Nessler) en demasiadas muestras,

por su presencia recurrente en dichas envasadoras concretas.

Una prueba clásica contundente fue olvidada por la Norma ISO 16266:

Reducción Aeróbica de Nitratos (RAN) en sólo 2h, una prueba definitiva de tremenda rapidez (MICROKIT Tubos TPLRAN + Reactivo Nitratos A + B).

Si la colonia inoculada en el tubo, no vira en 2h a fucsia, entonces no es Pseudomonas aeruginosa.

De modo que ya no es necesario sustituir el CN (o el Rapid CN) por otros medios cromogénicos basados en el BAP (β-alanyl aminopeptidasa)

para la detección certera de Pseudomonas aeruginosa, ya que dicho cromógeno no elimina ni uno solo de los 7 falsos positivos antedichos.

Pero lo que es peor, en muchas cepas estresadas de P.aeruginosa propias de aguas oligotróficas,

como son las aguas de manantial ¡da falsos negativos! cepas de Ps.aeruginosa que crecen pero no colorean, colorean tarde o colorean débilmente.

En definitiva, empleando Rapid CN Agar (18 h) y confirmando sus colonias rojas con el test de RAN (2h), reducimos el tiempo de detección confirmativa de Pseudomonas aeruginosa de 3 días a sólo uno.

PLAQUIS®: innovación en formato y diseño

Otro tema del máximo interés: Nuestros medios están disponibles en un formato exclusivo:

las PLAQUIS®, placas herméticas de 55 mm de diámetro, especialmente diseñadas para membranas de 47 mm.

Este formato aporta tres ventajas fundamentales:

–Hermeticidad: implica durabilidad real de hasta 6 meses; además, la tapa no se separa de la base incluso en caídas accidentales en cabina, estufa o durante el transporte de una a otra.

–Apilado seguro y eficiente: su encaje permite apilar las placas de forma muy estable, lo que evita accidentes durante su manipulación y permite optimizar el espacio en la estufa y en la cabina.

– Ahorro de espacio: su menor altura y diámetro permiten duplicar la capacidad de almacenamiento en almacén y estufas, además de reducir drásticamente el volumen de residuos.

De hecho, en una caja donde apenas caben 30 plaquitas convencionales de las demás marcas, caben el doble, 60, de nuestras PLAQUIS®.

Ventajas adicionales de las Plaquis®

Otro aspecto diferencial es que ninguno de nuestros medios destinados al análisis de aguas envasadas requiere refrigeración.

A diferencia de otros fabricantes que trasladan erróneamente al sector del agua, condiciones de conservación propias de medios clínicos (con antibióticos termolábiles, sangre o suero),

nuestras PLAQUIS® se almacenan fácilmente en un armario común, entre 15-25 °C;

la única precaución, como siempre en todo medio preparado: protegidas de la luz y de variaciones bruscas de temperatura.

¡Ahorre espacio en sus neveras!

No te pierdas nuestro vídeo sobre las Plaquis®: https://www.youtube.com/watch?v=fS1ycmLpJ4Q&t=459s

Mirando hacia adelante

El éxito de las PLAQUIS® ha sido tan grande que próximamente lanzaremos un nuevo molde de fabricación propia,

sin la marca “Pall” en la base, lo que permitirá una visualización aún más clara del medio.

Además, dejaremos de depender de proveedores de Canadá,

ya que las nuevas placas se fabricarán directamente en España, promoviendo la economía nacional.

Da el salto a un nuevo universo microbiológico con nuestros medios avanzados, en PLAQUIS®, y optimiza tus análisis de aguas envasadas con mayor rapidez, fiabilidad y certeza.

En nuestra próxima entrada de aguas envasadas, la 4, hablaremos sobre el parámetro

que actualmente genera los falsos negativos más frecuentes en intercomparación en las envasadoras de agua:

los clostridios, y cómo abordar de raíz este desafío en su detección (que encima, sólo tardará 24 horas).

¡Hasta la próxima entrega de microbiología de aguas envasadas, hacia el 21 de Mayo de 2026!

CONTROL MICROBIOLÓGICO DEL AEROPLANCTON

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MICROBIOLOGÍA DEL AEROPLANCTON QUE RESPIRAMOS: DE LA SEDIMENTACIÓN PASIVA CON MICROORGANISMOS QUE NO CAEN, AL MUESTREO RIGUROSO POR IMPACTO

El aire es una de las principales vías de transmisión de microorganismos, tanto los que causan enfermedades como los que contaminan productos sensibles como alimentos, medicamentos y cosméticos.

Durante mucho tiempo, los métodos de análisis del aire eran muy poco fiables.

Intentar capturar microorganismos dejando placas abiertas era como «rezar» para que algo cayera en ellas.

Este método de sedimentación pasiva no tiene en cuenta algo tan fundamental como que los microorganismos son aeroplancton:

están suspendidos en el aire y rara vez caen por sí solos, si no van acompañando a partículas de polvo, más pesado.

Por eso, era un método cualitativo, ineficaz e impredecible.

La evolución hacia la fiabilidad: el método de impacto

A partir de la década de 1970, se desarrollaron muestreadores de aire que utilizan un flujo laminar para «impactar» las partículas del aire directamente en un medio de cultivo.

Este es el método oficial y normativo actual.

Pero según se emplee, los resultados pueden ser muy diferentes, ya que además del método, intervienen variables de gran importancia:

-volumen del muestreo por sala,

-volumen de muestreo por placa (número de placas por m3),

-velocidad de impacto de los microorganismos en el medio,

-caudal del aire,

-efecto desecación (de la pared celular, además de la del medio de cultivo tras impactar el aire),

-adición de antidesecantes a las placas, como el antiburbujas de Microkit

-efecto rebote por la tensión superficial del medio,

-efecto “paso de largo” por el diseño del muestreador y de la placa,

-placa Petri o placa Rodac,

-número y localización de muestras,

-medios de cultivo más adecuados en el aire,

-temperaturas de incubación,

-inactivación de los residuos de desinfectantes empleados en el aire,

-aplicación del factor NMP en función del número de poros del cabezal…

En un mundo ideal, todas estas variables deberían estar fijadas para que todos los datos en distintas fábricas y edificios fueran comparables.

La estandarización en microbiología del aire

En MICROKIT, fuimos pioneros en la estandarización de estos parámetros.

Nuestro estudio de 2002, «PARÁMETROS CRÍTICOS EN MUESTREO DE AIRE» (disponible en la web de MICROKIT), sirvió como base para la Norma ISO 100012, una guía fundamental para la microbiología ambiental.

De todas formas los estudios de MICROKIT son más completos que dicha Norma ISO, ya que abarcan más variables, y los regalamos dentro del manual de instrucciones de nuestros dos equipos de muestreo por impacto.

Actualmente, la microbiología del aire está regulada básicamente por 3 Normas ISO:

-ISO 100.012 de ambientes interiores y climatización,

-UNE 171.340 de hospitales (derivada de la primera),

-ISO 14.698 (y otras muchas más) de salas blancas.

Y por Farmacopea en industria farmacéutica.

Le presentamos el muestreador de aeroplancton que le permite seguir todas estas Normas y que ostenta el récord con más unidades vendidas en el mundo: el MBS.

Ventajas del Muestreador MBS

Portátil y ligero: Con solo 700 g, es compacto, fácil de transportar y manejar incluso en «muestreos de paseo». .
Calidad: Fabricado en el Reino Unido, su diseño optimizado minimiza el efecto rebote, lo que permite una mayor recuperación de colonias por placa. En 15 años de distribución, ¡ni uno solo ha necesitado reparación! El equipo con mayor longevidad y con menor gasto postventa .
Económico y práctico: Utiliza pilas AA estándar, que son fáciles de conseguir y reemplazar, a diferencia de las engorrosas baterías personalizadas de otros equipos. Viene con pilas recargables de alto rendimiento (hasta 150 muestreos sin tener que recargarlas)

Precio muy competitivo; los habrá aún más baratos, pero su calidad no tiene nada que ver.

Soporte técnico incomparable: Con cada compra, incluimos nuestros estudios detallados que explican Velocidad de impacto, efecto rebote, efecto desecación, volumen de muestra por placa, volumen de muestra por SALA, medios de cultivo ideales, temperaturas de incubación según las poblaciones buscadas, corrección NMP según el número de poros del cabezal, correlación con los recuentos de superficies, frecuencia, lugar y número de muestreos por volumen de sala, criterios de aceptabilidad… No solo vendemos un producto, ofrecemos un conocimiento único y bien respaldado. .
Diseñado tanto para placa normal de 90 mm como para placa convexa Rodac, aunque recomendamos esta ultima porque minimiza el efecto rebote de los reflujos que se crean en la placa de 90 mm entre el medio y la pared de plástico. Simplemente cambiando las pestañas con un destornillador podrá cambiar de tipo de placa o de marca de placa; nosotros lo enviamos colocado para usar Rodac con el diámetro exacto de nuestra marca ENVIROCOUNT, dado que con ellas la recuperación es ¡el triple! que con placas de 90 mm .
Servicio postventa en España: Nuestro ingeniero aeronáutico calibra los equipos directamente en nuestras instalaciones, garantizando un servicio rápido y eficiente. El equipo llega con su certificado de calibración, pero es recomendable recalibrarlo cada 200-500 muestreos o al menos cada 3 años.

Modo de empleo sencillo

Supongamos que nuestros jefes o nuestra empresa ya nos han comprado el MBS.

Veámos como se muestrea con él de forma sencilla y precisa:

Prepara el equipo: Abre el cabezal de acero inoxidable de 220 poros, coloca la placa de cultivo (preferiblemente una placa convexa Rodac para minimizar el rebote), verifica que está bien ajustada horizontalmente es sus tres pestañas y retira su tapa. .
Desinfecta: Limpia el cabezal con nuestro spray de etanol o con nuestras toallitas con alcohol y vuelve a colocarlo correctamente ajustado. .
Muestrea: Coloca el MBS en el lugar que quieres analizar, enciéndelo y presiona «Start». El equipo recordará la última configuración. También puedes pasear con él por toda la sala, eso sí bien alejado de él para que tus microorganismos no interfieran. En climas templados aconsejamos 200 L por placa, porque es el punto de inflexión (menos volumen es poco, más volumen no genera recuentos más altos, por el efecto desecación); en climas cálidos aconsejamos 50 L por placa. En salas blancas y estériles también da MUCHO mejores resultados tomar 5 placas de 200 L y sumar los resultados para darlos por m3, que tomar los 1.000 L en una sola placa. Esto para cualquier marca de muestreador. .
Espera: El muestreador se apagará automáticamente al terminar para ahorrar energía. .
Incuba: abre el cabezal y retira la placa, verifica que los orificios del cabezal se hayan marcado en su superficie (señal de muestreo correcto) y tápala para incubarla. .
Resultados: Multiplica el recuento de colonias de una placa de 200 L por 5 para obtener el recuento por m³. Para muestras de salas blancas o estériles, es más fiable sumar los resultados de 5 muestreos de 200 L que hacer uno solo de 1000 L, ya que se evita el efecto de desecación (de la pared celular, no solo de la placa).

Un muestreador para cada necesidad: MBS y Microflow

Mientras que el MBS de UK (con un caudal fijo de 100 L/min) es el preferido en la industria alimentaria, cosmética, depuradoras, quirófanos, mutuas de RRLL por el Síndrome del Edificio Enfermo…,

… el Microflow de Italia es un referente para las salas limpias y estériles de la industria farmacéutica, porque es el único muestreador de impacto que permite graduar el caudal, es decir, minimizar la velocidad de impacto y, por tanto, eliminar en extremo el efecto rebote.

Aunque reducir el caudal suponga, lógicamente, aumentar el tiempo de muestreo. Por lo demás es similar al MBS.

Demuéstrales a tus jefes, auditores e inspectores que sabes lo que haces, que conoces todas las variables en microbiología del aire y que eliges la mejor opción para obtener resultados fiables y precisos.

Pide tu muestreador MBS o Microflow hoy mismo. Para precios actualizados, contáctanos en pedidos@microkit.es

No te pierdas nuestra otra entrada sobre microbiología del aire:

https://www.medioscultivo.com/wp-admin/post.php?post=4883&action=edit&classic-editor

Ni el remake de la conferencia que dimos en México en 2016 sobre muestreo microbiológico del aire, la más exitosa y aplaudida de los 37 años de historia de MICROKIT hasta la fecha de publicación de esta entrada:

https://youtu.be/JYcRtKbfvQI?si=iZoLOdRuFjaQW2GD

MICROBIOLOGÍA DE ALIMENTOS-2 y El efecto matriz

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MAIL 2 ALIMENTOS y El efecto matriz en microbiología alimentaria

El gran olvidado en la Normativa y en los protocolos clásicos que genera el mayor pico de falsos negativos en los laboratorios de microbiología de alimentos.

Es tan evidente que los alimentos sirven de comida a los microorganismos, que a pocos se les ocurre pensar que desde que los homínidos prehistóricos nos igualaron en capacidad intelectual, encontraron plantas aromáticas y especias que les permitían conserva mejor los alimentos…

…aunque ellos no sabían que era porque impedían a los microbios proliferar en dichas matrices…

Efecto matriz en microbiología de alimentos: ¿de verdad es tan importante que hasta provoca la mayoría de falsos negativos a nivel universal?

¿Por qué resulta tan complejo alcanzar la máxima calificación en los ensayos intercomparativos de alimentos?

En otras áreas de la microbiología, la importancia de neutralizar inhibidores es incuestionable.

* En microbiología de aguas, nadie analiza una muestra sin inactivar previamente el cloro con tiosulfato sódico.

* En microbiología de cosméticos, nadie comienza sin neutralizar los conservantes mediante caldos como LPTN, Letheen o Eugon LT.

Sin embargo, en microbiología alimentaria, se sigue pasando por alto este paso fundamental: la inactivación de conservantes (incluidas las especias y aromáticas como saborizantes ¡y conservantes! naturales). Y es ahí donde los resultados pueden perder coherencia.

El gran olvidado en este campo es el efecto matriz, una inhibición imprevisible de ciertos microorganismos que están presentes en el alimento y por culpa de la cual, no los detectamos.

Sea por los inhibidores propios del alimento (conservantes, especias, salmueras, jarabes…), sea por los inhibidores generados por otros microorganismos durante su enriquecimiento.

La paradoja de las normas actuales

Las Normas ISO no han contemplado este aspecto, situando a los laboratorios de alimentos en un escenario crítico. ¿Realmente es un problema insalvable?

La respuesta es no.

¿Y si existiera un caldo actualizado, con todos los neutralizantes necesarios para cualquier conservante autorizado en alimentos, sea natural, sea artificial?

¿Y si además estuviera validado como exige la legislación?

Una alternativa validada y eficaz

En 2008, MICROKIT desarrolló y patentó, a partir de su experiencia en intercomparaciones y en el sector cosmético y de aguas, pero para alimentos, un medio de cultivo específico: el Agua Peptonada Tamponada Neutralizante (APTN, en inglés BPNW).

Este caldo está formulado con todos los neutralizantes necesarios para inactivar cualquier conservante autorizado en alimentos, además de contrarrestar el efecto inhibidor de especias como ajo, pimentón, pimienta, perejil, apio, romero, tomillo o cúrcuma, entre otros.

También neutraliza los metabolitos de la microbiota acompañante (bacterias acidolácticas, aerobios, hongos…), que con frecuencia interfieren en el crecimiento de los microorganismos de interés.

No se trata de una simple agua de peptona tamponada:

* Está validada en múltiples rondas intercomparativas.

* Garantiza resultados con mayor certeza y robustez.

* Ha demostrado reducir significativamente los falsos negativos frente a los caldos convencionales. Sobre todo, si se usa en los alimentos más inhibitorios, a [x2]

Tenemos grandes clientes enamorados de nuestro BPNW, y no sólo en nuestro país.

Y no olvidemos que en salmueras y jarabes, además de usar BPNW, hay que partir de la dilución -2 (no de la madre -1) para obtener resultados coherentes. Sólo hay que comparar los resultados en paralelo usando ambas diluciones para darse cuenta:

Paradoja del poder inhibitorio intrínseco en algunos alimentos:

en ellos detecta mejor la dilución -2 (arriba de la foto) que la (-1), abajo

Evidencia en cifras

* En la ronda 100 de Seilalimentos (ensalada), todos los laboratorios que emplearon APTN obtuvieron la máxima calificación (10/10, sin falsos positivos ni negativos en 13 parámetros microbiológicos). Ningún laboratorio con caldos clásicos alcanzó dicho resultado.

* Analizando las 20 rondas entre 2017 y 2024, la excelencia (ausencia de falsos negativos) se logró en el 81,34% de laboratorios que usan APTN, frente a un 52,21% de quienes usaron aguas de peptona sin neutralizantes. Casi un 30% más de laboratorios con excelencia, a favor del APTN.

* El número medio de falsos negativos por usuario fue de 0,62 con APTN, mientras que con caldos tradicionales ascendió a 1,39: más del doble.

La decisión está en tus manos

Es cierto: APTN supone una inversión superior respecto a las aguas de peptona clásicas.

Pero lo que aporta es inestimable: la tranquilidad de saber que tus análisis reflejan la realidad, sin comprometer la calidad ni la fiabilidad de tus resultados.

¿Seguir con lo económico y conocido?

¿O apostar por la certeza que tu laboratorio merece?

Sólo tú eliges

Pero recuerda…

si sigues como hasta ahora, no vas a neutralizar los conservantes naturales y artificiales de los alimentos, ni los metabolitos de la microbiota acompañante,

por lo que vas a disparar la incertidumbre en la idoneidad de tus resultados analíticos.

https://www.microkit.es/fichas/BUFFERED%20PEPTONE%20NEUTRALIZING%20WATER.pdf

Solicita la información que necesites en microkit@microkit.es

¡Hasta la próxima entrega sobre mejoras en la microbiología de alimentos a mediados de Mayo-2026!

M17 Agar para detección y recuento de estreptococos lácticos

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Detección y recuento de estreptococos lácticos: M17 Agar

Los estreptococos lácticos son bacterias clave para la elaboración de derivados lácteos, como el queso y el yogur

Aunque tradicionalmente se clasificaban dentro del género Streptococcus (Ej: Streptococcus thermophilus), muchas especies lácticas se han reclasificado en el género Lactococcus (Ej: Lactococcus lactis)

Son Gram positivos, anaerobios facultativos, que producen ácido láctico mediante la fermentación de azúcares, principalmente lactosa. Son bacterias catalasa negativas.

Se reconocen al microscopio por formar cadenas de cocos.

M-17 AGAR

Detección y enumeración de estreptococos lácticos

COMPOSICIÓN

Triptona 2,50 g
Digerido pépsico de carne 2,50 g
Digerido papaínico de soja 5,00 g
Extracto de levadura 2,50 g
Extracto de carne 5,00 g
Lactosa 5,00 g
Glicerofosfato sódico 19,00 g
Sulfato de Magnesio 0,25 g
Acido ascórbico 0,50 g
Agar-agar 15,00 g
(Fórmula por litro)
pH final: 7,1 ± 0,1

PREPARACIÓN

Disolver 57 g de medio en 1 litro de agua destilada.
Calentar agitando hasta ebullición para su completa disolución.
Repartir en tubos o frascos.
Autoclavar a 115 ºC durante 20 minutos.

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO.
MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y
OSCURO. AGITE EL BOTE ANTES DE USAR.

DESHIDRATADO CODIGO: DMT087

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio
siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar
laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque
no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)
DESHIDRATADO: Polvo grueso, crema
PREPARADO: Estéril, Crema
CONTROL DE CRECIMIENTO 24-48 h a 37°C aproximadamente:
Enterococcus faecalis WDCM00087, Correcto, Puntiforme.
Streptococcus uberis MKTC 994 T, Correcto.
Streptococcus mutans MKTA25175**, Correcto.
Lactobacillus delbruckii MKTA9649**, Escaso.
Escherichia coli WDCM00013. Correcto.
**Las colecciones TIPO prohíben el uso de su referencia por lo que indicamos
la nuestra, directamente trazable a la colección TIPO.

PRESENTACIÓN: MEDIO DESHIDRATADO

MODO DE EMPLEO E INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS

Sembrar en profundidad 1 ml de muestra y de su serie de diluciones decimales.
Incubar a 37 ºC aproximadamente, durante 48 horas para Str. thermophilus y a
30 ºC aproximadamente, durante 48-72 horas para los estreptococos mesófilos.
Los Streptococcus termófilos y mesófilos forman colonias de 1-2 mm, en
función de su densidad en la placa.Confirmar al microscopio que se trata de
diplococos o estreptococos Gram (+).

El usuario es el único responsable de la eliminación de los microorganismos
según la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la
basura.

https://www.microkit.es/fichas/M-17-STREPTOCOCCUS-AGAR.pdf

Consulte los precios actualizados del M17Agar de MICROKIT en pedidos@microkit.es

MICROBIOLOGÍA DE PRODUCTOS COSMÉTICOS-2 y la Muestra mínima / inactivación correcta de conservantes

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MAIL 2 COSMÉTICA y la Muestra mínima e inactivación correcta de conservantes

¿Por qué 1 g?

En seguridad microbiológica, la representatividad de la muestra lo es todo:

– En alimentos, incluso en aquellos tan inhibitorios como el pimentón o la mostaza, se exige analizar 25 g para la búsqueda de patógenos.

– En aguas, el mínimo aceptado son 100 mL en potables y 250 mL en envasadas.

– Y, sin embargo, en cosméticos, siendo tan inhibitorios,… la práctica más extendida es analizar ¡tan sólo 1 g!

La pregunta es inevitable: ¿de dónde sale este “mínimo tan mínimo”?

La respuesta puede sorprenderte: de la simple comodidad de disolverlo en un tubo con 9 mL de caldo inactivador. Nada más. Y, siendo sinceros, no parece un motivo sólido para justificar un análisis con semejante impacto.

Motivos de peso para trabajar con una muestra mayor

La legislación está de tu parte.

No te exige limitarte a 1 g. Tampoco a 100 g. Lo que sí exige es que seas capaz de demostrar que tu producto es seguro: libre de patógenos en todo lote, en cada lote. A tu criterio… pero ¡ay de ti si analizan tu cosmético en sus campañas de muestreo y tiene algún patógeno, aunque sólo sea 1 ufc/50 g!

Los microorganismos no se distribuyen “a partes iguales”.

Los microorganismos no siguen reglas matemáticas de homogeneidad al distribuirse, no siguen la distribución Normal de Gauss como ocurre en química. Si un lote de 100 kg contiene 100.000 Pseudomonas aeruginosa (aprox. 1 ufc cada 1 g), la mayoría de las muestras de 1 g estarán libres de ella, porque se acumulará en algunas otras porciones de 1 g. ¿El resultado? Un riesgo enorme de falsos negativos, que no es aceptable en un control de calidad serio.

Las Buenas Prácticas de Laboratorio van más allá.

Sí, muchos inspectores recomiendan tomar muestras del inicio, del centro y del final del lote. Es correcto… pero insuficiente si cada una de esas fracciones es de sólo 1 g, o peor aún, si la suma de las tres fracciones es de sólo 1 g.

Una práctica más robusta

¿Qué pasaría si desde ahora analizas 10 g de muestra en un frasco con 90 mL de caldo inactivador? Y enriqueces los 10 g (no sólo 1 g, al extraer 10 mL para enriquecer en otro caldo como te dicen los protocolos obsoletos basados en medicamentos)

Incluso puedes mezclar, por ejemplo: 3 g del inicio, 4 g del centro y 3 g del final.

Si lo primero que te viene a la cabeza es que así tendrías que ampliar tu capacidad de incubadoras y multiplicar el gasto de caldo… creo sinceramente que la pregunta que deberías hacerte es otra:

¿No debería preocuparte mucho más la posibilidad de estar obteniendo falsos negativos porque tus muestras son demasiado pequeñas, no representativas?

El reto de los caldos inactivadores

Otro punto crítico: los caldos más habituales (Letheen modificado, Eugon de efectividad reducida por Reach) no neutralizan todos los conservantes permitidos actualmente en cosmética.

De ahí surge la paradoja: las Normas ISO llegan a exigir que valides el caldo en cada análisis… una exigencia tan impracticable como redundante. Y lo más importante:

Las Normas ISO de microbiología cosmética NO son de obligado cumplimiento. ¿Cómo?

No aparecen ni en el DOUE ni en el BOE. Son, en esencia, una moda del sector. Y no lo decimos a la ligera: tenemos amplias conversaciones con las autoridades sanitarias que lo confirman.

La alternativa que sí da certeza

¿Y si existiera un caldo actualizado, con todos los neutralizantes necesarios para cualquier conservante autorizado en cosmética?

¿Y si además estuviera validado como exige la legislación?

La buena noticia es que sí, ya existe. Y está validado por intercomparación.

¿Es más caro? Evidentemente: la calidad, los componentes y la robustez tienen un precio.

Pero lo que realmente ofrece es algo que no tiene precio: certeza en tus resultados

Tenemos grandes clientes enamorados de nuestro LPT Neutralizing Broth, porque les hace obtener las mejores calificaciones en los inters de muestras microbiológicas ciegas.

Sobre todo si se usa a doble concentración.

Por cierto, si añades a este caldo 2 gotas/L de Antiburbujas MICROKIT (SBL001) en cosméticos que generan espuma o 10 mL/L de Miristato de Isopropilo en cremas, leches y pomadas, aumentarás de forma exponencial la eficacia de tus análisis, al homogeneizar mucho mejor la solución madre, gracias a ellos.

La decisión está en tus manos:

¿Prefieres seguir con lo cómodo y barato, como hace la mayoría?

¿O apostar por la tranquilidad de saber que tus análisis reflejan la verdad?

https://www.medioscultivo.com/letheen-eugon-o-lpt-neutralizing-broth/

Validado: ver pag 4-5 de: https://microkit.es/fichas/LPT-NEUTRALIZINGBROTH-INCOLORO.pdf

Solicita la información que necesites en microkit@microkit.es

¡Hasta la próxima entrega a primeros de Mayo-2026!

LENA CLOSTRIDIUM PERFRINGENS LACTOSE AGAR BASE

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CLOSTRIDIUM PERFRINGENS LACTOSE AGAR BASE (LENA) para aislamiento selectivo de Clostridium perfringens en alimentos según ISO 15213-3:2024

Medio idéntico a lo indicado en esta Norma ISO:

COMPOSICION

Enzimatic digest of casein 10,0 g

Meat extract 10,0 g

Sodium chloride NaCl 5,0 g

Lactose C₁₂H₂₄O₁₂ 10,0 g

Phenol Red C₁₉H₁₄O₅S 0,1 g

Agar-agar 15 g

(Fórmula en g/L)

Ajustar a pH final tras autoclavado: 7,3 ± 0,2

PREPARACION

1-Disolver 50,1 g de medio en 1 litro de agua bidestilada. Calentar hasta ebullición, agitando para su total homogeneización. Dispensar en tubos o frascos herméticos y esterilizar en autoclave a 121ºC durante 15 min. No sobrecalentar. El color final del medio es naranja. Se puede hacer stock de este LENA base esterilizado, manteniendo hasta 4 semanas a 5ºC.

2-Llevar hasta 44-47 ºC, 100 mL de LENA base DMT295 y añadir 1 mL de una solución de Neomycina sulfato (250 mg) SMT015 esterilizada por filtración (por 0,2 µ) en 10 mL de agua destilada estéril (para 1 L de LENA). Esta solución antibiótica se puede mantener a 5ºC hasta 4 semanas en tubos o frascos herméticos.

3-Añadir a los dos anteriores 5 mL de emulsión estéril de yema de huevo SBH010. Agitar hasta que los 3 ingredientes queden homogéneos

4-Dispensar en placas Petri estériles. Las placas así preparadas se pueden mantener en tuppers de cierre hermético (para que no pierdan humedad) hasta 4 semanas a 5ºC.

USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO. MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO, EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO. AGITAR ANTES DE USAR PARA ASEGURAR LA HOMOGENEIZACIÓN DE LOS eventuales gradientes de densidad de los COMPONENTES.

PRESENTACIÓN

-Medio deshidratado LENA BASE, botes 500 g, CÓDIGO: DMT295

-Emulsión de yema de huevo estéril CÓDIGO SBH010

-Neomycina NO estéril en viales de 250 mg, para añadir a 10 mL de agua destilada estéril/vial y elaborar 1 L de medio final/vial, Caja 40 viales CÓDIGO: SMT015. Si se usa SMT015 NO estéril:

-Agua destilada estéril en Tubos de 10 mL CÓDIGO: TPL001+

-Filtros estériles de carcasa para jeringa (lúer), 0,2 µm y 30 mm de diámetro, CÓDIGO: VHU237

-Jeringas estériles 20 mL para los filtros VHU237, CÓDIGO: VPL089

-Neomycina polvo estéril, para añadir a 10 mL de agua destilada estéril/vial y elaborar 1 L de medio final/vial ahorrando VHU237 y VPL090, CÓDIGO SMT015+I

CONTROL DE CALIDAD

DESHIDRATADO: Polvo de color rosado PREPARADO: Estéril, color rojo coral (foto página anterior).

CONTROL DE CRECIMIENTO CUANTITATIVO 24 horas a 46ºC aprox:

Clostridium perfringens WDCM00007 Colonias amarillas con halo amarillo (ver foto)

E.coli WDCM00012 Completamente inhibido

Bacillus subtilis WDCM00003 Colonias amarillas sin halo de precipitación

MODO DE EMPLEO E INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS

Seguir las directrices de la Norma ISO 15213-3:2024

Emplear también el Rapid perfringens Medium BASE (RPM): Ver DMT293

Tambien hay que emplear otros medios clásicos según ISO 15213-3:2024: TSC Agar DMT175 con su suplemento D-Cicloserina SMS252, Columbia Blood Agar DMT020 con suplemento de sangre, SIM Agar DMT112 y reactivos Indol Kovacs SBH056, fosfatasa ácida -cancerígena- la cual imaginamos permitirán sustituir por MUP SMT009 como en la búsqueda de C.perfringens en aguas, por demostrarse como método equivalente)

https://www.microkit.es/fichas/C-PERFRINGENS-LACTOSE-AGAR-BASE-LENA.pdf

Ver tambien el caldo C.PERFRINGENS RAPID MEDIUM BASE (RPM):

https://www.microkit.es/fichas/C-PERFRINGENS-RAPID-MEDIUM-BASE-RPM.pdf

Consulte precios actualizados en pedidos@microkit.es