Archivo de la categoría: microbiologia de aguas

Optimización en los análisis microbiológicos de
AGUAS Y BEBIDAS.
Nuevos métodos de análisis microbiológicos utilizados exitosamente en los laboratorios líderes

¿Qué microorganismos estamos bebiendo?

¿Qué microorganismos estamos bebiendo? Lo que revelan las aguas naturales más allá de los análisis habituales

El agua cristalina que brota de una fuente de montaña o de pueblo nos inspira confianza. Está fresca, sabe bien y procede directamente de la naturaleza. ¿Qué podría tener de malo? Son aguas naturales… Hay algo en lo que coinciden todos los mayores de nuestros pueblos: cada uno está convencido de que el agua de su fuente es la mejor del mundo.

¿Quién no ha bebido alguna vez de una fuente de montaña, convencido de que aquella agua cristalina, fresca y deliciosa tenía que ser excelente?

Pero ¿y si su aspecto no tuviera prácticamente nada que ver con su calidad microbiológica?

Para comprobar hasta qué punto coinciden, en MICROKIT® decidimos analizar diferentes aguas naturales de la Península ibérica, aprovechando para recolectar 17 puntos que encontramos durante nuestros viajes de agosto y septiembre de 2026. Buscamos en casi todos los casos aguas famosas por su presunta pureza o lo más alejadas posible de la civilización.

No nos limitamos a las fuentes: incluimos también surgencias, aguas superficiales (Un río reconocido por su extraordinaria calidad ecológica y una laguna de aguas turquesa esmeralda, tan espectaculares que parecen completamente puras), una alberca y un pozo.

Las zonas muestreadas estaban en las provincias de Madrid, Ávila, Zamora, Cuenca, Albacete y Valencia, además del distrito portugués de Bragança.

Y, además de investigar los indicadores microbiológicos convencionales, quisimos ir más allá, buscando microorganismos oportunistas como Pseudomonas aeruginosa y el complejo Burkholderia cepacia, así como colífagos somáticos.

No pretendíamos elaborar un mapa de la calidad del agua de la Península Ibérica ni determinar qué porcentaje de sus fuentes es potable. Nuestro objetivo era más sencillo: observar qué microorganismos podíamos detectar y, especialmente, qué información aportaban los distintos métodos microbiológicos.

Nuestra experiencia en diversos cursos de supervivencia en plena naturaleza ya nos había enseñado algo sorprendente: encontrar agua natural microbiológicamente potable es mucho más difícil de lo que parece. Y no hablamos de selvas tropicales, donde abundan las enfermedades transmitidas por el agua, sino de nuestras propias latitudes europeas, templadas, aparentemente mucho más seguras.

Los resultados nos han dejado varias enseñanzas, aparte de la que ya teníamos de supervivencia.

  1. ¿Qué microorganismos encontramos en las aguas naturales?

En nuestra serie exploratoria de 17 aguas naturales obtuvimos los siguientes resultados:

Microorganismos investigados Detecciones
Coliformes-E.coli detectados con Colicult P/A, estriados en Agar MugPlus (CCA) y confirmadas las colonias azules con indol + y las rojas con oxidasa – 76,5 %
Enterococos fecales detectados con Enterocult P/A y confirmados con catalasa – 88,2 %
Clostridium perfringens presuntivos, detectados con Clostricult P/A a 44ºC 70,6 %
Pseudomonas aeruginosa detectada con Pseudocult P/A, estriada en Agar Cetrimida y confirmadas las colonias (pigmentadas y fluorescentes, o no) mediante Nitratos y Acetamida-Nessler 23,5 %
Burkholderia cepacia presuntiva, detectada con Burkhocult P/A, estriada en Cromokit BCPT Agar y confirmadas las colonias con OF Glucosa (no eran Aeromonas) y ADH (no eran Pseudomonas aeruginosa) 11,7 %

En este video se estudian estos dos ultimos kits, pero en aguas farmacosméticas: https://www.youtube.com/watch?v=oLHcldiRG_s

Los porcentajes corresponden exclusivamente a las muestras estudiadas, no a una estimación de la prevalencia en las aguas naturales de la Península Ibérica. Algunas detecciones fueron débiles, tardías o confirmadas con dudas, por lo que deben interpretarse como resultados presuntivos.

Pero lo que más nos interesó no fueron sólo los positivos, sino las aparentes contradicciones entre unos análisis y otros.

  1. ¿Cómo puede un agua tener casi cero aerobios y contener indicadores de contaminación?

Encontramos aguas naturales con recuentos extraordinariamente bajos de aerobios cultivables y, sin embargo, positivas para coliformes o enterococos.

Por ejemplo, una fuente presentó 0 UFC/mL a 22 °C y sólo 3 UFC/mL a 35 °C, pese a que se detectaron ambos grupos de indicadores de contaminación fecal.

La explicación es sencilla: no estamos buscando lo mismo ni en el mismo volumen.

En nuestros recuentos de aerobios analizamos 1 mL, mientras que los métodos de detección de indicadores emplean volúmenes mayores (100 mL) y, en nuestro caso, procedimientos de enriquecimiento.

Además, las condiciones de incubación y el medio de cultivo seleccionan qué microorganismos consiguen formar colonias.

Por eso, obtener 0 UFC/mL no significa que el agua esté estéril, y mucho menos que sea potable.

  1. La temperatura cambia la población que vemos

Otro resultado sorprendente fue la diferencia entre los recuentos a 22 y 35 °C.

En una muestra encontramos 90 UFC/mL a 22 °C y ninguna colonia a 35 °C. En otra, a la inversa, sólo 7 UFC/mL a 22 °C frente a 35 UFC/mL a 35 °C.

Es decir, la temperatura no se limita a acelerar o retrasar el crecimiento: puede seleccionar fracciones diferentes de la microbiota cultivable en las aguas naturales.

Sin identificar las especies no podemos saber exactamente qué poblaciones predominaban en cada caso. Pero sí podemos afirmar que un recuento de aerobios a una sola temperatura no describe toda la microbiología de un agua natural.

  1. El problema de los falsos positivos presuntivos en aguas naturales

Quizá la enseñanza metodológica más importante apareció al investigar Pseudomonas aeruginosa.

El 94,1 % de las aguas produjo resultados positivos presuntivos en Pseudocult P/A, al ser un kit diseñado para aguas tratadas de la industria farmacosmética. Sin embargo, sólo pudimos confirmar mediante Nitratos (RAN) y Acetamida la presencia de P. aeruginosa en el 23,5 % del total de muestras.

Esto no significa que todos los demás aislamientos fueran necesariamente falsos positivos, porque no realizamos identificaciones moleculares. Significa que un resultado presuntivo de screening no puede darse como definitivo si falta una identificación confirmada.

Además, encontramos un aislamiento que no presentaba fluorescencia en Agar Cetrimida y, sin embargo, dió positivo en Acetamida, algo ya descrito como «colonias atípicas» en la Norma ISO de Pseudomonas aeruginosa en aguas.

Por tanto, ni el crecimiento en Cetrimida demuestra por sí solo la identidad de P. aeruginosa, ni la ausencia de fluorescencia permite descartarla automáticamente.

Algo semejante ocurrió con la búsqueda del complejo Burkholderia cepacia: varios aislamientos que crecieron en los medios utilizados presentaron perfiles bioquímicos distintos de los esperados: Decidimos no atribuirles una identidad que no habíamos demostrado.

La conclusión es especialmente importante para quienes trabajamos con medios de cultivo: la selectividad de un método debe interpretarse teniendo en cuenta la matriz que estamos analizando. No es lo mismo una agua oligotrófica farmacosmética, casi estéril, que un agua natural con una enorme diversidad en su microbiota.

  1. ¿Y los colífagos?

También investigamos colífagos somáticos, virus capaces de infectar determinadas bacterias y utilizados como indicadores de contaminación fecal.

No encontramos calvas de lisis en las muestras examinadas de aguas naturales, incluso aumentando el volumen analizado en parte de ellas de 1 mL a 2, de 2 a 5, de 5 a 10 y de 10 a 36 mL.

Sin embargo, no podemos interpretar estos negativos como prueba de ausencia de colífagos en 100 mL de agua.

Este resultado nos recuerda otra limitación esencial de la microbiología: lo que no detectamos no siempre está ausente.

  1. Entonces, ¿es seguro beber agua de una fuente natural?

La respuesta no puede obtenerse mirando el agua, probándola, ni siquiera contando únicamente sus aerobios.

Un agua transparente puede contener indicadores microbiológicos incompatibles con los criterios exigidos al agua destinada al consumo humano.

Tampoco debemos confundir la detección de una bacteria ambiental con la demostración de un riesgo sanitario concreto: los indicadores, los microorganismos oportunistas y los patógenos tienen significados distintos.

Nuestro estudio no pretendía clasificar las aguas naturales de las provincias visitadas, ni extrapolar sus porcentajes al conjunto de España y Portugal. Sí permite ilustrar las limitaciones de interpretar aisladamente los resultados microbiológicos.

De las 17 aguas analizadas, sólo 2 cumplieron todos los criterios microbiológicos evaluados:

  • 11,8 % cumplieron todos los criterios.
  • 88,2 % incumplieron al menos uno.

Y lo más revelador: las dos aguas que cumplieron los criterios ¡estaban cloradas! Una procedía de una fuente municipal en un gran municipio y la otra de una casa de campo conectada a la red del pueblo más cercano.

Es decir, ninguna de las aguas naturales sin tratar que analizamos cumplió todos los criterios microbiológicos.

Es cierto que nuestras 17 muestras no permiten afirmar que todas las aguas naturales sean microbiológicamente no potables. Pero los resultados invitan a desconfiar de una creencia muy extendida: que el agua, por proceder directamente de la naturaleza, es necesariamente saludable.

Porque incluso en los parajes más apartados puede haber animales aguas arriba, bañándose, bebiendo… o haciendo algo bastante menos inocente.

Y ni siquiera el agua que gotea de una estalactita está necesariamente a salvo: la roca puede haberla filtrado durante muchísimo tiempo, pero el contacto posterior con guano de murciélagos puede comprometer su calidad microbiológica.

La naturaleza puede filtrar el agua. Lo que no hace es garantizarnos su potabilidad.

El agua más cristalina, fresca y agradable al paladar no tiene por qué ser la microbiológicamente más segura.

La gran lección

Después de décadas diseñando medios de cultivo y comparando metodologías microbiológicas, este pequeño estudio nos ha recordado algo que también observamos en alimentos y cosméticos:

Lo que encontramos en una muestra depende de los microorganismos que contiene, pero también del volumen que analizamos, del medio y método que utilizamos y de las condiciones en las que incubamos.

Y cuando se trata de agua para beber, estas diferencias no son una simple curiosidad de laboratorio.

Porque la naturaleza nos ofrece aguas naturales de aspecto idílico. Pero la potabilidad hay que demostrarla. La belleza del agua no garantiza su calidad microbiológica.

Nuestros resultados muestran que distintas aguas de aspecto perfectamente normal pueden contener indicadores microbiológicos que obligan a cuestionar su aptitud para el consumo.

Pero también muestran que no basta con buscar muchos microorganismos: hay que saber interpretar correctamente cada resultado.

No todas las bacterias ambientales representan el mismo riesgo. No todas las pruebas positivas constituyen una identificación. Y no todos los resultados negativos tienen la misma capacidad para descartar contaminación.

Nuestro trabajo fue exploratorio, con un número limitado de muestras obtenidas en distintos entornos y sin un diseño estadístico representativo. Por eso no sería correcto extrapolar sus resultados a todas las fuentes de España y Portugal.

Lo que sí podemos afirmar es que ni la transparencia, ni el sabor, ni la baja cantidad de aerobios cultivables garantizan la potabilidad de un agua.

Que nuestros antepasados bebieran de los ríos no significa que nosotros podamos hacerlo sin consecuencias. La civilización no nos ha hecho invulnerables a los microorganismos del agua. Y algunos pueden provocar bastante más que una diarrea del viajero.

MICROKIT® — Microbiólogos especializados en medios de cultivo, métodos de detección, análisis e intercomparaciones microbiológicas.

Agosto 2026 en MICROKIT®: cuatro nuevos vídeos mientras otros descansaban

Cuatro vídeos. Cuatro problemas microbiológicos. Un solo mes.

Agosto suele ser sinónimo de vacaciones, descanso y desconexión. En MICROKIT® este año también hemos intentado descansar… pero no demasiado.

Durante el mes de agosto hemos preparado nada menos que cuatro nuevos vídeos técnicos, ya disponibles en nuestro canal de YouTube, sobre cuatro problemas muy diferentes de la microbiología aplicada: desde microorganismos emergentes en nuestras costas hasta el autocontrol microbiológico de cosméticos y la validación de la limpieza de superficies.

 

Vibrio vulnificus: la bacteria carnívora está cada vez más cerca

El aumento de la temperatura de las aguas está favoreciendo la expansión de Vibrio vulnificus, un microorganismo que durante mucho tiempo hemos asociado a otras regiones del mundo, pero cuya presencia merece cada vez mayor atención también en nuestras costas.

En el vídeo explicamos por qué está adquiriendo importancia, dónde debemos buscarlo y qué herramientas microbiológicas permiten detectarlo.

https://www.youtube.com/watch?v=nkpZSuHPXqA

Hongos dermatofitos en playas y piscinas: los grandes olvidados

Cuando pensamos en el control microbiológico de playas y piscinas solemos pensar inmediatamente en bacterias. Pero compartimos estos ambientes con otro grupo de microorganismos capaces de producir infecciones muy conocidas: los hongos dermatofitos.

¿Los buscamos suficientemente? ¿Sabemos realmente qué estamos pisando cuando caminamos descalzos por determinadas superficies húmedas?

Este vídeo pone el foco precisamente en ellos y en su detección microbiológica.

https://www.youtube.com/watch?v=CAm4BOehVQY&

Su primer laboratorio de autocontrol microbiológico de cosméticos

¿Es necesario disponer de un gran laboratorio para comenzar a realizar el autocontrol microbiológico de los cosméticos?

En este vídeo mostramos cómo Cosmetikit® permite iniciarse en el autocontrol microbiológico de una forma sencilla y práctica, reuniendo todos los elementos necesarios para realizar los análisis fundamentales sin convertir su puesta en marcha en un proyecto complejo.

Una puerta de entrada a la microbiología para fabricantes que quieren conocer mejor lo que ocurre realmente en sus productos, con las herramientas más adecuadas.

https://www.youtube.com/watch?v=eQk0FO01hD4

KITPROPLUS: validar la limpieza sin necesidad de aparatos

Y terminamos con un problema completamente diferente: ¿cómo comprobar que una limpieza ha sido realmente eficaz?

KITPROPLUS permite validar la limpieza de superficies de forma inmediata y sin necesidad de adquirir aparatos, facilitando que la comprobación deje de basarse únicamente en que una superficie “parezca limpia”.

Porque limpiar y demostrar que se ha limpiado correctamente no son exactamente lo mismo.

https://www.youtube.com/watch?v=gAh4isyUlRM&

Cuatro vídeos. Cuatro problemas microbiológicos. Un solo mes.

Patógenos emergentes en nuestras costas, dermatofitos, autocontrol de cosméticos y validación de limpiezas.

Cuatro nuevos vídeos elaborados durante agosto y ya disponibles gratuitamente en nuestro canal de YouTube.

Parece que este año no se nos ha dado demasiado bien eso de desconectar por vacaciones.

Y todavía nos quedan más de 100 temas en preparación para nuestro canal de youtube…

8 horas de microbiología con químicos e ingenieros: 7 reglas que cambian cuando trabajamos con seres vivos

LA MICROBIOLOGÍA NO ES QUÍMICA

Siete claves para que químicos, ingenieros y responsables de Calidad empiecen a comprender los resultados microbiológicos.

Hace unos días pasamos ocho horas trabajando en una auditoría microbiológica con el equipo de una empresa de los sectores cosmético y de detergencia. Fue una jornada intensa, combinando revisión teórica, procedimientos y trabajo práctico de laboratorio.

El nivel técnico del laboratorio de microbiología era excelente. De hecho, después de ocho horas no encontramos ni una sola No Conformidad.

Y, sin embargo, la jornada puso de manifiesto algo mucho más interesante.

Cuando químicos, ingenieros, responsables de Calidad y microbiólogos analizan juntos un mismo problema, no parten del mismo modelo mental. Viven en Universos paralelos.

No es extraño. La química y la ingeniería trabajan habitualmente con sistemas en los que esperamos relaciones relativamente reproducibles entre variables. Pero un microorganismo no es una molécula ni una partícula inerte.

Está vivo.

Puede lesionarse, recuperarse, competir, adaptarse, cambiar su comportamiento e incluso modificar el medio en el que se encuentra.

De aquellas ocho horas surgieron siete paradigmas de la microbiología que merece la pena conocer para interpretar correctamente cualquier análisis microbiológico.

 

  1. Las muestras microbiológicas no son homogéneas

Cuando medimos la concentración de una sustancia disuelta, esperamos que dos fracciones adecuadamente homogeneizadas proporcionen resultados similares.

Con los microorganismos no sucede así. Puedes estar toda la mañana agitando una muestra de 100 mL que contenga 100 ufcs y nunca vas a obtener 1 ufc/mL. Esto es aún más evidente en muestras sólidas. Pero sucede en todo tipo de muestras: aire, superficies, aguas, alimentos, cosméticos, medicamentos, productos químicos…

Las células suelen encontrarse distribuidas irregularmente, formando agregados o microcolonias. Por ello, dos porciones tomadas de una misma muestra pueden contener números diferentes de microorganismos por muy bien que hayamos homogeneizado.

Una fracción puede contener 18 UFC, otra 4 y otra ninguna, sin que ninguno de los análisis se haya realizado incorrectamente.

Por eso, en microbiología, la representatividad del muestreo cobra la máxima importancia, ya que puede ser tan importante como la precisión del propio método analítico.

 

  1. No detectar un microorganismo no demuestra necesariamente su ausencia

Esta diferencia conceptual es fundamental.

Un resultado negativo significa que el microorganismo no ha sido detectado mediante el procedimiento utilizado y en la cantidad de muestra analizada.

No significa necesariamente que no exista.

Un microorganismo presente en una concentración muy baja puede simplemente no haber quedado incluido en la porción analizada. También puede encontrarse fisiológicamente lesionado y no recuperarse en determinadas condiciones de cultivo.

Por eso resulta más correcto informar:

«No detectado en X gramos de muestra analizada»

que afirmar simplemente:

«Ausente».

 

  1. Un microorganismo vivo puede necesitar una ventana temporal muy concreta para demostrar que está vivo

Los microorganismos sometidos a conservantes, cambios de pH, desecación u otras condiciones adversas pueden permanecer viables pero fisiológicamente dañados.

Antes de comenzar a multiplicarse necesitan reparar esos daños y adaptarse al nuevo entorno.

Es la denominada fase lag o fase de adaptación.

Por ello, un cultivo aparentemente negativo a las 24 horas puede resultar positivo a las 36 horas.

Pero tampoco debemos caer en el extremo contrario: más tiempo de enriquecimiento no significa necesariamente mayor sensibilidad.

Durante un enriquecimiento prolongado cambia el ecosistema inicial. Los microorganismos crecen, compiten, consumen nutrientes y producen metabolitos que les afectan subletalmente. Unas poblaciones pueden favorecer o perjudicar a otras.

El propio método utilizado para observar la muestra puede, por tanto, modificar aquello que pretendemos observar.

 

  1. Los microorganismos no viven solos

Una muestra contaminada debe entenderse como un pequeño ecosistema microbiano cuya diversidad de especies depende de muchos factores.

Los microorganismos pueden competir por nutrientes, producir sustancias inhibitorias, modificar el pH, facilitar el crecimiento de otros o impedirlo.

Por ello, el microorganismo dominante en un primer análisis puede no ser necesariamente el dominante en otro realizado posteriormente, ni siquiera en la muestra inicial.

Esta es también una de las razones por las que, cuando queremos conocer inequívocamente la respuesta de un producto frente a diferentes microorganismos, puede resultar preferible estudiarlos individualmente en lugar de mezclarlos indiscriminadamente.

En microbiología, 1 + 1 no siempre equivale biológicamente a 2.

 

  1. Un microorganismo no siempre tiene el mismo aspecto

Estamos acostumbrados a identificar de visum determinados microorganismos mediante colonias consideradas «típicas».

Pero el fenotipo microbiano presenta una considerable plasticidad.

La expresión de pigmentos, enzimas y otras características puede variar según la cepa, su estado fisiológico, el estrés sufrido previamente y las condiciones de incubación. Incluso pueden depender de la muestra de la que proceden.

Una Pseudomonas aeruginosa puede crecer sin producir la pigmentación verde, azul o amarilla que esperamos, ni la forma de colonia grande y lobulada. Un Staphylococcus aureus puede presentar colonias grises en vez de negras y carecer del halo característico en determinados medios. E.coli crece de color violeta en ciertos medios, pero a veces crece azul turquesa-celeste en esos mismos medios.

La morfología colonial es una herramienta extraordinariamente útil, pero una colonia atípica no deja por ello de pertenecer al microorganismo que estamos buscando.

Descartar sistemáticamente todo aquello que no coincide con la imagen «de libro» puede generar falsos negativos.

 

  1. Los microorganismos se adaptan

La presión selectiva y las interacciones entre microorganismo y producto son extraordinariamente complejas.

Un microorganismo puede adaptarse a condiciones inicialmente desfavorables e incluso llegar a utilizar sustratos que, a priori, parecerían poco aprovechables. Incluso los propios conservantes/desinfectantes.

Su enorme plasticidad genética y metabólica es consecuencia de una historia evolutiva acumulada durante incontables generaciones. Rutas metabólicas que en unas condiciones aportan poca ventaja pueden convertirse en decisivas cuando cambia el entorno.

De ahí una frase que utilizamos frecuentemente, llevándola deliberadamente al extremo:

«Ponga un microorganismo junto a casi cualquier cosa y, antes o después, encontrará la manera de comérsela».

No debe interpretarse literalmente, pero resume una característica esencial del mundo microbiano: no debemos asumir que unas condiciones inicialmente desfavorables continuarán siéndolo indefinidamente para todas las poblaciones microbianas.

Es el mismo principio que subyace a uno de los grandes problemas sanitarios actuales. Los antibióticos eliminan los microorganismos sensibles, pero simultáneamente ejercen una presión selectiva que favorece la supervivencia y propagación de los resistentes. Lo mismo sucede cuando no rotamos desinfectantes.

Una herramienta destinada a combatir al enemigo puede, utilizada inadecuadamente o en exceso, contribuir a seleccionar un enemigo cada vez más difícil de combatir.

 

  1. El resultado depende también de cómo decidamos mirar

Probablemente ésta sea la observación más impactante.

En microbiología, el resultado obtenido depende no sólo de los microorganismos presentes en la muestra, sino también de las condiciones que utilizamos para intentar recuperarlos.

Cantidad y lugar de toma de muestra, dilución, neutralización, enriquecimiento, medio de cultivo, temperatura, atmósfera y tiempo de incubación determinan qué parte del ecosistema microbiano conseguimos hacer visible.

Dos métodos diferentes pueden observar partes diferentes de una misma realidad.

Por ello, cuando aparece una discrepancia microbiológica, la primera pregunta no debería ser necesariamente:

«¿Quién ha realizado mal el análisis?»

A veces la pregunta verdaderamente interesante es:

«¿Qué diferencia entre ambos métodos ha permitido que uno recuperase el microorganismo y el otro no?»

Podemos ir incluso más allá y afirmar: el método con el que analizamos , sea cual sea, cambia el ecosistema microbiano presente en la muestra, es decir, el ecosistema durante el análisis puede dejar de ser el mismo que el que había en origen. Cuando añadimos un producto al caldo de enriquecimiento, unas cepas van a quedar favorecidas a costa de que otras van a ocultarse cada vez más hasta el punto de no detectarse al final del análisis.

 

Poner «nombre y apellidos» al problema

Hay finalmente otra lección práctica.

Cuando un microorganismo aparece repetidamente en una instalación o producto, identificarlo correctamente no constituye una simple curiosidad taxonómica.

Poner «nombre y apellidos» al microorganismo que nos está dando problemas puede marcar la diferencia entre combatirlo a ciegas o hacerlo con conocimiento de causa.

Una identificación precisa permite investigar mejor su posible procedencia, conocer las condiciones que favorecen su supervivencia y orientar las medidas destinadas a eliminar la causa del problema, en lugar de limitarse a combatir sus consecuencias.

Las técnicas actuales, desde las pruebas bioquímicas y fisiológicas hasta la identificación mediante espectrometría de masas MALDI-TOF o, para máxima certeza, la secuenciación genética, proporcionan herramientas extraordinariamente potentes para conseguirlo.

 

Una conclusión para quienes no son microbiólogos

La microbiología no es imprecisa porque dos resultados puedan ser diferentes.

Es una ciencia que trabaja con sistemas biológicos extraordinariamente variables e impredecibles.

La clave no consiste en pretender eliminar esa variabilidad, sino en comprenderla, asumirla y diseñar métodos suficientemente robustos para que tenga la menor probabilidad posible de ocultar un riesgo real.

Por eso, quizá la mejor manera de resumir aquellas ocho horas de trabajo sea ésta:

El resultado microbiológico es función tanto de la muestra como del método empleado para observarla.

Cuando trabajamos con seres vivos, las reglas cambian.

CONTROL MICROBIOLOGICO AGUAS

CONTROL MICROBIOLOGICO AGUAS: DE LOS MEDIOS ISO A LOS MEDIOS MÁS EFICIENTES PARA CADA MICROORGANISMO CONCRETO

En MICROKIT llevamos 37 años ofreciendo nuevas soluciones para el control microbiológico de alimentos

A veces son compatibles con los métodos ISO

Otras veces, el hecho de ser no sólo diseñadores y fabricantes de medios de cultivo y kits

sino además laboratorio de control

y además coordinadores de ensayos intercomparativos,

nos da una triple visión, a vista de pájaro, para que los árboles no nos tapan el bosque:

detectamos los problemas habituales del laboratorio de microbiología de alimentos

y los resolvemos,

sea con protocolos mejorados, eliminando puntos críticos en el análisis,

sea con nuevos medios de cultivo y kits del siglo XXI que diseñamos con nuestra larga experiencia

Ya vimos, en la entrada anterior  https://www.medioscultivo.com/wp-admin/post.php?post=7427&action=edit&classic-editor una lista de kits que han mejorado drásticamente la detección o recuento de los diferentes microorganismos

en numerosos laboratorios pioneros, que no se conforman con lo que digan las Normas ISO,

porque si no avanzamos, ¿para que elegimos este sector tan científico?

Veamos ahora las soluciones avanzadas en medios de cultivo para aguas:

 

Ejemplos de medios de cultivo que mejoran el rendimiento de los clásicos

Recuento de aerobios

YEA cromogénico (el PCA Water ISO 6222, pero con cromógeno), en el que las colonias rojas destacan sobre el fondo evitando la vista cansada y evitando la confusión con artefactos en la placa

Recuento de hongos en sólo 36 horas en aguas y bebidas

Rapid Sabouraud RYM Agar, medio con base Sabouraud Caf que impide la invasión de la placa, pero además acelera extraordinariamente el crecimiento y esporulación de levaduras y mohos

Burkholderia cepacia

Este microorganismo acuático y ubicuo en suelos naturales es buscado en aguas cosméticas y en aguas de hospitales con enfermos de fibrosis quística, para los cuales es letal. Hay 4 agares para elegir: BCPT, BCSA Farmacopea, OFPBL y BCPT cromogénico. Los clientes de MICROKIT prefieren, con diferencia, este último.

Clostridium

Aparte del TSC Agar ISO (que sustituyó al anticuado m-CP Agar) existe un medio cromogénico para Clostridium perfringens, el Cromokit-CP Agar, con la gran ventaja de que la colonias (naranjas) no se decoloran al sacar la placa de la anaerobiosis, al contacto con el aire.

Coliformes

Desde 1995 ofrecemos el Agar MugPlus, medio cromogénico donde los coliformes crecen con colonias rosas, y además el coliforme por antonomasia, E.coli, se distingue creciendo con colonias azules: sumar ambas para el recuento total de coliformes. Actualmente es el recomendado por ISO (con el nombre CCA), el que ya usan todos los laboratorios por filtración de membrana, en vez del anticuado Chapman Tergitol TTC. Si se desean confirmar las colonias como coliformes (tanto las rosas como las azules), es tan fácil como emplear los test de citocromo-oxidasa, ya que todos los coliformes (incluida E.coli) son oxidasa negativos. En MICROKIT tenemos dos versiones: tiras para colonias aisladas y ampollas para bañar toda la placa: así, cuando hay varias colonias, «matamos todos los pájaros de un tiro»

E.coli

el mismo Agar MugPlus de coliformes (CCA), donde hay que buscar y contar todas las colonias de los distintos tonos azules (índigo, violeta, turquesa…), y confirmar con la simple e inmediata prueba de indol (Kovacs; en el MugPlus de Microkit, a causa de la riqueza en triptófano de la peptona empleada, se puede usar directamente sin pasar por caldo de triptona con triptófano) y para los más exigentes, además, con el Citrato de Simmon´s.

Ojo: Si hemos usado en la placa el reactivo oxidasa para confirmar todas las colonias de coliformes, no podremos usar después el Kovacs en las mismas colonias. O las resembramos antes, o usamos la oxidasa en tiras sólo en  colonias diferentes a las azules que usemos con Kovacs.

En aguas de consumo se puede emplear sin el suplemento de antibióticos Cefsulodina-Vancomicina, pero en aguas de manantial, con rica flora acompañante, es mejor usarlo con este suplemento selectivo.

Enterococos fecales

Aparte del Slanetz Bartley M-Enterococcus Agar, MICROKIT ha validado su Bilis Esculina Azida Agar (Rapid-BEA) para su uso directo, lo que ahorra 24-28 horas en la detección y recuento de los enterococos fecales, con resultados equivalentes.

Pseudomonas aeruginosa

El Agar Cetrimida CN funciona muy bien en aguas de consumo pero obtiene recurrentes falsos positivos en aguas de manantial, ricas en no fermentadores. Con el Rapid CN Agar de MICROKIT disminuyen estos falsos positivos y además con las pruebas RAN y Acetamida de MICROKIT se confirma con certeza si es o no es P.aeruginosa.

Reductores del Sulfato (Desulfovibrio…)

Ofrecemos un medio muy buscado por algunos laboratorios y difícil de encontrar para detectar estos corroedores de metales: el Sulfate API Agar

Salmonella

el caldo SS Broth sin los falsos negativos del Rappaport y el agar cromogénico Cromosalm que la ultima versión de la ISO llama ABC, aparte del Agar clásico XLD

 Staphylococcus aureus

sin los numerosos falsos resultados del Baird Parker, el Baird Parker Mannitol (BPMY) Agar ha sido validado con un espectacular 100% de sensibilidad y 100% de especificidad

Shigella

el caldo ISO (Shigella Broth) y el caldo mejorado (SS Broth), aparte de los agares de aislamiento clásicos, como el XLD, el SS Agar, el Hektoen…

Vibrio

aparte de los clásicos Alkaline Broth, Alkaline-Saline Broth y TCBS Agar, ofrecemos el medio cromogénico Cromokit-Vibrio agar, los tubos de medios MPT para V.cholerae y el Agar CPC específico para detectar el temible V.vulnificus

Solicite la información y precios actualizados de todos los que llamen su atención para mejorar los resultados de los métodos ISO, en microkit@microkit.es

 

 

CONTROL CALIDAD MICROBIOLOGICO AGUAS

CONTROL CALIDAD MICROBIOLOGICO AGUAS: DE LOS MEDIOS ISO A LAS HERRAMIENTAS MÁS EFICIENTES PARA CADA MICROORGANISMO

Y van ya 37 años que llevamos en MICROKIT ofreciendo nuevas soluciones para el control microbiológico de aguas.

A veces son compatibles con los métodos ISO

Pero otras veces, el hecho de ser no sólo diseñadores y fabricantes de medios de cultivo y kits

sino además coordinadores de ensayos intercomparativos,

y además laboratorio de control,

lo que nos da una triple visión, a vista de pájaro, para que los árboles no nos tapan el bosque:

tenemos el privilegio de detectar los problemas habituales del laboratorio de microbiología de alimentos y los resolvemos,

sea con protocolos mejorados, eliminando puntos críticos en el análisis,

sea con nuevos medios de cultivo y kits del siglo XXI que diseñamos con nuestra larga experiencia

Veremos en la próxima entrada de hoy https://www.medioscultivo.com/control-microbiologico-aguas/, la lista de medios de cultivo que han mejorado drásticamente la detección o recuento de los diferentes microorganismos del agua

en numerosos laboratorios pioneros, que no se conforman con lo que digan las Normas ISO,

porque si no avanzamos, ¿para que elegimos este sector tan científico?

 

Hoy haremos lo mismo con los kits de detección y confirmación:

Recuento de aerobios

Para las aguas de refrigeración, aguas residuales… ya puede saber si sobrepasa el límite en sólo 15 minutos, con el kit EIA en stick: M-Ident® BAC

Para tener una aproximación rápida del recuento, los tubos Rapidtest le permiten rechazar aguas sucias desde las primeras 4 horas

Algas microscópicas y cianobacterias

Por fin puede detectarlas sin necesidad de cansar su vista al microscopio, con la técnica del medio de cultivo multiplicador que vira de color: Ficokit P/A y Cianokit P/A

Anaerobios

Para crear la atmósfera de anaerobiosis ya no necesita jarras ni tuppers, si el numero diario de placas no supera las 7: Anaerokit en bolsas

Confirme la especie con las galerías rápidas (4h) enzimáticas  Rapid-ANA

Burkholderia cepacia

Esta «prima» de Pseudomonas aeruginosa debe ser controlada en las aguas de los hospitales con enfermos de fibrosis quística, al ser mortal para ellos. Para ella tenemos el kit detector en 100 mL Burkhocult P/A y los kits confirmativos M-Ident® Burkholderia, además de las galerías Enterotube que, a pesar de ser para Enterobacterias, lo identifican muy bien

Clostridium perfringens

Ofrecemos el kit detector en 100 mL de agua Clostricult P/A, que evita los falos negativos causados por la oxigenación que supone la filtración de membrana.

Confirme las colonias mediante el conjunto completo (kit) de test bacdive-ISO que necesita:     M-Ident® C.perfringens

O bien con el reactivo MUP (Fosfatasa ácida) en gotero para añadir a las colonias sospechosas: fluorescencia inmediata: positivo; no derroche reactivo en placas preparadas que luego darán negativo (sin colonias)

También puede confirmar la especie, si lo prefiere, con las galerías rápidas (4h) enzimáticas Rapid-ANA

Coliformes, E.coli

Aparte del kit detector en 100 mL Colicult P/A, y del Indol Kovacs para E.coli, para todos ellos identifique mediante las galerías rápidas (4h) enzimáticas Rapid ONE, o bien mediante las galerías más clásicas y reconocidas que existen: Enterotube

Enterococos fecales

Para ellos ofrecemos el kit detector en 100 mL Enterocult P/A (con medio ISO BEA), los kits confirmativos M-Ident® Catalasa, además de las galerías rápidas (4h) enzimáticas Rapid-STR 

Hongos (levaduras y mohos)

Con Mycokit P/A podrá detectar su presencia o su ausencia en 100 mL de agua

Legionella pneumophila

Confirme las colonias con el stick EIA M-Ident® Virapid Legionella, que le permitirá reconocer género, especie y serogrupo sin la falta de robustez/subjetividad de los látex, máxime ahora que las entidades de acreditación han reconocido su error al pedir en el pasado «inmunoaglutinación» en vez de «inmunoensayo» como dice la ISO.

Pseudomonas aeruginosa

Inmejorable el kit detector en 100 mL Pseudocult P/A (cromogénico y fluorogénico), los kits confirmativos M-Ident® Acetamida-Nessler, el test rápido (2 h) Tubos RAN (Reducción aeróbica de Nitratos), además de las galerías rápidas (4h) enzimáticas Rapid-NF

Salmonella spp

Búsquela en grandes volúmenes de agua sin necesidad de aparatos y en sólo 36 h gracias a Salmoquick y confirme las colonias sospechosas con los antisueros Poli-O+Vi y Poli-H,  o bien con el látex  M-Ident® SAL, aparte de las galerías Enterotube o las rápidas (4h) enzimáticas Rapid-ONE. Si además desea serogrupar, solicite el látex policromático Wellcolex Salmonella

Staphylococus aureus

Aparte del kit detector Staphykit P/A, confirme las colonias típicas con el kit de la coagulasa   M-Ident® Staph látex , y use el Reactivo FF (fosfatasa alcalina fluorescente): colonias fluorescentes de inmediato, positivo para esta especie

Vibrio cholerae y otros Vibrio spp

Use el kit detector de Vibriocult P/A para V.cholerae en 100 mL de agua. Confirme y distinga las colonias de éste mediante los antisueros polivalentes Eltor y Bengala

Identifique la especie de Vibrio (V.vulnificus, V.alginolyticus, V.parahaemolyticus, V.cholerae…) mediante las galerías rápidas (4h) enzimáticas RAPID-NF

 

Aparte de todos los kits vistos por microorganismos, existen otros tipos de kits por utilidad:

Crioteca®

Para mantener viables en congelación sus aislados de cepas, especializadas en bacterias generales, bacterias difíciles, hongos…

Otros Kits P/A

para detectar un total de 9 diferentes microorganismos en aguas, como los vistos Colicult, Enterocult, Clostricult, Pseudocult, Burkhocult, Ficokit, Cianokit, Mycokit y Staphykit; 3 presentaciones: cómoda, estándar y económica

DryPlates®

La gama más completa (29 medios) de placas deshidratadas que, a diferencia de las demás, permiten no sólo el recuento en masa en 10 segundos, sino además la detección de patógenos por estría tras enriquecimiento. Ideal la DryPlates-TC Water con YEA ISO 6222 (PCA-Water) para el recuento total de 1 mL de agua en masa sin tener que fundir/enfriar agares

Kits para superficies por barrido/rascado

Esponjas realmente abrasivas, KitProPlus para detección inmediata de suciedad orgánica (proteínas, sin necesidad de aparato lector), escobillones con medio de cultivo…

Kits para superficies por contacto

Aparte de las placas de contacto Envirocount, los laminocultivos que crearon éste nombre hace ya 40 años, los Desinfectest®

Antiburbujas-Antidesecante

para añadir una simple gota por litro de medio y acabar con el efecto desecación, el efecto rebote, las burbujas-agujeros en la superficie que cuestionan depositar encima la membrana de filtración…

Neogram

Gotero para distinguir de inmediato colonias de Grampositivos (no filamentan a simple vista) de las de Gramnegativos (filamentan a simple vista)

Validación 

Consulte nuestras herramientas que le ayudan a validar: el protocolo, el informe tipo, el diseño del experimento, las tablas de recopilación de resultados, el servicio completo de validación in situ…

 

Solicite la información y precios actualizados de todo lo que llame su atención para mejorar los resultados de los métodos ISO, en microkit@microkit.es

MICROBIOLOGÍA DE AGUAS ENVASADAS Y REFRESCOS 6 Y EL RECUENTO DE HONGOS

Recuento de hongos (levaduras y mohos) en refrescos: de 5 días de cuarentena a sólo 36 horas, gracias al Agar RYM de MICROKIT

MAIL 6 AGUAS ENVASADAS:                                                 CERTEZA EN TUS RESULTADOS

 En esta última entrega de nuestra campaña de seis, abordamos un tema que da continuidad al anterior sobre el recuento de aerobios: el recuento de hongos.

Porque en la microbiología de refrescos, los hongos siguen siendo el mayor desafío… y la última frontera por optimizar.

 

El gran reto de la microbiología de refrescos: los hongos

A pesar de los enormes avances logrados en investigación y desarrollo en los últimos dos siglos, muchos laboratorios continúan utilizando medios que hoy deberían considerarse obsoletos:

Agar Sabouraud, YGC, PDA, MEA, OGYE, entre otros muchos.

El problema no radica en su composición, sino en su lentitud.

La obtención de resultados fiables puede tardar hasta cinco días, lo que convierte al recuento de hongos en el eslabón más débil de toda la cadena analítica

—especialmente cuando la prioridad del laboratorio es liberar lotes lo antes posible.

 

¿De verdad debo mantener mi stock de producto terminado una semana en cuarentena?

Hoy sabemos cómo obtener resultados fiables de patógenos en tan solo 18-24 horas.

Sin embargo, la liberación microbiológica de un lote de refrescos sigue demorándose hasta una semana completa.

¿Dónde está entonces el cuello de botella que frena todo el proceso?

En el recuento de hongos (levaduras y mohos), que tradicionalmente han requerido 5 días de incubación a 21–25 °C.

Este paso nos hace perder un tiempo precioso, genera días de espera innecesarios y ocupa un costoso espacio en la “zona amarilla” de cuarentena.

 

¿Y si pudiéramos ganar 3 días?

Imagina un medio de cultivo capaz de enumerar hongos en sólo 2 días, al mismo ritmo que el recuento de aerobios. Eso supondría:

Liberar lotes 3 días antes.

Reducir en un 60% el espacio ocupado en cuarentena.

Parece ideal… pero la buena noticia es que… ya es una realidad.

 

La solución ya existe: RYM, el medio rápido de MICROKIT

Para superar las limitaciones de los medios tradicionales, MICROKIT desarrolló un nuevo medio rápido:

Agar RYM (Rapid Yeast & Moulds), bautizado también como “Rapid Sabouraud Agar” en honor al clásico pionero.

Este medio combina lo mejor de ambos mundos:

* Es tan rico y selectivo para hongos como el Sabouraud Caf Agar.

* Limita el tamaño invasivo de los mohos de crecimiento rápido, como lo hacen los medios DRBC o DG18 empleados en alimentos o el Rosa Bengala de ambientes.

* Y, lo más importante: además, permite lecturas fiables desde las primeras 18 a 36 horas:    https://microkit.org/wp-content/uploads/2026/07/RAPID-SABOURAUD-RYM-AGAR.pdf

La mayoría de hongos también crecen en verano, por lo que incubarlos a 35ºC como las bacterias no es ninguna aberración.

De todas formas si quiere detectar también esos hongos termolábiles, puede incubar una placa duplicada de RYM a 25ºC,

pero sus resultados no serán tan fulminantemente rápidos como en la placa de RYM a 35ºC.

 

La sinergia perfecta: DryPlates-RYM y DryPlates-TC Water

Combinando DryPlates-RYM con DryPlates-TC Water, logramos que el eslabón más lento de la cadena analítica se reduzca de 5 días a sólo 2.

DryPlates-RYM con Aspergillus niger ya esporulado en sólo 36 h.                                                             El medio viró a las 18 h de lila a amarillo, alertando de la presencia de hongos.

DryPlates TC con aerobios desde 1 mL de agua sembrada en masa                                                        en menos de 10 segundos, tras incubar sólo 36 horas

O bien las plaquis® preparadas herméticas:

En otras palabras, el recuento de hongos ya no añade 4 días extra al proceso, sino sólo uno adicional (total: 2 días) al análisis de patógenos de 1 día.

En conclusión: Gracias a la innovación desarrollada por MICROKIT, hoy es posible liberar lotes de aguas y refrescos en tan sólo 36–48 horas.

Y si no se incluyen los recuentos de aerobios ni de hongos, incluso en sólo 18–24 horas.

Esto no es sólo un avance técnico: es una revolución silenciosa en la forma de entender la microbiología industrial:

Menos tiempo de espera ///

Menos espacio inmovilizado ///

Más confianza en cada resultado.

Porque la verdadera innovación no consiste en hacer lo mismo más deprisa, sino en repensar el proceso completo para que la ciencia trabaje al ritmo que exige la industria.

 

Epílogo: el valor de atreverse a innovar

Con este sexto relato cerramos un viaje que comenzó con una idea sencilla, casi obvia: ¿y si pudiéramos hacer microbiología de forma más eficiente, rápida y cómoda?

A lo largo de esta campaña hemos recorrido juntos ese camino de la optimización.

Durante años, la microbiología industrial ha avanzado paso a paso, con precisión, pero también con inercias.

Nos atrevimos a hacer las preguntas incómodas:

¿Y si lo que hace la mayoría no es lo mejor que se puede hacer?

¿Y si pudiéramos reducir 2-5 días de espera a sólo 1-2?

¿Necesita un medio  calentar ni enfriar para sembrar en masa?

¿Y si las placas clásicas no herméticas no son las más adecuadas?

¿Y si los anaerobios es verdad que no sobreviven a la oxigenante filtración?

Hemos cuestionado métodos asumidos durante décadas, desafiado inercias y demostrado que la innovación no depende del tamaño del proveedor,

sino de su curiosidad, constancia y pasión científica.

Hoy, cada producto que desarrollamos —desde las Quanti-P/A o las DryPlates-TC Water y DryPlates-RYM, hasta el Rapid BEA Agar y el Rapid Pseudomonas Agar—

no es solo una herramienta técnica.

Es el resultado de una filosofía: repensar cada paso para liberar tiempo, energía y recursos, sin comprometer la fiabilidad.

En vez de dejarse llevar por la inercia de un pasado obsoleto.

Cada avance de esta campaña ha sido una invitación a desafiar lo que era habitual y a mirar el laboratorio no sólo como un lugar de control, sino como un espacio de descubrimiento.

Porque innovar no siempre significa inventar algo nuevo; a veces, significa atreverse a mejorar lo que todos daban por hecho.

 

Sólo hemos esbozado unas pocas soluciones MICROKIT, pero hay otras muchas.

Por ejemplo, el tema de las microalgas y cianobacterias, crucial en aguas: https://www.youtube.com/watch?v=TZYC3ZKcSQM

MICROKIT nació hace ya 37 años con ese espíritu y lo mantiene vivo:

el de quienes creen que la microbiología puede ser más ágil, más clara y más humana.

Porque detrás de cada placa, cada fórmula y cada resultado, hay algo más importante que una cifra:

la confianza en que estamos haciendo las cosas muy bien, y mejor que ayer. La famosa pero olvidada “mejora continua” de la ISO 9001.

Así cerramos esta campaña, no como un final, sino como una invitación:

a seguir vaciando la taza,

a seguir aprendiendo,

y a seguir transformando la rutina de los laboratorios en auténtica innovación.

La ciencia sólo avanza cuando alguien se pregunta ¿por qué no puedo hacerlo mejor?”

Gracias por acompañarnos en esta revolución. El futuro de la microbiología ya empezó… y lo estamos construyendo juntos.

Ahora la decisión está en tus manos:

¿Prefieres seguir con la incertidumbre y con la lentitud habituales,

o eliges vivir con certeza y reducir a menos de la mitad los costes de almacenamiento de tus productos y el tiempo de liberación?

Si prefieres lo segundo, aquí me tienes para lo que necesites: consultastecnicas@microkit.es

Canal de youtube: https://www.youtube.com/user/Microkit1/videos

Microbiología de aguas 6 y los recuentos en sólo 36 horas

MICROBIOLOGÍA DE AGUAS Y LOS RECUENTOS EN SÓLO 36 H: AEROBIOS Y HONGOS (LEVADURAS Y MOHOS) ENUMERADOS EN TIEMPO RÉCORD

ENTRADA 6 DE 6 EN AGUAS ENVASADAS:                                   CERTEZA EN TUS RESULTADOS

 

Recuento de hongos (levaduras y mohos) en aguas y refrescos  

En esta última entrega de nuestra campaña de seis, abordamos un tema que da continuidad al anterior sobre el recuento de aerobios:

el recuento de hongos.

Porque en la microbiología de refrescos, los hongos siguen siendo el mayor desafío… y la última frontera por optimizar.

 

El gran reto de la microbiología de refrescos: los hongos

A pesar de los enormes avances logrados en investigación y desarrollo en los últimos dos siglos,

muchos laboratorios continúan utilizando medios que hoy deberían considerarse obsoletos:

Agar Sabouraud, YGC, PDA, MEA, OGYE, entre otros muchos.

El problema no radica en su composición, sino en su lentitud.

La obtención de resultados fiables puede tardar hasta cinco días,

lo que convierte al recuento de hongos en el eslabón más débil de toda la cadena analítica

—especialmente cuando la prioridad del laboratorio es liberar lotes lo antes posible.

 

¿De verdad debo mantener mi stock de producto terminado una semana en cuarentena?

Hoy sabemos cómo obtener resultados fiables de patógenos en tan solo 18-24 horas.

Sin embargo, la liberación microbiológica de un lote de refrescos sigue demorándose hasta una semana completa.

¿Dónde está entonces el cuello de botella que frena todo el proceso?

En el recuento de hongos (levaduras y mohos), que tradicionalmente han requerido 5 días de incubación a 21–25 °C.

Este paso nos hace perder un tiempo precioso, genera días de espera innecesarios

y ocupa un costoso espacio en la “zona amarilla” de cuarentena.

 

¿Y si pudiéramos ganar 3 días?

Imagina un medio de cultivo capaz de enumerar hongos en sólo 2 días,

al mismo ritmo que el recuento de aerobios. Eso supondría:

-Liberar lotes 3 días antes.

–Reducir en un 60% el espacio ocupado en cuarentena.

Parece ideal… pero la buena noticia es que ya es una realidad.

 

La solución ya existe: RYM, el medio rápido de MICROKIT

Para superar las limitaciones de los medios tradicionales, MICROKIT desarrolló un nuevo medio rápido:

Agar RYM (Rapid Yeast & Moulds),

bautizado también como “Rapid Sabouraud Agar” en honor al clásico pionero.

Este medio combina lo mejor de ambos mundos:

* Es tan rico y selectivo para hongos como el Sabouraud Caf Agar.

»Limita el tamaño invasivo de los mohos de crecimiento rápido, como lo hacen los medios DRBC o DG18 empleados en alimentos o el Rosa Bengala de ambientes.

* Y, lo más importante: además, permite lecturas fiables desde las primeras 18 a 36 horas:    https://microkit.es/fichas/rapid-ym-agar.pdf

 

La sinergia perfecta: DryPlates-RYM y DryPlates-TC Water

Combinando DryPlates-RYM con DryPlates-TC Water, logramos que el eslabón más lento de la cadena analítica se reduzca de 5 días a sólo 2.

https://microkit.es/fichas/Dry%20Plates%20Rapid%20Sabouraud%20RYM%20Agar%20Prospecto.pdf

https://microkit.es/fichas/Dry%20Plates%20TC-Water%20Prospecto.pdf

O bien las plaquis® preparadas herméticas.

https://microkit.es/pdf/plaquis.pdf

En otras palabras, el recuento de hongos ya no añade 4 días extra al proceso, sino sólo uno adicional (total: 2 días) al análisis de patógenos de 1 día.

 

En conclusión:

Gracias a la innovación desarrollada por MICROKIT, hoy es posible liberar lotes de aguas y refrescos en tan sólo 36–48 horas.

Y si no se incluyen los recuentos de aerobios ni de hongos, incluso en sólo 18–24 horas.

Esto no es sólo un avance técnico: es una revolución silenciosa en la forma de entender la microbiología industrial:

Menos tiempo de espera ///Menos espacio inmovilizado /// Más confianza en cada resultado.

Porque la verdadera innovación no consiste en hacer lo mismo más deprisa,

sino en repensar el proceso completo para que la ciencia trabaje al ritmo que exige la industria.

 

Epílogo: el valor de atreverse a innovar

Con este sexto relato cerramos un viaje que comenzó con una idea sencilla, casi obvia: ¿y si pudiéramos hacer microbiología de forma más eficiente, rápida y cómoda?

A lo largo de esta campaña hemos recorrido juntos ese camino de la optimización.

Durante años, la microbiología industrial ha avanzado paso a paso, con precisión, pero también con inercias.

Nos atrevimos a hacer las preguntas incómodas:

¿Y si lo que hace la mayoría no es lo mejor que se puede hacer?

¿Y si pudiéramos reducir 2 días de espera a sólo 1?

¿Si un medio no necesitara calentar ni enfriar para sembrar en masa?

¿Y si las placas clásicas no herméticas no son las más adecuadas?

¿Y si los anaerobios es verdad que no sobreviven a la oxigenante filtración?

Hemos cuestionado métodos asumidos durante décadas, desafiado inercias

y demostrado que la innovación no depende del tamaño del proveedor, sino de su curiosidad, constancia y pasión científica.

Hoy, cada producto que desarrollamos —desde las Quanti-P/A o las DryPlates-TC Water y DryPlates-RYM, hasta el Rapid BEA Agar y el Rapid Pseudomonas Agar— no es solo una herramienta técnica.

Cada producto diseñado en MICROKIT el resultado de una filosofía:

repensar cada paso para liberar tiempo, energía y recursos, sin comprometer la fiabilidad.

En vez de dejarse llevar por la inercia de un pasado obsoleto.

Cada avance de esta campaña ha sido una invitación a desafiar lo que era habitual y a mirar el laboratorio no sólo como un lugar de control, sino como un espacio de descubrimiento.

Porque innovar no siempre significa inventar algo nuevo; a veces, significa atreverse a mejorar lo que todos daban por hecho.

Sólo hemos esbozado unas pocas soluciones MICROKIT, pero hay otras muchas. Por ejemplo, el tema de las microalgas y cianobacterias, crucial en aguas: https://www.youtube.com/watch?v=TZYC3ZKcSQM

MICROKIT nació hace ya 37 años con ese espíritu y lo mantiene vivo: el de quienes creen que la microbiología puede ser más ágil, más clara y más humana.

Porque detrás de cada placa, cada fórmula y cada resultado, hay algo más importante que una cifra: la confianza en que estamos haciendo las cosas muy bien, y mejor que ayer. La famosa pero olvidada “mejora continua” de la ISO 9001.

Así cerramos esta campaña, no como un final, sino como una invitación:

→ a seguir vaciando la taza,  → a seguir aprendiendo,  → y a seguir transformando la rutina de los laboratorios en auténtica innovación.

La ciencia sólo avanza cuando alguien se pregunta ¿por qué no puedo hacerlo mejor?”

Gracias por acompañarnos en esta revolución.

El futuro de la microbiología ya empezó… y lo estamos construyendo juntos.

Ahora la decisión está en tus manos:

¿Prefieres seguir con la incertidumbre y con la lentitud habituales,

o eliges vivir con certeza y reducir a menos de la mitad los costes de almacenamiento de tus productos y el tiempo de liberación?

Si prefieres lo segundo, aquí me tienes para lo que necesites: consultastecnicas@microkit.es

Canal de youtube: https://www.youtube.com/user/Microkit1/videos

Dermatofitos en piscinas y zonas de baño

Hongos en piscinas y zonas de baño: vigilancia microbiológica de dermatofitos más allá del agua, en la arena de las playas, duchas, spas…

 

El problema

Cada verano, millones de personas acuden a piscinas, parques acuáticos y playas convencidas de que el principal riesgo microbiológico está en el agua.

Y es lógico pensarlo.

Desde hace décadas analizamos el agua buscando Escherichia coli, Pseudomonas aeruginosa, Legionella y otros microorganismos indicadores de contaminación.

La legislación exige esos controles y gracias a ellos la seguridad sanitaria de las piscinas ha mejorado enormemente.

Sin embargo, existe un riesgo microbiológico que rara vez se busca de forma rutinaria.

Porque los hongos dermatofitos, responsables del pie de atleta y de muchas tiñas, normalmente no se transmiten nadando.

Se transmiten caminando.

Caminando descalzos por vestuarios.

Por duchas.

Por pediluvios.

Por playas de piscina.

Por spas.

Por gimnasios.

O incluso por determinadas zonas de arena de playas y parques infantiles.

Y lo más sorprendente es que una instalación puede cumplir perfectamente todos los parámetros microbiológicos exigidos para el agua y, aun así, mantener superficies capaces de transmitir estos hongos.

Esta afirmación no es una hipótesis.

La literatura científica lleva décadas demostrándolo.

 

Bibliografía científica utilizada 

 Contaminación de playas

Müller (1973).

Primer trabajo que demuestra la presencia de dermatofitos en arena de playas europeas.

Contaminación ambiental en piscinas

Detandt, M. & Nolard, N. (1988). Dermatophytes and swimming pools: seasonal fluctuations.

  • Demuestra que la contaminación por dermatofitos aumenta durante la temporada de mayor utilización de las piscinas.
  • País: Bélgica.

Detandt, M. & Nolard, N. (1995). Fungal contamination of the floors of swimming pools, particularly subtropical swimming paradises.

Considerado uno de los trabajos de referencia.

Conclusiones:

  • los suelos y playas de piscina constituyen un reservorio de dermatofitos;
  • predominan Trichophyton rubrum y T. mentagrophytes;
  • la contaminación aumenta con el número de usuarios y el tiempo de apertura.

País: Bélgica.

Ali-Shtayeh, M.S. et al. (2002).

Estudian piscinas y cursos de agua contaminados.

Confirman la presencia de dermatofitos y otros hongos queratinofílicos en instalaciones recreativas.

País: Palestina.

Efstratiou y colaboradores (2012).

Detectan dermatofitos en arena de playas recreativas, especialmente en las zonas de mayor tránsito de personas.

País: Grecia.

Sisti, M. et al. (2014).

Demuestran la eficacia de la radiación ultravioleta para eliminar dermatofitos en aguas termales, partiendo de la necesidad de controlar este riesgo microbiológico.

País: Italia.

Revisión sistemática (Irán, 2021).

Analiza decenas de estudios internacionales.

Conclusión:

Las duchas, vestuarios, saunas y playas de piscina son los lugares donde con mayor frecuencia aparecen dermatofitos y otros hongos potencialmente patógenos.

 

¿Y España?

Aquí aparece probablemente el dato más interesante de toda esta entrada.

España dispone de numerosos estudios epidemiológicos sobre dermatofitosis humanas, incluso un gran estudio multicéntrico coordinado por el Instituto de Salud Carlos III con la participación de 62 hospitales de 14 comunidades autónomas, que demuestra, entre otras cosas, que Trichophyton rubrum y Trichophyton mentagrophytes son los principales agentes de estas infecciones.

Sin embargo, tras revisar la bibliografía disponible, prácticamente no existen estudios publicados sobre la búsqueda sistemática de dermatofitos en superficies de piscinas, vestuarios, duchas o playas españolas.

Es decir, conocemos perfectamente el problema clínico, pero apenas investigamos su origen ambiental.

Y aún así, hay ayuntamientos pioneros (sobre todo de zonas turísticas) que sí los buscan.

Las revisiones científicas más recientes llegan a la misma conclusión:

los dermatofitos pueden persistir en superficies húmedas frecuentadas por personas infectadas y actuar como fuente de transmisión si no se detectan y controlan adecuadamente.

Lo curioso es que, mientras esta evidencia científica continúa acumulándose, la legislación española sigue centrando los controles microbiológicos casi exclusivamente en el agua.

No existe actualmente ningún requisito reglamentario para vigilar de forma rutinaria la presencia de dermatofitos en las superficies donde realmente se produce la mayor parte de la transmisión.

Y aquí aparece una pregunta inevitable.

Si sabemos dónde están…

Si sabemos cuándo aumentan…

Si conocemos las especies responsables…

¿Por qué esperar a que aparezcan los casos clínicos o una nueva legislación ambiental?

La prevención siempre resulta más eficaz que la reacción.

Por eso cada vez resulta más interesante incorporar programas de vigilancia ambiental específicos para dermatofitos en

instalaciones deportivas, piscinas municipales, spas, gimnasios, hoteles, residencias o playas.

Otro problema invisible que sacamos a la luz en MICROKIT.

 

¿Cómo hemos llegado a esta conclusión?

«Cada día aprendemos algo nuevo sobre microbiología porque la observamos desde tres ángulos diferentes.»

Muchas veces nos preguntan de dónde salen todas estas ideas.

La respuesta es sencilla.

En MICROKIT tenemos la suerte de trabajar desde tres facetas diferentes:

-Diseñamos medios de cultivo y kits, incluso nuevos procedimientos.

-Analizamos muestras reales todos los días en nuestro laboratorio.

-Y coordinamos ensayos intercomparativos entre laboratorios.

Es precisamente la combinación de esas tres actividades la que nos permite detectar problemas que, vistos desde una sola perspectiva, pasarían desapercibidos.

Recibimos retroalimentación desde los tres frentes. Eso explica por qué muchas de nuestras innovaciones surgen de problemas muy concretos que otros no pueden llegar a detectar.

 

La solución

El DTM Taplin Agar de MICROKIT fué diseñado precisamente para esa finalidad.

Permite aislar y detectar dermatofitos de forma rápida y sencilla a partir de muestras ambientales de superficies,

facilitando actuaciones preventivas antes de que el problema llegue a los usuarios.

https://microkit.es/fichas/DERMATOPHYTE%20DTM%20TAPLIN%20AGAR.pdf

El viraje de naranja a rojo del medio en los dos primeros días de incubación ya alerta precozmente que van a crecer dermatofitos a partir de esa muestra.

Además, el DTM en nuestros tubos inclinados herméticos, en lugar de placas preparadas,

no solo protege la muestra frente a contaminaciones externas,

sino que contribuye también a proteger preventivamente la salud de los analistas, al impedir su exposición a las esporas fúngicas.

Así prevenimos la salud pública mediante muestreos con DTM y prevenimos la salud de los analistas mediante tubos preparados herméticos de este medio.

Porque proteger la salud pública no consiste únicamente en analizar el agua.

Consiste en buscar cada microorganismo allí donde realmente se encuentra.

Y en el caso de los dermatofitos, la ciencia lleva más de cincuenta años indicándonos exactamente dónde debemos buscarlos.

Durante décadas hemos aprendido que no basta con analizar el agua para proteger la salud pública.

También debemos vigilar las superficies donde realmente se transmiten determinados microorganismos.

La evidencia científica internacional sobre los dermatofitos ya existe.

La pregunta es si vamos a esperar a que la legislación nos obligue a buscarlos… o si preferimos adelantarnos al problema.

En MICROKIT creemos que la verdadera prevención siempre empieza detectando antes que nadie el riesgo real.

 

Otro dato de interés

Aunque la mayor parte de los estudios sobre dermatofitos se han centrado en la arena húmeda, los vestuarios y las playas de piscina,

los expertos y la bibliografía respaldan que la espuma marina constituye un punto de muestreo muy interesante, ya que concentra gran cantidad de esporas fúngicas procedentes del entorno litoral.

MICROKIT: La empresa que transforma décadas de evidencia científica en soluciones prácticas para la microbiología ambiental y alimentaria.

Porque detectar antes el riesgo siempre será la mejor forma de prevenirlo.

No se pierda nuestro video sobre dermatofitos: https://www.youtube.com/watch?v=CAm4BOehVQY&

 

COLÍFAGOS SOMÁTICOS COMO INDICADORES EN AGUAS DE CONSUMO HUMANO

Colífagos somáticos: cuando la legislación llegó, nuestros clientes ya estaban preparados desde hacía más de una década 

 

  1. EL PROBLEMA

 Durante décadas el control microbiológico del agua se basó casi exclusivamente en buscar bacterias indicadoras.

Pero existe un problema:

Las bacterias suelen desaparecer antes que muchos microorganismos mucho más resistentes.

Los colífagos son virus que infectan a Escherichia coli.

No producen enfermedad en las personas.

Pero sí se comportan como excelentes indicadores de contaminación fecal y, sobre todo, de la posible presencia de virus entéricos mucho más resistentes que las bacterias.

Por eso las Normas ISO llevan muchos años recomendando su determinación.

Y finalmente, en 2023 esa recomendación terminó llegando también a la legislación del agua de consumo.

Una muestra puede ser negativa para bacterias indicadoras y, sin embargo, seguir revelando una contaminación fecal reciente mediante la presencia de colífagos.

Además, la infiltración de aguas naturales superficiales contaminadas —por ejemplo, tras lluvias intensas que arrastran contaminación fecal desde el terreno o por fallos en la protección de las captaciones— no solo puede transportar bacterias.

También puede vehiculizar virus y otros microorganismos resistentes, como Giardia, Cryptosporidium, Toxoplasma, amebas u otros protozoos de interés sanitario.

La ausencia de colífagos es un buen indicio de que no ha existido una contaminación reciente por aguas naturales superficiales o fecales y, por tanto,

hace menos probable la presencia de microorganismos resistentes transportados por ese tipo de contaminación, entre ellos virus entéricos y protozoos.

Porque el objetivo ya no es solo saber si el agua tuvo contaminación fecal.

El objetivo es saber si esa contaminación pudo transportar microorganismos que las bacterias indicadoras ya no son capaces de revelar.

 

  1. LO QUE OCURRIÓ

Cuando apareció el Real Decreto de Aguas de Consumo de Enero de 2023, muchos laboratorios tuvieron que implantar deprisa un método completamente nuevo.

No era un ensayo microbiológico convencional.

Había que cultivar una cepa hospedadora específica de E. coli.

Prepararla con la concentración adecuada.

Mezclarla con un medio semisólido.

Añadir la muestra.

Verter todo sobre un agar base.

Incubar.

Y finalmente contar las calvas de lisis producidas por cada partícula vírica.

Para la mayoría de laboratorios suponía aprender una técnica completamente diferente.

 

  1. LA SOLUCIÓN MICROKIT: ANTICIPACIÓN

En MICROKIT aquello no era nuevo.

Llevábamos muchos años, desde 2010, fabricando exactamente los medios definidos por la Norma ISO 10705-2.

Por eso, cuando llegó la legislación, numerosos laboratorios ya conocían nuestros productos y pudieron implantar el método inmediatamente.

Unos pocos ya llevaban mucho tiempo usándolos.

Actualmente ofrecemos los tres medios necesarios para realizar el procedimiento completo:

  • Scholten Broth, para preparar y multiplicar la cepa hospedadora.
  • Scholten Semisolid Medium, donde se mezcla la bacteria con la muestra.
  • Scholten Agar, sobre el que aparecen las calvas de lisis que permiten contar los colífagos.
  • Así como la cepa específica de coli asignada por la Norma ISO, en el formato robusto de enorme longevidad de nuestras lentículas

https://microkit.es/fichas/BACTERI%C3%93FAGOS-COL%C3%8DFAGOS%20SCHOLTEN%20BROTH.pdf?v=2025

https://microkit.es/fichas/BACTERI%C3%93FAGOS-COL%C3%8DFAGOS%20SCHOLTEN%20SEMISOLID.pdf?v=2025

https://microkit.es/fichas/BACTERI%C3%93FAGOS-COL%C3%8DFAGOS%20SCHOLTEN%20AGAR.pdf?v=2025

No reinventamos el método.

Simplemente fuimos los primeros fabricantes en ofrecer exactamente la formulación establecida por la Norma ISO, una década antes de que se convirtiera en legislación.

 

  1. ¿QUÉ SE HACE REALMENTE EN EL LABORATORIO?

Este ensayo impresiona al principio al leer la Norma ISO que lo describe, pero una vez implantado sigue una secuencia muy lógica.

Primero se prepara la cepa hospedadora de E. coli, que actuará como «blanco» para los virus.

Después se ajusta su crecimiento hasta obtener la concentración indicada por la Norma.

Mientras tanto se prepara el medio semisólido, al que se añade calcio —imprescindible para favorecer la infección por los fagos—

y, si es necesario, otros aditivos previstos por la ISO para mejorar la lectura, como el TTC, que provocará un color rojo de fondo en la placa con el E.coli crecido, y calvas incoloras que contrastan muy bien.

A continuación se mezclan tres componentes:

  • la bacteria hospedadora,
  • la muestra de agua,
  • y el medio semisólido.

Esa mezcla se vierte inmediatamente sobre una placa de Scholten Agar.

Durante la incubación, cada colífago infecta una bacteria, se multiplica y destruye las células vecinas.

Como consecuencia aparecen pequeñas zonas transparentes, llamadas calvas de lisis, de ausencia de crecimiento del E.coli.

Si se añadió TTC en el medio semisólido, las calvas contrastarán mucho mejor (incoloras sobre medio rojo).

Cada una de esas calvas corresponde al crecimiento de una única partícula infectiva de virus.

Por eso el resultado final se expresa como unidades formadoras de placa, o PFU.

Cuando se entiende la lógica del proceso, deja de parecer una técnica complicada y pasa a ser un método muy reproducible.

 

  1. ¿Y QUÉ PASA CON LOS COLÍFAGOS ARN-F ESPECÍFICOS?

Los colífagos somáticos no son los únicos contemplados por las Normas ISO.

Existe también la Norma ISO 10705-1 para los colífagos ARN-F específicos.

La diferencia fundamental está en cómo infectan a la bacteria.

Los colífagos somáticos penetran a través de la pared celular.

Los ARN-F utilizan los pili sexuales F de la bacteria hospedadora.

Ambos grupos aportan información complementaria sobre la contaminación fecal y, en algunos estudios, permiten caracterizar mejor su origen y el comportamiento de diferentes virus en el medio ambiente.

Aunque actualmente la legislación española se centra en los colífagos somáticos, MICROKIT también fue el primer fabricante en ofrecer la gama completa de medios para los colífagos ARN-F conforme a la Norma ISO.

La infraestructura ARN-F se encuentra ya plenamente operativa, con tráfico de clientes en la UE en sus tres medios de cultivo.

Es una apuesta por adelantarse a las necesidades del laboratorio y del mercado, igual que ocurrió años antes con los colífagos somáticos.

 

  1. EL MENSAJE MICROKIT

En MICROKIT no esperamos a que una técnica se haga obligatoria para desarrollarla.

Estudiamos las Normas ISO, fabricamos exactamente los medios que describen y ayudamos a que nuestros clientes lleguen preparados cuando cambia la legislación.

Lo mismo que acaba de suceder en 2023 y 2024 con los medios para Clostridium Sulfito -Reductores (ISA) y para Clostridium perfringens (RPM y LENA)  en alimentos.

Porque nuestro orgullo no es vender medios de cultivo.

Es facilitar que los laboratorios implanten con seguridad las técnicas microbiológicas que antes o después terminarán siendo necesarias.

Tenemos un video que lo explica todo: https://www.youtube.com/watch?v=cQNij-WXAYA

MICROKIT: siguiendo las Normas ISO antes de que la legislación obligue a hacerlo.

Anticipamos las necesidades futuras siguiendo las Normas técnicas antes de que las administraciones las conviertan en obligación legal.

Vibrio vulnificus: la «bacteria asesina» que el calentamiento del mar está convirtiendo en un riesgo creciente

Vibrio vulnificus: la «bacteria asesina» que el calentamiento del mar está convirtiendo en un riesgo creciente

Cada verano aparecen titulares sobre la llamada «bacteria asesina» o «bacteria carnívora».

El nombre impresiona, pero detrás de él no hay un microorganismo nuevo, sino una bacteria conocida desde hace décadas: Vibrio vulnificus.

Lo que sí está cambiando es el entorno en el que vive.

El aumento de la temperatura del agua en la presente época geológica está favoreciendo su proliferación y ampliando las zonas donde puede encontrarse,

motivo por el que algunos organismos europeos de salud pública mantienen una vigilancia especial durante los meses más cálidos.

 

Un habitante natural de las aguas costeras

Vibrio vulnificus pertenece al género Vibrio, un grupo de bacterias adaptadas a vivir en ambientes marinos y salobres,

como estuarios, desembocaduras de ríos y zonas costeras (sobre todo charcas estancadas) donde se mezclan el agua dulce y el agua de mar.

Se trata de un bacilo Gram negativo, oxidasa positivo, anaerobio facultativo y provisto de un flagelo polar que le proporciona movilidad.

Tolera concentraciones elevadas de sal (con óptimo a 20-25 g/L, cuando la salinidad del mar está entre 37 y 42 g/L)

y de sales biliares, pero es oxidasa positivo (a diferencia de las enterobacterias) y puede desarrollarse en medios relativamente alcalinos, características que explican su adaptación al medio marino.

Aunque existen más de un centenar de especies del género Vibrio,

solo unas pocas (V.cholerae, V.parahaemolyticus, V.alginolyticus…) representan un riesgo importante para la salud humana,

siendo Vibrio vulnificus una de las más preocupantes por la gravedad que pueden alcanzar algunas de sus infecciones.

 

¿Cómo llega al ser humano?

La bacteria puede infectar a las personas principalmente por dos vías.

La primera, y más conocida, es el consumo de pescado o marisco crudo o insuficientemente cocinado,

especialmente ostras y otros moluscos bivalvos, auténticos filtros concentradores de los microorganismos presentes en el agua.

La segunda vía, la que más impacta, es el contacto de heridas abiertas, cortes, tatuajes recientes o piercings con agua marina contaminada.

En estos casos, la bacteria puede penetrar directamente en los tejidos y matar en cuestión de horas.

 

Desde una gastroenteritis hasta una infección potencialmente mortal

En personas sanas, la infección suele limitarse a un cuadro gastrointestinal con diarrea, náuseas, fiebre y malestar general.

Sin embargo, cuando la bacteria consigue acceder al torrente sanguíneo o invade una herida, la situación puede complicarse rápidamente.

Vibrio vulnificus puede producir infecciones profundas de los tejidos blandos, incluyendo fascitis necrosante,

una enfermedad caracterizada por la destrucción acelerada de piel, tejido subcutáneo y fascia, motivo por el que popularmente se la conoce como «bacteria carnívora».

En los casos más graves puede desarrollarse una septicemia con una elevada mortalidad.

Cuando el tratamiento antibiótico no consigue controlar la infección, puede ser necesario recurrir a la cirugía e incluso a la amputación del miembro afectado para salvar la vida del paciente.

 

¿Quién corre más riesgo?

La mayoría de las personas expuestas nunca desarrollarán una infección grave.

Los cuadros más severos aparecen principalmente en personas con enfermedades hepáticas crónicas, diabetes, hemocromatosis, inmunodepresión, aclorhidria o edad avanzada.

En estos pacientes, la capacidad de la bacteria para pasar al torrente sanguíneo aumenta considerablemente.

Las diferentes series clínicas publicadas, sitúan la mortalidad de la septicemia por Vibrio vulnificus entre aproximadamente el 18 % y el 50 %,

dependiendo de la rapidez del diagnóstico y del inicio del tratamiento.

Hay casos de muerte fulminante en cuestión de un día o dos por no acudir al hospital a tiempo.

 

El calentamiento oceánico actual cambia también el mapa microbiológico

La preocupación actual no se debe a que la bacteria haya aparecido recientemente, sino a que las condiciones ambientales le resultan cada vez más favorables.

Las aguas costeras cálidas y de baja salinidad favorecen su multiplicación, y los episodios de olas de calor hacen que estas condiciones se mantengan durante más tiempo.

Como consecuencia, el riesgo ya no se limita únicamente a regiones tradicionalmente cálidas.

Los datos europeos reflejan esta tendencia:

Mientras que entre 2014 y 2017 se notificaban alrededor de 126 casos anuales, durante la intensa ola de calor de 2018 se registraron 445 casos,

lo que puso de manifiesto la influencia de la temperatura sobre la presencia de estas bacterias.

El Mediterráneo constituye una de las zonas que más preocupa a los expertos debido al progresivo calentamiento de sus aguas,

unido a la elevada actividad turística y al consumo de productos del mar.

Siendo España el país más meridional (cálido) de Europa, con más línea de costa y con más turismo playero, la preocupación en nuestro país debería convertirse en una emergencia nacional.

 

Detectar antes para prevenir mejor

La expansión de Vibrio vulnificus no es solo una noticia sanitaria; es también un aviso para los laboratorios.

A medida que aparecen riesgos microbiológicos emergentes o aumentan microorganismos antes poco frecuentes,

la capacidad para detectarlos de forma rápida y específica adquiere un papel cada vez más importante.

Para responder a esta necesidad, MICROKIT dispone de un medio de cultivo que resulta muy selectivo para su detección:

El Vibrio vulnificus CPC Agar, formulado para favorecer el aislamiento selectivo de esta especie.

Sobre todo si se siguen todos los consejos de nuestro folleto técnico:

https://microkit.org/producto/vibrio-vulnificus-cpc-agar-celobiosa-polimixina-colistina-aislamiento-selectivo-de-vibrio-vulnificus-bam-fda/

También disponemos, aparte del clásico TCBS Agar,  del CROMOKIT Vibrio Agar, un medio cromogénico que facilita la diferenciación visual de las otras 3 especies más patógenas del género Vibrio, agilizando su identificación presuntiva: V.cholerae, colonias azules, V.parahaemolyticus, colonias blancas con centro rojo; V.alginolyticus, (el “hermano pequeño” de V.vulnificus, con reacciones similares aunque a menudo menos severas) colonias crema y grandes.

https://microkit.es/fichas/CROMOKIT-VIBRIO-AGAR.pdf

https://microkit.es/fichas/TCBS%20VIBRIO%20AGAR.pdf

Vibrio vulnificus en TCBS Agar

El caldo de enriquecimiento Alkaline-Peptone-Saline adicionado de 10 g/L de ClNa, es la mejor opción para convertir productos del mar sólidos en muestras que se pueden estriar en placa. Y además permite enriquecer (tanto los alimentos marinos como el agua de mar) para su detección más certera.

https://microkit.es/fichas/ALKALINE-VIBRIO-ENRICHMENT-BROTH.pdf

En un escenario donde el calentamiento de las aguas está modificando la distribución de estos microorganismos, disponer de herramientas microbiológicas adecuadas resulta tan importante como conocer el riesgo.

 

Vigilancia microbiológica: más importante que nunca

La expansión de Vibrio vulnificus ilustra cómo el calentamiento de las aguas costeras también modifica los riesgos microbiológicos asociados al agua y a los alimentos.

Para la industria alimentaria, los laboratorios y las autoridades sanitarias, mantener una vigilancia adecuada de los productos marinos y de las aguas costeras resulta esencial para detectar precozmente este tipo de microorganismos y minimizar el riesgo para la salud pública.

Porque, aunque Vibrio vulnificus sea un habitante natural del mar desde hace mucho tiempo, el escenario en el que vive está cambiando… y con él, también nuestra exposición a esta bacteria. En nuestro canal de youtube puedes ver este video sobre el tema: