DEXTROSA TRIPTONA LEVADURA BROMOCRESOL AGAR

DEXTROSA TRIPTONA LEVADURA BROMOCRESOL AGAR Ensayo de fermentación para  Enterobacterias (UNE 34-557:1983, ISO 21528:2004, ISO 4702:1993).

ColorVioletaPurpuraCOMPOSICIÓN
Triptona 10,000 g
Extracto de Levadura 1,500 g
Glucosa 10,000 g
Cloruro de sodio 5,000 g
Púrpura de Bromocresol 0,015 g
Agar 15,000 g
(Fórmula por litro)
pH final: 7,0 ± 0,1

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO. AGITE EL BOTE ANTES DE USAR.

PREPARACIÓN
Disolver 41,5 gramos de medio en 1 litro de agua bidestilada. Agitar lentamente para su completa disolución. Repartir en tubos. Autoclavar a 121 ºC durante 20 minutos.

PRESENTACIÓN: MEDIO DESHIDRATADO CODIGO: DMT178

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO:
Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)
DESHIDRATADO: Gris azulado
PREPARADO: Púrpura-lila

CONTROL DE CRECIMIENTO 24-48 h a 37°C aproximadamente:
E.coli MKTA 25922, Correcto, medio amarillo en 24 h
Pseudomonas aeruginosa MKTA 9027, Correcto, medio lila
Salmonella abony MKTN 6017, Correcto, medio amarillo en 24 h
Staphylococcus aureus MKTA 6538P, Pobre, medio amarillo tras 48 horas

SIEMBRA E INTERPRETACIÓN DEXTROSA TRIPTONA LEVADURA BROMOCRESOL AGAR
Inocular con las colonias crecidas en VRBG (DMT136 ó BCD088) e incubar a 37 ºC aproximadamente, durante 24h. Un color amarillo en la totalidad del tubo, acompañado normalmente de gas, indica una reacción positiva.

El usuario es el único responsable de la eliminación de los microorganismos según la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.

Si desea más información sobre nuestro DEXTROSA TRIPTONA LEVADURA BROMOCRESOL AGAR o cualquier otro producto no dude en contactar con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es, o en nuestro teléfono 91-897 46 16.

BIGGY NICKERSON CANDIDA AGAR

BIGGY NICKERSON CANDIDA ‑ AGAR. Detección de Candida.

CANDIDA

COMPOSICIÓN

  • Extracto de levadura               1.0 g
  • Glicina                                      10.0 g
  • Glucosa                                    10.0 g
  • Citrato-bismuto amoniacal     5.0 g
  • Sulfito sódico                             3.0 g
  • Agar‑agar                                 15.0 g

(Fórmula por litro)             pH final: 6,8 ± 0,2

 PREPARACIÓN

Disolver 44 g de medio en 1 litro de agua estilada. Calentar hasta ebullición, agitando ara su disolución. Mantener la ebullición durante un máximo de 2 minutos.

NO autoclavar ni sobrecalentar o el medio virará a gris.

Medio que, una vez preparado, gana calidad con el tiempo, mientras se mantenga blanco (1-2 años).

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO

MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO. AGITE EL BOTE ANTES DE USAR.

DESHIDRATADO CODIGO: DMT017

PRESENTACIÓN: TUBOS INCLINADOS CON PICO LARGO, FRASCOS 100 ml, MEDIO DESHIDRATADO

 CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…).

DESHIDRATADO: Polvo fino, Beige         PREPARADO: Estéril, Blanco.

CONTROL DE CRECIMIENTO 48-72 h a 37°C aproximadamente, o bien a temperatura ambiente (aprox.21-28°C):

  • Candida albicans MKTA 10231, Excelente, Colonia marrón sin difusión de pigmento al medio. Con respecto a PCA estandarizado*, recuento 114-119%, pero de forma selectiva.
  • Candida tropicalis MKTA 1005, Excelente, Colonia con difusión del color negro-metálico al medio. Con respecto a PCA estandarizado*, recuento 115%, pero de forma selectiva.
  • Escherichia coli MKTA 25922, Inhibido.
  • Staphylococcus aureus MKTA 6538P, Inhibido.

* El que cumple con recuperación superior al 92-125% con respecto a cepas cuantitativas trazables a la cepa tipo. Incertidumbres detectadas entre todos los lotes a lo largo de un año (la mayoría de la incertidumbre se debe a la cepa y a la proporción de cepas acompañantes inoculadas, no al medio).

 

NOTA: Bismuto‑Sulfito‑Glucosa‑Glicina‑Yeast Agar (BIGGY) es un medio selectivo para Candida. El sulfito de Bismuto inhibe la flora bacteriana y es reducido a pardo oscuro por las Candida. El medio es tan bueno Para C.albicans que no ha sido mejorado por los medios cromogénicos.

SIEMBRA

Fundir frascos a 98 ºC para elaborar placas sin sobrecalentar. Sembrar en superficie, exclusivamente con asa de Platino (VCS147). A pesar de ser una levadura, si se siembra en masa, se obtendrán recuperaciones incluso 3 veces inferiores y colonias más tardías y diminutas.

Incubar durante 1‑3 días a 35 ºC aproximadamente.

 CANDIDA2

INTERPRETACIÓN

Candida albicans forma colonias negras o pardo oscuras, sin brillo metálico ni difusión de pigmentos al medio. C tropicalis: colonias pardo‑oscuras con centro negro, con reflejo metálico y con pigmento negro que difunde alrededor de las colonias tras 72 horas. C. pseudotropicalis: colonias pardo‑rojizas oscuras, brillantes, sin difusión. C. krusei: colonias rugosas, plateadas‑pardo‑negruzcas, con halo de difusión amarillo. C. parakrusei: colonias rugosas, pardo‑rojizas, con micelio amarillo alrededor. C. stellatoidea: colonias pardo‑oscuras con leve reborde micelial.

 

Si desea más información sobre nuestros MEDIO BIGGY NICKERSON CANDIDA AGAR, rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

DEXTROSE TRYPTONE AGAR (DTA) (BASE)

DEXTROSE TRYPTONE AGAR (DTA) (BASE) AGAR GLUCOSADO PARA BACILLUS. Detección de esporulados termófilos (ICUMSA, NCA) y demás Bacillus, alterativos o no. Bacillus cereus (ISO 7932).

BacillusMelenaLeonCOMPOSICIÓN
Extracto de levadura 1,500 g
Triptona 10,000 g
Glucosa 10,000 g
Cloruro sódico 5,000 g
Púrpura de bromocresol 0,015 g
Agar-Agar 12,000 g
(Fórmula por litro)
pH final: 7,0 ± 0,2

PREPARACIÓN
Disolver 38’5 g de medio en 1 litro de agua bidestilada. Calentar hasta ebullición, agitando hasta la completa homogeneización. Autoclavar a 121 ºC durante 15 minutos. Para que el medio sea selectivo, añadir asépticamente 10 ml/l de Polimixina B estéril (SMS009).
PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO. AGITE EL BOTE ANTES DE USAR.
DESHIDRATADO CODIGO: DMT183

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO
Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)
DESHIDRATADO: Polvo fino, Verdoso
PREPARADO: Estéril, Violeta

CONTROL DE CRECIMIENTO 24-48 h a 30-37°C aproximadamente:
Bacillus cereus MKTA 10876, Excelente, colonias expandidas con intensa acidificación del medio (viraje a amarillo). Con respecto a PCAestandarizado*, recuento medio 218 %.
Bacillus subtilis MKTA 6633, Excelente, colonias expandidas sin acidificación del medio (sin viraje). Con respecto a PCA estandarizado*, recuento medio 223 %.
Staphylococcus aureus MKTA 6538P, Crece, colonias redondas y discretas. Con respecto a PCA estandarizado*, recuento medio 75 %.
Pseudomonas aeruginosa MKTA 27853, Inhibido.
Escherichia coli MKTA 25922, Inhibido.
* El que cumple con recuperación superior al 92-125% con respecto a cepas cuantitativas
trazables a cepa tipo.

PRESENTACION: TUBOS PREPARADOS INCLINADOS, FRASCOS 100
ml, MEDIO DESHIDRATADO.
DEXTROSE TRYPTONE AGAR (DTA) es un medio para la detección de esporulados termófilos acidificantes en alimentos, incluido Bacillus coagulans. Y para detección y recuento de  esporulados aerobios del aire, de las superficies y de otras muestras.
DTA
SIEMBRA
Para aerobios esporulados, a fin de germinar las esporas,. calentar el tubo con dilución madre y el de dilución –1 en un baño a 80ºC durante un minuto exacto, sacar y poner en un baño de agua con hielo durante 1 hora.
Sembrar 0,1 ml de la muestra y su serie de diluciones decimales en superficie de placas duplicadas; o bien sembrar en estría en los tubos inclinados. O bien sembrar por impacto en placa de contacto con un muestreador tipo MICROFLOW.
Incubar 2-3 días a 30 ºC aproximadamente, o bien 36-48 horas a 55 ºC aproximadamente en un incubador húmedo para prevenir la desecación del medio. Para detectar también la población de cepas termófilas puede ser necesario realizar un duplicado, e incubarlo tras darle a la placa sembrada un shock térmico de 1-4 horas a 55°C aproximadamente. Para confirmar B.cereus, según Norma ISO 7932, incubar sólo 24 h a 30°C aproximadamente y observar el viraje del medio lila a amarillo.

BThuringiensisINTERPRETACIÓN
B. coagulans forma colonias en “flat sour” amarillo-verdosas. B.cereus crece en sólo 24 horas a 30°C con colonias amarillas que viran el medio a amarillo.
La mayoría de especies de Bacillus crecen selectivamente en este medio. Use KUS700 para identificar la especie de acuerdo con el Manual Berggey.

El usuario es el único responsable de la eliminación de los microorganismos según la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.

Si desea más información sobre nuestro DEXTROSE TRYPTONE AGAR (DTA) o cualquier otro producto no dude en contactar con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es, o en nuestro teléfono 91-897 46 16.

BAT ALICYCLOBACILLUS AGAR

BAT ALICYCLOBACILLUS AGAR. Medio selectivo para el aislamiento de microorganismos acidotermófilos y osmotolerantes, según IFU-12-2007

Medio selectivo para el aislamiento de microorganismos acidotermófilos y osmotolerantes (incluido Alicyclobacillus acidocaldarius) en jugos de frutas, concentrados, mermeladas y otros alimentos ácidos, según IFU-12-2007. Cada vez hay más problemas microbiológicos industriales, que pueden asociarse a estas bacterias acidófilas esporuladas termoresistentes (Eguchi y col., 1999),  que provocan en el alimento un olor desagradable por síntesis de fenoles. El extracto de levadura, la glucosa y las sales minerales aportan las vitaminas, carbohidratos y oligoelementos necesarios, la temperatura y pH de la incubación actúan como agentes selectivos.

 COMPOSICIÓN.

  • Extracto de levadura                                2,00 g
  • Glucosa                                                      5,00 g
  • CaCl2.2 H2O                                               0,12 g
  • MgSO4.7 H2O                                            0,25 g
  • (NH4)2 SO4                                                 0,10 g
  • KH2PO4                                                      1,50 g
  • ZnSO4. 7 H2O                                            0,09 mg
  • CuSO4. 5 H2O                                            0,08 mg
  • MnSO4. H2O                                              0,07 mg
  • CoCl2. 6 H2O                                              0,09 mg
  • H3BO3                                                         0,05 mg
  • Na2MoO4. 2 H2O                                      0,15 mg
  • Agar-agar                                                  20,00 g

(Fórmula por litro)           pH final: 5,3 ± 0,2

 PREPARACIÓN

Disolver 29 g del medio en 1 litro de agua destilada. Calentar agitando hasta ebullición para su disolución. Autoclavar a 116 ºC durante 15 minutos, acortando al máximo los tiempo de autoclave y provocando un enfriamiento forzado a su salida.

NOTA IMPORTANTE: Sólo tras autoclavar y antes de que solidifique, ajustar el pH de cada frasco a 4,0 ± 0,2 mediante H2SO4, ya que el agar recalentado a un pH tan ácido pierde buena parte de sus propiedades gelificantes, por lo que quedará más friable y blando cuanto más lo recalentemos.

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO. MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO FRESCO Y OSCURO. AGITE EL BOTE ANTES DE USAR.

CODIGO DESHIDRATADO: DMT231, FRASCOS PREPARADOS: RPL145

 CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

DESHIDRATADO: polvo crema    PREPARADO: Estéril, Paja-Ambar

CONTROL DE CRECIMIENTO, 3 días a 45°C:

  • Alicyclobacillus acidocaldarius MKT 001, Excelente
  • Escherichia coli MKTA 25922, Inhibido
  • Staphylococcus aureus MKTA 6538P, Inhibido

 

PRESENTACIÓN: MEDIO DESHIDRATADO, FRASCOS PREPARADOS

 MODO DE EMPLEO E  INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS

Si el producto es filtrable, filtrar la cantidad deseada de muestra, en general 100-250 ml, por una membrana estéril de 0,45 µm, para obtener recuentos. Sembrar la membrana sobre una placa con BAT Agar. Si se desea, realizar un duplicado con una segunda capa (por si acaso la siembra en masa estimula mejor el crecimiento de los microorganismos presentes), a 45°C controlados para evitar que los microorganismos se estresen.

Si el producto no es filtrable, preincubarlo 3 días a 45 °C para su posterior investigación, en este caso sin posibilidad de recuento, ya que se ha enriquecido. Sembrar en la superficie del BAT Agar, en estría o repartiendo con asa de Digralsky, una alícuota de la muestra enriquecida; o en masa si el agar está muy blando como para estriarlo. En este caso, no voltear la placa durante su incubación.

Si el producto no es filtrable y se desea recuento, utilice tubos de Alicyclobacillus Broth (MICROKIT TPL011) para realizar un recuento NMP.

Incubar 3-7 días a 45°C (incluso puede ser a 60°C) en estricta AEROBIOSIS. Contar todas las colonias, ya que a esas temperaturas y con ese pH, sólo crecen microorganismos acidotermófilos. Si desea identificar las colonias, a nivel de especie, utilice los kits M-Ident®-Acidificantes, si se trata de bacterias acidoacéticas o acidolácticas, o bien M-Ident®-Bacillus si se trata de Bacilos.

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DEXTROSA (GLUCOSA ANHIDRA) PARA MICROBIOLOGÍA

DEXTROSA (GLUCOSA ANHIDRA) PARA MICROBIOLOGÍA es una Base común usada como fuente de hidratos de carbono para microbiología, para fermentación y para asimilación.

COMPOSICIÓN
Solubilidad en agua: hasta 1 g por ml
Sulfitos < 15 ppm
Sulfatos < 200 ppm
Cenizas sulfúricas < 1,0 %
Calcio < 200 ppm
Cloruros < 125 ppm
Arsénico < 1 ppm
Agua < 1,0 %

MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO. PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO. PRESENTACION: EN POLVO

DESHIDRATADO CÓDIGO: DMT042

CONTROL DE CALIDAD
Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

DESHIDRATADO:Polvo blanco, inodoro y dulce.
PREPARADO: Estéril, incoloro, inodoro y dulce
CONTROL DE CRECIMIENTO 24-48 h a 37°C:

Integrada en el medio de cultivo PCA:
Enterococcus faecalis ATCC 29212, Excelente.
Staphylococcus aureus ATCC 6538P, Excelente.
E. coli ATCC 25922, Excelente.
Pseudomonas aeruginosa ATCC 9027, Excelente.

PREPARACIÓN DEXTROSA (GLUCOSA ANHIDRA)
Se trata del azúcar procedente de la uva o de la hidrólisis del almidón. Es el monosacárido más usado en microbiología. Se añade en medios de cultivo a razón de 1 a 40 gramos por litro final de medio. Si se trata de ver el crecimiento en medios hiperosmóticos, se añaden hasta 500 g/l.

El usuario es el único responsable de la eliminación de los microorganismos según la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.

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BAIRD PARKER AGAR (BASE) POLVO

BAIRD PARKER AGAR (BASE) POLVO. Detección y enumeración de Staphylococcus aureus (USP, FIL, ISO 6888-1:2000, UNE 34-811:1985, ISO 22718-cosméticos

COMPOSICIÓN

  • Triptona                  10.00 g
  • Extracto de carne        5.00 g
  • Extracto de levadura   1.00 g
  • Piruvato sódico           10.00 g
  • Glicina                           12.00 g
  • Cloruro de litio             5.00 g
  • Agar-agar                     15.00 g

(Fórmula por litro)

pH final: 7,2 ± 0.2

Staphylococcus aureus

Colonias típicas de Staphylococcus aureus

 PREPARACIÓN

Disolver 58 g de medio en 1 l de agua bidestilada. Calentar hasta ebullición agitando para su completa disolución. Autoclavar a 121 ºC durante 15 minutos. El color final del medio es crema.

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO

MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO.   AGITE EL BOTE ANTES DE USAR

DESHIDRATADO CODIGO: BCD085

 CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

DESHIDRATADO: Polvo, tostado PREPARADO: Estéril, Crema, Opaco

EVALUACIÓN DEL RENDIMIENTO s/ISO/TS 11133-2,  24-48 h a 37 ºC (Aplicando el método ISO 6888-1:2000, o el indicado en el Manual MICROKIT actual):

  • Staphylococcus aureus MKTA 6538P, Excelente, colonias negras-grises, con reborde blanco y amplio halo de aclaramiento de la yema. PR > 0,5, en concreto >50-150% de colonias respecto al número de ufc certificadas e inoculadas en TSA; esta variabilidad de la productividad depende de la composición y carga de la flora acompañante inoculada
  • Staphylococcus epidermidis MKTA 12228, Crecen colonias negras-grises, pero sin halo.
  • Escherichia coli MKTA 25922, Inhibido completamente: Ni una sola colonia.
  • Bacillus subtilis MKTA 6633, Escaso, colonia marrón, pero sin halo de lecitinasa.
  • Proteus mirabilis MKTA 14153, Excelente, colonia marrón, pero sin halo de lecitinasa.

Si la muestra a analizar es rica en mohos, tras añadir 4-10 mg de Cicloheximida por litro de medio final, los hongos quedan inhibidos.

*El que cumple con recuperación superior al 92-125 % con respecto a cepas cuantitativas trazables a la cepa tipo. Las colecciones TIPO prohiben el uso de su referencia por lo que indicamos la nuestra, directamente trazable a la colección TIPO.

PRESENTACIÓN: TUBOS 20 ml BASE + SUPLEMENTO, FRASCOS 100 ml BASE + SUPLEMENTO, MEDIO DESHIDRATADO BASE + SUPLEMENTO, DESINFECTEST-STAF/LIS.

NOTA: Medio selectivo y diferencial para la detección y enumeración de S. aureus en alimentos y productos farmacéuticos. El Cloruro de Litio, el Telurito Potásico y la Glicina inhiben la flora acompañante. Si la muestra es rica en mohos, se pueden eliminar añadiendo al medio enfriado a 45°C, 0,05-0,5 g/l de Cicloheximida (SKM200).

 SIEMBRA

Fundir tubos 20 ml o frascos 100 ml BASE a 98 ºC, enfriar a 48 ºC y mezclar bien con 50 ml/l de emulsión estéril de yema de huevo con telurito potásico (SBH011). Añadir 20 ml/placa. Sembrar la placa con 0,1ml de la muestra y sus diluciones, en superficie, con un triángulo de vidrio estéril VRR154 o con asas de Digralsky desechables (VCL155). Para detectar la presencia de S. aureus, sembrar caldo de enriquecimiento Giolitti-Cantoni. Para recuento, sembrar directamente las diluciones decimales de la muestra. Las Placas de Contacto se aplican un instante sobre la superficie problema, apretando y sin desplazar, o se introducen en un aparato de control de aire. Incubar 48 horas a 35-38 ºC (según ISO 6888-1, 24 h a temperatura ambiente seguido de 24 h a 36-38°C).

 INTERPRETACIÓN

S.aureus forma colonias características (negras o grises, brillantes, convexas, de 1,5-2,5 mm, a menudo con reborde opalescente-blanco, rodeadas de un halo claro de 2‑5 mm de diámetro (lísis de la yema de huevo). Sospechar tambien de las colonias atípicas (negras brillantes y grises, sin halo). Confirmar la coagulasa con el látex inmediato KWD094 o bien con incubación en BHI (DMT022, RPL004, TPL003), 22-26 h a 35-37 °C y, tras 4-6 h de añadir 0,3 ml de plasma de conejo, a 35-37°C, el coágulo supera la mitad del volumen original. Otros estafilococos, Micrococcus y Bacillus forman colonias sin alguna de las características descritas. Para descartar los falsos positivos de Micrococos, realizar una citocromo-oxidasa (con las tiras estables KOT050), ya que los Staphylococcus spp. son oxidasa negativos pero los Micrococcus spp. son oxidasa positivos.

Si desea más información sobre nuestros Medio BAIRD PARKER AGAR rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

 

 

DESOXICOLATO CITRATO AGAR (D.C.A.)

DESOXICOLATO CITRATO AGAR (D.C.A.) es un Agar selectivo para el aislamiento de Salmonella spp. y Shigella spp. en medicamentos, alimentos, ambiente y muestras clínicas, asi como de otras enterobacterias y coliformes.
Pharmacopea medio J.

COMPOSICIÓN
Extracto de carne 10,0 g
Peptona de carne 5,0 g
Lactosa 10,0 g
Citrato Sódico 20,0 g
Tiosulfato sódico 5,0 g
Citrato Férrico 1,0 g
Desoxicolato Sódico 5,0 g
Rojo neutro 0,02 g
Agar-Agar 13,5 g
(Fórmula por litro)
pH final: 7,0 ± 0,2

PREPARACIÓN
Disolver 69,5 gramos en 1 litro de agua bidestilada. Agitar calentando hasta ebullición. No Autoclavar! No sobrecalentar! El color final del medio es rosa pálido, traslúcido, con un fino precipitado de desoxicolato. No refundir!

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO. AGITE EL BOTE ANTES DE USAR, PARA ASEGURAR LA HOMOGENEIZACIÓN DE LOS EVENTUALES GRADIENTES DE DENSIDAD DE LOS COMPONENTES. MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO.
DESHIDRATADO CODIGO: DMT037

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO:
Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…).

DESHIDRATADO: Polvo grueso, rosado
PREPARADO: Estéril, rosa pálido

EVALUACIÓN DEL RENDIMIENTO ISO/TS 11133-2
(Aplicando el método ISO 6579, ISO 12824, o el indicado en el Manual MICROKIT actualizado), 24-48 h a 37 ºC:
Salmonella abony MKTN 6017, Colonias transparentes, amarillentas, con centro negro. PR > 0,5, en concreto >50-96% de colonias respecto al número de ufc certificadas e inoculadas en TSA; esta variabilidad de la productividad depende de la composición y carga de la flora acompañante inoculada. Si procede de enriquecimiento, buen crecimiento en estría.
Shigella flexneri MKTA 12022, colonias incoloras/rosadas.
Citrobacter freundii MKT 8090, Crece con colonias rojas-rosas con centro negro y precipitado en el medio.
Proteus mirabilis MKT 14153, Crece con colonias amarillas, invasivas, con centro gris-negro y olor a pescado.
E. coli MKTA 25922, Inhibición parcial o total, colonias grandes, rosas-rojas con precipitado en el medio.
Enterococcus faecalis MKTN 775, Inhibición completa: Ni una sola colonia.
Staphylococcus aureus MKTA 6538P, Inhibición completa: Ni una sola colonia. Las colecciones TIPO prohiben el uso de su referencia por lo que indicamos la nuestra, directamente trazable a la colección TIPO.

PRESENTACIÓN: MEDIO DESHIDRATADO, TUBOS inclinados con pico largo.
NOTA: Se utiliza para diferenciar enterobacterias y coliformes y en particular para detectar S.paratyphi. El desoxicolato sódico reduce el crecimiento de gram positivos. La degradación de lactosa en ácidos se detecta por el color rosa-rojo del rojo neutro. Los no fermentadores de lactosa crecen con colonias incoloras. La formación de sulfuro de hidrógeno se detecta por la aparición de óxido de hierro negro en el centro de las colonias.

PRESENTACIÓN: MEDIO DESHIDRATADO.

SIEMBRA E INTERPRETACIÓN DESOXICOLATO CITRATO AGAR (D.C.A.)
Sembrar en estría, para aislar colonias, a partir del caldo enriquecido. Incubar 18-24 horas a 37°C.
Colonias rosas-rojas, con o sin centro negro: Escherichia, Enterobacter, Klebsiella. Colonias incoloras, con o sin centro negro: Salmonella, Proteus.
Colonias incoloras sin centro negro: Shigella, Pseudomonas. Identificar las colonias mediante galerías adecuadas (KBH260).

El usuario es el único responsable de la eliminación de los microorganismos según la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.

Si desea más información sobre nuestro DESOXICOLATO CITRATO AGAR (D.C.A.) o cualquier otro producto no dude en contactar con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es, o en nuestro teléfono 91-897 46 16.

BAIRD PARKER AGAR (BASE) PHARMACOPEA

 

BAIRD PARKER AGAR (BASE)PHARMACOPEA.                             PHARMACOPEA MEDIO O.

Detección y enumeración de Staphylococcus aureus (USP, ISO 22718-cosméticos) Staphylococcus aureus

Colonias típicas de Staphylococcus aureus

COMPOSICIÓN

  • Triptona                      10.00 g
  • Extracto de carne        5.00 g
  • Extracto de levadura   1.00 g
  • Piruvato sódico           10.00 g
  • Glicina                           12.00 g
  • Cloruro de litio             5.00 g
  • Agar-agar                    20.00 g

(Fórmula por litro)

pH final: 6,8 ± 0.2

 

PREPARACIÓN

Disolver 63 g de medio en 1 l de agua bidestilada. Calentar hasta ebullición agitando para su completa disolución. Autoclavar a 121 ºC durante 15 minutos. El color final del medio base es crema y transparente.

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO. AGITE EL BOTE ANTES DE USAR, PARA ASEGURAR  LA  HOMOGENEIZACIÓN DE LOS EVENTUALES GRADIENTES DE DENSIDAD DE LOS COMPONENTES. MUY HIGROSCÓPICO: MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO.

DESHIDRATADO CODIGO: DMT306

 CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

DESHIDRATADO: Polvo, tostado

PREPARADO: Estéril, Crema, Opaco

CONTROL DE CRECIMIENTO CUANTITATIVO 48 h a aprox.37°C:

  • Bacillus subtilis MKTA 6633, Escaso, Colonia marrón.
  • Proteus mirabilis MKTA 14153, Excelente, Colonia marrón.
  • Staphylococcus aureus MKTA 6538P, Excelente, Colonia negra, Con reborde blanco y amplio halo. Con respecto a PCA estandarizado*, recuento 73-95 %, pero de forma selectiva.
  • Staphylococcus epidermidis MKTA 12228, Bueno, Colonia negra, sin halo.

* El que cumple con recuperación superior al 92-125% con respecto a cepas cuantitativas trazables a cepa tipo. Incertidumbres detectadas entre todos los lotes a lo largo de un año (la mayoría de la incertidumbre se debe a la cepa y a la proporción de cepas acompañantes inoculadas, no al medio)

PRESENTACIÓN: MEDIO DESHIDRATADO BASE + SUPLEMENTO.

NOTA: Medio selectivo y diferencial para la detección y enumeración de S. aureus en alimentos y productos farmacéuticos. El Cloruro de Litio, el Telurito Potásico y la Glicina inhiben la flora acompañante. La yema de huevo demuestra la actividad lecitinasa. Si la muestra es rica en mohos, se pueden eliminar añadiendo al medio enfriado a 45°C, 0,05-0,5 g/l de Cicloheximida (SKM200). 

SIEMBRA

Dejar enfriar el medio BASE a 48 ºC y mezclar bien con 50 ml/l de emulsión estéril de yema de huevo con telurito potásico (SBH011). El color final del medio completo es crema y algo opaco. Añadir 20 ml/placa. Sembrar la placa con 0,1 ml de la muestra y sus diluciones, en superficie, con un triángulo de vidrio estéril VRR154 o con asas de Digralsky desechables (VCL155). O bien por agotamiento si la muestra procede de enriquecimiento y por consiguiente, no es para realizar recuentos. Incubar 48 horas a 35-38 ºC. 

INTERPRETACIÓN

S.aureus forma colonias características (negras o grises, brillantes, convexas, de 1,5-2,5 mm, a menudo con reborde opalescente-blanco, rodeadas de un halo claro de 2‑5 mm de diámetro (lísis de la yema de huevo). Sospechar también de las colonias atípicas (negras brillantes y grises, sin halo). Confirmar la coagulasa con el látex inmediato KWD094 o bien con incubación en BHI (DMT022, RPL004, TPL003), 22-26 h a 35-37 °C si, tras 4-6 h de añadir 0,3 ml de plasma de conejo, a 35-37°C, el coágulo supera la mitad del volumen original. Otros estafilococos, Micrococcus y Bacillus forman colonias sin alguna de las características descritas. Para descartar los falsos positivos de Micrococos, realizar una citocromo-oxidasa (con las tiras estables KOT050), ya que los Staphylococcus spp. son oxidasa negativos pero los Micrococcus spp. son oxidasa positivos.

Si desea más información sobre nuestros Medio BAIRD PARKER AGAR rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

 

AZIDE DEXTROSE BROTH

AZIDE DEXTROSE BROTH. CALDO GLUCOSADO CON AZIDA DE ROTHE. Presunción de Estreptococos-D fecales por la técnica de NMP (APHA, OMS, UNE 77-076:1991)

AzideDextBroth COMPOSICIÓN
PolPeligroXipeptona 20,0 g
Glucosa 5,0 g
Cloruro sódico 5,0 g
Tampón fosfatos 5,4 g
Azida sódica 0,2 g
(Fórmula por litro)
pH final: 7,2 ± 0,2.

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO. AGITE EL BOTE ANTES DE USAR.

PREPARACIÓN
Disolver 35,6 gramos de medio en 1 litro de agua bidestilada. Si se desea, añadir 1 ml de solución de púrpura de bromocresol (1g en 67 ml de etanol). Repartir en tubos. Autoclavar a 121 ºC, durante 15 minutos. Dejar enfriar suavemente.
PRECAUCIÓN: La Azida Sódica es tóxica (y explosiva en contacto con plomo). Evitar el contacto con la piel y las mucosas (y no desechar por las cañerías).
DESHIDRATADO CODIGO: DMT014

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO
Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)
DESHIDRATADO: Polvo grueso, Beige
PREPARADO: Estéril, Ambar
CONTROL DE CRECIMIENTO 24-48 h a 37°C aproximadamente:
Escherichia coli MKTA 25922, Inhibido
Staphylococcus aureus MKTA 6538P, Inhibido
Enterococcus faecalis MKTA 29212, Correcto, turbidez (amarillo si se añadió púrpura de bromocresol)

PRESENTACIÓN: MEDIO DESHIDRATADO
NOTA: Medio para la determinación presuntiva de los estreptococos fecales en aguas y alimentos (OMS, APHA)

SIEMBRA
Inocular 9 tubos (triplicado de tres concentraciones), según la técnica NMP. Incubar a 35-37 ºC aproximadamente, durante 24-48 horas.

INTERPRETACIÓN DEL AZIDE DEXTROSE BROTH
La turbidez (o viraje a amarillo si se añadió púrpura de Bromocresol) son presuntivos de estreptococos fecales. Confirmar con EVA Litsky Broth (DMT053). Ver también KAA Broth (DMT061).

El usuario es el único responsable de la eliminación de los microorganismos según la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.

Si desea más información sobre nuestro AZIDE DEXTROSE BROTH o cualquier otro producto no dude en contactar con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es, o en nuestro teléfono 91-897 46 16.

ASPARAGINE PSEUDOMONAS BROTH

ASPARAGINE PSEUDOMONAS BROTH es un caldo APHA y CENAN para la detección y enumeración NMP presuntivas de Pseudomonas aeruginosa en aguas embotelladas, refrescos, aguas de baño y otros líquidos. Tambien útil para detectar y enumerar las bacterias gram negativas no fermentadoras.

COMPOSICIÓN
Fosfato monopotásico 10,0 g
Fosfato dipotásico 1,0 g
Asparagina 2,0 g
Sulfato magnésico 0,5 g
(Fórmula por litro)
pH final: 7,0 ± 0,2

PREPARACIÓN
Disolver 13,5 gramos en 1 litro de agua bidestilada que contenga 8 ml de glicerol. Agitar hasta su completa disolución. Autoclavar a 121° C durante 15 minutos. Para obtener el caldo a doble concentración, disolver 27 g en 1 litro de agua bidestilada que contenga 16 ml de glicerol. El color final del medio es paja-verdoso.
PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO. AGITE EL BOTE ANTES DE USAR, PARA ASEGURAR LA HOMOGENEIZACIÓN DE LOS EVENTUALES GRADIENTES DE DENSIDAD DE LOS COMPONENTES. MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO.
DESHIDRATADO CODIGO: DMT346

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO:
Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…).
DESHIDRATADO: Polvo grueso, Crema
PREPARADO: Estéril, Paja-verdoso

CONTROL DE CRECIMIENTO 24-48 h a 35-37°C aproximadamente:
Pseudomonas aeruginosa MKTA 27853, Correcto, turbidez.
Pseudomonas aeruginosa MKTA 10145, Correcto, turbidez.
Staphylococcus aureus MKTA 6538P Inhibido

PRESENTACIÓN: MEDIO DESHIDRATADO.

SIEMBRA E INTERPRETACIÓN
Medio que permite el correcto enriquecimiento de Pseudomonas aeruginosa por ser estrictamente mineral, con la Asparagina como única fuente de nitrógeno y la glicerina como única fuente de hidratos de carbono. Los demás componentes tamponan y proporcionan minerales. En principio, sólo los Gram negativos no fermentadores pueden crecer en estas condiciones.
Se recomienda para la enumeración NMP mediante 5 tubos/series inoculando 10 ml, 1 ml y 0,1 ml de muestra.
Los tubos se incuban a 35 °C durante 24-48 horas.
Pseudomonas aeruginosa hidroliza la asparagina, convirtiéndola en ácido aspártico. La aparición de crecimiento mediante turbidez (aparezca o no pigmentación fluorescente) se considera presuntiva de la presencia de Pseudomonas aeruginosa. y/o de otros Gram negativos No fermentadores. Mediante el NMP se determina su concentración en la muestra.

Confirmar los tubos turbios añadiendo una alícuota de cada uno en sendos tubos de caldo Acetamida (DMT003) que virarán, tras incubarse y añadir reactivo Nessler (SDA002), a amarillo-pardo, si la presencia de Pseudomonas aeruginosa es auténtica.

El usuario es el único responsable de la eliminación de los microorganismos según la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.

Si desea más información sobre nuestro ASPARAGINE PSEUDOMONAS BROTH o cualquier otro producto no dude en contactar con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es, o en nuestro teléfono 91-897 46 16.