NGBS-New GBS Medium Agar selectivo para Streptococcus agalactiae

NGBS-New GBS Medium
Agar selectivo para Streptococcus agalactiae

Medio selectivo para el aislamiento e identificación Steptococcus agalactiae.

CÓDIGO: TPL2075: Tubos preparados

COMPOSICIÓN:

  • Peptona proteosa N3              25
  • Almidón soluble                     10
  • Tampón MOPS                      11
  • Fosfato sódico            monobásico    1.5
  • Fosfato sódico dibásico         14.5
  • Sulfato magnésico                  0.2
  • Metronidazol                          0.01
  • Colistina sulfato                     0.005
  • Extracto Malta                                   1.5
  • Agar Bacteriológico               13.5
  • Suero de caballo                     12.5 ml

Fórmula (en g/L)

pH 7.0 ± 0,2

DESCRIPCIÓN Y USOS:

Este medio se utiliza para evidenciar y detectar la presencia de “Streptococcus agalactiae” a partir de muestras clínicas. El medio utiliza la característica de los S. agalactiae de producir en condiciones adecuadas, un pigmento carotenoide naranja- rojizo, que se correlaciona con la capacidad hemolítica de la cepa. Esta pigmentación viene favorecida por un buen tamponamiento del medio y la presencia de inhibidores del ácido fólico en el mismo.

La correlación entre aparición de la pigmentación rojiza y la presencia de S. agalactiae es muy próxima al 100%. La anaerobiosis y la inhibición de la flora acompañante con la colistina y el metronidazol también favorecen la pigmentación.

MODO DE EMPLEO:

Es recomendable que los tubos alcancen la temperatura ambiente antes de su utilización.

Inocular por siembra hasta agotamiento con asa de platino la muestra recogida con escobillón; mantener en incubación aerobia, anaerobia o con un 5% CO2. Para potenciar la pigmentación incubar en anaerobiosis durante 48 horas a 37 ±2ºC aunque en las otras condiciones también se observa un buen crecimiento. La formación de pigmento naranja-rojizo puede detectarse desde las 8 horas, aunque su intensidad puede ser variable, dependiendo de la cepa.

ALMACENAMIENTO:

Los tubos de este medio preparado deben conservarse en refrigeración entre 4 y 15 ºC, preferiblemente en la oscuridad. La caducidad, establecida por requerimientos de su composición, y el número de lote vienen indicados en cada caja individualmente.

CONTROL DE CALIDAD:

Respuesta típica después de una incubación de 48 horas a 37±2 ºC con 5% CO2

  • Streptococcus agalactiae        ATCC 12386  Crecimiento excelente, pigmentación naranja.
  • Streptococcus pyogenes         ATCC 19615  Crecimiento excelente, sin pigmentación.
  • Escherichia coli                      ATCC 25922  Inhibición del crecimiento.
  • Staphylococcus aureus                       ATCC 25923  Inhibición parcial del crecimiento.

El usuario es el único responsable de la destrucción de los microorganismos generados en el interior del kit durante su uso, de acuerdo con la legislación medioambiental vigente. Sumerja en lejía o alcohol, o mejor autoclávelos, antes de desecharlos a la basura. Mantener fuera del alcance de los niños. No ingerir.

Si desea más información sobre nuestros NGBS-New GBS Medium Agar selectivo para Streptococcus agalactiae rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

NEUTRALIZING DILUENT SCDLP20-FCDLP20

NEUTRALIZING DILUENT SCDLP20-FCDLP20

Diluyente para realizar diluciones (y posteriores recuentos) en muestras con propiedades antimicrobianas, según las nuevas Normas ISO de microbiología cosmética: NF T75-611 (Poder inhibitorio intrínseco), ISO 21149 (recuento de aerobios), ISO 16212 (recuento de hongos), ISO18415 (detección de microorganismos), ISO22718 (Staphylococcus aureus), ISO21150 (E.coli), ISO22717 (Pseudomonas aeruginosa), ISO 18416 (Candida albicans).

COMPOSICIÓN

  • Triptona                        20,00 g
  • Lecitina                         5,00 g
  • Polisorbato 20              40,00 ml

(Fórmula en g/l)

pH: 7,6 ± 0,2

 

Izda: Sin inocular. Dcha: Tubo turbio, enriquecido con crecimiento a pesar de los

Izda: Sin inocular.
Dcha: Tubo turbio, enriquecido con crecimiento a pesar de los conservantes

PREPARACIÓN

Disolver los 40 ml de polisorbato-20 en 960 ml de agua bidestilada precalentada a 49 ± 2 °C. Añadir la triptona con lecitina, calentando unos 30 minutos hasta obtener una solución homogénea. Agitar y distribuir en tubos o en frascos. Autoclavar 15 minutos a 121°C. Ajustar el pH a 7,3 ± 0,2

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO.   AGITE EL BOTE ANTES DE USAR. MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO. DESHIDRATADO CODIGO: DMT203

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

DESHIDRATADO: Polvo grueso, Crema

PREPARADO: Estéril, Ámbar, con fondo precipitado.

CONTROL DE CRECIMIENTO 48-72 h a 37°C aproximadamente, o bien a temperatura ambiente (21-28°C aproximadamente):

  • Bacillus subtilis MKTA 6633, Excelente.
  • Escherichia coli MKTA 25922, Excelente.
  • Pseudomonas aeruginosa MKTA 9027, Excelente.
  • Staphylococcus aureus MKTA 6538P, Excelente.
  • Enterococcus faecalis MKTA 29212, Excelente.

PRESNTACION: MEDIO DESHIDRATADO

SIEMBRA E INTERPRETACIÓN

Añadir 1-25 gramos de muestra en 10-225 ml de medio. Agitar y dejar reposar-actuar 20-30 minutos a temperatura ambiente. Realizar las ulteriores diluciones decimales en este mismo medio, volviendo a dejar actuar 20-30 minutos a temperatura ambiente. Para realizar recuentos, sembrar 1 ml de cada dilución en masa en los agares adecuados, sin previo enriquecimiento.

NOTA: Dados los resultados de los intercomparativos Seilaparfum de microbiología cosmética de los ultimos años, seguiremos recomendando nuestro LPT Neutralizing Broth (DMT217, RPL054, TPL053S), que tan inmejorables resultados proporciona, aunque nos veamos obligados a fabricar también este medio con motivo de las nuevas Normas ISO de microbiología cosmética y la probable ortodoxia que éstas generarán, sin el menor convencimiento de que este medio sea adecuado para el fin que se propone.

El usuario final es el único responsable de la destrucción de los organismos que se hayan desarrollado, según la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.

Si desea más información sobre nuestros NEUTRALIZING DILUENT SCDLP20-FCDLP20 rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

 

 

 

 

 

NEUTRALISING AGENTS PHARMACOPEA

NEUTRALISING AGENTS PHARMACOPEA
Pharmacopea USP XXXI

COMPOSICIÓN

  • Lecitina de huevo 3,0 g
  • Peptona 1,0 g
  • Cloruro sódico 4,3 g
  • Histidina 1,0 g
  • DihidrogenoFosfato potásico 3,6 g
  • HidrogenoFosfato disódico 7,2 g

(Fórmula por litro)
pH final: 7.0 ± 0.1

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO. AGITE EL BOTE ANTES DE USAR, PARA ASEGURAR LA HOMOGENEIZACIÓN DE LOS EVENTUALES GRADIENTES DE DENSIDAD DE LOS COMPONENTES. MUY HIGROSCÓPICO: MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO.

COD: DMT302
PREPARACIÓN

Disolver 20,1 gramos de medio en 1 l de agua bidestilada que contenga entre 1 y 30 gramos de polisorbato 80 (SDA071) y 16,1 g de Buffered ClNa Peptone Solution pH 7,0 Pharmacopea (DMT301). Dispensar en tubos o en frascos. Autoclavar a 121 ºC durante 15-20 minutos. El color final del medio es paja.

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

DESHIDRATADO: Polvo fino, Crema
PREPARADO: Paja

CONTROL DE CRECIMIENTO 16-48 h a 37°C aproximadamente:

  • E. coli MKTA 25922, Correcto.
  • Salmonella abony MKTN 6017, Excelente.
  • Staphylococcus aureus MKTA 6538P, Excelente.
  • Pseudomonas aeruginosa MKTA 9027, Excelente.
  • Bacillus subtilis MKTA 6633, Excelente.
  • Candida albicans MKTA 10231, Excelente.

PRESENTACIÓN: MEDIO DESHIDRATADO
SIEMBRA E INTERPRETACIÓN

Para realizar la suspensión inicial ó 1ª dilución, en general hay que añadir 25 g de muestra en 225 ml de medio (o bien 10 g de muestra en 90 ml de medio), pero tener en cuenta que hay matrices muy inactivadoras, que requieren diluciones mayores (1:100) o muestras mayores (50 g, 500 g…). Las demás diluciones decimales se hacen añadiendo 1 ml de la dilución anterior en 9 ml de medio, y así sucesivamente.

MICROKIT recomienda sustituir esta mezcla de neutralizantes y el Buffered ClNa Peptone Solution pH 7,0, por LPT Neutralizing Broth, que incluye además una excelente sinergia de otros componentes mencionados en la tabla de inactivadores adicionales de la Pharmacopea.
El usuario es el único responsable de la eliminación de los microorganismos según la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.

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NBB AGAR (BASE)

NBB AGAR (BASE)

Agar selectivo para la detección de microorganismos alterativos en la industria cervecera.

COMPOSICIÓN

  • Extracto de levadura 5,0 g
  • Triptona 5,0 g
  • Extracto de carne de vacuno 2,0 g
  • Polisorbato Tween 80 0,5 g
  • Acetato potásico 6,0 g
  • Fosfato disódico 2,0 g
  • L-Cisteína HCl 0,2 g
  • Rojo de clorfenol 0,07 g
  • Dextrosa 15,0 g
  • Maltosa 15,0 g
  • Ácido L-Málico 0,5 g
  • Agar-Agar 15,0 g

(Fórmula por litro)

pH final: 5,8 ± 0,2

PREPARACIÓN

Disolver 66,3 gramos en 500 ml de agua bidestilada. Añadir 500 ml de cerveza sin gas. Agitar calentando hasta ebullición, para la completa disolución. Autoclavar a 121°C durante 15 minutos. Enfriar a 40-45 °C, mezclar bien y verter en placas o tubos.

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO. AGITE EL BOTE ANTES DE USAR, PARA ASEGURAR LA HOMOGENEIZACIÓN DE LOS EVENTUALES GRADIENTES DE DENSIDAD DE LOS COMPONENTES. MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO.

DESHIDRATADO CODIGO: DMT352
CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO:

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque
no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…).
DESHIDRATADO: Polvo grueso, rosa PREPARADO: Estéril, rojizo

CONTROL DE CRECIMIENTO 4 días a 30°C aproximadamente:

  • Lactobacillus brevis MKTA 8291, Excelente, vira a amarillo.
  • Pediococcus acidilactici MKTA 8042, Excelente, vira a amarillo.
  • Pediococcus damnosus MKTA 29358, Excelente, vira a amarillo.

PRESENTACIÓN: MEDIO DESHIDRATADO.

NOTA:

Este medio proporciona gran cantidad de nutrientes que favorecen el crecimiento de los microorganismos alterativos de la cerveza. El acetato potásico en lugar de acetato sódico lo hace menos inhibitorio para los microorganismos buscados.

SIEMBRA E INTERPRETACIÓN

Sembrar en masa con doble capa para obtener recuentos y en estría para simples aislamientos. Incubar a 30-35 °C aproximadamente, durante 4 días. En función del tipo de microorganismos buscados, incubar o no en microaerofilia con una atmósfera enriquecida en CO2 al 5%.
Para identificar las especies que intervienen en la alteración de alimentos, utilice el kit KUS801.

El usuario es el único responsable de la eliminación de los microorganismos según la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.

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MUP Metil-Umbeliferil Phosfate Reactivo para la confirmación de Clostridium perfringens (ISO/CD 6461-2)

MUP Metil-Umbeliferil Phosfate
Reactivo para la confirmación de Clostridium perfringens (ISO/CD 6461-2)

Clostridium perfringens en TSC.

Clostridium perfringens en TSC.

Idem en TSC  con MUP bajo luz UVA de 366 nm

Idem en TSC con MUP bajo luz UVA de 366 nm

El MUP (Metil-Umbeliferil Phosfate, Ref: MICROKIT reacciona con las colonias de Cl.perfringens emitiendo fluorescencia azul bajo luz UVA de 366 nm (linterna MICROKIT VMT050).

PRESENTACIÓN

Puede adquirirse el reactivo en polvo (SMT009), para añadir a TSC Agar, o bien ya preparado en PLAQUIS® herméticas de MICROKIT (Ref. PPL929) a las que debería añadirse una segunda capa de TSC Agar fundido y atemperado a 45°C tras depositar la membrana.

PREPARACIÓN DEL REACTIVO EN POLVO:

Disolver 45 g de TSC Agar en 1 l de agua bidestilada. Calentar, agitando, hasta ebullición, para su total homogeneización. Autoclavar a 121 ºC durante 15 minutos o mejor a 116 ºC, 15 minutos. El color final del medio es crema. Enfriar a 50 ºC y añadir asépticamente 400 mg de D- Cicloserina estéril (4 viales de 100 mg de SMS252). Añadir también, por cada 500 ml de medio enfriado a 50°C, 55-100 mg de suplemento MUP (Metil-Umbeliferil Phosfate, que reaccionará con las colonias. A mayor concentración de MUP, más nitidez se obtendrá en la fluorescencia. Verter de inmediato en placas y no recalentar. Utilizar de inmediato a su preparación para evitar la letal oxigenación.

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO. MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO. AGITE EL BOTE ANTES DE USAR.

MODO DE EMPLEO E INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS:

Según UNE-EN 26461-2, calentar la muestra 15 minutos a 70-80 ºC. Filtrar 100 ml de agua a través de 0,22 µm (VAC022). Añadir en la placa Petri y verter 18 ml del medio enfriado a 50 ºC (y si se desea, preparado a doble concentración), sin que se formen burbujas. Es preferible sembrar la membrana filtrada entre dos capas de medio, añadiendo la segunda capa a 45-47°C justo antes de solidificar. Incubar 18-24 (-48) horas a 43-46 ºC aproximadamente, en anaerobiosis. Clostridium perfringens MKTA 13124 crece con colonias negras, pardas o grises, blancas si la anaerobiosis no es correcta, fluorescentes bajo luz UVA de 366 nm gracias al MUP. PR > 0,7 respecto al número de ufc certificadas e inoculadas en otro lote validado de TSC Agar sin MUP. Con respecto a TSA recuento 75-252%, variabilidad que depende de la composición y carga de la flora acompañante inoculada.

El usuario final es el único responsable de eliminar los microorganismos de acuerdo con la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.

Si desea más información sobre nuestros MUP Metil-Umbeliferil Phosfate rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

MICROKIT® MUG PLUS CROMOGENIC AGAR AGAR CROMOGÉNICO COLIFORMES Y E.COLI

MICROKIT® MUG PLUS CROMOGENIC AGAR (CROMOGÉNICO COLIFORMES Y E.COLI)  S/BOE 31-MARZO-2009

Agar selectivo para la detección simultánea confirmativa
de coliformes totales/fecales y E.coli en aguas y alimentos (cromógenos según ISO 16649-1:2001, AFNOR V08053-4)

INTRODUCCION

MICROKIT® MUGPLUS: Agar cromogénico para E. coli (colonias azules -olas-) y demás coliformes (colonias rosas -surf-). Campylobacter y Shigella crecen con colonias verdes (hierba) y otros Gram negativos con colonias crema (Pseudomonas -montañas-).

MICROKIT® MUGPLUS: Agar cromogénico para E. coli (colonias azules -olas-) y demás coliformes (colonias rosas -surf-). Campylobacter y Shigella crecen con colonias verdes (hierba) y otros Gram negativos con colonias crema (Pseudomonas -montañas-).

Los substratos cromógenicos desarrollados por los laboratorios BIOSYNTH AG, en concreto Salmon-Gal y X-Glucurónido, permiten la detección simultánea de coliformes (colonias rojas) y E.coli (colonias azules) en el mismo medio de cultivo.
La acción simultánea de las peptonas seleccionadas en el medio, del piruvato y de los tampones fosfato, garantiza un rápido crecimiento colonial, incluso para los coliformes en estado subletal. El crecimiento de la flora acompañante Gram positiva, queda inhibido gracias al lauryl sulfato y a la mezcla de antibióticos Cefsulodina + Vancomicina.
El enzima Beta-D-galactosidasa, característica de los coliformes, actúa sobre el Salmon-GAL provocando la pigmentación roja o rosada en las colonias de coliformes.
E.coli, coliforme Beta-D-glucuronidasa positivo, actúa sobre el Salmon-GAL y sobre el X-Glucurónido (5-bromo-4-chloro-3-indoxyl Beta-D-glucurónido) de modo que sus colonias crecen de azul oscuro al añil.

COMPOSICION (g/l)

Inconfundibles colonias añil (no violetas ni esmeralda) de E.coli

Inconfundibles colonias añil (no violetas ni esmeralda) de E.coli

  • Peptonas 3´0
  • Cloruro Sódico 5´0
  • Dihidrógeno Fosfato Sódico 2´2
  • Hidrógeno Fosfato Disódico 2´7
  • Piruvato Sódico 1´0
  • Triptófano 1´0
  • Tergitol 7 0´15
  • Sorbitol 1´0
  • Mezcla cromogénica
  • (Salmon Gal 0,2 y X-Glu 0,2) 0´4
  • Agar-Agar 10´0
  • pH Final: 6´8 ± 0´2

MODO DE EMPLEO

Agitar el bote. Disolver 26,5 g en 1 litro de agua destilada, calentando hasta ebullición. Mantener durante 1 minuto. Agitar hasta su completa disolución. Añadir asépticamente, cuando el medio se haya enfriado a 55 ºC, 5 mg de Cefsulodina + 5 mg de Vancomicina (total 5 ml de solución estéril MICROKIT SMS400) para aumentar la selectividad del medio y eliminar la flora acompañante Gram positiva. No autoclavar. El medio final es blanquecino. No refundir más de una vez.
En alimentos, la siembra en profundidad elimina los Gram negativos no fermentadores, que en la técnica de Filtración de Membrana para análisis de aguas pueden dar lugar a falsos positivos y además reducir en un 50% la recuperación de los microorganismos diana; para evitarlo, añadir sobre la membrana una segunda capa de medio agarizado, previamente enfriado a 50 ºC. Esto no es tan necesario en aguas potables o poco contaminadas por flora acompañante.

LECTURA DE RESULTADOS

Nueva imagen (5)Tras 18-24 horas de incubación a 35-37 ºC aproximadamente (ó 44,5 ºC aproximadamente para C. fecales), los resultados son: E.coli: Colonias de azul oscuro a añil (Salmon GAL y X-Glucurónido positivo) que resultan indol positivas (puede comprobarse directo en la colonia). Coliformes: Colonias rosas- rojas (Salmon GAL positivo) + las azules (E.coli). Otras enterobacterias: Colonias incoloras, excepto cepas como las Salmonella o Shigella Beta-D glucuronidasa positivas, que aparecen de color azul claro a turquesa. Muchas cepas de Shigella y de Campylobacter crecen con colonias verdes, pero también es del máximo interés que sean detectados, al ser microorganismos patógenos.

Unas pocas cepas de Enterococcus durans crecen con colonias rojas, pero también indican contaminación fecal del agua. Ciertas cepas de Staphylococcus aureus y de Bacillus crecen con colonias naranjas, pero nunca rosas-rojas. Otras cepas crecen con colonias crema que no se han de tener en cuenta. Las colonias con colores intermedios (violáceo-lila) proceden de ufc mixtas: diluir y repetir el análisis, o mirar una placa sembrada con una dilución mayor.
Confirme E.coli pinchando ó cubriendo sus colonias con reactivo de Kovacs. Si éste
vira a rojo-cereza antes de 1 minuto, la reacción es, definitivamente, confirmativa.

Color de la colonia Salmon-GAL X-Glucurónido Indol Rto. PCA estandarizado*

  • E.coli Azul oscuro-añil o turquesa + + + 58-125% **
  • Citrobacter freundii Rojo-rosa + – – 98-106%
  • Klebsiella oxytoca Lila-Granate + – – >99%
  • Enterobacter cloacae Rojo-rosa + – – 58-104%
  • Salmonella enteritidis Incoloro – – – 29-202%
  • Shigella flexneri Incoloro (azul en superficie) – – –
  • Salmonella MUG+ Azul claro – + –
  • E. coli O157 : H7 Rojo-rosa + – + 230%
    * El que cumple con recuperación superior al 92-125% con respecto a cepas cuantitativas trazables a cepa tipo.
    Incertidumbres detectadas entre todos los lotes a lo largo de un año (la mayoría de la incertidumbre se debe a la cepa y a la proporción de cepas acompañantes inoculadas, no al medio).
    ** En superficie, ya que en masa recupera el 200% más que en superficie
    Un estudio comparativo independiente (*) de validación cuantitativa entre este medio, otros cromogénicos, Endo y MFC demuestra que MUG PLUS® es el mejor medio de recuento de E. coli en aguas. La validación interna realizada por MICROKIT con centenares de muestras y la revalidación trimestral en Seilagua ®, Seilalimentos y Seilaparfum, lo confirman para agua y para todo tipo de matrices alimentarias y cosméticas.

PRESENTACION

* Botes de 100 g de medio de cultivo deshidratado en polvo agarizado. Referencia DMT400-
* Suplemento en frasco de 100 ml, con 100 mg de solución estéril de Cefsulodina + Vancomicina, para 20 litros de medio (5 ml/l). Referencia SMS400.
* Frascos de 100 ml de agar MUG PLUS® preparado con Cefsulodina+Vancomicina. Referencia RPL444.
* Frascos de 200 ml de agar MUG PLUS® preparado con Cefsulodina+Vancomicina. Referencia RPL244.
* Tubos de 20 ml de agar MUG PLUS® preparado con Cefsulodina+Vancomicina. Referencia TPL400.
* Viales 2 ml de caldo MUG PLUS® de MF con Cefsulodina+Vancomicina. Referencia FPL400.
* Viales pinchables de 100 ml de caldo MUG PLUS® de MF con Cefsulodina+Vancomicina. Ref. RPL400.
* Plaquitas herméticas de Agar MUGLUS® preparado con Cefsulodina+Vancomicina . Referencia PPL902

 

El usuario es el único responsable de la eliminación de los microorganismos según la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.

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MUELLER HINTON AGAR

MUELLER HINTON AGAR

Antibiogramas (cálculo de la Concentración Mínima Inhibitoria de antibióticos para la cepa problema). Base para agar sangre y detección de Neisseria.
COMPOSICIÓN

Placa de antibiograma con halos de inhibición alrededor de todos los discos de antibióticos

Placa de antibiograma con halos de inhibición alrededor de todos los discos de antibióticos

  • Infusión de carne 2,0 g
  • Peptona de caseina 17,5 g
  • Almidón 1,5 g
  • Agar agar 17,0 g

(Fórmula por litro)
pH final: 7,4 ± 0,2
PREPARACIÓN

Disolver 38 g de medio en 1 litro de agua destilada.
Calentar hasta ebullición, agitando para su disolución.
Autoclavar a 121 ºC durante 15 minutos, o bien a 116 ºC durante 15-30 minutos.

PARA USO EXCLUSIVOEN LABORATORIO.

MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO. AGITE EL BOTE ANTES DE USAR.

DESHIDRATADO CODIGO: DMT084

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)
DESHIDRATADO: Polvo fino, Beige
PREPARADO: Estéril, Blanquecino
CONTROL DE CRECIMIENTO 24-48 h a 37°C aproximadamente:

  • Staphylococcus aureus MKTA 6538P, Correcto.
  • Streptococcus pyogenes MKTA 19615, Correcto
  • Proteus mirabilis MKTA 14153, Correcto.
  • Pseudomonas aeruginosa MKTA 9027, Correcto
  • Enterococcus faecalis MKTA 29212, Correcto

PRESENTACIÓN: TUBOS 20 ml, FRASCOS, MEDIO DESHIDRATADO
Medio de referencia para estudiar la sensibilidad bacteriana a los diferentes antibióticos y sulfamidas. BASE de Agar Sangre.
SIEMBRA

Fundir un tubo 20 ml para elaborar una placa o un frasco para elaborar varias. Es contraproducente fundir un frasco varias veces (use tubos 20 ml). No elaborar placas con menos de 4 mm de espesor. Inocular en superficie la solución de la cepa infecciosa con un triángulo de vidrio (VRR154) o asas de Digralsky desechables (VCL155). Dejar secar 10 minutos. Colocar los discos de antibióticos de forma que estén, entre sí y con respecto al borde de la placa, a más de 15 mm. Incubar a 37°C aproximadamente.
Véase también Blood Agar Base: Agar sangre de carnero o de caballo.
INTERPRETACION

Medir los halos de inhibición con un compás. Ver la tabla del MIC (Minimal Inhibitory Concentration) del fabricante de los discos de antibióticos para establecer correlaciones a la hora de decidir qué antibióticos son más recomendables en el tratamiento de la enfermedad.

El usuario es el único responsable de la eliminación de los microorganismos según la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.
Revisado en Julio, 2010

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M-TGE MODIFFIED M PLATE COUNT BROTH

M-TGE MODIFFIED M PLATE COUNT BROTH

Recuento total por el método de filtración de membrana.
COMPOSICIÓN

  • Extracto de levadura 5 g
  • Triptona 10 g
  • Dextrosa 2 g

(Fórmula por litro)
pH final: 7,0 ± 0,2
PREPARACIÓN

Disolver 17 gramos en 1 litro de agua destilada.
Autoclavar a 121 ºC durante 15 minutos.

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO

MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO. AGITE EL BOTE ANTES DE USAR.

DESHIDRATADO CODIGO: DMT187

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

DESHIDRATADO: Polvo fino, Beige
PREPARADO: Estéril, Ambar claro

CONTROL DE CRECIMIENTO CUANTITATIVO 24-48 h a 37°C aproximadamente, o bien 72 h a temperatura ambiente (21-28°C aproximadamente), por el método de Filtración de Membrana:

  • Escherichia coli MKTA 25922, Correcto. Con respecto a PCA estandarizado*, recuento >95%.
  • Micrococcus luteus MKTA 10240, Correcto. Con respecto a PCA estandarizado*, recuento >95%.
  • Staphylococcus aureus MKTA 6538P, Correcto. Con respecto a PCA estandarizado*, recuento >95%.
  • Pseudomonas aeruginosa MKTA 9027, Correcto. Con respecto a PCA estandarizado*, recuento >95%.
  • Enterococcus faecalis MKTA 29212, Excelente. Con respecto a PCA estandarizado*, recuento >95%.

* El que cumple con recuperación superior al 92-125% con respecto a cepas cuantitativas trazables a la cepa tipo.

PRESENTACIÓN: VIALES MF, MEDIO DESHIDRATADO

MODO DE EMPLEO E INTERPRETECIÓN DE RESULTADOS

Añadir 2 ml del medio autoclavado a un cartón absorbente incluido en una placa Petri de 60 mm Ø. Depositar sobre el mismo la membrana de filtración utilizada. Incubar a 30 ºC aproximadamente, durante 48-72 horas. Para aguas, duplicar la operación e incubar una placa 24 horas a 37 ºC aproximadamente y otra 72 horas a 22 ºC aproximadamente.
Contar todas las colonias.
El medio tiene doble concentración que el PCA para optimizar la sensibilidad por el método MF.

El usuario final es el único responsable de eliminar los microorganismos de acuerdo con la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.

Si desea más información sobre nuestros M-TGE MODIFFIED M PLATE COUNT BROTH rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

M.R.V.P. MEDIUM (CLARKS & LUBS) (BASE)

M.R.V.P. MEDIUM (CLARKS & LUBS) (BASE)

Medio para ensayos de Rojo de metilo y Voges-Proskauer (APHA) para la identificación acorde al IMViC (UNE-EN 12824, UNE 34-818:1985, UNE 34-554:1983, ISO 7932 modificada, ISO 6585:2001)

COMPOSICIÓN

  • Peptona 7,0 g
  • Glucosa 5,0 g
  • Hidrógenofosfato dipotásico 5,0 g

(Fórmula por litro)
pH final: 6,9 ± 0,2.

PREPARACIÓN

Disolver 17 gramos de medio en 1 litro de agua bidestilada. Autoclavar 20 minutos a 115 ºC.

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO

MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO. AGITE EL BOTE ANTES DE USAR.

DESHIDRATADO CODIGO: DMT082

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

DESHIDRATADO: Polvo grueso, Beige
PREPARADO: Estéril, Ambar

CONTROL DE CRECIMIENTO 1-5 días a 30-37°C aproximadamente:

  • Staphylococcus aureus MKTA 6538P, MR+, VP+.
  • Escherichia coli MKTA 25922, MR+ (rojo), VP .
  • Samonella abony MKTN 6017, MR+, VP .

PRESENTACIÓN: MEDIO DESHIDRATADO, TUBOS PREPARADOS

El caldo Methyl Red Voges Proskauer se usa para la diferenciación de coliformes (APHA). Los MR + fermentan la glucosa con acidificación. Los MR fermentan la glucosa con una variación del pH a la neutralidad. La reacción del VP distingue microorganismos que fermentan la glucosa a ácido de los que la fermentan a acetil metil carbinol.

MODO DE EMPLEO E INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS

Inocular cultivo puro en un tubo de medio. Incubar 5 días a 30 ºC aproximadamente. Añadir 10 gotas de Rojo de Metilo (SKM494) Rojo: MR-Positivo. Inocular cultivo puro en un tubo de medio. Incubar 24- 48 horas a 35 ºC ó 37 ºC aproximadamente. Añadir VP1 y después VP2 (SRH083). Tubo rojo o rosa antes de 4 horas: VP-Positivo. El viraje a rojo rosa a las 2 4 horas de añadir los reactivos es prueba +. E.coli, Proteus, Salmonella, Shigella, Edwarsiella y Citrobacter son MR +, VP . Enterobacter aerogenes y Klebsiella son MR y VP +.

NOTA: para seguir la ISO 7932:1993 de Bacillus, añadir 5’0 g/l de Cloruro Sódico e incubar 24-48 h a 30 °C.

El usuario final es el único responsable de eliminar los microorganismos de acuerdo con la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.

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M.R.S. BROTH

M.R.S. BROTH

Detección y enriquecimiento de Lactobacilos según Man, Rogosa y Sharpe (ISO 9232:1999, ISO 15214:1998).
COMPOSICIÓN

  • Polipeptona 10,00 g
  • Extracto de levadura 4,00 g
  • Glucosa 20,00 g
  • Extracto de carne de buey 8,00 g
  • Fosfato dipotásico 2,00 g
  • Citrato amonico 2,00 g
  • Sulfato manganésico 0,05 g
  • Sulfato magnésico 0,20 g
  • Acetato sódico 5,00 g
  • Tween 80 Polisorbato 1,00 g

(Fórmula por litro)
pH final: 6,4 ± 0,2
PREPARACIÓN

Disolver 52 g de medio en 1 litro de agua bidestilada.
Calentar hasta ebullición,agitando para su disolución.
Autoclavar a 121 ºC durante 15 minutos.

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO.

MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO. AGITE BIEN EL BOTE ANTES DE USAR.

DESHIDRATADO CODIGO: DMT081

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…).

DESHIDRATADO: Polvo fino, Tostado
PREPARADO: Estéril, Ambar

CONTROL DE CRECIMIENTO 72 h a 37°C aproximadamente, en microaerofilia:

Lactobacillus plantarum MKTA 8014, Excelente.
Staphylococcus aureus MKTA 6538P, Débil.

PRESENTACIÓN: VIALES MF con suero de tomate, TUBOS 9 ml, MEDIO DESHIDRATADO.

NOTA: Preparado de acuerdo con la fórmula de Man, Rogosa y Sharpe, es un medio selectivo indicado para la detección de los lactobacilos procedentes de cualquier muestra (cárnica, láctea, bucal, fecal…). Los lactobacilos de difícil crecimiento en otros medios (L. brevis, L. fermentum), crecen bien aquí.
SIEMBRA

Inocular 1 gramo ó 1 ml de muestra en el tubo. Incubar a 37 ºC aproximadamente, durante 3 días o bien a 30 ºC aproximadamente, durante 5 días. Es aconsejable hacerlo en atmósfera de microaerofilia (KKM101 ó KKM037).
INTERPRETACIÓN

Sembrar los tubos turbios en MRS Agar a fin de aislar colonias, o bien utilizar directamente el caldo como starter. Añadiendo suero de tomate (SDA500) aumenta la velocidad y eficacia del crecimiento.

El usuario final es el único responsable de eliminar los microorganismos de acuerdo con la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.

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