PLATE COUNT AGAR (PCA)

PLATE COUNT AGAR (PCA)    STANDARD METHODS AGAR GRANULADO

Recuento total en alimentos (FIL, IDF, AOAC, APHA, ICMSF, UNE 34-553:1983, ISO 2293:1983, UNE-EN ISO 4833:2003)

COMPOSICIÓN

  • Triptona                        5,00 g
  • Extracto de levadura     2,50 g
  • Glucosa                         1,00 g
  • Agar-agar                      15,00 g
  • (Fórmula por litro)
  • pH final:     7.0 ± 0,2
Recuento total  con colonias hemisféricas (por siembra en superficie) y ovaladas (por siembra en masa).

Recuento total con colonias hemisféricas (por siembra en superficie) y ovaladas (por siembra en masa).

PREPARACIÓN

Disolver 23,5 gramos de medio en 1 litro de agua bidestilada. Calentar, agitando, hasta  ebullición, para la total homogeneización. Repartir en tubos o en frascos. Autoclavar durante 15 minutos a 121 ºC. El color final del medio es blanco-crema.

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO.

MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO.

DESHIDRATADO CODIGO: DMT094

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

Este es el medio standard a cuyos resultados cuantitativos se trazan los resultados de los demás medios de recuento.

DESHIDRATADO: Granulado, Crema    PREPARADO: Estéril, Blancuzco

CONTROL DE CRECIMIENTO 24-48 h a 37°C aproximadamente (o bien 72 h a temperatura ambiente, 21-28°C aproximadamente):

  • Bacillus subtilis MKTA 6633***, Excelente, recuperación media 165%
  • Clostridium perfringens MKTA 12915***, Muy pobre, recuperación media 7%, medio inadeduado para aislar este microorganismo
  • coli MKTA 25922***, Correcto, recuperación media 24-123%, no es un medio medio adecuado para aislarlo sino para recuento total de aerobios
  • E.coli 0157 MKTA 35150***, Correcto, recuperación media 23%, no es un medio adecuado para aislarlo sino para recuento total de aerobios
  • Enterobacter aerogenes MKTA 13048***, Correcto, recuperación media 51%,  no es un medio adecuado para aislarlo sino para recuento total de aerobios
  • Enterococcus faecalis MKTA 29212***, Excelente, recuperación media 104-119%
  • Listeria monocytogenes MKTA 19115***, Correcto, recuperación media 53%, no es un medio adecuado para aislarlo sino para recuento total de aerobios
  • Micrococcus luteus MKTA 9341***, Correcto, Amarillo en 48 h, recuperación media 97%
  • Pseudomonas aeruginosa MKTA 27853***, Correcto, Verde-azul, recuperación media 20-92%
  • Salmonella enteritidis–D MKTA 13076***, Correcto,  recuperación media 61%, no es un medio adecuado para aislarlo sino para recuento total de aerobios
  • Staphylococcus aureus MKTA 6538P***, Excelente, Dorado en 48 h, recuperación media 97-125%
  • Aspergillus niger MKTA 16404***, Excelente, filamentos crema, luego negros, recuperación media 114-200%
  • Candida albicans MKTA 10231***, Excelente, grandes colonias blancas, recuperación media 58-127%
  • Saccharomyces cerevisiae MKTN 3191***, Excelente, colonias blancas, recuperación media 101%

*** Cepas comerciales cuantitativas, trazables a la cepa tipo, con inóculo de 103 ufc. Incertidumbres detectadas entre todos los lotes a lo largo de un año (la mayoría de la incertidumbre se debe a la cepa y a la proporción de cepas acompañantes inoculadas, no al medio).

PRESENTACIÓN: TUBOS 20 ml, FRASCOS 100 y 250 ml,  MEDIO DESHIDRATADO.

Medio para recuento total standard de bacterias aerobias en alimentos, medicamentos, cosméticos y otros productos.

 MODO DE EMPLEO E INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS

Sembrar en la superficie de la placa para aislar colonias. Para siembra en masa, fundir tubos de 20 ml y frascos y verter 15 ml atemperados sobre la muestra previamente inoculada (1 ml) en una placa Petri. Tras homogeneizar y dejar solidificar, añadir otros 5 ml del medio. Repetir con las distintas diluciones decimales de la muestra. En lácteos, añadir 1 g/l de SKIM MILK MICROKIT para ver halos de caseolisis. Incubar a 30 ºC aproximadamente durante 48‑72 horas para la detección de aerobios mesófilos, a 55 ºC aproximadamente para los termófilos y a 7 ºC aproximadamente para los psicrófilos.  Contar todas las colonias. Para facilitar el recuento puede añadirse por litro de medio, a 55 ºC, 2 ml de TTC estéril (MICROKIT SDA018) al elaborar las placas; así las colonias se tiñen de rojo y contrastan sobre el medio y las partículas de la muestra. Si desea aumentar la sensibilidad en el recuento, utilice un PCA más aeróbico (BCD010), con menos Agar. Para minimizar la desecación en muestreos de aire y superficies, o para siembra en Spiral, añadir 2 gotas de antiburbujas (SBL001) por cada litro de agua, antes de añadir el medio y antes de autoclavar. Para contar por separado las bacterias, de las levaduras y mohos, añadir a un duplicado, enfriado a 45°C, 0,05-0,5 g/l de  Cicloheximida (SKM200): En la placa con CEX  sólo crecerán las bacterias y en la placa sin CEX , la suma de bacterias + levaduras y mohos.

El usuario es el único responsable de la eliminación de los microorganismos según la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.           

Si desea más información sobre nuestros PLATE COUNT AGAR (PCA) rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

PLATE COUNT AGAR (PCA) CROMOGÉNICO

PLATE COUNT AGAR (PCA) CROMOGÉNICO

Recuento total en alimentos (FIL,IDF,AOAC,APHA,ICMSF), diferenciando las colonias, incluso las más diminutas, de las partículas y del medio

COMPOSICIÓN

  • Triptona                                5,0 g
  • Extracto de Levadura          2,5 g
  • Glucosa                                1,0 g
  • Agar‑agar                             10,5 g
  • Cromógeno termoestable c.s.
  • (Fórmula por litro)
  • pH final: 7,0 ± 0,2

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Con este novedoso medio de MICROKIT, distinguirá a simple vista las colonias, rojas, de las partículas de muestra y del medio, agilizando los recuentos sin desgastar su vista.

Con este novedoso medio de MICROKIT, distinguirá a simple vista las colonias, rojas, de las partículas de muestra y del medio, agilizando los recuentos sin desgastar su vista.

 

 

 

 

 

 

 

 

PREPARACIÓN

Disolver 19 g de medio en 1 litro de agua destilada.

Calentar hasta ebullición, agitando para su completa disolución.

Repartir en tubos o frascos. Autoclavar a 121 ºC durante 15 min o preferiblemente a 116°C durante 15 minutos. No sobrecalentar ni mantener fundido mucho tiempo. Refundir sólo una vez. El color final del medio es blanco-crema. A veces, por sobrecalentamiento, adquiere un tono rosado que retorna al crema cuando se vuelve a enfríar el medio y no afecta los resultados.

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO.

MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO. AGITE EL BOTE ANTES DE USAR.

DESHIDRATADO CODIGO: BCD510

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…). DESHIDRATADO: Polvo grueso, Crema    PREPARADO: Estéril, Crema

EVALUACIÓN DEL RENDIMIENTO ISO/TS 11133-2  24-48 h a 37 ºC  o mejor 72 h a 30 ºC, aplicando el método ISO 4833, ISO 2293, o el indicado en el Manual MICROKIT:

  • coli MKTA 25922, Excelente, colonias rojas, PR >70% en concreto 76-163 % * de colonias respecto al número de ufc certificadas e inoculadas en TSA.
  • Staphylococcus aureus MKTA 6538P, Excelente, colonias rojas, PR >70% en concreto 81-145 % * de colonias respecto al número de ufc certificadas e inoculadas en TSA.
  • Bacillus subtilis MKTA 6633, Excelente, colonias rojas, PR >70% en concreto 93-107 % * de colonias respecto al número de ufc certificadas e inoculadas en TSA.
  • Micrococcus luteus MKTA 9341, Excelente, Colonias rojas en 48 h, crecen mucho más rápido y mejor que en TSA, y mejor a temperatura ambiente.
  • Enterococcus faecalis MKTA 29212, Excelente, colonias rojas, PR >70% en concreto 171 % *de colonias respecto al número de ufc certificadas e inoculadas en TSA.
  • Pseudomonas aeruginosa MKTA 9027, Excelente, colonias rojas.

* Esta variabilidad de la productividad depende de la composición y carga de la flora acompañante inoculada.

Las colecciones TIPO prohiben el uso de su referencia por lo que indicamos la nuestra, directamente trazable a la colección TIPO.

Dos años de participación en ensayos intercomparativos de alimentos, con 10 matrices alimentarias diferentes, demuestran que no existen diferencias en los recuentos en contra del PCA cromogénico de MICROKIT respecto a los PCA standard, sino al revés; ejemplo: en hamburguesas, recuento medio en PCA clásico 9,0 x 104, en PCA cromogénico 2,6 x 105 (ya que el color permite ver muy bien las colonias diminutas), otros medios (Nutrient Agar, R2, LPT Agar, YEA… no indicados para matrices alimentarias) 8,5 x 103.

   Comparando la recuperación de diferentes microorganismos en PCA cromogénico, fabricado con diferentes agares, observamos que el Agar Europeo MICROKIT es el que mejores resultados obtiene, con diferencias significativas de 1 log (36-39 veces más colonias), respecto a los demás agares y respecto a TSA, y por ello es el que empleamos, para máximas recuperación y exactitud:

Cepa con concentración certificada en TSA

PCA cromogénico fabricado a partir de PCA de otra marca de reconocido prestigio

PCA cromogénico fabricado con agar americano MICROKIT

PCA cromogénico fabricado con agar Europeo MICROKIT

E. coli   1.79 x 103

6×103 (335 %)

1×104 (559 %)

1.8×104  (1000 %)

Klebsiella oxytoca   7.10 x 103

6×103 (84,51 %)

1×103 (14 %)

1.7×104  (239 %)

Shigella sonnei   1.37 x 103

7×103 (511 %)

7×103 (511 %)

1.6×104 (11.678 %)

Enterococcus faecalis   2.46 x 103

1×104 (406 %)

6×103 (244 %)

1.5×104 (6.098 %)

Candida albicans   3.19 x 103 5×103 (157 %) 8×103  (251 %)

1.8×104  (564 %)

TOTAL RECUENTO 1,59 x 104

298 % respecto a TSA

316 % respecto a TSA

106 % respecto al anterior

3.916 % respecto a TSA

3.694 % respecto a los anteriores

PRESENTACIÓN: TUBOS 20 ml, FRASCOS 100 ml, MEDIO DESHIDRATADO.

Recuento total standard de bacterias aerobias en alimentos, productos farmacéuticos, cosméticos y otros productos. Las colonias crecen en distintos tonos del rojo: rosa, naranja, purpura…. sobre el tono crema del medio (excepto ciertos acidolácticos y ciertas levaduras, que crecen con colonias blancas, sin viraje, por lo que este medio los distingue de los aerobios). El color no afecta a las pruebas de identificación posteriores que quisiera realizar.

 MODO DE EMPLEO E INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS

Inocular 1 ml de muestra y su serie de diluciones decimales, en masa. Incubar a 30 ºC aproximadamente durante 48 horas. Con flora psicotrofa, incubar a 6 ºC aproximadamente durante 10 días y con flora termófila, incubar a 55 ºC aproximadamente durante 48 horas. Contar todas las colonias. Esta fórmula, con menos agar, aumenta la sensibilidad del medio frente a los aerobios más lábiles, al permitir una mejor oxigenación del fondo. Este medio está diseñado para siembra en masa. Si desea sembrar en superficie, añada 3-5 g/l de Agar-Agar (BCB006), o utilice 25-27 g/l de este mismo medio. Para minimizar la desecación en muestreos de aire y superficies, o para siembra en Spiral, añadir 2 gotas de antiburbujas (SBL001) por cada litro de agua, antes de añadir el medio y antes de autoclavar. Para contar por separado las bacterias, de las levaduras y mohos, añadir a un duplicado, enfriado a 45°C, 0,05-0,5 g/l de  Cicloheximida (SKM200): En la placa con CEX  sólo crecerán las bacterias y en la placa sin CEX , la suma de bacterias + levaduras y mohos.

El usuario es el único responsable de la eliminación de los microorganismos según la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.                                            Diseñado  en Enero 2007,  revisado en Nov, 2014

Si desea más información sobre nuestros PLATE COUNT AGAR (PCA) CROMOGÉNICO rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

pH 8,0 INHIBITORS AGAR

 pH 8,0 INHIBITORS AGAR

 Para ensayo de sustancias inhibidoras en tejidos animales (Método de las 3-5 placas).

COMPOSICIÓN

  • Peptona de caseina exenta de inhibidores 3,45 g
  • Peptona de carne exenta de inhibidores    3,45 g
  • Cloruro sódico                                          5,10 g
  • Fosfato trisódico                                       2,40 g
  • Agar-Agar                                                15,00 g
  • (Fórmula por litro)
  • pH final: 8,0 ± 0,2

 PREPARACIÓN

Disolver 29,4 g de medio en 1 litro de agua bidestilada Agitar calentando hasta ebullición para la total homogeneización. Autoclavar a 121 ºC durante 15 minutos. Medir el pH y si es necesario reajustarlo. Enfriar hasta 50-45 ºC. Preparar 2 placas, a una se le añade 1 ml de suspensión de esporas de Bacillus subtilis (para detección de residuos de aminoglucósidos y de macrólidos)  y a la otra placa, 104 CFU/ml de Micrococcus luteus (para detección de residuos de beta lactámicos y macrólidos). Puede sustituirse, con mejores resultados, la placa de pH 7,2 de E.coli para quinolonas,  por otra de pH 8,0, tambien con E.coli. Conservar las placas  hasta 3 semanas a 3-6 ºC.

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO.

MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO. AGITE EL BOTE ANTES DE USAR

DESHIDRATADO CODIGO: DMT202

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO:

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

DESHIDRATADO: Polvo crema

PREPARADO: Crema

CONTROL DE CRECIMIENTO 24 h a temperatura ambiente (21-28°C aproximadamente):

Con B.subtilis MKTA 6633 y M.luteus MKTA 10240, en ambas placas, halo de inhibición de más de 12 mm alrededor del disco de control de 0,5 µg de Streptomicina,  resto opaco.

PRESENTACIÓN: MEDIO DESHIDRATADO y Frascos preparados 100 ml

MODO DE EMPLEO E INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS

El tejido a analizar debe estar en las condiciones más asépticas posibles y se coloca en  bocados excavados en las placas. Como control, habrá que colocar un disco de Streptomicina (0,5 µg) por placa. Incubar a 30 ºC aproximadamente, 18-24 horas, Bacillus subtilis y E.coli, y a 37 ºC aproximadamente, Micrococcus luteus. Se mide las zonas de inhibición tanto del tejido como del disco de antibiótico. Cuando la zona de inhibición tiene al menos 4 mm el resultado se considera positivo (presencia de inhibidores). Una zona de entre 1-4 mm  se consideraría como resultado dudoso. El disco control debe tener una zona de inhibición de 12 mm aproximadamente.

El usuario es el único responsable de la eliminación de los microorganismos según la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.

Si desea más información sobre nuestros pH 8,0 INHIBITORS AGAR rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

pH 7,2 INHIBITORS AGAR

pH 7,2 INHIBITORS AGAR

Para ensayo de sustancias inhibidoras en tejidos animales (Método de las 3-5 placas). Equivalente al medio DST Agar con diferente composición.

COMPOSICIÓN

  • Peptona de caseina exenta de inhibidores 3,60 g
  • Peptona de carne exenta de inhibidores    3,60 g
  • Cloruro sódico                                          5,00 g
  • Fosfato trisódico                                       0,80 g
  • Agar-Agar                                                15,00 g
  • (Fórmula por litro)
  • pH final: 7,2  ± 0,2

PREPARACIÓN

Disolver 28 g de medio en 1 litro de agua bidestilada. Agitar calentando hasta ebullición para la total homogeneización. Autoclavar a 121 ºC durante 15 minutos. Medir el pH y si es necesario reajustarlo. Enfriar hasta 50-45 ºC, añadir 1 ml de suspensión de esporas de Bacillus subtilis  con 50 µg/l de trimetoprim (para detección de residuos de sulfamidas) y, en otra alícuota,1 ml de suspensión de E.coli (para detección de quinolonas, aunque éstas se detectan  mejor con el medio de pH 8,0). Elaborar placas y conservarlas hasta 3 semanas a 3-6 ºC.

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO.

MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO. AGITE EL BOTE ANTES DE USAR

DESHIDRATADO CODIGO: DMT201

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

DESHIDRATADO: Polvo crema

PREPARADO: Crema

CONTROL DE CRECIMIENTO 24 h a temperatura ambiente (21-28°C aproximadamente):

Con Bacillus subtilis MKTA 6633, halo de inhibición de más de 12 mm alrededor del disco de control de 0,5 µg de sulfamidina, resto opaco.

PRESENTACIÓN: MEDIO DESHIDRATADO y Frascos preparados 100 ml

MODO DE EMPLEO E INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS

El tejido a analizar debe estar en las condiciones más asépticas posibles y se coloca en bocados excavados en las placas. Como control,  habrá que colocar un disco de Sulfamidina (0.5 µg). Incubar a 30 ºC aproximadamente, 18-24 horas . Se  mide las zonas de inhibición tanto del tejido como del disco de antibiótico. Cuando la zona de inhibición tiene al menos 4 mm el resultado se considera positivo (presencia de inhibidores). Una zona de entre 1-4 mm se consideraría como resultado dudoso. El disco control debe tener una zona de inhibición de 12 mm aproximadamente.

El usuario es el único responsable de la eliminación de los microorganismos según la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.

Si desea más información sobre nuestros pH 7,2 INHIBITORS AGAR rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

pH 6,0 INHIBITORS AGAR

pH 6,0 INHIBITORS AGAR

 Para ensayo de sustancias inhibidoras en tejidos animales.

(Método de las 3-5 placas).

 COMPOSICIÓN

  •  Peptona de caseina exenta de inhibidores 3,45 g
  • Peptona de carne exenta de inhibidores    3,45 g
  • Cloruro sódico                                          5,10 g
  • Agar-Agar                                                15,00 g

(Fórmula por litro)

pH final: 6,0 ± 0,2

 PREPARACIÓN

Disolver 27 g de medio en 1 litro de agua bidestilada. Agitar calentando hasta ebullición para la total homogeneización. Autoclavar a 121 ºC durante 15 minutos. Medir el pH y si es necesario reajustarlo. Enfriar hasta 50-45 ºC, añadir 1 ml de suspensión de esporas de Bacillus subtilis para detección de residuos de tetraciclinas y penicilinas. Elaborar placas y conservarlas hasta 3 semanas a 3-6 ºC.

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO.

MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO. AGITE EL BOTE ANTES DE USAR

DESHIDRATADO CODIGO: DMT200

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

DESHIDRATADO: Polvo crema

PREPARADO: Crema

CONTROL DE CRECIMIENTO 24 h a temperatura ambiente (21-28°C aproximadamente):

Con Bacillus subtilis MKTA 6633, halo de inhibición de más de 12 mm alrededor del disco de control de 0,01 ui penicilina, resto opaco.

PRESENTACIÓN: MEDIO DESHIDRATADO y Frascos preparados 100 ml

MODO DE EMPLEO E INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS

El tejido a analizar debe estar en las condiciones más asépticas posibles y se coloca en bocados excavados  en las placas. Como control, habrá que colocar un disco de Penicilina (0.01 I.U.). Incubar a 30 ºC aproximadamente, 18-24 horas. Se mide las zonas de inhibición tanto del tejido como del disco de antibiótico. Cuando la zona de inhibición tiene al menos 4 mm el resultado se considera positivo (presencia de inhibidores). Una zona de entre 1-4 mm se consideraría como resultado dudoso. El disco control debe tener una zona de inhibición de 12 mm aproximadamente.

El usuario es el único responsable de la eliminación de los microorganismos según la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.

Si desea más información sobre nuestros pH 6,0 INHIBITORS AGAR rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

PEPTONE WATER (TRYPTONE WATER) GRANULADA

PEPTONE WATER (TRYPTONE WATER) GRANULADA

Diluciones. Prueba del indol.

ISO 7251:1993

COMPOSICIÓN

  • Peptona de caseina 10,0
  • Cloruro sódico         5,0
  • (Fórmula por litro)
  • pH final: 7,3 ± 0,2

PREPARACIÓN

Disolver 15 gramos en 1 litro de agua.

Distribuir en tubos o en frascos.

Autoclavar a 121 ºC durante 15 minutos.

 

MANTENER EL BOTE BIEN CERRADO

EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO.

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO.

DESHIDRATADO CODIGO: DMT093

Ver tambien TRYPTONE-TRYPTOPHAN WATER polvo (BCD129).

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

DESHIDRATADO: Granulado, Blanco

PREPARADO: Estéril, Ambar claro

CONTROL DE CRECIMIENTO 24-48 h a 37°C y a 44°C aproximadamente:

  • Escherichia coli MKTA 25922, Excelente, viraje a rojo tras añadir unas gotas de Kovacs tanto a 37°C como a 44°C.
  • Escherichia coli O157 MKTA 35150, Excelente, sin viraje a rojo tras añadir unas gotas de Kovacs.
  • Klebsiella oxytoca MKTA 13182, Excelente, indol positivo a 37°C pero no a 44°C.
  • Salmonella abony MKTN 6017, Excelente, sin viraje a rojo tras añadir unas gotas de Kovacs..
  • Staphylococcus aureus MKTA 6538P, Excelente, sin viraje a rojo tras añadir unas gotas de Kovacs.

PRESENTACIÓN: TUBOS PREPARADOS 9 ml, FRASCOS PREPARADOS DE 100 ml, MEDIO DESHIDRATADO

NOTA: Medio para enriquecimiento de bacterias en general, también se utiliza erróneamente para hacer diluciones (debe usarse Buffered Peptone Water) y cuya principal utilidad radica en ser el medio de referencia para llevar a cabo el test de Mackenzie (identificación de E. coli por producción de indol a partir del triptófano del medio, con reactivo de Kovacs).

SIEMBRA

Sembrar 1 ml de muestra en cada tubo, o bien de 1 a 25 ml por frasco. Incubar 48 horas a 44 ºC aproximadamente. Añadir 0,5 ml de reactivo de Kovacs.

 INTERPRETACIÓN

La producción de indol se pone de manifiesto por la aparición de color rojo antes de que pasen unos minutos, sobre todo en la superficie en contacto con el aire.

El usuario es el único responsable de la eliminación de los microorganismos según la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.

Si desea más información sobre nuestros PEPTONE WATER (TRYPTONE WATER) GRANULADA rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

LACTAMATOR-CPC

LACTAMATOR-CPC

Inactivación enzimática de los principales antibióticos β-lactámicos.

INTRODUCCIÓN

LACTAMATOR-CPC es un producto con base enzimática especialmente diseñado para la inactivación de un amplio rango de antibióticos betalactámicos, como las penicilinas, así como las cefalosporinas de 1ª a 4ª generación y Carbapenémicos. Con este innovador producto ahora es posible inactivar antibióticos betalactámicos resistentes como la Cefepima, Cefoxitina, Cefradina y muchos otros.

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El producto está disponible en forma de polvo, y que solamente requiere hidratación con agua purificada y filtración estéril. Gracias a su formulación no hacen falta otros compuestos o reactivos para alcanzar su máxima actividad. De hecho, es un punto clave NO añadir ningún buffer o sal adicional al reconstituir el polvo.

Además, su alta estabilidad permite almacenar el producto ya hidratado durante meses sin perder ni un ápice de su actividad, pudiendo almacenar el polvo incluso durante años.

PRESENTACIÓN

LACTAMATOR está disponible en dos posibles presentaciones:

– LCT-5: pack de 10 viales, en el que cada cual contiene

> 50 UI de cefalosporinasa /vial y > 500 UI de penasa/vial

– LCT-20: pack de 1 vial que contiene

> 2.000 UI de cefalosporinasa /vial y > 20.000 IU de penasa/vial

El producto liofilizado puede almacenarse entre -20 y +8ºC, y tras su hidratación entre 2 y 8ºC durante al menos dos meses sin perder su actividad.

MODO DE EMPLEO

Tras reconstituir el producto con agua purificada, esterilice la solución mediante filtración, por ejemplo con jeringa estéril (Ref. MICROKIT VPL089) y filtro de carcasa  estéril de 0,2 µm y 30 mm de diámetro (Ref. MICROKIT VHU237), tras lo cual ya está listo para ser utilizado. La cantidad de LACTAMATOR que hay que añadir a cada prueba, dada la multiplicidad de muestras que pueden ensayarse, debería determinarse para cada caso concreto, dependiendo de la aplicación del producto, la concentración de antibiótico a inactivar y la betalactamasa específica que tengamos.

Como norma general, para la preparación de placas que contengan antibióticos, se sugiere usar una cantidad de enzima (referida a la cefalosporinasa) de entre 500 y 1000 UI/l de medio a preparar. Un medio que contenga 1000 UI/l suele inactivar todas las betalactamasas procedentes de penicilinas y cefalosporinas de hasta 4ª generación y carbapenémicos, pero una concentración de 500 UI/l se obtienen buenos resultados en general, aunque aquellos de mayor eficacia (4ª generación, por ejemplo), la inactivación puede no ser completa.

En el caso de su uso en líquido, en tests de esterilidad por ejemplo, la cantidad de enzima debería determinarse experimentalmente dependiendo del protocolo usado (tiempo y temperatura de incubación), y la concentración y tipo de antibiótico. Como sugerencia de tipo general, podemos usar una concentración final de entre 0.1 y 0.3 UI/ml (referida a la cefalosporinasa).

OBSERVACIONES

Como probablemente sepa, existe actualmente en el mercado un producto llamado “Mezcla de betalactamasa de amplio rango” (“Broad range beta lactamase Mixture”). Este producto contiene una betalactamasa II (o cefalosporinasa), para cuya activación es necesaria la presencia de zinc. Muchos laboratorios que usan este producto añaden una solución tampón de zinc al polvo durante la recontitución. ESTO ESTÁ ABSOLUTAMENTE DESACONSEJADO con nuestro producto, por lo que es importante hacérselo saber.

El producto liofilizado almacenado a 60º C durante 4 días pierde cerca del 25% de su actividad inicial. Esto aconseja no enviarlo en condiciones refrigeradas, a causa de su alta estabilidad.

Atención: La Penasa clásica de otros fabricantes sólo contiene Penicilinasa, por lo cual sólo inactivará a las Penicilinas. Con la penasa no se pueden inactivar betalactamas como las Cefalosporinas o los Carbapenémicos.

Cuidado: Definición de unidades: la penasa clásica de otros fabricantes utiliza una nomenclatura especial para sus unidades, o incluso hasta dos. Utilizan las Unidades Levy (que aparecen en los Certificados de Control de Calidad) y las Unidades Penicilina (que aparecen en la etiqueta del producto), lo cual puede llevar a confusión. De este modo, su producto más concentrado inactiva 10.000.000 unidades de Penicilina/ml, que equivalen a 20.000 Unidades Levy/ml/min que a su vez equivalen a 33,33 UNIDADES INTERNACIONALES (UI) -1 UI son 600 Unidades Levy-. Para hacer una comparación con nuestra presentación LCT-5, tenemos 10 viales cada uno de los cuales contiene más de 50 UI de Cefalosporinasa y más de 500 UI de penasa o penicilinasa, por lo que, sólo refiriéndonos a la penasa, hay presentes más de 300.000 Unidades Levy/vial, que suman un total de 3.000.000 de Unidades Levy en los diez viales. La comparación en términos de producto es de 20.000 de las unidades Levy que ofrecen los fabricantes de la penasa clásica y nuestras 3.000.000 de Unidades Levy. Esto da una idea de lo realmente económico que es este novedoso Lactamator.

Actualmente existe otro producto más similar al nuestro:

  1. Utiliza el mismo sistema de unidades que utilizamos nosotros.
  2. También es capaz de inactivar Penicilinas (a la que llaman betalactamasa I), ALGUNAS Cefalosporinas y ALGUNOS Carbapenémicos (actividad betalactamasa II).
  3. Su tamaño de pack es el mismo de nuestro LCT-5, por lo que contienen 10 viales cada uno con un contenido mayor a 500 UI de betalactamasa I (el nombre alternativo que le dan a la Penasa) y más de 50 UI de betalactamasa II (el nombre alternativo que le dan a la Cefalosporinasa).

Pero entonces, ¿cuáles son las diferencias entre este producto y el nuestro?

Su producto, liofilizado como el nuestro, sí es estéril mientras que el nuestro no lo es porque nuestro proceso de liofilización no incluye un liofilizador estéril. Así, nuestro producto se convierte en estéril tras su disolución en agua y posterior filtración, mientras que el otro no necesita de este proceso al ser ya estéril, lo que lo encarece considerablemente. Sin embargo, la diferencia más importante es el espectro de actuación: nuestro producto inactiva un rango más amplio de productos como, por ejemplo, las cefalosporinas de 3ª y 4ª generación, ante las cuales su producto NO es activo en absoluto o muchísimo menos que el nuestro.

En desarrollo nuevos kits para inactivar aminoglucósidos como la Neomicina y macrólidos como la Eritromicina.

El usuario es el único responsable de la destrucción de los microorganismos generados en el interior del kit durante su uso, de acuerdo con la legislación medioambiental vigente. Sumerja en lejía o alcohol, o mejor autoclávelos, antes de desecharlos a la basura. Mantener fuera del alcance de los niños. No ingerir.

El usuario final es el único responsable de la destrucción de los organismos que se hayan desarrollado, según la legislación medioambiental vigente

Si desea más información sobre nuestros LACTAMATOR-CPC rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

 

P.B.S.-PHOSPHATE BUFFERED SALINE

P.B.S.-PHOSPHATE BUFFERED SALINE

Solución tampón de fosfato salino UNE-EN ISO 11290-1:1997/11290-2:2000

 COMPOSICIÓN

  •  Cloruro sódico                                           8,50 g
  • Fosfato de hidrógeno disódico dihidratado        8,98 g
  • Fosfato de dihidrógeno sódico                   2,71 g

(Fórmula por litro)

pH final: 7,2 ± 0,2

 PREPARACIÓN

Disolver 20,2  g de medio en 1 litro de agua bidestilada. Autoclavar a 121 ºC durante 15 minutos.

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO.

MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO. AGITE EL BOTE ANTES DE USAR

DESHIDRATADO CODIGO: DMT098

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

 Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

DESHIDRATADO: Polvo blanquecino

PREPARADO: Incoloro

CONTROL DE CRECIMIENTO (Tras siembra en PCA, 24-48 h a 37°C aproximadamente):

  •  Pseudomonas aeruginosa MKTA 9027, Correcto
  • Escherichia coli MKTA 25922,  Correcto
  • Staphylococcus aureus MKTA 6538P, Correcto
  • Listeria monocytogenes MKTA 7644, Correcto

PRESENTACION: EN POLVO DESHIDRATADO

INTERPRETACION

Se recomienda el uso de esta solución salina durante los procesos del cultivo de tejidos, diluciones bacterianas y lavados de membranas filtrantes, así como para seguimiento de la norma ISO 11290 de Listeria.

El usuario final es el único responsable de la destrucción de los organismos que se hayan desarrollado, según la legislación medioambiental vigente

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OSMOTOLERANT-YEASTS AGAR (OYA)

OSMOTOLERANT-YEASTS AGAR (OYA)

Fórmula IFU Method Nº 3. Medio de cultivo para detección y recuento de levaduras osmotolerantes, que soportan altas presiones osmóticas.

 COMPOSICIÓN

  • Extracto de levadura              10,0 g
  • Fructosa                                 200,0 g
  • Sacarosa                                 200,0 g
  • Agar‑agar                               10,0 g

(Fórmula por litro)

pH final: 5,5 ± 0,2

PREPARACIÓN

Disolver 420 gramos de medio en 580 m1 de agua bidestilada. Calentar, agitando, hasta  ebullición, para la total homogeneización. La turbidez es normal y se minimiza al plaquear.  Repartir en tubos o en frascos. Autoclavar a 110º C durante 10 minutos en un autoclave pequeño, minimizando los tiempos de calentamiento y enfriamiento. O bien a 116°C, 5 minutos. El color final del medio es ámbar.  No sobrecalentar o podría destruirse la macromolécula de Agar, perdiéndose su capacidad solidificante.  Si  se desea crecimiento exclusivo de hongos (levaduras y mohos), añadir antes de autoclavar 0.5 g/l de Cloranfenicol (SMS195). Sembrar 1 ml de muestra y su serie de diluciones decimales, en masa o bien  0,1 ml en superficie con asa de Digralsky. Incubar en atmósfera húmeda a 29ºC durante 3-5 días. Contar todas las colonias y expresar los resultados en ufc/g de muestra. Para contar por separado las bacterias, de las levaduras y mohos, añadir a un duplicado, enfriado a 45ºC, 0,05-0,5 g/l de Cicloheximida (SKM200): En la placa con CEX sólo crecerían las bacterias osmotolerantes y en la placa sin CEX, la suma de bacterias + levaduras y mohos osmotolerantes. Identificar las colonias con el servicio de identificación molecular SFI004+ de MICROKIT

MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO. AGITE EL BOTE ANTES DE USAR.

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO.

DESHIDRATADO: SÓLO SE PREPARA BAJO PEDIDO EN BIDÓN DE 5 Kg (ó 10 botes de 500 g): DMT216

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

DESHIDRATADO: Polvo fino, Beige

PREPARADO: Estéril, Paja-Ambar

CONTROL DE CRECIMIENTO 3-5 días a temperatura ambiente (21-28°C aproximadamente):

  • Staphylococcus aureus MKTA 6538P, inhibido.
  • E.coli MKTA 25922, inhibido.
  • Saccharomyces cerevisiae MKTA 9763, Crece con dificultad
  • Zygosaccharomyces rouxi MKTN 381, Correcto

PRESENTACIÓN: MEDIO DESHIDRATADO

MODO DE EMPLEO E INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS

Fundir al baño María los frascos que se hayan estocado a partir del medio deshidratado, sin sobrecalentar. Si se desea, se puede reajustar el pH hasta 5,5 con Acido Tartárico estéril para mejorar la selectividad. No recalentar.

Sembrar en masa 1 ml de muestra e incubar 3-7 días a 21-25 ºC aproximadamente, o mejor incubar el tiempo y a la temperatura para los que se puedan esperar problemas (las del almacenamiento y transporte). Contar todas las colonias como bacterias y/o levaduras (según proceda mediante el cloranfenicol o la cicloheximida) osmotolerantes.

El usuario es el único responsable de la eliminación de los microorganismos según la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.

Si desea más información sobre nuestros OSMOTOLERANT-YEASTS AGAR (OYA) rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

OSMOPHILIC ZYGOSACCHAROMYCES YEASTS AGAR OZYA

OSMOPHILIC ZYGOSACCHAROMYCES YEASTS AGAR OZYA

Fórmula CENAN mejorada. Medio de cultivo para detección y recuento de levaduras osmófilas, que soportan altas presiones osmóticas, como Zygosaccharomyces rouxi.

 COMPOSICIÓN

  • Polipeptona micológica          5,0 g
  • Extracto de levadura              5,0 g
  • Fructosa                                 250,0 g
  • Polisorbato Tween 80            0,75 g
  • Agar‑agar                               15,0 g

(Fórmula por litro)

pH final: 6,4 ± 0,2

PREPARACIÓN

Disolver 276 g de medio en 1 litro de agua destilada caliente. Calentar agitando hasta ebullición para su disolución. Autoclavar a 116 ºC durante 5 minutos. No sobrecalentar!

MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO. AGITE EL BOTE ANTES DE USAR.

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO.

DESHIDRATADO: SÓLO SE PREPARA BAJO PEDIDO EN BIDÓN DE 5 Kg (ó 10 botes de 500 g): DMT225

PREPARADO EN FRASCOS 100ml CÓDIGO: RPL147

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

DESHIDRATADO: Polvo fino, Beige

PREPARADO: Estéril, Paja-Ambar

CONTROL DE CRECIMIENTO 3-5 días a temperatura ambiente (21-28°C aproximadamente):

  • Staphylococcus aureus MKTA 6538P, inhibido.
  • E.coli MKTA 25922, inhibido.
  • Saccharomyces cerevisiae MKTA 9763, Crece con mucha dificultad
  • Zygosaccharomyces rouxi MKTN 381, Correcto

PRESENTACIÓN: DESHIDRATADO, FRASCOS PREPARADOS

MODO DE EMPLEO E INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS

Fundir al baño María los frascos , sin sobrecalentar. Si se desea, se puede bajar el pH hasta 5,5 con Acido Tartárico estéril para mejorar la selectividad. Si se desea una selectividad total añadir 0,5 g/l de Cloranfenicol.

No recalentar.

Sembrar en masa 1 ml de muestra e incubar 3-7 días a 21-25 ºC aproximadamente, o mejor incubar el tiempo y a la temperatura para los que se puedan esperar problemas (las del almacenamiento y transporte).

El usuario es el único responsable de la eliminación de los microorganismos según la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.

Si desea más información sobre nuestros OSMOPHILIC ZYGOSACCHAROMYCES YEASTS AGAR OZYA rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16