SELENITE CYSTINE BROTH

 

SELENITE CYSTINE BROTH

Enriquecimiento selectivo de Salmonella‑Shigella (USP,FIL,FDA, AOAC,APHA, UNE-EN 12824, UNE 34-818:1985, UNE-EN ISO 6579: 1997, ISO 6340:1995, ISO 6785:2001)

Selenite Cystine Broth, granulado para evitar ser respirado por el analista.

COMPOSICIÓN

  • Peptona pancreática caseina 5,00 g
  • Lactosa                                 4,00 g
  • Fosfato disódico                   10,00 g
  • Selenito sódico                      4,00 g
  • Cistina                                  0,01 g

(Fórmula por litro)

pH final: 7,0 ± 0,2

PRECAUCIÓN: TÓXICOALMACENAR A TEMPERATURA INFERIOR A 15 ºC

 

PREPARACIÓN

Disolver 23 g de medio en 1 litro de agua bidestilada. Esterilizar hirviendo, o mejor por filtración. El color final del medio es paja claro. No sobrecalentar.  Mantener a menos de 15 ºC en oscuridad. En caso contrario aparecerá una coloración  rosada en el medio que no afecta de forma  importante a su calidad. Lo que no es aceptable es un precipitado rojo, debido a un eventual sobrecalentamiento del medio.

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO.

MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO.

DESHIDRATADO CODIGO: DMT111

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

DESHIDRATADO: Granulado, Blanco,

PREPARADO: Estéril, Ambar precipitado

EVALUACIÓN DEL RENDIMIENTO ISO/TS 11133-2, 24-48 h a 37-41,5 ºC (Aplicando el método UNE EN ISO 6579: 2003 mejorada, o el indicado en el Manual MICROKIT actualizado):

  • Salmonella abony MKTN 6017 con acompañantes (E.coli MKTA 25922 y Ps.aeruginosa MKTA 9027), Crece bien, a las 24 h el medio se vuelve lechoso. Tras estriar una alícuota en XLD e incubar, aparecen más de 10 colonias típicas.
  • Escherichia coli MKTA 25922, parcialmente inhibido: tras estriar en TSA e incubar, aparecen menos de 100 colonías.
  • Enterococcus faecalis MKTA 29212, Parcialmente inhibido: tras estriar en TSA e incubar, aparecen menos de 100 colonías..
  • Bacillus subtilis MKTA 6633, Parcialmente inhibido.
  • Pseudomonas aeruginosa MKTA 9027, Escaso.
  • Shigella flexnery MKTA 12022, Escaso.

Las colecciones TIPO prohiben el uso de su referencia por lo que indicamos la nuestra, directamente trazable a la colección TIPO.

PRECAUCIÓN: Producto muy tóxico.

PRESENTACIÓN: MEDIO DESHIDRATADO GRANULADO (minimiza respirar el polvo tóxico).

Medio de enriquecimiento para la detección de Salmonella. El selenito inhibe el desarrollo de los microorganismos que no son Salmonella, en especial los coliformes y enterococos (U.S.P.).

NOTA: Utilizar en paralelo al caldo Rappaport para obtener resultados selectivos óptimos, sin falsos positivos (típicos del Selenito)  ni falsos negativos (posibles en el Rappaport). La nueva versión 2000 de la Norma ISO 6579 descarta el uso de Selenito y lo sustituye por Tetrationato Mueller Kauffman (DMT086).

SIEMBRA

Añadir 1‑10 ml de pre‑enriquecimiento ó de muestra a 9‑90 ml de medio. Incubar a 35 ºC ó 37 ºC aproximadamente, durante 24 h y 24 h suplementarias. Sembrar en agares selectivos (SS Agar DMT107, XLD Agar DMT142). Muchos autores consideran que añadiendo sólo 1 ml se obtienen mejores resultados (menos falsos positivos).

El usuario final es el único responsable de la destrucción de los organismos que se hayan desarrollado, según la legislación medioambiental vigente.

Si desea más información sobre nuestros SELENITE CYSTINE BROTH rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

SCHAEDLER AGAR

SCHAEDLER AGAR

Detección y recuento de anaerobios

COMPOSICIÓN

  • Peptona de caseína-soja             8,2 g
  • Polipeptona bacteriológica 3,5 g
  • Extracto de levadura        5,0 g
  • Glucosa                            5,8 g
  • Tris (hidroximetil)
  • amino-metano tampón              3,0 g
  • Cloruro Sódico                   1,7 g
  • Hemina                           10 mg
  • L-cisteina                          0,4 g
  • Agar-agar                        13,5 g

(Fórmula por litro)

pH final: 7,6 ± 0,2

Recuento de Anaerobios en tuboen Schaedler agar. Obsévese el gas generado que se detecta en el tubo.

PREPARACIÓN

Disolver 41 g de medio en 1 litro de agua destilada. Calentar hasta ebullición, agitando para su disolución. Repartir en tubos o en frascos. Autoclavar a 121 ºC durante 15 minutos. NO sobrecalentar.

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO.

MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO,FRESCO Y OSCURO. AGITE EL BOTE ANTES DE USAR.

DESHIDRATADO CODIGO: DMT108

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

DESHIDRATADO: Polvo fino, Tostado

PREPARADO: Estéril, Ambar

CONTROL DE CRECIMIENTO 48 h a 37°C aproximadamente, en anaerobiosis:

  • Clostridium sporogenes MKTA 11437, Correcto. Con respecto a PCA standarizado*, recuento 280 %,  pero de forma selectiva.
  • Clostridium perfringens MKTA 13124, Correcto. Con respecto a PCA standarizado*, recuento 90 %,  pero de forma selectiva.
  • E.coli MKTA 25922, Inhibido

* El que cumple con recuperación superior al 92-125% con respecto a cepas cuantitativas trazables a la cepa tipo.

PRESENTACIÓN: TUBOS 9 ml PARAFINADOS, TUBOS 15 ml sin parafina, MEDIO DESHIDRATADO

NOTA: Medio no selectivo utilizado para el recuento de bacterias anaerobias en alimentos, productos farmacéuticos y cosméticos y en muestras patológicas. A menudo el agar se cuartea por la presencia de anaerobios gasógenos.

 SIEMBRA

Sembrar en la superficie de la placa, o mejor en masa con doble capa (15 ml con la muestra y, una vez solidificada la placa, otros 10 ml encima), e incubar en condiciones anaerobias a 35‑37 ºC aproximadamente, durante 48 horas. Los tubos (parafinados o no) se funden en agua hirviendo, se dejan enfriar a unos 75 ºC y se inoculan en profundidad con 1 ml de muestra, de modo que sólo resistirán las esporas de anaerobios. Para las formas vegetativas, enfriar a 45°C en vez de a 75°C antes de inocular. Voltear sin agitar para mezclar sin oxigenar, y enfriar en posición vertical. Incubar estos tubos MICROKIT sin necesidad de atmósfera anaerobia (al ser herméticos), a 35‑37 ºC aproximadamente, durante 48 horas. Si parte de medio deshidratado y sus tubos son tan herméticos como los de MICROKIT, llenarlos bastante de medio, dejando una cámara de aire de 1 cm de espesor para permitir la formación de gas.

El usuario final es el único responsable de la destrucción de los organismos que se hayan desarrollado, según la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.

Si desea más información sobre nuestros SCHAEDLER AGAR rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

SAN FRANCISCO AGAR

SAN FRANCISCO AGAR

 Agar para el aislamiento de Lactobacilos.

COMPOSICIÓN

  • Triptona                                 10,0 g
  • Extracto de carne de vacuno 2,0 g
  • Extracto de levadura              7,0 g
  • Dextrosa                                7,0 g
  • Fructosa                                 7,0 g
  • Maltosa                                  7,0 g
  • Gluconato Sódico                  2,0 g
  • Acetato sódico                       5,0 g
  • Citrato diamónico                  5,0 g
  • Fosfato dipotásico ácido                 2,5 g
  • Sulfato Magnésico                 0,2 g
  • Sulfato Manganésico              0,05 g
  • Cisteína HCl                          0,5 g
  • Polisorbato Tween 80            1,0 g
  • Sulfato Férrico                       0,01 g
  • Agar-Agar                              15,0 g

(Fórmula por litro)

pH final: 5,4 ± 0,2

PREPARACIÓN

Disolver 71 gramos en 850 ml de agua  bidestilada. Agitar  calentando hasta ebullición, para la completa disolución. Autoclavar a 121°C durante 15 minutos. Enfriar a 40-45 °C, añadir asépticamente 150 ml de solución fresca al 5% (es decir, 7,5 g en 150 ml de agua) de extracto de levadura (esterilizada por filtración) para aumentar la variedad y concentración de vitaminas, mezclar bien y verter en placas o tubos.

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO. AGITE EL BOTE ANTES DE USAR, PARA ASEGURAR  LA  HOMOGENEIZACIÓN DE LOS EVENTUALES GRADIENTES DE DENSIDAD DE LOS COMPONENTES. MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO.

DESHIDRATADO CODIGO: DMT351

 CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO:

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque

no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…).

DESHIDRATADO: Polvo grueso, crema          PREPARADO: Estéril, crema

CONTROL DE CRECIMIENTO 18-24 horas a 37 °C aproximadamente:

  • Lactobacillus casei  MKTA 939, Excelente.
  • Lactobacillus acidophilus MKTA 4356, Excelente.

PRESENTACIÓN: MEDIO DESHIDRATADO.

NOTA:

Este medio es una modificación del MRS Agar donde se ha añadido Gluconato sódico como agente estabilizante. El Citrato diamónico, el Acetato sódico y el bajo pH, inhiben la aparición de otros muchos microorganismos, incluidos los estreptococos y los hongos. El tween 80 se agrega en este caso como fuente de ácidos grasos necesarios para el desarrollo de los lactobacilos; su adición pulverizada en el polvo puede crear un aspecto que parece hidratado, pero está correcto.

SIEMBRA E INTERPRETACIÓN

 Sembrar en masa para obtener recuentos y en estría para simples aislamientos. Incubar a 37 °C aproximadamente, durante 18-24 horas. En función del tipo de lactobacilos buscados, incubar en microaerofilia con una atmósfera enriquecida en CO2 al 5%.

Para identificar las especies que intervienen en la alteración de alimentos, utilice el kit KUS801.

El usuario es el único responsable de la eliminación de los microorganismos según la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.

Si desea más información sobre nuestros SAN FRANCISCO AGAR rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

SALMONELLA-SHIGELLA BROTH (SS BROTH)

SALMONELLA-SHIGELLA BROTH (SS BROTH)

Versión caldo del medio SS Agar UNE-EN ISO 6579:2003

 Enriquecimiento selectivo de Salmonella y Shigella con máxima recuperación

De izquierda a derecha: SS Broth sin nocular, E. coli, Shigella (turbio), y Salmonella (negro).

PREPARACIÓN

Disolver 48 g en 1 l de agua bidestilada.

Hervir 1 minuto a 100  ºC. No autoclavar o, mejor aún, esterilizar por filtración. El aspecto grumoso-filamentoso del medio preparado es normal.

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO.

MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO. AGITE EL BOTE ANTES DE USAR.

PRECAUCIÓN: CONTIENE SALES BILIARES

DESHIDRATADO CODIGO: DMT067

 

 

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

DESHIDRATADO: Polvo grueso, rosado.   PREPARADO: Estéril, rojo intenso con precipitado filamentoso que NO ES contaminación.

CONTROL DE CRECIMIENTO 24-48 h a 42°C aproximadamente:

  • Salmonella abony MKTN 6017: Correcto, Amarillento y ennegrece el medio.
  • Escherichia coli MKTA 25922: Inhibido, Puede llegar a crecer en 48 h.
  • Pseudomonas aeruginosa MKTA 9027, Inhibido.
  • Proteus mirabilis MKTA 14153, Bueno.
  • Shigella flexneri MKTA 12022, Bueno.
  • Enterococcus faecalis MKTA 29212, Escaso.

PRESENTACIÓN: MEDIO DESHIDRATADO, TUBOS PREPARADOS, FRASCOS PREPARADOS, KITS P/A.

NOTA: Medio ideal para el enriquecimiento selectivo de Salmonella y Shigella; presenta la ventaja, sobre el Caldo Selenito-Cystina, de no ser tóxico; y sobre el Caldo Rappaport Vassiliadis, de permitir el crecimiento de las Shigella. Casi toda la flora Gram positiva queda inhibida (excepto algunas cepas de Bacillus cereus, Enterococcus durans y Staphylococcus epidermidis); y gram parte de la flora Gram negativa también es inhibida (excepto algunas cepas de E. coli, Pseudomonas aeruginosa, y el grupo KES -Klebsiella, Enterobacter y Serratia-). Estas cepas quedarán luego descartadas en los agares selectivos XLD y SS (sustituya este último por Chromosalm si sólo busca Salmonella) y con las pruebas inmunológicas (KMB501) y bioquímicas. En los servicios intercompartivos SEILALIMENTOS de los ultimos 7 años, este medio demuestra ser el que mejor recupera las diferentes cepas de Salmonella y de Shigella en todo tipo de matrices (lácteos, cárnicos, pescados, vegetales…)

 SIEMBRA

Agitar para resuspender las nubes, precipitados y flóculos. Inocular 0,1 ml de caldo de pre-enriquecimiento (Buffered peptone Water) en un tubo de 9 ml, o bien 1 ml en un frasco de 100 ml. Incubar 48 horas a 42 ºC aproximadamente.

 INTERPRETACIÓN

Llevar a los medios sólidos selectivos XLD Agar y SS-Agar (sustituya éste por Chromosalm si sólo busca Salmonella) y, sembrando en superficie por agotamiento, cualquier caldo turbio o con viraje de color. Los medios con precipitado cristalino o flóculos son normales y no indican crecimiento.

ATENCIÓN, MÉTODO RÁPIDO PARA SALMONELLA: Uniendo este avance a un enriquecimiento mixto acelerado (mezclando los medios del preenriquecimiento revitalizador y neutralizante: 225 ml Buffered Peptone Neutralizing Water de MICROKIT  DMT011+ enriquecimiento selectivo 18 ml SS Broth concentrado [x5] de MICROKIT DMT067) e incubándolos juntos en las 18 h previas; permite la detección fiable de Salmonella en sólo 36 h desde la muestra inicial. Por todo ello, este método acortado es la herramienta que estaban esperando todas las fábricas de productos alimenticios para poder liberar lotes gracias a la detección precoz de este patógeno, que les retrasaba hasta ahora el resultado global del laboratorio microbiológico a 3-5 días.

 BIBLIOGRAFÍA

FSanchis, J. 09-2014: XIX Congreso Nacional de Microbiología  de los Alimentos. Doble enriquecimiento simultáneo para detección de Salmonella. J. Sanchís. MICROKIT.

El usuario final es el único responsable de la destrucción de los organismos que se hayan desarrollado, según la legislación medioambiental vigente

Si desea más información sobre nuestros SALMONELLA-SHIGELLA BROTH (SS BROTH) rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

TERRIFIC (Tartoff & Hobbs) BROTH

TERRIFIC (Tartoff & Hobbs) BROTH

 Medio tamponado que soporta mayores concentraciones de E.coli y mejor rendimiento de sus DNA-plásmidos que el LB

 COMPOSICIÓN

  • Triptona de caseína      12.0 g
  • Extracto de Levadura  24.0 g
  • K2 H PO4                        9,4 g
  • KH2 PO4                         2,2 g
  • (Fórmula por litro)
  • pH final: 7,0 ± 0,2

 PREPARACIÓN

Disolver 47,6 g de medio en 1 litro de agua bidestilada. Añadir 4 g de glicerol (que a diferencia de la glucosa, no es fermentado a ácido acético). Agitar, calentando hasta ebullición para su completa disolución. Distribuir en tubos o frascos. Autoclavar a 121ºC durante 15 minutos. Se obtienen mejores resultados acortando el ciclo del autoclave y con posterior enfriamiento forzado, ya que los integrantes del extracto de levadura se desnaturalizarán menos. El color final del medio es ámbar, ligeramente opalescente. Mejor mantener el medio preparado en refrigeración. Incubar el tiempo y Tª adecuados para la cepa, en principio 18-24 horas a 35-44 °C.

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO. AGITE EL BOTE ANTES DE USAR

MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO.

DESHIDRATADO CODIGO: DMT357+ Bidones de 5 Kg

 CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

DESHIDRATADO: Polvo crema

PREPARADO: Paja-ámbar

CONTROL DE CRECIMIENTO 24-48 h a 37°C aproximadamente:

  • Escherichia coli MKTA 25922 (WDCM 00013), Excelente
  • Escherichia coli MKTA 8739 (WDCM 00196), Excelente

El usuario final es el único responsable de eliminar los microorganismos de acuerdo con la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.

Si desea más información sobre nuestros TERRIFIC (Tartoff & Hobbs) BROTH rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

SCREENING-SWABBS

SCREENING-SWABBS

Tras el éxito obtenido en los ultimos años con los X-Swabbs (kits completos con hisopos para recuentos de microorganismos diversos en superficies y manipuladores, con el método de barrido), a petición de muchos clientes diseñamos estos otros kits que simplifican un paso, al buscar con ellos sólo la presencia o ausencia del microorganismo dado, no su recuento.

El método de barrido es el ideal en ambientes de alta carga microbiana (ej. países tropicales) donde el método de contacto con placa Rodac o con laminocultivos no puede tener éxito excepto en salas blancas, porque casi siempre dichas placas crecen incontables.

Cada kit consta de todo el material estéril y listo para su uso, para:

1-La toma de muestras por barrido (hisopos secos en su tubo)

2-La detección del microorganismo buscado por simple cambio de color del caldo selectivo/diferencial, tras incubarlo por la noche.

La gama es completa para los microorganismos más buscados en superficies, pero si no encuentra el Screening-Swabb del microorganismo que busca, podemos diseñarlo para Ud. para un pedido mínimo de sólo 5 kits. Actualmente disponibles 5 tipos:

 

  • COLIKIT : Ver folleto X-Swabbs, ya que este es el mismo kit que el COLISWABB
  • LISTERISWABS: Ver  folleto Listeriswabbs-Green, ya que aunque el medio es sólido, también es para detección en un solo paso
  • FUNGIKIT ScreeningSWABBS:
  • SALMONKIT ScreeningSWABBS:
  • STAPHYKIT ScreeningSWABBS:

El usuario final es el único responsable de la destrucción de los microorganismos que se hayan multiplicado con el KIT, de acuerdo con la legislación medioambiental vigente. Añada lejía con cuidado de no tocar ni derramar el cultivo (si al abrir los botes sale gas a presión o líquido, lavar bien las manos con agua corriente y jabón), o bien autoclavar antes de desechar a la basura. Para uso exclusivo en laboratorio por personal especializado en microbiología.

MANTENER EN POSICION VERTICAL A 4-25ºC! ¡ EN OSCURIDAD!

FUNGIKIT-Screening-SWABBS- Hongos (Levaduras y Mohos)

Kit de detección de Hongos (Levaduras y Mohos) en un solo paso en superficies y manipuladores, por el método de barrido

PRESENTACIÓN: KIT DE 20 TEST                CÓDIGO: KMT102P

–    20 hisopos en tubo.

–    20 tubos líquidos de caldo color paja del medio selectivo Sabouraud

Polimicological Caf.Broth (TPL041).

MODO DE EMPLEO: Barrer la superficie a muestrear (ideal 10 x 10 cm2) con un hisopo previamente mojado en agua estéril o, mejor aún sumergido unos segundos en caldo LPT Neutralizing (Tubos TPL053S no incluidos en el kit). Si la superficie está seca, rascar con el escobillón, para arrastrar la suciedad con el algodón. Devolver el escobillón a su tubo, cerrar y llevar al laboratorio. Introducir el hisopo en uno de los tubos de caldo Sabouraud que incluye el kit, meter y sacar varias veces en el caldo y volver a sacarlo y guardarlo en su tubo original. Cerrar el tubo con caldo e incubarlo 48-72 h a  30±5ºC.

 

INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS. Cualquier turbidez demuestra la presencia de levaduras y cualquier flóculo algodonoso demuestra la presencia de mohos sin necesidad de más confirmaciones.

SALMONKIT-Screeening-SWABBS- Salmonella

Kit de detección de Salmonella spp. en un solo paso en superficies y manipuladores, por el método de barrido

PRESENTACIÓN: KIT DE 20 TEST                CÓDIGO: KMT104P

–  20 hisopos en su tubo.

–  20 tubos líquidos de caldo color rojizo del medio de enriquecimiento selectivo SS Broth (TPL401).

MODO DE EMPLEO: Barrer la superficie a muestrear (ideal 10 x 10 cm2) con un hisopo previamente mojado en agua estéril, o mejor aún sumergido unos segundos en caldo LPT  Neutralizing (Tubos TPL053S no incluidos en el kit). Si la superficie está seca, rascar con el escobillón, para arrastrar la suciedad con el algodón. Devolver el escobillón a su tubo, cerrar y llevar al laboratorio. Introducir el hisopo en uno de los tubos de caldo SS incluidos en el kit, meter y sacar varias veces en el caldo y volver a sacarlo y guardarlo en su tubo original. Cerrar el tubo con el caldo e incubarlo 24-48 h a  35±2ºC.

  INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS: Cualquier viaje del caldo rojo a negro indica presunta presencia de Salmonella. Confirmar estos presuntos positivos estriando en placas de Cromosalm Agar y XLD Agar (no incluidas en el kit).

STAPHYKIT-Screening-SWABBS- Staphylococcus aureus

Kit de detección de Staphylococcus aureus  en un solo paso en superficies y manipuladores, por el método de barrido

PRESENTACIÓN: KIT DE 20 TEST                CÓDIGO: KMT105P

–  20 hisopos en su tubo.

– 20 tubos líquidos de caldo color rojo del medio de enriquecimiento selectivo Mannitol Salt.Broth (TPL064).

MODO DE EMPLEO: Barrer la superficie a muestrear (ideal 10 x 10 cm2) con un hisopo previamente mojado con agua estéril, o mejor sumergido unos segundos en caldo LPT Neutralizing (Tubos TPL053S no incluidos en el kit). Si la superficie está seca, rascar con el escobillón, para arrastrar la suciedad con el algodón. Devolver el escobillón a su tubo, cerrar y llevar al laboratorio. Introducir el hisopo en uno de los tubos de caldo Mannitol incluidos en el kit, meter y sacar varias veces en el caldo y volver a sacarlo y guardarlo en su tubo original. Cerrar el tubo con el caldo e incubarlo 24-48 h a  35±2ºC.

  INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS: Cualquier viraje del caldo rojo a amarillo o anaranjado indica presunta presencia de Staphylococcus aureus. Confirmar estos presuntos positivos estriando en placas de Cromokit X-Staph Agar (no incluidas en el kit).

El usuario es el único responsable de la destrucción de los microorganismos generados en el interior del kit durante su uso, de acuerdo con la legislación medioambiental vigente. Destruir por inmersión en lejía. Mantener fuera del alcance de los niños. No ingerir.

Si desea más información sobre nuestros productos rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

15 PRODUCTOS SORPRENDENTES DE MICROKIT

15 PRODUCTOS SORPRENDENTES DE MICROKIT

Contamos con una quincena de productos que, por estar “escondidos” en el catálogo, a pesar de su originalidad y escasez de productos alternativos, no son muy conocidos, pero sabemos le resultarán de gran interés. Por eso queremos destacarlos en este nuevo folleto, a modo de “cajón de sastre”:

 

  • Goteros de Agente antidesecante para añadir a los medios de cultivo. Este agente no interfiere en el crecimiento de los microorganismos pero permite que las placas preparadas perduren muchas más semanas, que no aparezcan burbujas-huecos en su superficie al prepararlas y que al exponer las placas al aire para control ambiental no se sequen tan rápidamente como las placas preparadas convencionales. Ref: SBL001. Goteros de 5 ml para laboratorios y de 100 ml para fabricantes de medios. Se emplea una gota por litro de medio, antes de autoclavarlo.

  • Matrices estériles para validar métodos microbiológicos. Se trata de alimentos, cosméticos o cualquier otro tipo de muestra, que pesamos (generalmente a 25 g pero podemos pesar lo que necesiten los estimados clientes) e irradiamos para conseguir su esterilidad sin alterar sus propiedades físicas, químicas ni organolépticas. De este modo, los laboratorios que desean validar sus métodos microbiológicos, pueden añadirles nuestras cepas cuantitativas de concentración conocida y convertir la validación en un experimento resumido a un día de trabajo. Ya que conociendo la flora y/o el recuento esperables, pueden comparar lo obtenido con su método con lo que deberían haber encontrado. Se fabrican bajo pedido de los materiales exactos que necesita cada laboratorio. Ref: KMT363. Packs de 10 botes idénticos de 25 g cada uno.

  • Desodorantes de autoclave. Se trata de goteros (o de perlas) con agentes esenciales que permiten eliminar (no sólo enmascarar) los desagradables olores de algunos de los medios de cultivo donde ya han crecido los microorganismos, que a menudo aumentan su mal olor al autoclavarlos, convirtiendo el aire de algunos laboratorios en irrespirable. Al emplear estos agentes en cada autoclavado, se consigue un agradable aroma a manzana, naranja, limón o menta, (Ref: VPL052+, VRO001, VRO002, VRO003, respectivamente)

  • Guantes para el autoclave, para no quemarse al manipular el contenido del esterilizador recién abierto. Son de cuero tratado y aterciopelado por dentro, de modo que aguantan el calor incluso si se mojan (los suficientes segundos para dejar el producto autoclavado en un lugar seguro y poder quitárselos sin llegar a quemarse) y todo el tiempo necesario si no se mojan. Todos los demás guantes de autoclave que hemos probado no sirven realmente para nada. Ref: VAA251 el par.

 

  • Linterna UVA de 366 nm. La luz negra o luz de Wood en cómoda linterna fluorescente es el más versátil de nuestros aparatos, al permitir la confirmación de los más diversos microorganismos: hongos dermatofitos, Pseudomonas aeruginosa (incluso las cepas menos fluorescentes), Legionella spp., Legionella pneumophila, E.coli con MUG, Salmonella spp. con MUCAP, Clostridium perfringens con MUP, Desulfovibrio reductor del sulfato, Bacteroides melaninogenicus... y otros usos como detección de aflatoxinas, activación de esporas, entomología, micología, filatelia, mineralogía, arqueología, criminología, detección de billetes falsos, cromatografía, fluoroquímica, cloruración, polimerización, titración, análisis de pesticidas, detección de lípidos, búsqueda de quinina en tónica, control de calidad de dispositivos electrónicos, localización de soldaduras imperfectas en aeronáutica, búsqueda de rastros de ratas… Ningún laboratorio debería carecer de esta económica linterna. Ref: VMT050.

  • Alfombras desechables adhesivas para entrar y salir del laboratorio dejando en ellas la suciedad de las suelas del calzado. No existe un método más sencillo para minimizar la contaminación de las salas que precisan la menor suciedad microbiológica. Ref: VAN037. 1,1 x 0,45 m a modo de cuaderno, con numerosas hojas plásticas, adhesivas, desechables una vez sucias.

 

  • Replicador de  placas. A menudo los métodos de identificación de colonias son destructivos e impiden el uso posterior de la placa para otros fines. Otras veces nos quedamos con las ganas de saber cómo habrían crecido las colonias obtenidas en otro medio de cultivo. Con el replicador de placas estos problemas dejan de serlo, ya que tocamos la placa con él (una vez colocada una de las telitas, que son reutilizables tras autoclavarlas) y acto seguido tocamos la otra placa con dicha tela, obteniendo tras la incubación otra placa con la misma disposición, recuento y tipos de colonias. Ref: A29094 (Y A29095 para reponer más telas cuando se desgasten las que vienen con el kit).

 

  • Estufa incubadora

 

  • Nevera 40 Litros para transporte de muestras en el coche, sustituye las típicas cestas de camping de limitado    uso   en    número   de    horas,   al conectarse  al  encendedor  del  coche  y  generar frío,  no  sólo  mantenerlo.  Es  imprescindible  en climas cálidos. Ref: 40018.
  • Arrollamembranas para poder introducir la membrana filtrada en un tubo o en un frasco con caldo y poder incubarla para control de esterilidad. Ref: CFS6120.

  • Esponjas abrasivas para toma de muestras microbiológicas en superficies. La toma de muestras para control de Salmonella en canales animales y de Listeria en superficies, es sumamente ineficaz con el método de contacto (placas de contacto rodac, laminocultivos dipslides…) y con el de barrido con escobillón (torunda, hisopo). Numerosos laboratorios usuarios de las esponjas MICROKIT nos han comunicado que sólo gracias a ellas han conseguido encontrar la fuente de contaminaciones pertinaces en el producto final, que no encontraban ni siquiera con esponjas abrasivas de otras marcas. Ref: VMT037, caja de 100 unidades, estériles, en bolsa autosellable unitaria. Nuestras esponjas van secas, para que les añada el caldo neutralizante (Ref: TPL053S) sólo si lo desea. Evitamos así contaminar de nutrientes la superficie.

  • Espátulas tomamuestras estériles y desechables, de plástico, para facilitar la toma de muestras viscosas. Envasadas de 10 en 10 en bolsas estériles. Ref: VJM001.

 

  • Palillos estériles para poder tomar criobolas con cepas congeladas sin que salten, como sucede con las asas de picadura y con las pinzas. También resultan útiles como asas de siembra, para toma de colonias… Ref: VDP099. 20 bolsas autosellables con 50 palillos cada una; cada palillo va envuelto individualmente en una bolsita de celofán y sólo tiene una punta, para prevenir contaminaciones cruzadas.

 

  • Portamangos de Kolle para que las asas de siembra no toquen las superficies. Un invento tan sencillo como necesario en todo laboratorio microbiológico. Ref: VCS569

  • Rotulador cuentacolonias digital, para no perderse al contar colonias en placa. El rotulador indeleble marca las colonias ya contadas. Su pantalla muestra el número de colonias que hemos contado en la placa, hasta que lo reiniciemos. El sonido, leve pero en audible “bip”, permite saber si realmente hemos tocado la colonia por debajo de la placa. Ref: A99634 (recambio con rotulador negro adicional Ref: A36100).

Si desea más información sobre nuestros productos rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

DryPlates® XLD

DryPlates® XLD

Detección de Salmonella y Shigella

DryPlates® XLD: DPP030- (caja 60 u) y DPP030+ (caja 1200 u)

Placas preparadas de medio deshidratado en disco nutriente, estériles y listas para su uso inmediato, que se hidratan precisamente mediante la muestra en el momento de inocularla en frío, lo que ahorra el hervido-fusión-enfriado-a-45ºC y las 2 horas de todo este trabajo propio del medio clásico para siembra por inclusión en masa. Y como sustituto de la placa preparada clásica para siembras en superficie, dada su extraordinaria caducidad (2 años desde fabricación).

El Agar XLD (ISO 6579, Pharmacopea medio K) es el mejor medio (selectivo y diferencial) para detección selectiva de Salmonella spp. y de Shigella spp. en muestras farmacéuticas, cosméticas, alimentarias, acuáticas y clínicas.

Colonias negras de Salmonella por siembra de 1 ml en masa.

Mediante el método de estría, se aprecia muy bien el contraste entre el crecimiento, con estrías y/o colonias aisladas de color negro de Salmonella, y el medio, de color rojizo o amarillento.

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

En formato DryPlate®, este medio permite la rápida detección de Salmonella spp. y de Shigella spp. en sólo 16h tras el enriquecimiento. Uniendo este avance a un enriquecimiento mixto acelerado (mezclando los medios del preenriquecimiento revitalizador y neutralizante: 225 ml Buffered Peptone Neutralizing Water de MICROKIT  DMT011; y el enriquecimiento selectivo 18 ml SS Broth concentrado [x5] de MICROKIT DMT067) e incubándolos juntos en las 18 h previas; permite la detección fiable de Salmonella y de Shigella en sólo 34 h desde la muestra inicial. Las colonias de Salmonella crecen negras, las de Shigella rojas o amarillas, y al proceder necesariamente de enriquecimiento, suelen ser tantas que si no se siembra por estría, sólo se suelen apreciar mediante un viraje tenue del medio al color de las colonias (a causa de miles de microcolonias). De modo que es mejor prehidratar la DryPlates con 1 ml de agua estéril y sembrar acto seguido el enriquecimiento en estría. Por todo ello, DryPlates® XLD es la herramienta que estaban esperando todas las fábricas de productos alimenticios para poder liberar lotes gracias a la detección precoz de este patógeno, que les retrasaba hasta ahora el resultado global del laboratorio microbiológico de 3 a 5 días. Al combinarla con DryPlates® SAL (medio Cromosalm), seguirá la ISO 6579 de Salmonella, asegurando así que ninguna cepa de este prolífico género pueda escapar a su detección.

 ¡Enhorabuena por utilizar el sustituto del Siglo XXI de los medios deshidratados y de los medios preparados hidratados!

 

MODO DE EMPLEO para detección de patógenos tras enriquecimiento y para ambientes interiores (superficies y aires)

  1. Puede estriar con un asa con caldo enriquecido (ideal SS Broth Microkit, ya que es un caldo que funciona mucho mejor que Rappaport o MKT sea cual sea el medio posterior de aislamiento), sobre cualquier DryPlates®, previamente hidratada con 1 ml de agua estéril (recuerde, el disco sobre el ml de agua centrado y nunca el agua sobre el disco nutriente). O también un escobillón con el que haya barrido una muestra de superficies. El viraje de la estría y las colonias aisladas al final de la misma contrastarán mejor con el color de base del medio. Siga leyendo en “Modo de empleo para muestras de 1 ml”.
  2. También puede dejar la DryPlates® de cualquier medio, previamente hidratada con 1 ml de agua estéril (recuerde, el disco sobre el ml de agua centrada y nunca el agua sobre el disco), abierta durante 10-15 minutos en los puntos críticos de la sala, para realizar una estimación “de campo” de la flora ambiental (aunque es mejor usar un muestreador tipo Microflow o MBS para obtener recuentos por m3 de aire).

 

MODO DE EMPLEO para muestras de 1 ml

  1. Con unas pinzas, sacar un disco nutriente de su bolsa y colocar en la tapa de una placa DryPlates® recién abierta.
  2. Añadir al centro de la base de la placa 1 ml de la muestra enriquecida y dejar caer encima el disco nutriente (con pinzas o simplemente cerrando la tapa con disco sobre la base de la placa), nunca al revés. Cerrar la placa. De esta forma y en caso de presencia de Salmonella, no debemos aspirar a obtener colonias aisladas, sino grandes biomasas que virarán la placa a gris-negro si hay Salmonella. Si no se desea recuento, mejor emplear el método de estría descrito en el punto anterior.
  3. O bien añadir al centro de la base de la placa 1 ml de agua estéril (o solución salina, Ringer, Buffered Peptone Water, Buffered Peptone Neutralizing, LPT Broth…) y dejar caer encima el disco nutriente. Estriar encima el caldo enriquecido, con estría lo más larga posible, para conseguir colonias aisladas. El disco una vez empapado se adhiere muy bien a la placa, por lo que se puede estriar sin problemas. Cerrar la placa.
  4. Incubar en estufa, IMPORTANTE: en atmósfera húmeda (basta con dejar 4 vasos llenos de agua en la estufa, uno en cada esquina), sin voltear las placas (el disco abajo) para que no se fugue nada de muestra durante la incubación. Nunca incube las DryPlates® directamente sobre la bandeja de la estufa, intercale dos placas vacías (como“base porta-placas” para poner entre la torre de placas y la base metálica de la estufa) para que la DryPlate® no se seque durante la incubación por el exceso de calor del metal; igualmente no deje que la torre de placas toque la paredes de la estufa. Las condiciones de incubación (tiempo y temperatura) son las estándar: 35-37ºC durante 16-24 (48)h. Antes de leer, es muy importante verificar que la superficie de la placa sigue húmeda. Las cepas de Salmonella spp. que no estén en estado subletal o estresado, crecerán desde las primeras 16h como colonias, virajes o estrías negras (detección precoz). Si no aparecieran estos cambios en 16h, siga incubando para revitalizar las células dañadas sub-letalmente durante la fabricación del producto, hasta las 48 h. Los resultados de las DryPlates®-XLD son mucho más rápidos (16h respecto a 24-48h) que los de los medios agarizados clásicos.
  5. Leer los resultados buscando sólo el color diana: Salmonella spp. crece de color negro (sean colonias aisladas, sean estrías, sean zonas del medio o sea el medio completo), mientras Shigella spp. crece con colonias o estrías rojizas o amarillas; otras enterobacterias pueden crecer, pero con colores amarillos. Dado que algunas cepas de Salmonella crecen con colonias rojas o incoloras en XLD, es mejor confirmar cualquier crecimiento.

 

MODO DE EMPLEO para muestras líquidas filtradas (100, 250… ml)

  1. Siga los mismos pasos que en el caso anterior pero con las siguientes salvedades:
  2. Prehidrate el disco nutriente incluido en la placa con 1 ml de agua estéril (o solución salina, Ringer, Buffered Peptone Water, Buffered Peptone Neutralizing, LPT Broth…). Recuerde, añada el disco sobre el ml de agua centrada y no al revés.
  3. Filtrar la muestra líquida (100, 250… ml) por una membrana estéril de 0,45 ó de 0,22 µm y depositar la membrana sobre el disco prehidratado de la DryPlates® XLD , evitando la formación de burbujas entre ambos. Evite estresar las posibles células de Salmonella spp. retenidas en la membrana: es conveniente enjuagar/revitalizar la membrana una vez recién filtrada la muestra, filtrando acto seguido por ella 100 ml de, por ejemplo, Buff.Peptone ClNa Solution pH 7,0 Pharmacopea (MICROKIT RPL115, DMT301); apague la bomba en cuanto se haya terminado el líquido del embudo de filtración y deposite la membrana sin demora sobre la DryPlates® XLD prehidratada.

CONSERVACIÓN Y PRECAUCIONES DE USO

Almacenar a temperatura ambiente (ideal 15-25ºC) ¡no en nevera!, ya que en ésta la humedad es más fácil que prehidrate y estropee los discos nutrientes. Es imprescindible almacenar en lugar muy seco y oscuro, ya que la humedad y la luz dañan irreversiblemente los medios de cultivo deshidratados. Si trabaja en zonas de alta humedad atmosférica, almacene las DryPlates®, bien cerradas en su bolsa, dentro de una caja hermética “tupper” con sacos antihumedad (ej: VRB747).

Shigella flexneri, colonias, estría y medio amarillos en DryPlates®-XLD

Otros muchos medios en DryPlates®: Aerobios totales (medios diferentes en alimentos, en cosméticos, en aguas, en aguas oligotróficas, en medicamentos, en bebidas alcohólicas), Levaduras y Mohos (en alimentos, en cosméticos, en aguas, en medicamentos), Enterobacterias (VRBG o cromogénico), Coliformes, Coliformes y E.coli, E.coli, Staphylococcus aureus, Bacillus cereus, Pseudomonas aeruginosa, Burkholderia cepacia, Candida albicans, Enterococos fecales (SB ó KAA a elegir), Salmonella spp. (Cromosalm y XLD), Listeria monocytogenes, Vibrio parahaemolyticus-Vibrio cholerae, Flora acidoláctica, Antiobiograma cromogénico, UTIs… Si necesita otros medios en formato DryPlates® podemos diseñarlos especialmente para Ud.

 

El usuario final es el único responsable de la eliminación de los microorganismos según la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura. Validado en base a la Norma UNE-EN-ISO 16140.

Diseño y fabricación 100% españoles. Derechos de explotación de la PATENTE concedidos en exclusiva a Laboratorios MICROKIT, S.L. tras 23 años de ensayos y mejoras para poder ofrecerle el mejor y más versátil producto de estas características.

Si desea más información sobre nuestros DryPlates® XLD rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16