RINGER SOLUCION ISOTONICA 1/4 (TABLETAS)

RINGER SOLUCION ISOTONICA 1/4 (TABLETAS)

Diluyente isotónico [1/4] s/Normas UNE 34-818:1985, UNE 34 810:1984, UNE 34 814:1985, UNE 34 805-1983, UNE 34 821-1986, UNE 34 812:1985, UNE 34 815:1985

COMPOSICIÓN

  • Cloruro sódico              2,250 g
  • Cloruro potásico           0,105 g
  • Cloruro cálcico 6- H2O 0,120 g
  • Bicarbonato sódico       0,050 g

(Fórmula por litro)

pH final: 7,0 ± 0.2

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PREPARACIÓN

Disolver una tableta en 500 ml de agua bidestilada para obtener una solución isotónica según Ringer 1/4.

Autoclavar a 121 ºC, 15 minutos.

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO

MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO, EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO.

CODIGO MEDIO EN TABLETAS DMT300

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

DESHIDRATADO: Tabletas, Blanco.

PREPARADO: Estéril, Incoloro.

CONTROL DE CRECIMIENTO tras sembrarlo en PCA 72 h a 37°C aproximadamente (o bien 5 días a temperatura ambiente 21-28°C aproximadamente):

  • Pseudomonas aeruginosa MKTA 9027, Correcto
  • Bacillus subtillis MKTA 6633, Correcto
  • Staphylococcus aureus MKTA 6538P, Correcto
  • Micrococcus luteus MKTA 10240, Correcto
  • E.coli MKTA 25922, Correcto

PRESENTACIÓN: MEDIO DESHIDRATADO EN TABLETAS, TUBOS PREPARADOS 9 ml., Frascos preparados 100 ml

MODO DE EMPLEO E INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS

Añadir 1 ml de muestra a un tubo con 9ml de solución Ringer 1/4. Así se obtiene la primera dilución decimal. Agitar y añadir 1 ml de esta solución madre a otro tubo con 9 ml de Ringer. Así se obtiene la segunda dilución decimal. Repetir el proceso cuantas veces sea necesario.

El usuario final es el único responsable de la eliminación de los microorganismos según la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.

Si desea más información sobre nuestros  RINGER SOLUCION ISOTONICA 1/4 (TABLETAS) rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

RHIZOBIUM AGAR USAL

RHIZOBIUM AGAR USAL

Aislamiento y cultivo de Rhizobia, bacterias endofíticas y Rhizobacterias según patente modificada de la Universidad de Salamanca (USAL)

COMPOSICION

  • Mannitol                       7 g/l
  • Fosfato monopotásico 0,15 g/l
  • Fosfato dipotásico        0,4 g/l
  • Nitrato amónico            1  g/l
  • Yeast Extract                0,5 g/l
  • Agar-Agar                     17 g/l

pH final: 7,0 ± 0,2

Rhizobium leguminosarum foto USAL

Rhizobium leguminosarum foto USAL

PREPARACION

Disolver 26,05 g  de medio en 1 litro de agua bidestilada. Calentar hasta ebullición, agitando para su total homogeneización. Dispensar en tubos o frascos y esterilizar en autoclave a 121ºC durante 20 min . No sobrecalentar. El color final del medio es  marfil

USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO. MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO, EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO. AGITAR ANTES DE USAR PARA ASEGURAR LA HOMOGENEIZACIÓN DE LOS eventuales gradientes de densidad de los COMPONENTES.

PRESENTACIÓN:

Medio deshidratado botes 500 g o bidones 5 Kg

CÓDIGO: DMT232

CONTROL DE CALIDAD

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

DESHIDRATADO: Polvo de color marfil PREPARADO: Estéril, color marfil.

CONTROL DE CRECIMIENTO CUANTITATIVO 72 horas a 28 ºC aproximadamente:

  • Rhizobium leguminosarum USDA2370T, Excelente, Colonias mucosas  de color blanco cremoso
  • Bradyrhizobium canariense BTA1T. Excelente, Colonias mucosas.de color blanco cremoso.
  • Ensifer meliloti ATCC 3390T. Excelente, Colonias mucosas.de color blanco cremoso.
  • Paenibacillus sp. GMPS02 Excelente, Colonias mucosas.de color blanco cremoso.

MODO DE EMPLEO E INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS

Para el aislamiento a partir de nódulos de leguminosas o de endofitos en general se parte de macerados de tejidos y se siembra por estría sobre la superficie de las placas con ayuda de una varilla o un pellet pestle estériles

Las colonias de rhizobia en este medio son muy mucosas y de color blanco-marfil, aunque algunos otros endofitos pueden presentar un aspecto similar en este medio.

Las aplicaciones recomendadas son:

  1. Medio de aislamiento y cultivo rutinario de rhizobia, bacterias endofíticas y rizobacterias que utilicen manitol como fuente de carbono.
  2. Como medio base para el aislamiento y cultivo de endofitos y rizobacterias que no utilicen manitol como fuente de carbono, adicionando previamente a la esterilización 1 g/l de Extracto de Levadura Difco y/o 2 g/l de Triptona Difco.

Bradyrhizobium, Mesorhizobium, Rhizobium y Sinorhizobium, así como  todas las Rhizobiáceas que empleen Manitol como fuente de Carbono, crecen estupendamente en el medio Rhizobium Agar USAL.

MICROKIT tiene los derechos exclusivos de fabricación de esta patente.
Rhizobium leguminosarum foto USAL

Rhizobium leguminosarum foto USAL

El usuario final es el responsable de la destrucción de los microorganismos crecidos en los medios de cultivo, de acuerdo con la legislación medioambiental vigente: Autoclavar antes de desechar en la basura.

Si desea más información sobre nuestros  RHIZOBIUM AGAR USAL rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

REINFORCED CLOSTRIDIAL FLUID MEDIUM (RCM) PHARMACOPEA MEDIO  P

Detección de Clostridios productores de gases y sus esporas (UNE-EN 26461-1:1995)

COMPOSICIÓN

  • Triptona                        10.0 g
  • Extracto de levadura     1.5 g
  • Extracto de carne          10.0 g
  • Glucosa                         1.0 g
  • Almidón                        1.0 g
  • Acetato sódico              5.0 g
  • Hidrocloruro de cisteína         0.5 g
  • Sulfito de sodio             0.8 g
  • Citrato de Hierro (III)    1.4 g
  • Agar-agar                      0.5 g

(Fórmula por litro)

pH final: 7,1 ± 0.2

PREPARACIÓN

Disolver 31’2 g de medio en 1 l de agua bidestilada. Calentar, agitando, hasta ebullición, para su total homogeneización. Repartir en tubos, mejor con parafina. Autoclavar a 121 ºC durante 15 minutos. El color final del medio es ámbar.

NOTA: Para mejorar el ennegrecimiento del medio debido a Clostridios, añada 1 vial del suplemento estéril VMT136 a cada 100-1000 ml de medio estéril, una vez enfriado a 45-50 ºC.

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO

AGITE EL BOTE ANTES DE USAR

MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO.

LAS PARTÍCULAS NEGRAS QUE PUEDEN VERSE OCASIONALMENTE, PRECIPITAN AL ENFRIARSE EL MEDIO Y SON BUENAS PARA EL AUMENTO DE SU SENSIBILIDAD, DE ACUERDO CON LAS NORMAS UNE 13401  y UNE-EN-26461.

DESHIDRATADO CODIGO: DMT170

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

DESHIDRATADO: Polvo grueso, Tostado

PREPARADO: Estéril, Ambar, Fluido denso (las burbujas, al agitar, suben lentamente)

CONTROL DE CRECIMIENTO 2-7 días a 37°C aprox., sin aerobiosis:

  • Clostridium  sporogenes MKTA 11437, Correcto.
  • Clostridium  perfringens MKTA 13124, Correcto.

PRESENTACIÓN: TUBOS PREPARADOS 9 ml, FRASCOS 100 ml, MEDIO DESHIDRATADO

Medio fluido para enumeración de esporas de clostridios productores de gas en alimentos y para detección de clostridios totales en productos farmacéuticos.

SIEMBRA

Regenerar el medio preparado calentándolo a 100 ºC durante 20 minutos, a fin de eliminar el oxígeno disuelto. Enfriar a unos 25 ºC. Calentar el inóculo a unos 75 ºC durante 15 minutos para destruir las formas vegetativas y activar las esporas. Inocular y añadir parafina, vaselina o agar estéril. Si se desea recuento, inocular 9 tubos por el método del Número Más Probable. Incubar a 37 ºC aproximadamente, durante 7 días. Según Norma UNE-EN 26461 para Anaerobios Sulfito-reductores se incuba, por NMP, a 36 -38°C durante 40-48 h  y se considera positivo todo frasco negro.

NOTA: Si por efecto del frío ambiental, el medio tiene flóculos de agar, éstos desaparecerán al regenerarlo por calentamiento.

INTERPRETACIÓN

Leer diariamente tras 48 horas de incubación. Turbidez, ennegrecimiento y gas entre el medio y la parafina se consideran prueba positiva. Si se desea recuento, comparar los resultados con la tabla del NMP. Ver también Reinforced Clostridial Agar (BCD023).

El usuario final es el único responsable de la eliminación de los microorganismos según la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.

Si desea más información sobre nuestros  REINFORCED CLOSTRIDIAL FLUID MEDIUM (RCM) PHARMACOPEA MEDIO  P rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

REINFORCED CLOSTRIDIAL FLUID MEDIUM (RCM)

REINFORCED CLOSTRIDIAL FLUID MEDIUM (RCM)PHARMACOPEA MEDIO  P

Detección de Clostridios productores de gases y sus esporas

COMPOSICIÓN

  • Peptona                                  10.0 g
  • Extracto de levadura              3.0 g
  • Extracto de carne                   10.0 g
  • Glucosa                                  5.0 g
  • Almidón soluble                     1.0 g
  • Acetato sódico                        3.0 g
  • Hidrocloruro de cisteína                  0.5 g
  • Cloruro de sodio                    5.0 g
  • Agar-agar                               0.5 g

(Fórmula por litro)

pH final: 6,8 ± 0.2

PREPARACIÓN

Disolver 38 g de medio en 1 l de agua bidestilada. Calentar, agitando, hasta ebullición, para su total homogeneización. Repartir en tubos, mejor con parafina. Autoclavar a 121 ºC durante 15 minutos. El color final del medio es ámbar.

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO. AGITE EL BOTE ANTES DE USAR, PARA ASEGURAR  LA  HOMOGENEIZACIÓN DE LOS EVENTUALES GRADIENTES DE DENSIDAD DE LOS COMPONENTES. MUY HIGROSCÓPICO: MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO.

DESHIDRATADO CODIGO: DMT307

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

DESHIDRATADO: Polvo grueso, Tostado

PREPARADO: Estéril, Ambar, Fluido denso (las burbujas, al agitar, suben lentamente)

CONTROL DE CRECIMIENTO 2-7 días a 37°C aprox., sin aerobiosis:

  • Clostridium  sporogenes MKTA 11437, Correcto.
  • Clostridium  perfringens MKTA 13124, Correcto.

PRESENTACIÓN:  MEDIO DESHIDRATADO

Medio fluido para enumeración de esporas de clostridios productores de gas en alimentos y para detección de clostridios gasógenos totales en productos farmacéuticos.

SIEMBRA

Regenerar el medio preparado calentándolo a 100 ºC durante 20 minutos, a fin de eliminar el oxígeno disuelto. Enfriar a unos 25 ºC. Inocular y es preferible añadir parafina, vaselina o agar estéril para evitar el crecimiento de aerobios acompañantes. Si se desea recuento, inocular 9 tubos por el método del Número Más Probable. Incubar a 37 ºC aproximadamente, durante 2-7 días.

NOTA: Si por efecto del frío ambiental, el medio tiene flóculos de agar, éstos desaparecerán al regenerarlo por calentamiento.

INTERPRETACIÓN

Leer diariamente tras 48 horas de incubación. Turbidez y gas entre el medio y la parafina se consideran prueba positiva. Si se desea recuento, comparar los resultados con la tabla del NMP. Ver también Reinforced Clostridial Medium s/UNE-EN 26461-1:1995 (DMT170).

El usuario final es el único responsable de la eliminación de los microorganismos según la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.

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REINFORCED CLOSTRIDIAL AGAR (RCA)

REINFORCED CLOSTRIDIAL AGAR (RCA)

Recuento de anaerobios en tubo (presuntos Clostridios)

COMPOSICIÓN

  • Extracto de levadura              3,0 g
  • Peptona y extracto de carne   20,0 g
  • Glucosa                                  5,0 g
  • Almidón soluble                     1,0 g
  • Cloruro Sódico                       5,0 g
  • Acetato Sódico                       3,0 g
  • L-Cysteina hidrocloruro                  0,5 g
  • Agar-agar                               15,0 g

(Fórmula en gramos/litro)

pH final 6,8 ± 0,2

 

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO.

AGITE EL BOTE ANTES DE USAR.

PRESENTACIÓN: MEDIO DESHIDRATADO

MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO.

PREPARACIÓN

Añadir 52,5 gramos a 1 litro de agua bidestilada. Agitar, calentando hasta ebullición para que la disolución sea completa. Autoclavar a 121 ºC, 15 minutos. Enfriar a 47 ºC y dispensar en placas o en tubos que contengan la serie de diluciones decimales de la muestra.

COD: BCD023

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

DESHIDRATADO: Polvo fino, crema.

PREPARADO: Estéril, Pajizo traslúcido.

CONTROL DE CRECIMIENTO 48-72 h a temperatura ambiente (21-28°C aproximadamente):

  • Clostridium  sporogenes MKTA 11437, Correcto.
  • Clostridium  perfringens MKTA 13124, Correcto.

MODO DE EMPLEO E INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS

Incubar a 30 ºC aproximadamente hasta 72 horas, las placas en anaerobiosis (los tubos no hace falta). Contar lo más pronto posible, ya que la producción de gas puede romper el agar. Toda colonia es un presunto Clostridium.

El usuario final es el único responsable de la eliminación de los microorganismos según la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.

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PROGRAMA RONDAS SEILA 2017

PROGRAMA RONDAS SEILA 2017

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Si desea inscribirse en un servicio intercomparativo SEILA para conocer los métodos que mejor detectan en otros laboratorios similares al suyo, respetando su anonimato, puede inscribirse en el programa 2017. Por realizarnos entre Febrero y Abril de 2017, un pedido de medios,  kits o cepas MICROKIT superior a 500 € , le concederemos semibeca de la próxima ronda de aguas, alimentos o cosméticos, de modo que por sólo 275 € adicionales de este servicio, podrá así comprobar cuánto puede ayudar SEILA a su laboratorio. Aproveche esta herramienta de aseguramiento de su control de calidad e inscríbase ya, indicando que la semibeca le ha sido concedida por esta oferta. No encontrará otro informe intercomparativo de donde sacar tantas acciones de mejora para su laboratorio.

Si desea más información sobre nuestros SERVICIOS INTERCOMPARATIVOS rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

RAPPAPORT VASSILIADIS SEMISOLID MSRV

RAPPAPORT VASSILIADIS SEMISOLID MSRV

Enriquecimiento y aislamiento simultáneos de Salmonella. Modificado según Addenda 2/2005 de la Norma ISO 6579:2003

COMPOSICIÓN

  • Peptona                              4.590 g
  • Hidrolizado de caseina        4,590 g
  • Cloruro sódico                    7.340 g
  • di-H Fosfato potásico         1.470 g
  • Cloruro de magnesio           10.93 g
  • Oxalato de verde malaquita    0.037 g
  • Agar-agar                            2.700 g

(Fórmula por litro)

pH final: 5.2 ± 0.2

PREPARACIÓN

Disolver 31,5 gramos en 1 litro de agua bidestilada. Calentar, agitando hasta ebullición, para su total disolución. NO AUTOCLAVAR.  Enfriar a 45°C y añadir asépticamente 20 mg/l de Novobiocina (BCX150). Mezclar bien antes de dispensar. El aspecto del medio es semisólido, azul.

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO.

MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO. AGITE EL BOTE ANTES DE USAR

DESHIDRATADO CODIGO: BCD150

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

DESHIDRATADO: Polvo grueso, verdoso

PREPARADO: Estéril, Azul turquesa

CONTROL DE CRECIMIENTO 24-48 h a 37°C aproximadamente:

  • Enterococcus faecalis MKTA 29212, escaso
  • Bacillus subtilis MKTA 6633, escaso
  • E.coli MKTA 25922, escaso
  • Pseudomonas aeruginosa MKTA 9027, escaso
  • Salmonella abony MKTN 6017, Bueno con halo de movilidad y con halo de captura junto a disco con antisuero H

PRESENTACIÓN: MEDIO DESHIDRATADO

MODO DE EMPLEO E INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS

Añadir 0,1 ml de caldo de preenriquecimiento al centro de la placa. Incubar a 37 ºC aproximadamente (mejor a 42 ºC aproximadamente) durante 18-24 h. Un crecimiento centrífugo indica que puede haber Salmonella. Este test puede ser confirmativo si se añade un disco de antisuero polivalente H (PL6100) a 2 cm del punto de inoculación y aparece en la zona un halo de captura transparente. El látex confirmativo de aglutinación (KMB501) se puede utilizar directamente en el borde de la zona de motilidad.

El usuario es el único responsable de la eliminación de los microorganismos según la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.

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RAPPAPORT VASSILIADIS SOJA BROTH

RAPPAPORT VASSILIADIS SOJA BROTH

(UNE-EN ISO 6579:2003, ISO 6785:2001 Modificadas)

Enriquecimiento selectivo de Salmonella en alimentos y agua.

COMPOSICIÓN

  • Peptona de soja                  4.500 g
  • Cloruro sódico                    7.200 g
  • Fosfato monopotásico        1.260 g
  • Cloruro de magnesio           13.580 g
  • Oxalato de verde malaquita    0.036 g
  • Fosfato dipotásico              0.180 g

(Fórmula por litro)

pH final: 5,2 ± 0,2

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PREPARACIÓN

Disolver 27 gramos en 1 l de agua bidestilada. Una posible ebullición espontánea es normal. Autoclavar a 115 ºC durante 15 minutos. El color final del medio es azul turquesa.

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO

MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN

LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO.

AGITE EL BOTE ANTES DE USAR.

DESHIDRATADO CODIGO: DMT196

De izquierda a derecha: Rappaport sin inocular, E. coli, Shigella, y Salmonella.

De izquierda a derecha: Rappaport sin inocular, E. coli, Shigella, y Salmonella.

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…).

DESHIDRATADO: Polvo fino, Azul

PREPARADO: Estéril, Azul turquesa

EVALUACIÓN DEL RENDIMIENTO ISO/TS 11133-2, 24 h a (37)-41,5 ºC:

(Aplicando el método UNE EN ISO 6579, o el indicado en el Manual MICROKIT actualizado)

  • Salmonella abony MKTN 6017 con acompañantes (E.coli MKTA 25922 y Ps.aeruginosa MKTA 9027), Crece bien, a las 24 h el medio se vuelve lechoso. Tras estriar una alícuota en XLD e incubar, aparecen más de 10 colonias típicas.
  • Escherichia coli MKTA 25922, parcialmente inhibido: tras incubar, estriar en TSA e incubar, aparecen menos de 10 colonías típicas e incluso ninguna.
  • Enterococcus faecalis MKTA 29212, parcialmente inhibido: tras incubar, estriar en TSA e incubar, aparecen menos de 10 colonías típicas.
  • Bacillus subtilis MKTA 6633, Parcialmente inhibido.
  • Pseudomonas aeruginosa MKTA 9027, Parcialmente inhibido.

Las colecciones TIPO prohiben el uso de su referencia por lo que indicamos la nuestra, directamente trazable a la colección TIPO.

PRESENTACIÓN: VIALES MF, TUBOS 10 ml, FRASCOS PREPARADOS, MEDIO DESHIDRATADO.

MODO DE EMPLEO E INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS

Inocular 0.1 ml del Agua Peptonada Tamponada de pre-enriquecimiento en 10 ml de este medio. Incubar 21-27 horas a 37 ºC aproximadamente o, para mayor selectividad para Salmonella, a 40,5-42,5 ºC aproximadamente. Para Shigella recomendamos el caldo S-S (DMT067) porque el Rappaport es demasiado selectivo. Además,  para tener un mínimo de certeza en la detección de Salmonella, NO SE PUEDE enriquecer sólo en caldo Rappaport, ya que, en ese caso, y en función de las distintas matrices de alimento y las distintas cepas,  podrían obtenerse hasta un 47,4 % de falsos negativos!!! Realizar un paralelo en caldo Mueller Kauffmann Tetrationato (DMT086),  o en Selenito (DMT111) o en SS Broth (DMT067). Sembrar en placas selectivas o inocular en kits de screening inmediato (KMB501).

El usuario final es el único responsable de la eliminación de los microorganismos según la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.

Si desea más información sobre nuestros RAPPAPORT VASSILIADIS SOJA BROTH rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

 

RAKA-RAY AGAR (BASE)

RAKA-RAY AGAR (BASE)

 Agar selectivo para el aislamiento de las bacterias acidolácticas de la industria cervecera.

COMPOSICIÓN

  • Triptona                                 20,0 g
  • Maltosa                                  10,0 g
  • Fructosa                                 5,0 g
  • Dextrosa                                5,0 g
  • Extracto de levadura              5,0 g
  • Aspartato potásico                2,5 g
  • Glutamato potásico               2,5 g
  • Hidrocloruro de Betaína                  2,0 g
  • Di-amonio hidrogeno-Citrato 2,0 g
  • Sulfato Magnésico                 2,0 g
  • Sulfato Manganésico              0,66 g
  • Fosfato potásico                    2,0 g
  • Extracto de hígado                 1,0 g
  • N-Acetilglucosamina              0,5 g
  • Cicloheximida                        0,007 g
  • Agar-Agar                              17,0 g

(Fórmula por litro)

pH final: 5,4 ± 0,2

PREPARACIÓN

Disolver 77,2 gramos en 1 litro de agua  bidestilada. Añadir 10 ml de Tween 80 (SDA071). Agitar  calentando hasta ebullición, para la completa disolución. No sobrecalentar! Autoclavar a 121°C durante 15 minutos. Enfriar a 40-45 °C, añadir 3 g de feniletanol, mezclar bien y verter en placas o tubos.

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO. AGITE EL BOTE ANTES DE USAR, PARA ASEGURAR  LA  HOMOGENEIZACIÓN DE LOS EVENTUALES GRADIENTES DE DENSIDAD DE LOS COMPONENTES. MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO.

DESHIDRATADO CODIGO: DMT344

 CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO:

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque

no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…).

DESHIDRATADO: Polvo grueso, crema          PREPARADO: Estéril, crema

CONTROL DE CRECIMIENTO 4-7 días a 30°C aproximadamente:

  • Lactobacillus fermentans MKTA 9338, Excelente.
  • Escherichia coli MKTA 25922, Inhibido.

PRESENTACIÓN: MEDIO DESHIDRATADO.

NOTA:Este medio proporciona excelentes resultados en la detección de Lactobacilos en los procesos de fermentación de la cerveza. Algunos metabolitos de estos microorganismos pueden alterar las propiedades organolépticas de la cerveza. Sin embargo su detección suele ser difícil, por eso hay tantos medios de cultivo específicos para cerveza, de los cuales este sea probablemente el más adecuado. Ciertos componentes específicos mejoran el rendimiento en el crecimiento de estos microorganismos: Extracto de hígado, Extracto de levadura, Triptona, N-Acetilglucosamina, Tween 80… Como ciertos Lactobacilos no pueden utilizar la glucosa, se añaden como fuentes de carbono tanto maltosa como fructosa. El feniletanol inhibe la aparición de bacterias Gram negativas y la cicloheximida impide el crecimiento de levaduras.

SIEMBRA E INTERPRETACIÓN

 Sembrar en masa con doble capa para obtener recuentos y en estría para simples aislamientos. Incubar a 25-30°C aproximadamente, durante 4 días, aunque algunas cepas requerirán incubaciones de hasta 7 días. En función del tipo de microorganismos buscados, incubar o no en microaerofilia con una atmósfera enriquecida en CO2 al 5%.

Para identificar las especies que intervienen en la alteración de alimentos, utilice el kit KUS801.

El usuario es el único responsable de la eliminación de los microorganismos según la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.

Si desea más información sobre nuestros RAKA-RAY AGAR (BASE) rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

R2 MEDIUM OLIGOTROFIC AGAR (A.P.H.A.)

 R2 MEDIUM OLIGOTROFIC AGAR (A.P.H.A.)(Pharmacopea medio S)

Recuento total en aguas potables, con máxima recuperación , al continuar las células en un medio tan oligotrófico como la muestra de agua. Recomendado para recuento en aguas cloradas y farmacéuticas.

COMPOSICIÓN

  • Extracto de levadura       0,50 g
  • Extracto de carne            0,50 g
  • Hidrolizado de caseina    0,50 g
  • Dextrosa-Glucosa           0,50 g
  • Almidón soluble              0,50 g
  • Di-K Hidrógeno Fosfato 0,30 g
  • Sulfato de Magnesio       0,024 g
  • Piruvato de Sodio           0,30 g
  • Agar-Agar                       15,00 g

(Fórmula por litro)

pH final: 7,2 ± 0,2

Recuento total por filtración de membrana en un agua destilada: Gran recuperación y diversidad de flora mixta.

Recuento total por filtración de membrana en un agua destilada: Gran recuperación y diversidad de flora mixta.

PREPARACIÓN

MANTENER EL BOTE BIEN CERRADO

EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO.

AGITE EL BOTE ANTES DE USAR.

PARA USO EN LABORATORIO.

DESHIDRATADO CODIGO: DMT215

Recuento total por siembra en masa.

Recuento total por siembra en masa.

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

DESHIDRATADO: Polvo grueso, Beige.

PREPARADO: Estéril, Blanquecino.

CONTROL DE CRECIMIENTO CUANTITATIVO 72 h a 37°C aproximadamente (o bien 5 días a Tª ambiente 21-28°C aproximadamente):

  • Escherichia coli MKTA 25922, Correcto. Con respecto a PCA estandarizado*, recuento 132-161%
  • Enterococcus faecalis MKTA 29212, Correcto. Con respecto a PCA estandarizado*, recuento 166-177 %
  • Pseudomonas aeruginosa MKTA 9027, Correcto. Con respecto a PCA estandarizado*, recuento 85-143%
  • Staphylococcus aureus MKTA 6538P, Correcto. Con respecto a PCA estandarizado*, recuento 111-133%
  • Aeromonas hydrophila MKTA 49141, Correcto. Con respecto a PCA estandarizado*, recuento >100%.

* El que cumple con recuperación superior al 92-125% con respecto a cepas cuantitativas trazables a la cepa tipo. Incertidumbres detectadas entre todos los lotes a lo largo de un año (la mayoría de la incertidumbre se debe a la cepa y a la proporción de cepas acompañantes inoculadas, no al medio).

PRESENTACIÓN: MEDIO DESHIDRATADO, FRASCOS PREPARADOS, PLAQUITAS HERMETICAS MF.

MODO DE EMPLEO E INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS

Inocular 1 ml en profundidad o mejor 0,1 ml en superficie, o aún mejor una membrana en superficie por la que se hayan filtrado 1-100 ml de muestra. Duplicar la muestra. Incubar una placa 5-7 días a 22 ºC aproximadamente y la otra 3 días a 30-37 ºC aproximadamente. Contar todas las colonias, que serán muchas más que en medios normales como PCA, TSA, Nutrient Agar, Total Charcoal Agar, LPT Neutralizing Agar… ( Sanchís, 9/99, Interlaboratorio sobre la recuperción de medios nutritivos para recuento total en aguas, XVII Congreso S.E.M.). La flora termófila se asocia a procedencia humana. La mesófila al proceso de depuración. Este medio no es adecuado para recuento en alimentos, superficies o aire, sólo es mucho más sensible en aguas puras.

El usuario es el único responsable de la eliminación de los microorganismos según la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.  

Si desea más información sobre nuestros  R2 MEDIUM OLIGOTROFIC AGAR (A.P.H.A.)(Pharmacopea medio S) rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16