Archivo de la categoría: Microbiología de Alimentos

Optimización en los análisis microbiológicos de ALIMENTOS.
Nuevos métodos de análisis microbiológicos utilizados exitosamente en los laboratorios líderes

Kit detección Salmonella alimentos

Kit detección Salmonella alimentos: sin necesidad de aparato alguno ¡y en sólo 36 horas! se descarta su presencia con el kit SALMOQUICK

El mercado rebosa de kits para control de la ausencia o presencia de Salmonella en 25 g de alimento…

…cada método rápido está representado con al menos un kit.

Sin embargo, faltaba el método más robusto, el que sirve para todo tipo de alimentos: el método clásico con medios de cultivo…

…y presentamos el método con medios de cultivo que además está modernizado:

1-con medios neutralizantes de los conservantes y metabolitos inhibidores,

2-con medios de enriquecimiento selectivo que no destruyen cepas de Salmonella y

3-con medios cromogénicos de aislamiento

 

La clave del drástico acortamiento de tiempo está en los dos enriquecimientos, al ser simultáneos:

a) El pre-enriquecimiento revitalizador de células dañadas o letárgicas

b) El post-enriquecimiento selectivo

Además, muy mejorados con dos medios de cultivo que, en la validación de este kit, demostraron comportarse mucho mejor que los clásicos con los que se compararon:

a) Buffered Peptone Neutralizing Water (BPNW, APTN) frente al clásico Buffered Peptone Water (BPW, APT)

b) Salmonella-Shigella Broth (SS Broth) frente al clásico Rappaport Vassiliadis Soja Broth

 

En cuanto al aislamiento en placa, tambien se ha optimizado con los dos mejores medios que existen para obtener colonias de Salmonella:

XLD Agar como medio clásico inmejorable y

ABC ChromoSalm Agar como el mejor cromogénico para Salmonella,

ambos medios aparecen ya en la ultima versión de la ISO 6579.

 

La confirmación de colonias sospechosas

se deja aparte de este kit que reúne estos 4 medios de cultivo, ya que sólo ha de usarse cuando crezcan colonias sospechosas

y se puede realizar bioquímicamente (por ejemplo con galerías enterotube)

https://www.microkit.es/fichas/Enterotubos.pdf?v=2025

y también de forma inmunológica, bien con antisueros (polivalente somático y capsular y polivalente flagelar) https://www.microkit.es/fichas/ANTISUEROS-para-ANTIGENOS-COLONIALES.pdf

o bien con el látex M-Ident Salmonella https://www.microkit.es/fichas/SALMONELLA%20M-IDENT%20RAPID%20SCREENING%20LATEX%20ISO%206579%20UE%202-2019%20alimentos.pdf

o incluso el alucinante kit que indica, por color, el serogrupo de Salmonella del que se trata la colonia: https://www.microkit.es/fichas/SALMONELLA%20WELLCOLEX%20SEROGROUPING%20LATEX.pdf

 

Para conocer mejor este fulminante kit,

consulte su folleto:

https://www.microkit.es/pdf/Salmoquick-2016.pdf

y para profundizar en su modo de empleo, consulte su prospecto:

https://www.microkit.es/fichas/SALMOQUICK%20UE%202-2019.pdf?v=2025

 

No olvide su ventaja principal sobre otros kits: NO NECESITA APARATOS LECTORES, ya que es el método clásico con medios de cultivo; el método MÁS ROBUSTO, el único validado y útil para todo tipo de alimentos

Puede solicitar los precios actualizados de todos estos productos en: microkit@microkit.es, para así poder realizar sus pedidos en: pedidos@microkit.es

Caldo de cultivo microbiología de alimentos

Caldo de cultivo microbiología de alimentos: de los caldos generales a los específicos (enriquecimiento, recuento NMP, selectivos, diferenciales…)

Por su modo de empleo, existen dos grandes tipos de medios de cultivo: los caldos líquidos (sus nombres acaban en «Broth») y los medios sólidos (sus nombres acaban en «Agar»)

Entre los caldos hay varias categorías:

 

Caldos generales

como el Nutrient Broth o caldo común (NB), el Brain Heart Infusion Broth (BHI), el Triptona Soja Broth (TSB), el Lennox LB Broth, el Sabouraud Dextrose Broth para levaduras y mohos, el Tioglicolato (FTM)  para anaerobios, el Maximum Recovery Diluent (o Peptona Salina), el Phosphate Buffered Saline (PBS), el Ringer, el Terrific Broth y los más empleados en alimentos: el Agua de Peptona (AP, PW), el Agua de Peptona Tamponada (APT) o Buffered Peptone Water (BPW), el Agua de Peptona Tamponada y Neutralizante (APTN, BPNW)…

Más típicos en cosméticos son el Eugon LT100 Modif. Broth, el Letheen Modif. Broth y el actual y Universal LPN Broth de Microkit

 

Caldos de enriquecimiento selectivo

como el Rappaport, el MK Tetrationato, el Selenito-Cystina o el SS Broth para Salmonella, el Semifraser o el LEB para Listeria, el Giolitti Cantoni o el Mannitol Salt Broth para Staphylococcus aureus, el Campylobacter Selective Broth, el Lactose Broth y el Mac Conkey Broth para Coliformes, el E coli O157 Broth para verotoxigénicos, el EE Broth para Enterobacterias, el GN Hajna Broth para Gram negativos, el MRS Broth para Lactobacilos, el Pediococcus Enrichment Broth, el Shigella Broth y el SS Broth para Shigella, el Alkaline Peptone Broth, el Alkaline-Saline Peptone Broth y el Vibrio Hipersaline Microkit Broth para Vibrio, etc

 

Caldos para recuento por Número Mas Probable (NMP, MPN)

se emplean sobre todo cuando hemos de contar números bajos , por debajo del límite inferior de cuantificación de la técnica de la siembra en agar,

en la cual, por debajo de 15 colonias/placa (=150 ufc/mL ó g en la solución madre) se habla de «número estimado de colonias» en vez de hablarse realmente de recuento

Aunque es una técnica más empleada en aguas antes de que se oficializara la técnica de filtración de membrana, en alimentos el más típico caldo para recuentos por NMP que todavía se emplea es el caldo verde brillante bilis 2% (BGBL 2%), seguido del antes mencionado Giolitti Cantoni para Staphylococcus aureus y del Minerals Glutamate Broth para coliformes en productos del mar

Más de aguas son el Azide Dextrose Broth (Rothe) y el Ethyl Violet Azide Broth (Litsky) para enterococos fecales, el EC Broth, el Colicult MCC Broth, el Lauryl Sulfate Broth, el Mac Conkey Broth… para coliformes

 

Caldos diferenciales

Son los que permiten diferenciar unos microorganismos de otros, por ejemplo:

Acetamida Broth, Lactosa-Magnesio Broth y RAN para Pseudomonas aeruginosa

Bryant Burkey tyrobutyricum Broth para el clostridio de la hinchazón tardía del queso

Crossley Milk Medium para diferenciar aerobios de anaerobios

Listeria Rhamnosa/Xylosa Broth y Listeria TSB-YE Broth para diferenciar L.monocytogenes de las demás

MRVP para diferenciar coliformes

O/F Glucose Broth para confirmar enterobacterias

Todd Hewith Broth para estreptococos hemolíticos

Tryptone-Triptophan Water para la prueba del indol en E.coli, que muchos laboratorios confunden con el simple Agua de Triptona

Urea Broth para distinguir Salmonella de Proteus

 

Tambien existen caldos para uso por filtración de membrana con cartón absorbente,

que son la versión sin agar-agar de los respectivos agares, por ejemplo M-Endo Broth, M-FC Broth, M-TGE Broth (caldo del PCA), M-Green Broth para hongos acidófilos, Orange Serum Broth, Tomato Juice Broth, WL Nutrient Broth, Worth Broth…

 

En realidad la lista de medios líquidos en caldo,

es inmensa (cerca de 1/3 de los medios de cultivo, complementada con otros 2/3 aprox de agares), de modo que, en vez de reproducirla aquí,  lo mejor es ir al listado en:

https://microkit.es/fichas-tecnicas-medios-de-cultivo.htm

y buscar todos los medios que contienen la palabra «Broth»

 

Solicita precios actualizados de cualquier medio líquido en caldo en microkit@microkit.es

Agar microbiología de alimentos

Agar microbiología de alimentos: medios de cultivo sólidos para elaborar placas y tubos en la búsqueda de colonias de microorganismos

Los medios de cultivo agarizados son el mayor avance del siglo XX en microbiología de alimentos, ya que gracias a este componente, extraído de ciertas algas marinas, podemos obtener colonias aisladas y éstas las podemos contar y/o identificar.

Muchos medios agarizados son simplemente su versión en caldo, a la que se añaden 10-15 g/L de agar-agar microbiológico.

Es la técnica inversa al microscopio: en vez de introducirnos en el micromundo para ver células, hacemos que éste crezca hasta poder verlo en forma de colonias en la placa o en el tubo de medio agarizado.

Como la distribución de los microorganismos en cualquier muestra no es la Normal (o de Gauss) sino «contagiosa», se considera que cada colonia proviene de una ufc (unidad formadora de colonia),

la cual a menudo no es una sola célula microbiana, sino varias (la madre, las hijas, las nietas… que permanecen unidas por exopolisacáridos).

A veces incluso las ufc son multiespecíficas, lo que complica su identificación certera.

Por eso no es correcto hablar de colonias/g ó mL ni de ufc/placa, lo correcto es ufc/g ó mL y colonias/placa.

El agar-agar no es sólo el mejor solidificante en microbiología:

-Además tiene una elevada capacidad de tamponar (por eso no es bueno ahorrar medio al elaborar placas y se deben añadir 18 mL/placa de 90 mm, no 15 ó 12 como hacen algunos fabricantes),

-También consigue que los medios sean menos termolábiles, como demostró MICROKIT al crear los primeros agares cromogénicos en versión deshidratada (que ahora todo el mundo hace, pero antes solo había placas preparadas)

-Y además absorbe los metabolitos generados en el crecimiento colonial (la curva de crecimiento de poblaciones microbianas, con fase exponencial, de meseta y degeneración, se elaboró con caldos), lo que  disminuye la fase de suicidio o alarga la fase de meseta.

 

Como curiosidad,

casi todo el agar microbiológico del mundo procede de la cartilaginosa alga roja Gelidium sesquipedale recolectada en Galicia, Cantabria y Asturias.

En Portugal hubo también fábricas de agar-agar antaño, pero al parecer la proporción de esta especie en sus costas no las hacía un negocio rentable.

Y en Marruecos se obtiene un agar-agar de la mezcla de algas rojas, con lo cual su pureza es inferior y se emplea en medios de cultivo de calidad barata y sobre todo como aditivo alimentario.

Tambien en México se produce un «agar-agar microbiológico americano» desde otra alga del género Gelidium, que resulta más blando y transparente que el agar-agar microbiológico europeo, por lo que las fórmulas de los medios americanos suelen contener un 10% más de agar-agar/L de medio que las diseñadas con agar-agar europeo.

Muchos fabricantes europeos no lo saben y pecan de agares demasiado duros al emular las fórmulas americanas con el agar-agar de aquí, provocando una barrera contra la oxigenación para las siembras en masa de aerobios.

Lo cual se puede aprovechar satisfactoriamente en la búsqueda de anaerobios.

Y los demás agar-agar (sobre todo de Asia) se extraen de otras algas rojas (Gracilaria confervoides, incluso Chondrus crispus, que lo que contiene son carragenatos) que no dan la talla a la hora de las siembras en masa,

ya que su punto de solidificación (54-55ºC) es muy superior al del agar-agar europeo (45-46°C), por lo que hace inviable a buena parte de la microbiota presente (recuentos demasiado reducidos).

Además provocan heterogeneidades en la placa, montañas y valles… que dificultan una siembra profesional

 

La lista de medios sólidos, agarizados,

es interminable, de modo que, en vez de reproducirla aqui  lo mejor es ir al listado en:

https://microkit.es/fichas-tecnicas-medios-de-cultivo.htm

y buscar todos los que contienen la palabra «Agar»

o «semisólido», medios con menos proporción de agar-agar (por ejemplo 2,7 g/L) sobre todo para permitir observar mejor la movilidad (Rappaport Semisolid Medium) o hasta 10 g/L para otros fines (Scholten Semisolid Coliphague Medium)

Tambien los medios «Fluidos» contienen una escasa proporción de agar, para que sigan líquidos pero dificulten la oxigenación en la búsqueda de anaerobios.

 

No todo son ventajas

Sin embargo, el agar-agar tiene una desventaja que nos han vendido como ventaja:

no se licúa hasta alcanzar una temperatura cercana al punto de ebullición del agua

y no solidifica hasta bajar de esa temperatura a alrededor de 45ºC

Eso hace perder 1 h al dia en todos los laboratorios de microbiología del mundo que se preparan sus placas y tubos a partir de medio deshidratado

Existen otros gelificantes con ventajas e inconvenientes sobre el agar-agar;

ninguno es tan duro y transparente conmo el agar-agar pero

¿y si consiguiéramos uno lo suficientemente duro como para permitir convertir las ufc en colonias y lo suficientemente transparente para permitir la siembra en masa sin que queden ocultas las colonias crecidas en profundidad?

Microkit lo consiguió con el HIDRAGAR. Nos costó 23 años, pero al fin lo conseguimos y de ahí  surgió la posibilidad de diseñar nuestras DryPlates®,

placas preparadas que no necesitan calentar ni enfriar el medio para absorber 1 mL de muestra en masa,

pero que a la vez son las únicas placas deshidratadas del mundo que permiten realizar siembra por agotamiento en estría

¿imaginas la rapidez con que se puede hacer un análisis gracias a las DryPlates?

¡10 segundos de la muestra diluida a la estufa incubadora!

https://microkit.es/pdf/dry-plates.pdf

Solicita precios actualizados de cualquier medio agarizado o DryPlates® en microkit@microkit.es

Medios de cultivo microbiología de alimentos

Medios de cultivo para microbiología de alimentos, incluidos numerosos nuevos medios más certeros y más rápidos

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Y en nuestra web https://microkit.es/ puede descargarse las fichas técnicas y folletos de todos nuestros productos de utilidad específica en microbiología de alimentos, además de los medios, kits y cepas comunes a otros proveedores (ISO)

En nuestro canal de youtube https://www.youtube.com/user/Microkit1/videos podrá ver videos de duración variable entre 1 y 30 minutos que sirven como curso de formación para saber manejar y entender a fondo las soluciones microbiológicas más vendidas de MICROKIT

Tambien disponemos de una nueva web (en continua construcción) realizada por expertos en marketing digital, que explica mejor quienes somos y cual es nuestro valor diferencial en el mercado de la microbiología alimentaria, acuática, ambiental e industrial: https://laboratoriosmicrokit.com/

Para conseguir el catálogo completo y los precios actualizados de los productos MICROKIT que desee sólo ha de escribirnos a nuestro email microkit@microkit.es y si es para realizar un pedido, al email pedidos@microkit.es

Y si lo que desea es asesoría en algún punto en el que tenga dudas sobre microbiología de alimentos, puede escribir directamente a nuestro director científico, biólogo con 40 años de experiencia en el laboratorio de microbiología alimentaria e inventor de nuestros cientos de soluciones para los diferentes microorganismos, al email: consultastecnicas@microkit.es 

Nuestro slogan, que resume lo que mejor sabemos hacer es:

«La innovación te lleva a otro nivel»

Y este otro también resume nuestro valor añadido en el mercado de la microbiología de alimentos:

«En MICROKIT hablamos de certeza en tus resultados»

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Catálogo microbiología de alimentos

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MICROBIOLOGÍA DE ALIMENTOS 3 Y LOS PROBLEMAS DEL BAIRD PARKER

MAIL 3 ALIMENTOS Y LOS PROBLEMAS DEL BAIRD PARKER: FALSOS POSITIVOS, FALSOS NEGATIVOS, EFECTO MATRIZ EXAGERADO…

Staphylococcus aureus  ¿Es el Baird Parker  –o el rpf– la solución que necesito?

Detectar Staphylococcus aureus en alimentos: un reto pendiente

Si preguntas a cualquier profesional de microbiología qué medio utilizar para detectar Staphylococcus aureus en alimentos, la respuesta suele ser unánime: “Baird Parker”.

Pero lo más conocido no siempre es lo más eficaz. Como dijo Albert Einstein:

“Si estás haciendo las cosas igual que la mayoría, probablemente lo estés haciendo mal”.

Los resultados de los ensayos intercomparativos lo confirman. Los estafilococos dorados son el parámetro más crítico en microbiología de alimentos, el que más errores genera:

* Hasta la mitad de los laboratorios participantes en cada ronda fallan en este punto.

* Los falsos positivos y falsos negativos son demasiado habituales: se detecta Staphylococcus aureus cuando no está, o no se detecta cuando sí está presente.

¡Normal!

Si hasta la misma ISO 6888 pone al Baird Parker en su sitio:

“las colonias típicas son negras con reborde hialino y halo en el medio; pero hay cepas que crecen con colonias grises, en vez de negras, otras cepas no tienen reborde hialino y otras no provocan halo en el medio”.

Parece un chiste de mal gusto.

Pero es que, además, cada alimento interfiere de forma diferente en el aspecto de las colonias de Staphylococcus aureus ¡hasta las hay marrones!

 

Intentos de solución… sin éxito

* Algunas marcas añadieron fibrinógeno al medio para mejorar la detección. El resultado fue aún peor: la fiabilidad era comparable a tirar una moneda al aire.

* Más tarde surgieron los medios cromogénicos (incluido nuestro XStaph Agar y nuestra mejora BPX19 Agar).

Estos redujeron los falsos negativos, pero no solucionaron los falsos positivos, ya que estafilococos no-aureus y cepas de Bacillus spp. e incluso otros microorganismos,

según cual fuese la matriz alimentaria,

seguían creciendo con colonias típicas de S.aureus. Y éstos seguían con su polimorfismo colonial, aquí traducido a colores.

Era evidente que no podíamos seguir aceptando este nivel de incertidumbre en pleno siglo XXI.

 

La innovación de MICROKIT

Tras años de trabajo, en MICROKIT hemos conseguido dar el paso definitivo:

El medio de cultivo Baird Parker Mannitol Yema (BPMY), con los mismos componentes del Baird Parker clásico, pero también con Mannitol y el mismo suplemento de Yema de huevo con Telurito Potásico). Se trata de Staphylococcus aureus sólo si:

* Colonias negras, con medio alrededor a menudo virado del rojo al naranja o amarillo:

* Y además, las colonias emiten una intensa luz azul en máximo 2 minutos, tras añadirles una gota del reactivo Fosfatasa Fluorescente (FF), en la oscuridad, bajo luz UVA de 366 nm:

La fosfatasa alcalina es la prueba que usan los medios cromogénicos, pero en MICROKIT la hemos elaborado de forma que provoque fluorescencia (luz azul) en vez de color, lo que impide esas molestas transiciones púrpura-lila-verde que tanto confunden en los medios cromogénicos para este microorganismo. Aquí sólo hay dos opciones: Con o sin luz en dos minutos.

* Si busca “estafilococos coagulasa positivos” puede aplicar el test de látex (El mejor es el          M-Ident coagulasa KWD094), aunque la correlación fosfatasa +/coagulasa + en Staphylococcus aureus es superior al 95%, lo que ahorra en 2 minutos la ambigüedad de resultados de los látex.

 

Recomendaciones de uso

Para obtener los resultados más fiables:

* Leer las placas en sólo 24 horas ¡en alimentos es un medio más rápido que el Baird Parker!

En cosméticos sí que hay que esperar las mismas 48 h que en el Baird Parker clásico

* Añadir una gota de reactivo FF, que haya hidratado hace menos de una semana, sobre colonias frescas (de 24h)

* Inclinar la placa para que el exceso de reactivo FF se escurra y no interfiera en la lectura

* Esperar dos minutos y ver bajo luz UVA de 366 nm como se va intensificando desde una luz azul tenue alrededor de la colonia, a una intensa luz azul en toda la colonia negra bañada con el reactivo FF

 

¡Por fin los laboratorios de microbiología alimentaria tienen a su alcance la máxima certeza en el microorganismo que más falsos positivos y falsos negativos genera cuando se trabaja con los medios tradicionales como Baird Parker o el rpf!

¡Hasta la próxima entrega a primeros de junio de 2026!

Puede conocer mejor este medio en:

https://microkit.org/producto/baird-parker-mannitol-bpm-agar/

Y entender mejor su manejo en el video:

https://www.youtube.com/watch?v=2661zhu_IzQ&t=4s

Consulta los precios actualizados de BPMY Agar (alimentos, con yema de huevo y telurito potásico) y BPM Agar (cosméticos, con sólo telurito potásico) en pedidos@microkit.es

Citrato acelerado para confirmar E.coli el mismo día

Confirmación de las colonias azules de presuntos E.coli en CCA, el mismo día, gracias al test del Citrato acelerado (Simmon´s Citrate Agar clásico)

Los test negativos suelen estar infravalorados, para el potencial que suponen a la hora de diferenciar positivos de falsos positivos.

Por ejemplo la catalasa es una prueba magnífica para confirmar sus negativos (Enterococos, Clostridios y Lactobacilos),

ya que son mucho más escasos que sus positivos que burbujean (casi todas las bacterias típicas de microbiología de alimentos, aguas, cosméticos, medicamentos… excepto las mencionadas arriba)

Lo mismo sucede con el test del Citrato de Simmon´s:  E.coli es negativo;

y eso lo diferencia de los falsos positivos en, por ejemplo, el medio oficial de aguas CCA

que en MICROKIT llamamos MugPlus desde que lo creamos en 1995.

https://www.microkit.es/fichas/MUGPLUS%20COLIFORM-E.COLI%20AGAR%20CCA.pdf

Así, para confirmar las colonias azuladas de E.coli en CCA (MugPlus), el método ISO 9308-1, habla de realizar el test del indol.

De este modo, los falsos positivos, que crecen con colonias de colores cercanos al azul en CCA (MugPlus), si son indol negativos, quedan descartados, ya que E.coli es indol positivo.

En el CCA (MugPlus) de MICROKIT, el test del indol se puede realizar directo en las colonias que hayan crecido en tonos azules,

ya que nuestra peptona es muy rica en triptófano, lo que ahorra las 18-24 horas de incubación adicional en agua de triptona con triptófano:

https://www.microkit.es/fichas/TRYPTONE-TRYPTOPHAN-WATER-PEPTONE-WATER-polvo.pdf

Pero en realidad para hacer las cosas 100% bien, se tardan 24 horas adicionales, ya que para que sea realmente confirmativo, el test de indol debe realizarse reincubando a 44ºC:

dado que algunas Klebsiellas de colonias lila o violáceo, son indol positivas a 35-37ºC,

que es la temperatura a la que habremos incubado el CCA-(MugPlus) para detectar tambien los demás coliformes totales.

 

Existe otra prueba definitiva para descartar colonias azuladas en CCA (MugPlus) que no son E.coli, que se puede acelerar a sólo 4-6 horas con la técnica que explicamos a continuación:

El test del Citrato acelerado

https://www.microkit.es/fichas/SIMMONS-CITRATE-AGAR.pdf

Esta aceleración no es un invento de MICROKIT:

algunos microbiólogos veteranos lo hacen y nosotros sólo hemos tenido el privilegio de haberles escuchado antes de que se jubilaran,

y lo transmitimos aquí a todos los microbiólogos que nos sigan y no lo sepan.

Además, hemos dado un paso adicional y facilitamos su uso estandarizado en viales preparados de Simmon´s Citrate Agar,

con el volumen y pH ideales, viales que hemos bautizado con la referencia KV1CIT.

Izda: E.coli, tras 4-6 horas sigue verde lima;

Dcha: falso positivo (Klebsiella pneumoniae), tras 4-6 horas ha virado a verdeazulado

 

CÓMO USAR EL TRUCO DE LOS VIALES MICROKIT PARA ACELERACIÓN EN LA CONFIRMACIÓN DE E.coli

1-Diluir 5 (o más) colonias azuladas del mismo aspecto y tono (pedir opinión a los compañeros del laboratorio, ya que cada persona ve diferente los colores), crecidas en MugPlus CCA, en un tubo Eppendorf al que hayamos añadido 0,1-0,2 mL de solución salina o Ringer. ¡Agitar bien!

2-Añadir con una pipeta o jeringa todo el contenido mezclado, en un vial de Agar Citrato de Simmons acelerador (MICROKIT Ref: KV1CIT),

verificando que el inóculo se esparza por la superficie del medio. Cuantas más colonias se añadan en los 0,1-0,2 mL de salina, más rápida será la reacción.

3-Incubar 4-6 h a 35ºC.

4-Si a las 4 h ya hay viraje a verde-azulado, no hace falta seguir incubando otras 2 horas: las colonias NO son de E.coli; si no, seguir incubando 2 horas más.

5-Comparar con el color verde lima de un vial sin inocular y decidir:

6-Citrato Agar sigue de un color similar lima (y además es Indol + a 44ºC, las colonias no son mucosas): definitivamente es E.coli

7- Citrato Agar ha virado a verde azulado o azul, (y es indol – a 44ºC y/o las colonias son mucoides):

no es E.coli, puede ser alguna cepa de Klebsiella, o también de Enterobacter, Citrobacter, incluso de alguna Salmonella…

El color pistacho o azulado se mantiene durante al menos 48 horas adicionales:

si empieza a realizarlo tarde en su jornada laboral, también puede usar este test sin tener que quedarse más tiempo en el laboratorio,

y leerlo al día siguiente.

 

A veces la innovación no necesita un nuevo medio o kit, y simplemente es la forma en que se sabe utilizar mejor un medio de cultivo clásico.

 

Si desea información y precios actualizados de estos viales estandarizados para acelerar el test del Citrato,

y descartar falsos positivos de E.coli (en CCA-MugPlus o en el medio que sea),

consulte a: microkit@microkit.es

MICROBIOLOGÍA DE ALIMENTOS-2 y El efecto matriz

MAIL 2 ALIMENTOS y El efecto matriz en microbiología alimentaria

El gran olvidado en la Normativa y en los protocolos clásicos que genera el mayor pico de falsos negativos en los laboratorios de microbiología de alimentos.

Es tan evidente que los alimentos sirven de comida a los microorganismos, que a pocos se les ocurre pensar que desde que los homínidos prehistóricos nos igualaron en capacidad intelectual, encontraron plantas aromáticas y especias que les permitían conserva mejor los alimentos…

…aunque ellos no sabían que era porque impedían a los microbios proliferar en dichas matrices…

 

Efecto matriz en microbiología de alimentos: ¿de verdad es tan importante que hasta provoca la mayoría de falsos negativos a nivel universal?

¿Por qué resulta tan complejo alcanzar la máxima calificación en los ensayos intercomparativos de alimentos?

En otras áreas de la microbiología, la importancia de neutralizar inhibidores es incuestionable.

* En microbiología de aguas, nadie analiza una muestra sin inactivar previamente el cloro con tiosulfato sódico.

* En microbiología de cosméticos, nadie comienza sin neutralizar los conservantes mediante caldos como LPTN, Letheen o Eugon LT.

Sin embargo, en microbiología alimentaria, se sigue pasando por alto este paso fundamental: la inactivación de conservantes (incluidas las especias y aromáticas como saborizantes ¡y conservantes! naturales). Y es ahí donde los resultados pueden perder coherencia.

El gran olvidado en este campo es el efecto matriz, una inhibición imprevisible de ciertos microorganismos que están presentes en el alimento y por culpa de la cual, no los detectamos.

Sea por los inhibidores propios del alimento (conservantes, especias, salmueras, jarabes…), sea por los inhibidores generados por otros microorganismos durante su enriquecimiento.

 

La paradoja de las normas actuales

Las Normas ISO no han contemplado este aspecto, situando a los laboratorios de alimentos en un escenario crítico. ¿Realmente es un problema insalvable?

La respuesta es no.

¿Y si existiera un caldo actualizado, con todos los neutralizantes necesarios para cualquier conservante autorizado en alimentos, sea natural, sea artificial?

¿Y si además estuviera validado como exige la legislación?

 

Una alternativa validada y eficaz

En 2008, MICROKIT desarrolló y patentó, a partir de su experiencia en intercomparaciones y en el sector cosmético y de aguas, pero para alimentos, un medio de cultivo específico: el Agua Peptonada Tamponada Neutralizante (APTN, en inglés BPNW).

Este caldo está formulado con todos los neutralizantes necesarios para inactivar cualquier conservante autorizado en alimentos, además de contrarrestar el efecto inhibidor de especias como ajo, pimentón, pimienta, perejil, apio, romero, tomillo o cúrcuma, entre otros.

También neutraliza los metabolitos de la microbiota acompañante (bacterias acidolácticas, aerobios, hongos…), que con frecuencia interfieren en el crecimiento de los microorganismos de interés.

No se trata de una simple agua de peptona tamponada:

* Está validada en múltiples rondas intercomparativas.

* Garantiza resultados con mayor certeza y robustez.

* Ha demostrado reducir significativamente los falsos negativos frente a los caldos convencionales. Sobre todo, si se usa en los alimentos más inhibitorios, a [x2]

Tenemos grandes clientes enamorados de nuestro BPNW, y no sólo en nuestro país.

Y no olvidemos que en salmueras y jarabes, además de usar BPNW, hay que partir de la dilución -2 (no de la madre -1) para obtener resultados coherentes. Sólo hay que comparar los resultados en paralelo usando ambas diluciones para darse cuenta:

Paradoja del poder inhibitorio intrínseco en algunos alimentos:

en ellos detecta mejor la dilución -2 (arriba de la foto) que la (-1), abajo

 

Evidencia en cifras

* En la ronda 100 de Seilalimentos (ensalada), todos los laboratorios que emplearon APTN obtuvieron la máxima calificación (10/10, sin falsos positivos ni negativos en 13 parámetros microbiológicos). Ningún laboratorio con caldos clásicos alcanzó dicho resultado.

* Analizando las 20 rondas entre 2017 y 2024, la excelencia (ausencia de falsos negativos) se logró en el 81,34% de laboratorios que usan APTN, frente a un 52,21% de quienes usaron aguas de peptona sin neutralizantes. Casi un 30% más de laboratorios con excelencia, a favor del APTN.

* El número medio de falsos negativos por usuario fue de 0,62 con APTN, mientras que con caldos tradicionales ascendió a 1,39: más del doble.

 

La decisión está en tus manos

Es cierto: APTN supone una inversión superior respecto a las aguas de peptona clásicas.

Pero lo que aporta es inestimable: la tranquilidad de saber que tus análisis reflejan la realidad, sin comprometer la calidad ni la fiabilidad de tus resultados.

¿Seguir con lo económico y conocido?

¿O apostar por la certeza que tu laboratorio merece?

Sólo tú eliges

Pero recuerda…

si sigues como hasta ahora, no vas a neutralizar los conservantes naturales y artificiales de los alimentos, ni los metabolitos de la microbiota acompañante,

por lo que vas a disparar la incertidumbre en la idoneidad de tus resultados analíticos.

https://www.microkit.es/fichas/BUFFERED%20PEPTONE%20NEUTRALIZING%20WATER.pdf

Solicita la información que necesites en microkit@microkit.es

¡Hasta la próxima entrega sobre mejoras en la microbiología de alimentos a mediados de Mayo-2026!

No se pierda el video: