Archivo de la categoría: Microbiología de Alimentos

Optimización en los análisis microbiológicos de ALIMENTOS.
Nuevos métodos de análisis microbiológicos utilizados exitosamente en los laboratorios líderes

Comprar material microbiología de alimentos

MICROKIT es el proveedor pionero y veterano que además, ofrece nuevos métodos robustos y rápidos para microbiología de alimentos

En nuestro blog  https://www.medioscultivo.com encontrará cientos de entradas sobre microbiología de alimentos

Y en nuestra web https://microkit.es/ puede descargarse las fichas técnicas y folletos de todos nuestros productos de utilidad específica en microbiología de alimentos, además de los medios y kits comunes a otros proveedores (ISO)

En nuestro canal de youtube https://www.youtube.com/user/Microkit1/videos podrá ver videos de duración variable entre 1 y 30 minutos que sirven como curso para saber manejar  los productos más exitosos de MICROKIT

Tambien disponemos de una nueva web (en continua construcción) realizada por expertos en marketing digital, que explica mejor quienes somos y cual es nuestro valor diferencial en el mercado de la microbiología industrial, alimentaria y ambiental: https://laboratoriosmicrokit.com/

Para conseguir los precios actualizados de los productos MICROKIT que desee sólo ha de escribirnos a nuestro email microkit@microkit.es y si es para realizar un pedido, al email pedidos@microkit.es

Y si lo que desea es asesoría en algún punto ciego que tenga sobre microbiología de alimentos, puede escribir directamente a nuestro director científico, biólogo con 40 años de experiencia en el laboratorio de microbiología de alimentos, al email: consultastecnicas@microkit.es 

Nuestro slogan, que resume lo que mejor sabemos hacer es:

«La innovación te lleva a otro nivel»

Y este otro también resume nuestro valor añadido en el mercado de la microbiología de alimentos:

«En MICROKIT hablamos de certeza en tus resultados»

 

MICROBIOLOGÍA DE ALIMENTOS 3 Y LOS PROBLEMAS DEL BAIRD PARKER

MAIL 3 ALIMENTOS Y LOS PROBLEMAS DEL BAIRD PARKER: FALSOS POSITIVOS, FALSOS NEGATIVOS, EFECTO MATRIZ EXAGERADO…

Staphylococcus aureus  ¿Es el Baird Parker  –o el rpf– la solución que necesito?

Detectar Staphylococcus aureus en alimentos: un reto pendiente

Si preguntas a cualquier profesional de microbiología qué medio utilizar para detectar Staphylococcus aureus en alimentos, la respuesta suele ser unánime: “Baird Parker”.

Pero lo más conocido no siempre es lo más eficaz. Como dijo Albert Einstein:

“Si estás haciendo las cosas igual que la mayoría, probablemente lo estés haciendo mal”.

Los resultados de los ensayos intercomparativos lo confirman. Los estafilococos dorados son el parámetro más crítico en microbiología de alimentos, el que más errores genera:

* Hasta la mitad de los laboratorios participantes en cada ronda fallan en este punto.

* Los falsos positivos y falsos negativos son demasiado habituales: se detecta Staphylococcus aureus cuando no está, o no se detecta cuando sí está presente.

¡Normal!

Si hasta la misma ISO 6888 pone al Baird Parker en su sitio:

“las colonias típicas son negras con reborde hialino y halo en el medio; pero hay cepas que crecen con colonias grises, en vez de negras, otras cepas no tienen reborde hialino y otras no provocan halo en el medio”.

Parece un chiste de mal gusto.

Pero es que, además, cada alimento interfiere de forma diferente en el aspecto de las colonias de Staphylococcus aureus ¡hasta las hay marrones!

 

Intentos de solución… sin éxito

* Algunas marcas añadieron fibrinógeno al medio para mejorar la detección. El resultado fue aún peor: la fiabilidad era comparable a tirar una moneda al aire.

* Más tarde surgieron los medios cromogénicos (incluido nuestro XStaph Agar y nuestra mejora BPX19 Agar).

Estos redujeron los falsos negativos, pero no solucionaron los falsos positivos, ya que estafilococos no-aureus y cepas de Bacillus spp. e incluso otros microorganismos,

según cual fuese la matriz alimentaria,

seguían creciendo con colonias típicas de S.aureus. Y éstos seguían con su polimorfismo colonial, aquí traducido a colores.

Era evidente que no podíamos seguir aceptando este nivel de incertidumbre en pleno siglo XXI.

 

La innovación de MICROKIT

Tras años de trabajo, en MICROKIT hemos conseguido dar el paso definitivo:

El medio de cultivo Baird Parker Mannitol Yema (BPMY), con los mismos componentes del Baird Parker clásico, pero también con Mannitol y el mismo suplemento de Yema de huevo con Telurito Potásico). Se trata de Staphylococcus aureus sólo si:

* Colonias negras, con medio alrededor a menudo virado del rojo al naranja o amarillo:

* Y además, las colonias emiten una intensa luz azul en máximo 2 minutos, tras añadirles una gota del reactivo Fosfatasa Fluorescente (FF), en la oscuridad, bajo luz UVA de 366 nm:

La fosfatasa alcalina es la prueba que usan los medios cromogénicos, pero en MICROKIT la hemos elaborado de forma que provoque fluorescencia (luz azul) en vez de color, lo que impide esas molestas transiciones púrpura-lila-verde que tanto confunden en los medios cromogénicos para este microorganismo. Aquí sólo hay dos opciones: Con o sin luz en dos minutos.

* Si busca “estafilococos coagulasa positivos” puede aplicar el test de látex (El mejor es el          M-Ident coagulasa KWD094), aunque la correlación fosfatasa +/coagulasa + en Staphylococcus aureus es superior al 95%, lo que ahorra en 2 minutos la ambigüedad de resultados de los látex.

 

Recomendaciones de uso

Para obtener los resultados más fiables:

* Leer las placas en sólo 24 horas ¡en alimentos es un medio más rápido que el Baird Parker!

En cosméticos sí que hay que esperar las mismas 48 h que en el Baird Parker clásico

* Añadir una gota de reactivo FF, que haya hidratado hace menos de una semana, sobre colonias frescas (de 24h)

* Inclinar la placa para que el exceso de reactivo FF se escurra y no interfiera en la lectura

* Esperar dos minutos y ver bajo luz UVA de 366 nm como se va intensificando desde una luz azul tenue alrededor de la colonia, a una intensa luz azul en toda la colonia negra bañada con el reactivo FF

 

¡Por fin los laboratorios de microbiología alimentaria tienen a su alcance la máxima certeza en el microorganismo que más falsos positivos y falsos negativos genera cuando se trabaja con los medios tradicionales como Baird Parker o el rpf!

¡Hasta la próxima entrega a primeros de junio de 2026!

Puede conocer mejor este medio en:

https://microkit.org/producto/baird-parker-mannitol-bpm-agar/

Y entender mejor su manejo en el video:

https://www.youtube.com/watch?v=2661zhu_IzQ&t=4s

Consulta los precios actualizados de BPMY Agar (alimentos, con yema de huevo y telurito potásico) y BPM Agar (cosméticos, con sólo telurito potásico) en pedidos@microkit.es

Citrato acelerado para confirmar E.coli el mismo día

Confirmación de las colonias azules de presuntos E.coli en CCA, el mismo día, gracias al test del Citrato acelerado (Simmon´s Citrate Agar clásico)

Los test negativos suelen estar infravalorados, para el potencial que suponen a la hora de diferenciar positivos de falsos positivos.

Por ejemplo la catalasa es una prueba magnífica para confirmar sus negativos (Enterococos, Clostridios y Lactobacilos),

ya que son mucho más escasos que sus positivos que burbujean (casi todas las bacterias típicas de microbiología de alimentos, aguas, cosméticos, medicamentos… excepto las mencionadas arriba)

Lo mismo sucede con el test del Citrato de Simmon´s:  E.coli es negativo;

y eso lo diferencia de los falsos positivos en, por ejemplo, el medio oficial de aguas CCA

que en MICROKIT llamamos MugPlus desde que lo creamos en 1995.

https://www.microkit.es/fichas/MUGPLUS%20COLIFORM-E.COLI%20AGAR%20CCA.pdf

Así, para confirmar las colonias azuladas de E.coli en CCA (MugPlus), el método ISO 9308-1, habla de realizar el test del indol.

De este modo, los falsos positivos, que crecen con colonias de colores cercanos al azul en CCA (MugPlus), si son indol negativos, quedan descartados, ya que E.coli es indol positivo.

En el CCA (MugPlus) de MICROKIT, el test del indol se puede realizar directo en las colonias que hayan crecido en tonos azules,

ya que nuestra peptona es muy rica en triptófano, lo que ahorra las 18-24 horas de incubación adicional en agua de triptona con triptófano:

https://www.microkit.es/fichas/TRYPTONE-TRYPTOPHAN-WATER-PEPTONE-WATER-polvo.pdf

Pero en realidad para hacer las cosas 100% bien, se tardan 24 horas adicionales, ya que para que sea realmente confirmativo, el test de indol debe realizarse reincubando a 44ºC:

dado que algunas Klebsiellas de colonias lila o violáceo, son indol positivas a 35-37ºC,

que es la temperatura a la que habremos incubado el CCA-(MugPlus) para detectar tambien los demás coliformes totales.

 

Existe otra prueba definitiva para descartar colonias azuladas en CCA (MugPlus) que no son E.coli, que se puede acelerar a sólo 4-6 horas con la técnica que explicamos a continuación:

El test del Citrato acelerado

https://www.microkit.es/fichas/SIMMONS-CITRATE-AGAR.pdf

Esta aceleración no es un invento de MICROKIT:

algunos microbiólogos veteranos lo hacen y nosotros sólo hemos tenido el privilegio de haberles escuchado antes de que se jubilaran,

y lo transmitimos aquí a todos los microbiólogos que nos sigan y no lo sepan.

Además, hemos dado un paso adicional y facilitamos su uso estandarizado en viales preparados de Simmon´s Citrate Agar,

con el volumen y pH ideales, viales que hemos bautizado con la referencia KV1CIT.

Izda: E.coli, tras 4-6 horas sigue verde lima;

Dcha: falso positivo (Klebsiella pneumoniae), tras 4-6 horas ha virado a verdeazulado

 

CÓMO USAR EL TRUCO DE LOS VIALES MICROKIT PARA ACELERACIÓN EN LA CONFIRMACIÓN DE E.coli

1-Diluir 5 (o más) colonias azuladas del mismo aspecto y tono (pedir opinión a los compañeros del laboratorio, ya que cada persona ve diferente los colores), crecidas en MugPlus CCA, en un tubo Eppendorf al que hayamos añadido 0,1-0,2 mL de solución salina o Ringer. ¡Agitar bien!

2-Añadir con una pipeta o jeringa todo el contenido mezclado, en un vial de Agar Citrato de Simmons acelerador (MICROKIT Ref: KV1CIT),

verificando que el inóculo se esparza por la superficie del medio. Cuantas más colonias se añadan en los 0,1-0,2 mL de salina, más rápida será la reacción.

3-Incubar 4-6 h a 35ºC.

4-Si a las 4 h ya hay viraje a verde-azulado, no hace falta seguir incubando otras 2 horas: las colonias NO son de E.coli; si no, seguir incubando 2 horas más.

5-Comparar con el color verde lima de un vial sin inocular y decidir:

6-Citrato Agar sigue de un color similar lima (y además es Indol + a 44ºC, las colonias no son mucosas): definitivamente es E.coli

7- Citrato Agar ha virado a verde azulado o azul, (y es indol – a 44ºC y/o las colonias son mucoides):

no es E.coli, puede ser alguna cepa de Klebsiella, o también de Enterobacter, Citrobacter, incluso de alguna Salmonella…

El color pistacho o azulado se mantiene durante al menos 48 horas adicionales:

si empieza a realizarlo tarde en su jornada laboral, también puede usar este test sin tener que quedarse más tiempo en el laboratorio,

y leerlo al día siguiente.

 

A veces la innovación no necesita un nuevo medio o kit, y simplemente es la forma en que se sabe utilizar mejor un medio de cultivo clásico.

 

Si desea información y precios actualizados de estos viales estandarizados para acelerar el test del Citrato,

y descartar falsos positivos de E.coli (en CCA-MugPlus o en el medio que sea),

consulte a: microkit@microkit.es

MICROBIOLOGÍA DE ALIMENTOS-2 y El efecto matriz

MAIL 2 ALIMENTOS y El efecto matriz en microbiología alimentaria

El gran olvidado en la Normativa y en los protocolos clásicos que genera el mayor pico de falsos negativos en los laboratorios de microbiología de alimentos.

Es tan evidente que los alimentos sirven de comida a los microorganismos, que a pocos se les ocurre pensar que desde que los homínidos prehistóricos nos igualaron en capacidad intelectual, encontraron plantas aromáticas y especias que les permitían conserva mejor los alimentos…

…aunque ellos no sabían que era porque impedían a los microbios proliferar en dichas matrices…

 

Efecto matriz en microbiología de alimentos: ¿de verdad es tan importante que hasta provoca la mayoría de falsos negativos a nivel universal?

¿Por qué resulta tan complejo alcanzar la máxima calificación en los ensayos intercomparativos de alimentos?

En otras áreas de la microbiología, la importancia de neutralizar inhibidores es incuestionable.

* En microbiología de aguas, nadie analiza una muestra sin inactivar previamente el cloro con tiosulfato sódico.

* En microbiología de cosméticos, nadie comienza sin neutralizar los conservantes mediante caldos como LPTN, Letheen o Eugon LT.

Sin embargo, en microbiología alimentaria, se sigue pasando por alto este paso fundamental: la inactivación de conservantes (incluidas las especias y aromáticas como saborizantes ¡y conservantes! naturales). Y es ahí donde los resultados pueden perder coherencia.

El gran olvidado en este campo es el efecto matriz, una inhibición imprevisible de ciertos microorganismos que están presentes en el alimento y por culpa de la cual, no los detectamos.

Sea por los inhibidores propios del alimento (conservantes, especias, salmueras, jarabes…), sea por los inhibidores generados por otros microorganismos durante su enriquecimiento.

 

La paradoja de las normas actuales

Las Normas ISO no han contemplado este aspecto, situando a los laboratorios de alimentos en un escenario crítico. ¿Realmente es un problema insalvable?

La respuesta es no.

¿Y si existiera un caldo actualizado, con todos los neutralizantes necesarios para cualquier conservante autorizado en alimentos, sea natural, sea artificial?

¿Y si además estuviera validado como exige la legislación?

 

Una alternativa validada y eficaz

En 2008, MICROKIT desarrolló y patentó, a partir de su experiencia en intercomparaciones y en el sector cosmético y de aguas, pero para alimentos, un medio de cultivo específico: el Agua Peptonada Tamponada Neutralizante (APTN, en inglés BPNW).

Este caldo está formulado con todos los neutralizantes necesarios para inactivar cualquier conservante autorizado en alimentos, además de contrarrestar el efecto inhibidor de especias como ajo, pimentón, pimienta, perejil, apio, romero, tomillo o cúrcuma, entre otros.

También neutraliza los metabolitos de la microbiota acompañante (bacterias acidolácticas, aerobios, hongos…), que con frecuencia interfieren en el crecimiento de los microorganismos de interés.

No se trata de una simple agua de peptona tamponada:

* Está validada en múltiples rondas intercomparativas.

* Garantiza resultados con mayor certeza y robustez.

* Ha demostrado reducir significativamente los falsos negativos frente a los caldos convencionales. Sobre todo, si se usa en los alimentos más inhibitorios, a [x2]

Tenemos grandes clientes enamorados de nuestro BPNW, y no sólo en nuestro país.

Y no olvidemos que en salmueras y jarabes, además de usar BPNW, hay que partir de la dilución -2 (no de la madre -1) para obtener resultados coherentes. Sólo hay que comparar los resultados en paralelo usando ambas diluciones para darse cuenta:

Paradoja del poder inhibitorio intrínseco en algunos alimentos:

en ellos detecta mejor la dilución -2 (arriba de la foto) que la (-1), abajo

 

Evidencia en cifras

* En la ronda 100 de Seilalimentos (ensalada), todos los laboratorios que emplearon APTN obtuvieron la máxima calificación (10/10, sin falsos positivos ni negativos en 13 parámetros microbiológicos). Ningún laboratorio con caldos clásicos alcanzó dicho resultado.

* Analizando las 20 rondas entre 2017 y 2024, la excelencia (ausencia de falsos negativos) se logró en el 81,34% de laboratorios que usan APTN, frente a un 52,21% de quienes usaron aguas de peptona sin neutralizantes. Casi un 30% más de laboratorios con excelencia, a favor del APTN.

* El número medio de falsos negativos por usuario fue de 0,62 con APTN, mientras que con caldos tradicionales ascendió a 1,39: más del doble.

 

La decisión está en tus manos

Es cierto: APTN supone una inversión superior respecto a las aguas de peptona clásicas.

Pero lo que aporta es inestimable: la tranquilidad de saber que tus análisis reflejan la realidad, sin comprometer la calidad ni la fiabilidad de tus resultados.

¿Seguir con lo económico y conocido?

¿O apostar por la certeza que tu laboratorio merece?

Sólo tú eliges

Pero recuerda…

si sigues como hasta ahora, no vas a neutralizar los conservantes naturales y artificiales de los alimentos, ni los metabolitos de la microbiota acompañante,

por lo que vas a disparar la incertidumbre en la idoneidad de tus resultados analíticos.

https://www.microkit.es/fichas/BUFFERED%20PEPTONE%20NEUTRALIZING%20WATER.pdf

Solicita la información que necesites en microkit@microkit.es

¡Hasta la próxima entrega sobre mejoras en la microbiología de alimentos a mediados de Mayo-2026!

M17 Agar para detección y recuento de estreptococos lácticos

Detección y recuento de estreptococos lácticos: M17 Agar

Los estreptococos lácticos son bacterias clave para la elaboración de derivados lácteos, como el queso y el yogur

Aunque tradicionalmente se clasificaban dentro del género Streptococcus (Ej: Streptococcus thermophilus), muchas especies lácticas se han reclasificado en el género Lactococcus (Ej: Lactococcus lactis)

Son Gram positivos, anaerobios facultativos, que producen ácido láctico mediante la fermentación de azúcares, principalmente lactosa. Son bacterias catalasa negativas.

Se reconocen al microscopio por formar cadenas de cocos.

M-17 AGAR

Detección y enumeración de estreptococos lácticos

COMPOSICIÓN

Triptona 2,50 g
Digerido pépsico de carne 2,50 g
Digerido papaínico de soja 5,00 g
Extracto de levadura 2,50 g
Extracto de carne 5,00 g
Lactosa 5,00 g
Glicerofosfato sódico 19,00 g
Sulfato de Magnesio 0,25 g
Acido ascórbico 0,50 g
Agar-agar 15,00 g
(Fórmula por litro)
pH final: 7,1 ± 0,1

PREPARACIÓN

Disolver 57 g de medio en 1 litro de agua destilada.
Calentar agitando hasta ebullición para su completa disolución.
Repartir en tubos o frascos.
Autoclavar a 115 ºC durante 20 minutos.

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO.
MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y
OSCURO. AGITE EL BOTE ANTES DE USAR.

DESHIDRATADO CODIGO: DMT087

 

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio
siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar
laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque
no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)
DESHIDRATADO: Polvo grueso, crema
PREPARADO: Estéril, Crema
CONTROL DE CRECIMIENTO 24-48 h a 37°C aproximadamente:
Enterococcus faecalis WDCM00087, Correcto, Puntiforme.
Streptococcus uberis MKTC 994 T, Correcto.
Streptococcus mutans MKTA25175**, Correcto.
Lactobacillus delbruckii MKTA9649**, Escaso.
Escherichia coli WDCM00013. Correcto.
**Las colecciones TIPO prohíben el uso de su referencia por lo que indicamos
la nuestra, directamente trazable a la colección TIPO.

PRESENTACIÓN: MEDIO DESHIDRATADO

MODO DE EMPLEO E INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS

Sembrar en profundidad 1 ml de muestra y de su serie de diluciones decimales.
Incubar a 37 ºC aproximadamente, durante 48 horas para Str. thermophilus y a
30 ºC aproximadamente, durante 48-72 horas para los estreptococos mesófilos.
Los Streptococcus termófilos y mesófilos forman colonias de 1-2 mm, en
función de su densidad en la placa.Confirmar al microscopio que se trata de
diplococos o estreptococos Gram (+).

El usuario es el único responsable de la eliminación de los microorganismos
según la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la
basura.

https://www.microkit.es/fichas/M-17-STREPTOCOCCUS-AGAR.pdf

Consulte los precios actualizados del M17Agar de MICROKIT en pedidos@microkit.es

LENA CLOSTRIDIUM PERFRINGENS LACTOSE AGAR BASE

CLOSTRIDIUM PERFRINGENS LACTOSE AGAR BASE (LENA) para aislamiento selectivo de Clostridium perfringens en alimentos según ISO 15213-3:2024

Medio idéntico a lo indicado en esta Norma ISO:

COMPOSICION

Enzimatic digest of casein                  10,0 g

Meat extract                                        10,0 g

Sodium chloride NaCl                        5,0 g

Lactose C12H24O12                              10,0 g

Phenol Red C19H14O5S                       0,1 g

Agar-agar                                           15 g

(Fórmula en g/L)

Ajustar a pH final tras autoclavado: 7,3 ± 0,2

 

PREPARACION                    

1-Disolver 50,1 g  de medio en 1 litro de agua bidestilada. Calentar hasta ebullición, agitando para su total homogeneización. Dispensar en tubos o frascos herméticos y esterilizar en autoclave a 121ºC durante 15 min. No sobrecalentar. El color final del medio es  naranja. Se puede hacer stock de este LENA base esterilizado, manteniendo hasta 4 semanas a 5ºC.

 

2-Llevar hasta 44-47 ºC, 100 mL de LENA base DMT295 y añadir 1 mL de una solución de Neomycina sulfato (250 mg) SMT015 esterilizada por filtración (por 0,2 µ) en 10 mL de agua destilada estéril (para 1 L de LENA). Esta solución antibiótica se puede mantener a 5ºC hasta 4 semanas en tubos o frascos herméticos.

 

3-Añadir a los dos anteriores 5 mL de emulsión estéril de yema de huevo SBH010. Agitar hasta que los 3 ingredientes queden homogéneos

 

4-Dispensar en placas Petri estériles. Las placas así preparadas se pueden mantener en tuppers de cierre hermético (para que no pierdan humedad) hasta 4 semanas a 5ºC.

USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO. MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO, EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO. AGITAR ANTES DE USAR PARA ASEGURAR LA HOMOGENEIZACIÓN DE LOS eventuales gradientes de densidad de los COMPONENTES.

 

PRESENTACIÓN

-Medio deshidratado LENA BASE, botes 500 g, CÓDIGO: DMT295

-Emulsión de yema de huevo estéril CÓDIGO SBH010

-Neomycina NO estéril en viales de 250 mg, para añadir a 10 mL de agua destilada estéril/vial y elaborar 1 L de medio final/vial, Caja 40 viales CÓDIGO: SMT015. Si se usa SMT015 NO estéril:

-Agua destilada estéril en Tubos de 10 mL CÓDIGO: TPL001+

-Filtros estériles de carcasa para jeringa (lúer), 0,2 µm y 30 mm de diámetro, CÓDIGO: VHU237

-Jeringas estériles 20 mL para los filtros VHU237, CÓDIGO: VPL089

-Neomycina polvo estéril, para añadir a 10 mL de agua destilada estéril/vial y elaborar 1 L de medio final/vial ahorrando VHU237 y VPL090, CÓDIGO SMT015+I

 

CONTROL DE CALIDAD

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

DESHIDRATADO: Polvo de color rosado PREPARADO: Estéril, color rojo coral (foto página anterior).

CONTROL DE CRECIMIENTO CUANTITATIVO  24 horas a 46ºC aprox:

Clostridium perfringens WDCM00007 Colonias amarillas con halo amarillo  (ver foto)

E.coli WDCM00012      Completamente inhibido

Bacillus subtilis WDCM00003 Colonias amarillas sin halo de precipitación

 

MODO DE EMPLEO E INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS

Seguir las directrices de la Norma ISO 15213-3:2024

Emplear también el Rapid perfringens Medium BASE (RPM): Ver  DMT293

Tambien hay que emplear otros medios clásicos según ISO 15213-3:2024: TSC Agar DMT175 con su suplemento D-Cicloserina SMS252, Columbia Blood Agar DMT020 con suplemento de sangre, SIM Agar DMT112 y reactivos Indol Kovacs SBH056, fosfatasa ácida -cancerígena- la cual imaginamos permitirán sustituir por MUP SMT009 como en la búsqueda de C.perfringens en aguas, por demostrarse como método equivalente)

https://www.microkit.es/fichas/C-PERFRINGENS-LACTOSE-AGAR-BASE-LENA.pdf

Ver tambien el caldo C.PERFRINGENS RAPID MEDIUM BASE (RPM):

https://www.microkit.es/fichas/C-PERFRINGENS-RAPID-MEDIUM-BASE-RPM.pdf

Consulte precios actualizados en pedidos@microkit.es

MICROBIOLOGÍA DE ALIMENTOS: entrega 1 de 6 y la OPTIMIZACIÓN DE TIEMPOS Y DE TÉCNICAS.

CONTROL MICROBIOLÓGICO DE ALIMENTOS: OPTIMIZACIÓN DE TIEMPOS Y DE TÉCNICAS.

LA INNOVACIÓN TE LLEVA A UN NIVEL SUPERIOR

MAIL 1 ALIMENTOS:                                                   CERTEZA EN TUS RESULTADOS

 

La diferencia entre sólo analizar y vivir con certeza está en la forma en que trabajas

¿Alguna vez te has parado a pensar que muchas de las decisiones que tomas en tu laboratorio quizá no las estás tomando tú al 100%… sino ese “piloto automático” que todos tenemos?

Ese subconsciente no es otra cosa que la grabación que han ido escribiendo en tu mente —con su mejor intención, eso sí— padres, maestros, jefes, compañeros… e incluso la propia sociedad y normativa. Un auténtico “matrix comunitario” que, en realidad, no elegiste tú.

 

La gran pregunta es:

¿Quieres seguir conformándote con lo que hace la mayoría (ISO), aunque los resultados en tus análisis intercomparativos no siempre te convenzan?

¿O prefieres tener la máxima seguridad de que tus resultados son correctos?

A eso, en MICROKIT, lo llamamos “vivir con certeza

 

 

Durante las próximas semanas vamos a publicar otras 5 entradas como ésta,

donde compartiremos los 5 problemas más habituales que hemos detectado en laboratorios de microbiología de alimentos…

y, lo más importante: las soluciones que mejor han funcionado en quienes ya los resolvieron.

Hablamos desde una posición privilegiada, porque en

MICROKIT llevamos años asumiendo esta triple faceta:

Dicho de otra manera: ¿los árboles no te dejan ver el bosque? En MICROKIT hemos trepado hasta más arriba de muchos árboles, y ahora tenemos la vista panorámica, como un águila, del bosque completo.

Queremos compartir contigo esta visión privilegiada para que, al final de este recorrido, seas tú quien decida:

¿Seguir como hasta ahora, o dar el paso hacia unos resultados analíticos optimizados?

 

Estos son los 5 problemas más comunes que abordaremos juntos:

  1. Efecto matriz en microbiología de alimentos ¿de verdad es tan importante que hasta provoca la mayoría de falsos negativos en el mundo?

 

  1. Staphylococcus aureus ¿Es el Baird Parker –o el rpf- la solución que necesito?

 

  1. ¿Por qué en el recuento de Enterobacterias a veces obtengo menor resultado que en el recuento de Coliformes, cuando eso es una incongruencia?

 

  1. ¿Por qué en el recuento de hongos se da la máxima dispersión de resultados entre los laboratorios participantes en los servicios intercomparativos?

 

  1. Servicios intercomparativos: ¿Por qué sigo con el de siempre, si no tiene en cuenta el efecto matriz, ni compara claramente los resultados según metodologías, ni compara medios de cultivo, ni mejora las herramientas estadísticas convencionales y hasta a veces me saca de z-scores cuando estoy convencido que soy el que mejor he enumerado (¿eso sucede?)?

 

El poder de la innovación

Muchos de los métodos oficiales que nos quieren imponer han sido redactados como si, durante los últimos 100 años, todo el esfuerzo de investigación para facilitar la vida a los laboratorios de microbiología de alimentos… no hubiera existido.

Nos quieren devolver al siglo XX

Y no son sólo palabras:

Aquí tienes los datos, tras más de 200 rondas intercomparativas y 25 años de experiencia, que demuestran cómo quienes aplican nuestra metodología obtienen los mejores resultados:

https://www.medioscultivo.com/mejora-tus-resultados-analiticos-gracias-a-nuestra-innovacion/

 

 

¿De verdad ya estás usando las herramientas adecuadas para tu trabajo actual?

Solicita la información que necesites en microkit@microkit.es

¡Hasta la próxima entrega en Abril-2026!

 

Cepas de acidolácticas

Cepa de Lactobacillus paracasei

Este microorganismo se encuentra de forma natural en la vagina humana.

Es una bacteria inocua (Riesgo Biológico Gr.1), es más: muy beneficiosa para todo ser humano

Su ingesta como probiótico restablece el equilibrio de la microbiota y activa naturalmente el sistema inmunológico.

También es un fermento láctico que proporciona al queso un aroma exquisito, mucho mejor que el de los fermentos industriales habituales

En MICROKIT lo ofrecemos en lentículas cuantitativas para QC de medios como MRS o Cromokit LAC Agar, y también lo incluimos en Seilalimentos para intercomparación de laboratorios

En la actualidad, mientras se redacta este artículo, disponemos de un lote de  lentículas con (7,68 ± 2,68) x 105  ufc/lentícula en MRS Agar y (7,78 ± 2,38) x 105  en Cromokit  LAC Agar

Su variabilidad dentro del lote es, en CV%: 23,31 % en MRS y 21,59 %  en Cromokit LAC Agar

Y su consumo preferente es 12-2026, por lo que se elaborará un nuevo lote hacia el verano, para que tenga una caducidad cercana a 7-2028.

Solicite precios, concentraciones y caducidades actualizados en microkit@microkit.es

De todos modos, si su uso es como cepa cualitativa, la caducidad suele poderse extender durante décadas mientras se mantenga congelada entre -5 y -20ºC

En la foto destacada resaltamos como su cultivo en tubo hermético proporciona mucho mejor crecimiento que la placa, ya que es microaerófilo

Puede ver el manejo de nuestras cepas en lentículas, en el folleto:

https://microkit.es/pdf/CEPAS-CUANTITATIVAS-2022.pdf

Y si lo prefiere, este es el video que lo explica todo mejor:

https://www.youtube.com/watch?v=4WJ8FQl6GIE&t=153s

Agradecemos sus likes y sus comentarios debajo del video, que ayudan de forma contundente a que más microbiólogos conozcan las ventajas de estas cepas y puedan ver todos los videos que les interesen y que hemos preparado para todos Uds.

Solicite el listado actualizado de cepas, donde podrá consultar la concentración y caducidad actualizadas de estas y otras cepas, así como los precios, en microkit@microkit.es

NUEVA WEB DE MICROKIT

WEB DE MICROKIT:

http://www.laboratoriosmicrokit.com

En MICROKIT estrenamos nueva web en Marzo de 2026, creada por nuestro equipo de marketing

Porque la innovación no puede limitarse a productos innovadores, también ha de afectar a la estructura de las empresas

En MICROKIT hemos apostado también por este segundo tipo de innovación:

-Entre 2025 y 2026 estamos creando decenas de videos sobre la utilidad y modo de empleo de los productos MICROKIT de máximo éxito, puede encontrar los que ya hemos terminado en nuestro canal de youtube:

https://youtube.com/@microkit1?si=oRcj96EHX5ZhtphB

-Seguimos introduciendo semanalmente artículos técnicos de microbiología de interés para todos los microbiólogos de la industria y el ambiente en nuestro blog:  https://www.medioscultivo.com/

-Empleamos la IA básicamente para mejorar la comprensión de los textos que escribimos

-Y ahora nuestra nueva web, que absorbe las dos anteriores en vez de sustituirlas (la clásica microkit.es y la más moderna del kit digital microkit.org) en nuestro dominio de hace décadas, recién recuperado (laboratoriosmicrokit.com en vez de microkit.es), con una visión más fácil sobre cual es nuestra motivación para estar aquí: ahorrar al laboratorio de microbiología tiempo, incertidumbre, puntos críticos y dinero: http://laboratoriosmicrokit.com

y nuestro nuevo lema:

«La innovación te lleva a un nivel superior. En MICROKIT hablamos de certeza en tus resultados

Con estas nuevas herramientas confiamos en que nuestros estimados clientes se sientan todavía mejor apoyados por nuestra innovación.

 

Yersinia enterocolitica, detección eficaz en alimentos

Método de detección de Yersinia enterocolitica en alimentos

Yersinia enterocolitica, método de detección en alimentos mediante CIN Agar y varias pruebas confirmativas, rápidas y definitivas

 

CIN YERSINIA AGAR (BASE)

Aislamiento de Yersinia enterocolitica s/ISO 10273:2003 tras enriquecer adecuadamente el alimento

 

COMPOSICIÓN

Extracto de carne                    20 g/L

Extracto de levadura                2 g/L

Mannitol                                  20 g/L

Piruvato sódico                        2 g/L

Cloruro sódico                         1 g/L

Sulfato magnésico                    0,010 g/L

Desoxicolato sódico                 0,5 g/L

Rojo neutro                              0,03 g/L

Cristal Violeta                          0,001 g/L

Agar‑agar                                 12 g/L

pH final: 7,4 ± 0,2

 

PREPARACIÓN

Disolver 28,75 g en 500 ml de agua destilada, calentando hasta hervir y agitando. NO AUTOCLAVAR.

Enfriar a 50 ºC y añadir 1 vial de Yersinia Supplement SBH021 (Cefsulodina 0,0015 g/l, Irgasan 0,004 g/l, Novobiocina 0,0025 g/l final de medio), reconstituido con 5 ml de agua destilada estéril.

Mezclar.

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO

AGITE EL BOTE ANTES DE USAR.

MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO

DESHIDRATADO CODIGO: DMT036

 

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

DESHIDRATADO: Polvo fino, Rosa   PREPARADO: Estéril, Rosado

EVALUACIÓN DEL RENDIMIENTO ISO/TS 11133-2 Aplicando el método ISO 10273 o el indicado en el Manual MICROKIT actualizado, 24 h a 30°C aprox:

Yersinia enterocolitica, MKTA27729**, Bueno, colonias translúcidas con centro  color rosa oscuro.

Escherichia coli WDCM00013, Inhibido total o parcialmente.

Staphylococcus aureus WDCM00034, Inhibido total o parcialmente.

Proteus mirabilis MKTA 43071**, Inhibido.

Pseudomonas aeruginosa WDCM00025, Inhibido.

Streptococcus faecalis WDCM00210, Inhibido.

**Las colecciones TIPO prohiben el uso de su referencia por lo que indicamos la nuestra, directamente trazable a la colección TIPO.

 

PRESENTACIÓN

MEDIO DESHIDRATADO BASE Y SUPLEMENTOS.

 

NOTA

El Cefsulodin Irgasan Novobiocin Agar (CIN) es un medio selectivo para aislamiento de Yersinia enterocolítica en muestras clínicas y alimentos. Es el más idóneo para aislamiento selectivo de Y. enterocolítica. Por el sodio desoxicolato, cristal violeta e Irgasan, son inhibidas las bacterias Gram (+), algunas Gram (‑) y las enterobacterias. Sólo algúnas cepas de Citrobacter freundii, Serratia liquefaciens y Enterobacter aglomerans pueden crecer sobre CIN Agar, con un aspecto similar al de Yersinia enterocolítica.

 

SIEMBRA

Sembrar en estría para conseguir colonias aisladas Incubar a 22‑25 ºC aproximadamente durante 48 horas. Si se desea enriquecer la muestra, incubarla previamente durante 28 días a 4 ºC aproximadamente en tubos de agua peptonada tamponada.

 

INTERPRETACIÓN

Yersinia enterocolítica crece con colonias rosa‑púrpura, rodeadas de un borde transparente (colonias en «ojo de buey»). El diámetro de la colonia varía de unas cepas a otras, pero permanece constante para cepas del mismo serotipo.

CONFIRMACIÓN      

Para confirmar en menos de 4 horas Yersinia enterocolitica desde las colonias en ojo de buey en el agar CIN:

  1. Oxidasa: Negativa (-). (Para diferenciar de Aeromonas, que también puede crecer en CIN y es Positiva).
  2. Urea (Test de ureasa rápido): Positivo (+). Yersinia es una productora potente de ureasa; el viraje a fucsia ocurre en 1-2 horas si sembramos varias colonias en un microtubo con 0,5 mL de caldo Urea.
  3. Ornitina (ODC): Positiva (+, violeta). Hacer caldo ODC con Extracto de levadura 5 g/L, L-Ornitina 10 g/L, Glucosa (como disparador del metabolismo) 0,5 g/L, y Púrpura de Bromocresol como indicador 0,01 g/L, ajustar a pH final 6,0. Inocular varias colonias en un microtubo (con 0.5 ml de caldo). Cubrir el caldo con 2 ó 3 gotas de Aceite de Vaselina o Parafina estéril (la descarboxilación de la ornitina requiere condiciones de anaerobiosis)
  4. Kligler (KIA) o TSI: Lectura A/A (Pico amarillo / Fondo amarillo) debido a la fermentación de sacarosa y glucosa, sin gas y sin H2S.

Solicite precios actualizados de todos estos productos en microkit@microkit.es