Archivo de la categoría: medios de cultivo

informacion, novedades, nuevos métodos relacionados con los medios de cultivo, Microbiología de alimentos, aguas, medicamentos, cosméticos y ambiente:

Análisis microbiológicos aguas

Análisis microbiológicos aguas siguiendo métodos ISO o, si lo prefieres, siguiendo las recomendaciones de la experiencia intercomparativa

En MICROKIT hemos estado 2 décadas siendo coordinadores de intercomparación en microbiología de aguas.

Ha sido una de las mejores experiencias en las que nos hemos embarcado:

nada te hace conocer mejor los puntos críticos de los métodos oficiales y de los medios clásicos

ya que actúas como árbitro ante laboratorios de todo tipo, observando lo que hacen, cómo lo hacen y cómo mejoran al cometer fallos (a menudo con un empujoncito por nuestra parte)

En nuestro caso, nos hemos atrevido a algo más que coordinar y comparar laboratorios:

nos hemos atrevido a aconsejar mejores métodos y mejores medios de cultivo, al observar como se repetían los errores en los distintos participantes cuando empleaban métodos estándar

Es más, nos hemos atrevido a diseñar nuevos medios de cultivo cuando los errores con los clásicos eran repetitivos ronda tras ronda, e independientes de quien fuese el laboratorio que los aplicara.

De ahi han surgido:

 

1-El MugPlus (que ahora llaman CCA) para detectar y enumerar E.coli y resto de coliformes

para evitar la incertidumbre clásica de medios como el Chapman Tergitol TTC, Endo, mFC, MacConkey, EMB Levine, VRBL en la detección y recuento de E.coli y demás coliformes

https://www.microkit.es/fichas/MUGPLUS%20COLIFORM-E.COLI%20AGAR%20CCA.pdf

 

2-El YEA Nutritivo (PCA water) cromogénico para los aerobios oligotrofos del agua

para distinguir las auténticas colonias (rojas) de los artefactos (partículas de la muestra, burbujas…) y del fondo del medio o de la membrana de filtración

con el efecto colateral de permitir una visión mucho más rápida de las colonias, gracias al contraste colonia roja/medio de cultivo crema o membrana blanca; de modo que podemos contar con confianza los aerobios desde las primeras 18-36 horas, en vez de las 72 horas clásicas

https://www.microkit.es/fichas/YEA-NUTRIENT-AGAR-CROMOGENICO.pdf

 

3-El Rapid BEA para Enterococos fecales

para detectar y enumerar los enterococos fecales en sólo 18-24 horas, en vez de las 48-52 horas de los medios de cultivo clásicos (Slanetz-Bartley Agar seguido del Bilis esculina Azida Agar).

Algo fundamental sobre todo en aguas envasadas, donde el espacio de almacenamiento en manantiales de montaña es el principal problema.

https://www.microkit.es/fichas/BILE%20ESCULIN%20AZIDE%20AGAR%20(BEA)%20RAPID.pdf

 

4-El Rapid CN Agar para Pseudomonas aeruginosa junto con los tubos RAN

para acelerar la detección y recuento de P.aeruginosa en sólo 18-24 h (+ 2 h de confirmación RAN de las colonias típicas)

https://www.microkit.es/fichas/CROMOKIT%20RAPID%20CN%20PSEUDOMONAS%20AGAR.pdf

https://microkit.org/wp-content/uploads/2026/06/RAN-confirmacion-de-Pseudomonas-aeruginosa.pdf

 

5-El QPA-TSC y el MUP en goteros

para detectar, enumerar y confirmar Clostridium perfringens sin la oxigenación letal propia de la filtración de membrana y sin el despilfarro del MUP en las placas negativas de Agar TSC

https://www.microkit.es/pdf/Quanti-PA-Clostricult-2022.pdf

https://microkit.org/producto/mup-metil-umbeliferil-phosfate-reactivo-para-la-confirmacion-de-clostridium-perfringens-iso-141892017/

 

6-Los medios para colífagos

aunque no los inventamos nosotros, si que fuimos los primeros en formularlos según la Norma ISO 10705-2001, 22 años antes de que fuese Ley (RD 3-2023), lo que nos hace ser los pioneros que mejor conocen los puntos críticos en su fabricación:
MSA https://www.microkit.es/fichas/BACTERI%C3%93FAGOS-COL%C3%8DFAGOS%20SCHOLTEN%20AGAR.pdf?v=2025

MSB https://www.microkit.es/fichas/BACTERI%C3%93FAGOS-COL%C3%8DFAGOS%20SCHOLTEN%20BROTH.pdf?v=2025

ssMSA https://www.microkit.es/fichas/BACTERI%C3%93FAGOS-COL%C3%8DFAGOS%20SCHOLTEN%20SEMISOLID.pdf?v=2025

 

Así como todas las cepas para su control de calidad y empleo, en el formato más estable y preciso del mercado

https://www.microkit.es/pdf/CEPAS-CUANTITATIVAS-2022.pdf

 

Y un largo etc.

 

El doble papel de creadores de medios de cultivo, kits y hasta procedimientos analíticos nuevos, por un lado

y de coordinadores de ensayos intercomparativos, por otro lado,

nos da la visión del águila, lo que nos permite evitar el hándicap común de «los árboles no te dejan ver el bosque»

típico de los analistas que no coordinan inters o de los coordinadores de inters que no analizan muestras ni diseñan medios.

Consulte directamente con el evaluador de nuestros servicios intercomparativos y creador de estos múltiples medios de cultivo, sobre los puntos críticos y sus soluciones del microorganismo que más se le resiste, en: consultastecnicas@microkit.es

Haga sus pedidos de las soluciones arriba indicadas en: pedidos@microkit.es

Análisis microbiológicos alimentos

Análisis microbiológicos alimentos siguiendo métodos ISO o, si lo prefieres, siguiendo las recomendaciones de la experiencia intercomparativa

En MICROKIT llevamos camino de 3 décadas siendo coordinadores de intercomparación en microbiología de alimentos.

Ha sido una de las mejores experiencias en las que nos hemos embarcado:

nada te hace conocer mejor los puntos críticos de los métodos oficiales y de los medios clásicos

ya que actúas como árbitro antes laboratorios de todo tipo, observando lo que hacen, cómo lo hacen y cómo mejoran al cometer fallos

En nuestro caso, nos hemos atrevido a algo más que coordinar y comparar laboratorios:

nos hemos atrevido a aconsejar mejores métodos y mejores medios de cultivo, al observar como se repetían los errores en los distintos participantes cuando empleaban métodos estándar

Es más, nos hemos atrevido a diseñar nuevos medios de cultivo cuando los errores con los clásicos eran repetitivos ronda tras ronda, e independientes de quien fuese el laboratorio que los aplicara.

De ahi han surgido:

 

1-El Buffered Peptone Neutralizing Water (BPNW)

para minimizar el efecto matriz provocado por los conservantes, saborizantes y metabolitos de la microbiota acompañante,

con una diferencia de casi el 30% de más laboratorios que obtienen la excelencia (ausencia total de falsos negativos) cuando se usa BPNW en vez de las aguas de peptona tradicionales. Casi 1/3 más de laboratorios con excelencia, a favor del BPNW…

…y con una reducción de falsos negativos entre los usuarios de BPNW a la mitad, respecto a los usuarios de caldos peptonados no neutralizantes.

https://www.microkit.es/fichas/BUFFERED%20PEPTONE%20NEUTRALIZING%20WATER.pdf?v=2023

 

2-El PCA cromogénico

para distinguir las auténticas colonias (rojas) de los artefactos (partículas de muestra, burbujas…)

con el efecto colateral de permitir una visión mucho más rápida de las colonias, gracias al contraste colonia roja/medio de cultivo crema; de modo que podemos contar con confianza los aerobios desde las primeras 18-36 horas, en vez de las 72 horas clásicas

https://www.microkit.es/fichas/PLATE%20COUNT%20AGAR%20CROMOG%C3%89NICO.pdf?v=2025

 

3-El Rapid Sabouraud (RYM Agar)

para detectar y enumerar los hongos (levaduras y mohos) desde las primeras 18-36 horas, en vez de los 5 días de los medios de cultivo clásicos (Sabouraud, DRBC, DG18, OGYE, YGC…).

Otro punto crítico en el recuento de hongos es no agitar inmediatamente antes de cada dilución o siembra, ya que sus esporas flotan en cuestión de segundos

y si no agitamos bien justo antes de tomar una alícuota del centro del tubo, estamos tomando una muestra nada representativa

https://www.microkit.es/fichas/RAPID%20SABOURAUD%20RYM%20AGAR.pdf

 

4-El Baird Parker Mannitol Yema Agar (BPMY) 

para eliminar esa aberrante proporción de falsos positivos y de falsos negativos del Baird Parker, que llevan a afirmar que es más fácil acertar con una moneda a pares o nones que gastando tiempo y dinero en un análisis clásico

https://microkit.org/producto/baird-parker-mannitol-bpm-agar/

y el reactivo FF para saber de inmediato si la colonia típica es realmente de Staphylococcus aureus

https://microkit.org/producto/baird-parker-mannitol-bpm-agar-copia/

 

5-El Rhamnosa/Xylosa Broth

para distinguir de golpe si las colonias crecidas en O&A Agar cromogénico son de Listeria monocytogenes o de L.ivanovii, y ahorrarnos galerías de identificación con montones de pruebas redundantes que no diferencian estas dos cepas, las únicas que pueden confundirse entre sí

https://www.microkit.es/fichas/LISTERIA%20RHAMNOSE-XYLOSE%20BROTH.pdf

 

6-EL MRS Agar cromogénico

para acabar de una vez con esa inmensa proporción de falsos positivos de aerobios que no son lactobacilos

https://www.microkit.es/fichas/CROMOKIT%20Lactobacillus%20Agar.pdf

Y un largo etc.

El doble papel de creadores de medios de cultivo, kits y hasta procedimientos analíticos nuevos, por un lado

y de coordinadores de ensayos intercomparativos, por otro lado,

nos da la visión del águila, lo que nos permite evitar el hándicap común de «los árboles no te dejan ver el bosque»

típico de los analistas que no coordinan inters o de los coordinadores de inters que no analizan muestras ni diseñan medios.

Consulte directamente con el evaluador de nuestros servicios intercomparativos y creador de estos múltiples medios de cultivo, sobre los puntos críticos y sus soluciones del microorganismo que más se le resiste, en: consultastecnicas@microkit.es

Haga sus pedidos de las soluciones arriba indicadas en: pedidos@microkit.es

 

MICROBIOLOGÍA DE PRODUCTOS COSMÉTICOS 5 y los mejores medios para patógenos cosméticos

Medios de cultivo realmente diseñados para los 5 patógenos más buscados en cosméticos, sin los falsos negativos de los medios estándar

medios de cultivo para cosméticos

Medios de cultivo: ¿tradición o certeza?

Lo que voy a contarte hoy puede sorprenderte aún más que todo lo que hemos visto en semanas anteriores sobre cómo mejorar la microbiología de cosméticos.

Hoy te invitamos a dejar a un lado los esquemas tradicionales preconcebidos y abrirte a un enfoque diferente: el que funciona.

Como dicen los maestros zen: “si quieres tomar un té, vacía tu taza, porque si ya está llena, los nuevos conocimientos no podrán entrar”.

¿Sabías que los medios de cultivo que hoy recogen las Normas ISO no se eligieron por ser los más eficaces ni los más innovadores?

En realidad, se seleccionaron simplemente porque llevaban más de un siglo utilizándose en otros ámbitos y eran los más conocidos para quienes redactaron esas normas.

Como si, durante los ultimos 100 años, todo el esfuerzo de investigación para facilitar la vida a los laboratorios de microbiología cosmética… no hubiera existido.

¿De verdad ya estás usando las herramientas adecuadas para tu trabajo actual?

Veamos algunos ejemplos:

 

E. coli → Mac Conkey Agar

¡Medio del siglo XIX, diseñado para microbiología clínica y heces! Desde luego, nunca fué diseñado para matrices inhibitorias como son los cosméticos…

¡Tan inhibitorio que, en intercomparaciones, cuando diferentes cepas de E. coli están presentes, la mayoría de participantes que lo emplean, obtienen falsos negativos!

⇒ Existen alternativas mucho más robustas para cosmética, como nuestro medio creado en 1995 y hoy obligatorio por Ley en aguas,

con el que los participantes que lo emplean en esos mismos intercomparativos de microbiología cosmética sí que detectan la presencia de las diferentes cepas de E.coli.

⇒ MUGPLUS Agar Coliform & E. coli (CCA) colonias azules (E.coli) y rojas (demás coliformes)

también para las células estresadas.

https://microkit.es/fichas/MUGPLUS-COLIFORM-E-COLI-AGAR-CCA.pdf

Staphylococcus aureus → Baird Parker

¡Medio del siglo XX diseñado para alimentos (no para matrices inhibitorias)!

¡La Farmacopea lo rechazó al año siguiente de aceptarlo! ¿Por qué será?

¡Incluso la última ISO de alimentos reconoce su inconsistencia: las colonias pueden ser negras con halo, negras sin halo, negras sin reborde… o directamente no ser negras!

¡En intercomparaciones, la probabilidad de acertar usando este medio es casi la misma que apostar “pares o nones”!

⇒ Todo un delito, habiendo medios diseñados para cosmética que sí obtienen resultados coherentes: Baird Parker Mannitol (BPM) y Reactivo FF (Fosfatasa Fluorescente, mucho más certera que el test de la coagulasa).

https://microkit.org/producto/baird-parker-mannitol-bpm-agar/

Pseudomonas aeruginosa → Cetrimida Agar, el único medio clásico OK

* Aquí sí que teníamos ya el medio adecuado: Agar Cetrimida (colonias verde-amarillas-azules).

* La única recomendación es no incubar a 42 ºC, como dicen los protocolos ultra-inhibitorios de microbiología clínica, sino a 30–37 ºC, más propios en microbiología de letárgicos en cosméticos.

http://Cetrimida Agar https://microkit.es/fichas/CETRIMIDE-AGAR.pdf

Candida albicans → Sabouraud Dextrose Agar

¡Otro medio del siglo XIX! Y diseñado para dermatología clínica, nunca para cosméticos.

Ha habido mucho I+D desde entonces…

¡Prácticamente cualquier levadura crece igual que C. albicans, lo que obliga a confirmaciones innecesarias y al uso del microscopio según el obsoleto protocolo ISO 18416!

⇒ Existen alternativas diferenciales que ofrecen mucha más certeza:
BIGGY Nickerson Candida Agar, un clásico en la búsqueda concreta de Candida que no pasa de moda (colonias pardas)

https://microkit.es/fichas/BIGGY-NICKERSON-CANDIDA-AGAR.pdf

⇒ O incluso el mismo RYM Agar que comentábamos en la pasada entrada de micro cosmética para recuento de hongos, también diferencia bien C.albicans por estría tras enriquecimiento en otra placa adicional (por sus características colonias azul celeste)

https://microkit.es/fichas/RAPID%20SABOURAUD%20RYM%20AGAR.pdf

En RYM Agar, Candida albicans crece con colonias azul celeste-verdoso suave característico en 18 h (en la foto, en 48h, son más grandes que otras levaduras, que además son de otros colores)

En este caso de C.albicans, no recomendamos los medios cromogénicos, ya que aunque han sido diseñados  recientemente, lo han hecho para microbiología clínica, un campo con idiosincrasia muy distinta a la de los inhibitorios cosméticos.

 

Burkholderia cepacia → El gran ausente en ISO durante más de una década

¡Paradójicamente, más de una década después de salir las primeras, todavía no existe una Norma ISO para este patógeno!

¡a pesar de ser el que más retiradas de mercado provoca en cosmética (a nivel mundial)!

⇒ Entre los tres medios habituales (BCSA, OFPBL y BCPT), sólo la versión cromogénica de este último ofrece la certeza necesaria (colonias rojas, medio virado de salmón a fucsia):

https://www.microkit.es/fichas/CROMOKIT-BURKHOLDERIA-Agar.pdf

Conclusión

Las normas ISO siguen ancladas en medios de cultivo de un pasado muy remoto, pensados para contextos clínicos o alimentarios (con células en crecimiento exponencial),

incluso farmacéuticos, antagónicos a las necesidades de las células aletargadas/estresadas propias de los cosméticos.

La buena noticia es que hoy existen medios específicos, validados y diseñados para la realidad de la microbiología cosmética,

que han demostrado en intercomparación aportar lo más valioso: la certeza en tus resultados: 95-100% del rendimiento frente al 75% de los clásicos.

Todos ellos validados en cosméticos.

Incluso ya hay medios que detectan el resto de patógenos que han provocado retiradas de mercado de cosméticos, sin hacerte perder tu valioso tiempo. Lo veremos en la ultima entrega.

¡Hasta la próxima y ultima entrega de 6 sobre micro cosmética a primeros de Julio de 2026!

MUP para Agar TSC en goteros: del derroche habitual a la solución inteligente

MUP en goteros para Agar TSC: del derroche habitual del reactivo en el medio, a la solución del gotero para aplicar sólo en caso positivo

MUP en goteros para Agar TSC para confirmar Clostridium perfringens por fluorescencia bajo luz UVA de 366 nm

La aceptación oficial del MUP como método equivalente, publicado en enero de 2023 en el BOE-Aguas de consumo humano 10-1-2023 (Real Decreto 3-2023),

fué un enorme avance para la confirmación de colonias típicas de Clostridium perfringens sin necesidad de arriesgarse con los reactivos clásicos cancerígenos.

El problema de este reactivo es que caduca en 1-2 semanas una vez se hidrata,

por lo que las placas preparadas no son buena idea si se desea detectar las auténticas colonias sin obtener falsos negativos.

Conscientes del problema, hemos comprobado si el reactivo MUP, añadido después a la placa, cuando ya han crecido colonias sospechosas,  funciona lo suficientemente rápido,

y las noticias son excelentes:

añadida una gota del reactivo a la concentración adecuada, tras hidratarlo en agua,

las colonias de Clostridium perfringens emiten la fluorescencia azulada en una simple cuestión de segundos, máximo 1 minuto.

Y no es una fluorescencia sutil de fondo, es una fluorescencia tremendamente intensa en las colonias, mucho más intensa que la propia fluorescencia de base del reactivo MUP: inconfundible

De modo que podemos comercializar el reactivo en gotero, que empieza a contar sus 1-2 semanas de caducidad sólo una vez lo hidratamos con 1 mL de agua estéril:

MUP en goteros para Agar TSC

Mientras mantengamos los goteros sin hidratar y en el congelador, seguirán ofreciendo esos 2 años de caducidad de origen.

Esto supone un inmenso ahorro, ya que no estamos tirando MUP en todas esas placas de TSC-MUP Agar que darán negativo, sin crecimiento colonial típico.

MICROKIT es el primer laboratorio que presenta el reactivo MUP en gotero para hidratar cuando se necesite, y acto seguido añadir una gota a cada colonia sospechosa.

El gotero de 1 mL permite la confirmación inmediata de 25 colonias sospechosas en TSC Agar… a lo largo de 1-2 semanas.

Si no ha acabado el contenido del gotero en una semana, controle que sigue funcionando una vez ha transcurrido esa semana desde que lo hidrató, con una cepa de C.perfringens,

por ejemplo con las robustas lentículas de MICROKIT: use la WDCM 00007 hemolítica

o bien la WDCM 00174

Puede prolongar la caducidad del gotero hidratado, mientras este control positivo de cepa, proporcione un resultado claramente positivo:

fluorescencia rápida y potente bajo luz UVA de 366 nm (la misma que se emplea en Pseudomonas aeruginosa, en E.coli o en Legionella spp)

 

Presentación del MUP en goteros

El kit contiene 5 ó 24 goteros, para elegir uno u otro en función de las veces que a cada laboratorio le salen colonias sospechosas en un año en TSC Agar. Ref: KMTMUP5 y KMTMUP24.

El kit de 24 goteros está pensado para laboratorios que obtienen al menos alrededor de 300 colonias sospechosas al año, para 2 años (unas 5 ó 6 colonias sospechosas cada semana)

Dentro del kit hemos incluido el agua destilada estéril necesaria para hidratar el MUP contenido en los goteros, asi como las jeringas estériles para facilitar esta labor.

¡No hidrate todos los goteros, sólo el que necesite para esta semana!

Así no acortará su vida útil (de 2 años desde fabricación) a las 1-2 semanas que funciona bien una vez lo hayamos hidratado.

 

Emplee en otros productos MICROKIT la espectacular bajada de precio que representa este cambio de presentación:

-el MUP para añadir al medio TSC al autoclavarlo, cuesta cerca de 175 €/4 litros de medio final, con lo que hasta ahora se podía preparar 160-200 placas ¡cerca de 1 € por Placa!,

incluso en toda esa mayoría de placas donde luego no va a crecer ni una sola colonia sospechosa…

-el MUP en kit de 24 goteros cuesta un precio inferior a esos 175 €, para confirmar nada menos que 600 colonias sospechosas, durante uno o incluso dos años enteros

el cálculo del ahorro es fácil:

¿cuántas placas de TSC Agar con MUP consume al año?

¿200? ¡Son 200 € derrochados!

¿3.000? ¡Son 3.000 € derrochados!

¿y cuántas colonias sospechosas obtiene al año? Con un kit de 5 goteros de MICROKIT va  a tener suficiente para confirmar 125 colonias sospechosas y con un kit de 24 goteros, podrá confirmar 600 colonias

No hace falta pensarlo mucho…

Y nadie puede decirle que el de MICROKIT es un método alternativo, sólo está usando el mismo reactivo MUP que ha sido aprobado, por su equivalencia con los reactivos clásicos de la fosfatasa ácida,

pero sin derrocharlo en esa inmensa mayoría de placas negativas:

añadiéndolo a las colonias, en vez de añadirlo a las placas.

MICROBIOLOGÍA DE AGUAS ENVASADAS-5 y el recuento de aerobios

MICROBIOLOGÍA DE AGUAS ENVASADAS-5 y el recuento de aerobios

Recuentos de aerobios por inclusión en masa en Agar Nutriente YEA (ISO 6222) sin tener que perder el tiempo calentando y enfriando agares

Una vez más, te invitamos a dejar atrás los esquemas tradicionales y abrirte a un enfoque diferente:

aquel que realmente puede ayudarte a optimizar tus análisis de recuento de aerobios.

Recuerda la filosofía zen:

“Si no vacías tu taza de conocimientos, no podrás disfrutar de las consecuencias de tomarte otro té.”

Ven con nosotros, de la mano de la innovación. Lo que te contaremos hoy seguramente te hará reflexionar…

 

La catarsis del agar-agar

Como sabrás, el agar-agar proviene de unas algas rojas recolectadas en el Cantábrico español,

utilizadas por la mayoría de fabricantes de medios de cultivo del mundo.

(Aunque algunos productores del extremo oriente emplean un sucedáneo alimentario derivado de otra alga, lo cual genera falsos negativos en las siembras en masa de microbiología,

al sembrar-solidificar a una temperatura más elevada: 55ºC en vez de 47ºC).

Se bien de lo que hablo. Antes que microbiólogo fui biólogo marino, especialista en algas.

Durante años nos han enseñado que el agar-agar microbiológico es un excelente gelificante

porque, siendo inerte para los microorganismos (a diferencia de otros, como la gelatina),

solidifica al enfriarse a 45 °C, lo que aparentemente lo convierte en la base ideal de la microbiología.

Sin embargo, lo que rara vez se percibe es que esto implica una gran desventaja práctica:

cada vez que preparamos medios, debemos hervir y enfriar los agares, perdiendo fácilmente (o retrasándonos) una hora de trabajo diario.

A pesar de nuestra experiencia con el agar-agar, nos costó 23 años desarrollar el gelificante que soñábamos y que aún no existía:

transparente, no comestible para las bacterias, libre de inhibidores que les afectasen y, además, capaz de gelificar a temperatura ambiente.

En 2012, finalmente lo conseguimos. Lo llamamos “hidragar”.

Este avance nos permitió crear tanto los Quanti-P/A (de los que hablamos la semana pasada para Clostridios),

como las DryPlates® (de las que hablaremos hoy, para recuento de aerobios), sin necesidad de calentar ni enfriar agares.

 

DryPlates®: ¡de la muestra a la estufa en sólo 10 segundos!

Actualmente existen diversas marcas de placas deshidratadas procedentes de EE. UU, Japón y China.

Desconozco si a ellos también les llevó 23 años encontrar la fórmula adecuada, pero para nosotros ha sido todo un orgullo lograrlo aquí,

con los limitados recursos de una microempresa (PIME).

La gran ventaja del medio de cultivo con hidragar —nuestras DryPlates®—, para una siembra en masa, es su simplicidad operativa:

Sólo necesitas añadir 1 mL de muestra de agua al medio estéril (está incluido en un disco difusor textil), tras colocarlo en la placa Petri especial (cassette) y llevarlo a incubar.

→ Sin calentar, → Sin enfriar, Sin tener que mezclar, → Sin esperar a que solidifique.

En resumen:

-la filtración no viene a cuento en muestras de sólo 1 mL;

-y una siembra en masa tradicional, que puede tomar casi una hora (si no más, entre calentar, enfriar y dejar solidificar),

con DryPlates® el proceso se reduce a menos de 10 segundos.

Con resultados incluso mejores, dado que los aerobios no sufren el shock térmico de 47ºC del agar-agar.

 

La diferencia clave de nuestras DryPlates® sobre las demás placas deshidratadas

En el caso del recuento de aerobios en aguas, la principal diferencia entre nuestras DryPlates® y las demás placas deshidratadas disponibles en el mercado

es el medio de cultivo empleado:

Nosotros utilizamos el Agar Nutritivo al Extracto de Levadura (YEA),

conforme a la ISO 6222, que es la norma oficial para recuento de aerobios en análisis de aguas.

Las otras marcas, en cambio, usan PCA (Plate Count Agar),

ya que se enfocan exclusivamente en el sector alimentario,

aunque algunos de sus distribuidores pretendan hacer sus pinitos en aguas.

¿Y cuál es la diferencia entre YEA y PCA?

El YEA —también conocido como PCA-Water— es PCA sin azúcares, formulado para detectar los aerobios propios de las aguas,

una matriz oligotrófica,

https://microkit.es/fichas/YEAST%20EXTRACT%20AGAR%20YEA-NUTRIENT%20AGAR%20(PCA%20WATER).pdf?v=2025

https://microkit.es/fichas/YEA-NUTRIENT-AGAR-CROMOGENICO.pdf

a diferencia de los alimentos, que son ricos en nutrientes y por eso sus bacterias no entran en letargia con sus azúcares.

Por eso, nuestras DryPlates® para análisis de aguas se denominan “DryPlates®-TC Water”, para distinguirlas de:

* DryPlates®-TC, para aerobios en alimentos (con PCA).

⇒ Las DryPlates®-R2, para aerobios oligotróficos extremos en aguas farmacéuticas (con R2A).

* DryPlates®-TSA, para aerobios en cosméticos (con TSA Maxim Cromogenic Agar).

 

¿Por qué el YEA en DryPlates® es tan importante?

Las DryPlates®-TC Water no son sólo un nuevo formato:

representan un cambio de paradigma en la forma de trabajar en microbiología del agua con el recuento de aerobios en 1 mL de muestra.

Con ellas eliminamos los pasos innecesarios, reducimos el riesgo de errores, ahorramos energía, tiempo y recursos, y ganamos en certeza, estandarización y comodidad.

Después de más de dos décadas de I+D, podemos decir orgullosos que las DryPlates®-TC Water simbolizan lo mejor de la ciencia aplicada:

la solución más sencilla y única para un problema enquistado,

creada con rigor, pasión y la convicción de que siempre hay una manera mejor de hacer las cosas.

Porque la microbiología no evoluciona cuando repetimos lo de siempre, sino cuando nos atrevemos a reinventar el método.

¡Pruébalas! Experimenta lo que es pasar de 1 h a… ¡10 segundos!            

No te pierdas el video que lo explica:

https://www.youtube.com/watch?v=vkdRD5ulpSY&t=165s

¡Hasta la próxima entrega de micro de aguas envasadas a primeros de julio de 2026!

36-48 horas es el rango correcto de detección de patógenos en cosmética

36-48 horas es el rango correcto de enriquecimiento en la detección de patógenos en microbiología de cosméticos: ni más, ni menos

36-48 horas y la micro cosmética

Hace ya años que MICROKIT demostró que la curva de crecimiento microbiano es crítica en microbiología de cosméticos…

…hasta el punto que si enriquecemos menos de 36 h, no detectamos ni Candida albicans ni Burkholderia cepacia,

pero si enriquecemos más  de 48h, no detectamos Pseudomonas aeruginosa, E.coli ni Staphylococcus aureus, 

Así de simple y así de complicado

 

Esto tiene una clara repercusión:

Si empezamos los análisis microbiológicos de cosméticos en jueves o en viernes, tendríamos que ir al laboratorio a estriar en las placas selectivas en sábado o en domingo, respectivamente.

Si queremos detectar cuando haya problemas, no podemos tomarnos algo así a la ligera.

Todos hemos oído hablar de la gráfica de crecimientos microbianos, pero pocos la aplican adecuadamente; y si siembras letárgicos o moribundos, no vas a detectar lo que haya:

 Log del número
 de bacterias viables
   ▲
   │
   │                                   (3) MESETA ESTACIONARIA
   │                                    _______________
   │                                   /               \
   │                                  /                 \  (4) COLAPSO DEGENERATIVO por
   │    (2) ACTIVACIÓN EXPONENCIAL   /                   \     agotamiento de nutrientes
   │        a causa de la correcta  /                     \    y aumento de metabolitos
   │        neutralización y los   /                       \
   │        nutrientes.           /                         \
   │                             /                           \
   │                            /                             \
   │                           /                               \
   │  (1) LETARGIA en la      /                                 \
   │      muestra inhibitoria/                                   \   (5) DESTRUCCIÓN CELULAR
   │  ______________________/                                     \      IRREVERSIBLE
   │                                                               \________________________
   └────────────────────────────────────────────────────────────────────────────────────────► Tiempo
   0h                        12h              24h              48h       (Más de 48h)

 

En definitiva: son 36-48 horas y la micro cosmética

Una vez has sembrado el caldo de enriquecimiento el lunes, martes o miércoles, sólo tienes un rango de 12 horas para estriar el miércoles, jueves o viernes respectivamente: 12 h

es decir, si por ejemplo empezaste el análisis un lunes a las 13h, has de estriar el caldo enriquecido, en las placas selectivas,  sí o sí, el miércoles entre las 7h y las 19h

36-48 horas y la micro cosmética

 

El poder de los medios específicamente diseñados en el siglo XXI para microbiología cosmética:

Y descuida, si usas el más moderno, completo y universal de los caldos neutralizantes para enriquecimiento en cosméticos (que no es el Eugon, ni tampoco el Letheen),

https://www.microkit.es/fichas/LPT%20%20NEUTRALIZING%20BROTH%20INCOLORO.pdf?v=072023

una sola ufc de por ejemplo E.coli, en 10 gramos de muestra de tu cosmético, se podría convertir en 36 h a 35ºC  (en teoría, si no faltasen nutrientes ni se generasen metabolitos inhibitorios), en 3,24x10E32 y en 48 h a 35ºC en 2,23x10E43

Como el cuento del que se hizo rico apostando que no había trigo suficiente en el mundo para rellenar en la primera casilla de un tablero de ajedrez 1 grano, en la segunda 2, en la tercera 4…

 

Todo depende del tamaño celular

Hay que tener en cuenta que una colonia normal en un agar normal suele tener unas 10E7-10E9 células,

dependiendo del tamaño celular, por ejemplo una célula de E.coli, mide 2 micras, las células de  Staphylococcus aureus, de Pseudomonas aeruginosa o de Burkholderia cepacia miden menos de 1 micra en su zona más estrecha, pero una de Candida albicans mide entre 6 y 10 micras.

Asi que hay diferencias significativas de tamaño, que operan para que ese rango de 10E2 (de 10E7 a 10E9) células según cual sea la especie, sea tan fácil de percibir

En definitiva, si quieres detectar adecuadamente has de tener en cuenta muchas cosas que casi nadie te suele revelar. Aquí seguimos contando muchos secretos para quien nos quiera leer. El de hoy ha sido: 36-48 horas y la micro cosmética

MICROKIT PREMIA A SUS CLIENTES: LA TAZA FRIKIQUECA

MICROKIT PREMIA A SUS CLIENTES: LA TAZA FRIKIQUECA, PARA LOS ENAMORADOS DE LA MICROBIOLOGÍA QUE HASTA TOMAN SU CAFE RODEADOS DE MICROBIOS

MICROKIT creó desde 2012 la tradición de regalar a sus clientes peluches microbianos

Dada la escasez actual de los mismos tanto en su origen (USA) como en sus dos delegaciones europeas,

ya que si, por ejemplo, pedimos 50 de cada uno de los 19.8 tipos, nos llegan 10 de sólo 3 tipos, y encima 5 meses después de pedirlos…

Decidimos pedirles las tazas que empezaron a elaborar después:

Pero el problema de servicio es el mismo, después del primer envío, ha sido un martirio esperar nuevos pedidos de estas tazas.

Por todo ello, hemos decidido hacer aquí en España nuestra propias tazas Frikiquecas, con imágenes de los peluches de los 19 microorganismos que más nos afectan, emuladas por la IA «Nanobanana»:

Así, de nuevo podremos cumplir la promesa de que todo pedido directo a MICROKIT en medios, kits, cepas… superior a 500 €,

llevará de regalo una de estas simpáticas tazas

Se excluyen los pedidos realizados a través de distribuidores,

porque muchos de ellos se quedaban los peluches en vez de dárselos a los usuarios finales de nuestros productos,

dejándonos en mal lugar.

Colecciónelas, para su laboratorio y cuando tenga más de las necesarias, lléveselas también para su casa.

Si es una gran empresa, con almacenes independientes, y no abre Ud. mismo los paquetes de los pedidos que nos realiza, vigile que cada taza acabe en sus manos.

Muchos clientes se quejan de que no les llegan, pero es que muc.jhas salen de MICROKIT y no llegan al laboratorio.

Cuando tenga las suficientes tazas para todo el personal del laboratorio, puede regalarlas también al personal de su almacén.

Solicite su taza gratuita con cada pedido superior a 500 € en: pedidos@microkit.es

Estamos deseando que todos los laboratorios tengan tantas tazas frikiquecas que, si se les rompe una lavándola, en vez de intentar pegarla hagan otro pedido a MICROKIT y sigan sonriendo cada vez que las ven.

Porque saben que enseguida les llegará otra, y otra, y otra ¡por fin sin restricciones!

¿Sabía que hasta hicimos un video de los Frikiquecos?

Disfrute durante 4 minutos de estos simpáticos personajes, ya ligados para siempre a la imagen de MICROKIT:

https://www.youtube.com/watch?v=T5wdFirBySE&t=9s

Aunque muchos de los peluches microbianos que aparecen en él son falsos (es lo que tiene la IA: imaginación no le falta) también aparecen los de siempre.

MICROBIOLOGÍA DE ALIMENTOS 4 Y EL PROBLEMA DE LAS ENTEROBACTERIAS

MICROBIOLOGÍA DE ALIMENTOS 4 Y LAS ENTEROBACTERIAS: EL PROBLEMA DE SU RECUENTO EN AGAR VRBG ¿MEJORAR MEDIOS O MEJORAR PARÁMETRO?

MAIL 4 ALIMENTOS:                                                           CERTEZA EN TUS RESULTADOS

 

¿Por qué en el recuento de Enterobacterias, a veces obtengo menor resultado que en el recuento de Coliformes, cuando eso es una incongruencia?

Hoy te invitamos a dejar a un lado los esquemas tradicionales preconcebidos y abrirte a un enfoque diferente: el que funciona. Como dicen los maestros zen: “si quieres tomar un té, vacía tu taza, porque si ya está llena, los nuevos conocimientos no podrán entrar”.

 

La paradoja del recuento de Enterobacterias: lo que nos enseñan 26 años de experiencia en intercomparación

Tras más de 26 años coordinando el servicio intercomparativo Seilalimentos, hemos aprendido numerosas lecciones curiosas, entre ellas lo que llamamos “la paradoja del recuento de Enterobacterias”.

Dependiendo de la matriz alimentaria y de las cepas utilizadas en el inóculo, muchos laboratorios obtienen resultados inesperados:

* Recuentos más altos de coliformes en VRBL que de Enterobacterias en VRBG

(siendo el mismo medio, en el que sólo cambia la lactosa de los coliformes por la glucosa de las enterobacterias)

* Recuentos más altos de E. coli que de coliformes.

En teoría, esto no debería ocurrir, porque:

* Todos los coliformes son Enterobacterias, pero no todas las Enterobacterias son coliformes. Por lo tanto, debería haber siempre igual o mayor número de Enterobacterias que de coliformes.

* E. coli es el coliforme por excelencia, pero no todos los coliformes son E.coli, por lo que nunca debería aparecer E. coli en mayor número que los coliformes totales.

¿Qué nos dicen estas paradojas?

A quienes llevamos décadas enfrentándonos a este tipo de resultados, lejos de sorprendernos, nos estimulan a buscar las causas y, sobre todo, las soluciones a estas paradojas.

La explicación está en la imperfección de los medios de cultivo (y más aún cuando se emplean métodos indirectos, que siempre son menos robustos que el medio de cultivo). Si los medios fuesen tan fiables como creemos, estas incoherencias simplemente no existirían.

El Agar VRBG, aunque imperfecto, como acabamos de ver, sigue siendo el medio de referencia (y no se ha conseguido mejorar) para un grupo tan amplio, artificial y heterogéneo como son las Enterobacterias —un grupo definido por el ser humano, más que por una realidad biológica, genética o filogenética concreta—.

 

Innovación para mayor coherencia

En este contexto, en MICROKIT hemos trabajado en alternativas más prácticas y coherentes:

* 1-DryPlates®-ETB:

reproducen los resultados del VRBG clásico, pero sin las incomodidades del polvo: la esterilización, la siembra en masa o la doble capa (y en este medio, además, ese olor repugnante a bilis que desprende el polvo).

En apenas 10 segundos de trabajo, se obtienen los mismos resultados, con mayor comodidad y seguridad, y sin tener que respirar un polvo que provoca arcadas.

Las placas deshidratadas de MICROKIT ofrecen los recuentos de Enterobacterias más cercanos a la realidad y con las colonias más similares a las del medio VRBG en su versión clásica.

https://www.microkit.es/fichas/Dry-Plates-ETB-Prospecto.pdf

* 2-Ecogránulos:

Otra opción para no respirar ese horrible polvo es usar el medio deshidratado VRBG en su versión granulada que, en breve, vamos a poder ofrecer a un precio similar a su versión en polvo: https://www.microkit.es/fichas/VIOLET-RED-BILE-GLUCOSE-AGAR-VRBG-granulado.pdf

* 3-Agar MugPlus (y su versión en DryPlates®-EC):

nuestro segundo medio cromogénico, y el primero en éxito, creado desde finales del siglo pasado (1995).

Los laboratorios que lo emplean en Seilalimentos —ya sea en formato preparado, deshidratado o en DryPlates®-EC— obtienen resultados mucho más coherentes y más cercanos al valor inóculo y al valor consensuado,

en comparación con quienes utilizan VRBL para coliformes o TBX para E. coli, u otras placas deshidratadas.

https://www.microkit.es/fichas/MUGPLUS%20COLIFORM-E.COLI%20AGAR%20CCA.pdf

Agar MugPlus: Colonias azules: E.coli; colonias rosas: demás coliformes; resto de colores (verde, amarillo, crema…): acompañantes que no se deben incluir en el recuento de coliformes. Los coliformes son la suma de colonias azules y rosas. Ese numero a menudo es más cercano al número real de enterobacterias, que el numero de colonias obtenidas en VRBG

 

No es ninguna aberración:

Lo mismo que tradicionalmente el famoso MacConkey Agar se emplea para Enterobacterias cuando en realidad es un medio para coliformes (porque su fuente de carbono es la lactosa, no la glucosa)

https://www.microkit.es/fichas/Mac%20CONKEY%20AGAR.pdf

¿por qué no podemos usar un medio como el Agar MugPlus, en el que, cuando sumas las ufcs del inóculo de Enterobacterias, en servicios intercomparativos de inóculos estabilizados (como Seilalimentos),

el resultado en colonias es más cercano a esa realidad, que el resultado en colonias del VRBG?

En microbiología lo importante es la práctica, no la teoría.

 

Cómo abordar la incoherencia en los informes

Estas dos paradojas nos enseñan una lección clave: en nuestros PRTs de análisis y en los informes analíticos, debemos incorporar un criterio de corrección para mantener la coherencia:

* Si el número de E. coli supera al de coliformes, ajustar los coliformes al menos al mismo valor que E. coli.

* Si el número de coliformes supera al de Enterobacterias, ajustar las Enterobacterias al menos al mismo valor que los coliformes.

De no hacerlo, corremos un riesgo real: que alguien detecte la inconsistencia y se cuestione la credibilidad de nuestros resultados. No podemos aceptar sin más las limitaciones de los medios de cultivo, sino reconocerlas y corregirlas para garantizar informes coherentes.

Porque en microbiología no se trata sólo de contar colonias, sino de ofrecer certeza, fiabilidad y credibilidad. Y esa es la verdadera diferencia entre un laboratorio normal, que simplemente analiza… y uno que marca la diferencia.

 

Aprovechamos para indicar aquí otro tema muy importante en alimentos:

https://www.microkit.es/pdf/Listeriswabs-green-2021.pdf

Si desea conocer mejor todas estas soluciones en el recuento de Enterobacterias (DryPlates®-ETB, medio deshidratado en Ecogránulos, Agar MugPlus) solicite sus folletos técnicos y sus precios actualizados en microkit@microkit.es

¡Hasta la próxima entrega de microbiología alimentaria a finales de Junio de 2026!

Kit detección E.coli alimentos

Kit detección E.coli alimentos: mitos y leyendas acerca de E.coli y kits adecuados para detectarlo con certeza

 

El problema generado por no saber donde estamos

Existe una confusión provocada por ciertos proveedores de las zonas templadas (sobre todo centroeuropa y USA), que generan una carencia de análisis rigurosos de E.coli en alimentos en algunas fábricas:

han desarrollado kits para detectar las cepas patógenas (enterohemorrágicas, verotoxigénicas, VTEC) de E.coli, en vez de las cepas comunes de E.coli, que son las que se emplean de toda la vida como indicador de contaminación de los alimentos con aguas y otros residuos fecales.

E.coli O157 en concreto, el más común de los enterohemorrágicos, ha dado brotes en Centroeuropa y USA, pero muy pocos en España, por lo que aquí no se suele buscar si no es junto con el resto de cepas de E.coli: no necesitamos distinguirlo; si en un alimento demostramos que no hay E.coli, tampoco hay E.coli O157.

Es lo mismo que sucede con Listeria: si no hay Listeria spp. en una superficie de una fábrica, tampoco hay Listeria monocytogenes.

Y es que en España la población está inmunizada desde que es bebé, porque los verotoxigénicos son unos E.coli bastante frecuentes en el tracto digestivo de nuestras vacas y otros rumiantes;

y por tanto pueden pasar a la leche y sus derivados, a su carne y, por las aguas que las rodean mientras pastan, a las ensaladas.

E.coli y los países del Sur

De modo que los casos originados en España, el pais más meridional de Europa, de este patógeno, suelen darse en turistas del norte de Europa o USA que lo ingieren con comida contaminada

cuando nos visitan a nuestras latitudes más cálidas y aún no están inmunizados contra él.

Imaginamos la misma situación en México y países tropicales de Centro y SudAmérica:

ya sabemos que la diversidad biológica (también de los microorganismos) aumenta exponencialmente cuanto más nos acercamos al Ecuador.

Una vez aclarado el malentendido, hablaremos de los kits para detectar de verdad la presencia o ausencia de E.coli, elaborados con los medios de cultivo más rigurosos que existen

incluido ese patógeno O157, pero también todas las demás cepas de E.coli, cuyo papel es que son indicadores de posible presencia de patógenos entéricos, como Salmonella, Shigella, Yersinia, el mismo O157 y demás enterobacterias patógenas,

por lo que seguimos sin entender de qué sirve emplear un kit sesgado que sólo detecta las cepas verotoxigénicas de E.coli. En vez de emplear un kit que sirva para todos los E.coli.

Y tambien veremos los kits y medios que sirven para realizar recuentos de este mismo microorganismo indicador de falta de higiene, incluido el O157 y todas las demás cepas de E.coli que son indicadoras de patógenos.

Emplear un kit que sólo detecta O157 es un grave error, y más que lo ofrezcan como «kit para descartar E.coli«.

Ese tipo de kit es para investigar verotoxigénicos, como un plus una vez buscamos E.coli, no para cumplir con la auténtica legislación, que marca la búsqueda de E.coli como indicador de patógenos entéricos.

 

1-Kits cualitativos para detectar la presencia de E.coli

Existen numerosos kits en el mercado para buscar E.coli en aguas, alimentos y superficies.

Mencionaremos los que mejor conocemos por haberlos creado nosotros mismos con el medio que consideramos infalible, mucho más que el también famoso ONPG:

1: E.coli (gas y fluorescencia), 2: Coliformes incluido E.coli O157 (gas sin fluorescencia), 3: Sin inocular, 4: E.coli (gas y fluorescencia), 5: E.coli Cepa Lactosa negativo (sin gas pero con fluorescencia).

1A-Aguas:

Colicult MCC P/A detecta desde una sola célula de E.coli en 100 mL de agua:

https://www.microkit.es/fichas/P-A-COLICULT-UE-2-2019.pdf?v=2023

Se puede volver cuantitativo (recuento NMP) con las cubetas NMP Racks:

https://www.microkit.es/fichas/MPN-RACK.PDF?v=2023

1B-Alimentos:

Basado en el mismo medio Colicult MCC P/A, en medio deshidratado o en tubos preparados para añadir 1 g de muestra o de su dilución madre 1:10

https://www.microkit.es/fichas/MCC-COLICULT-CHROMOFLUOROGENIC-BROTH.pdf?v=2023

1C-Superficies:

Uniendo un tubo del mismo medio Colicult MCC P/A (si algo funciona bien, ¡no lo cambies!), con un escobillón para la toma de muestras:

https://www.microkit.es/fichas/COLIFORMKIT-SCREENING-SWABS-ANSES-ISO-18593–UE-2-2019.pdf

 

2-Kits cuantitativos para detectar la presencia de E.coli

2A-Aguas:

Como vimos en aguas, el recuento se puede realizar en 100 mL con Colicult MCC y las cubetas NMP-Racks

2B-Resto:

En alimentos y superficies (y también en aguas si sólo hay que buscar en 1 mL de muestra), es mejor emplear el medio agarizado MugPlus (que ahora las Normas ISO llaman CCA)

y que distingue a E.coli con colonias de cualquier tono azul o violeta y a los demás coliformes con colonias de tonos rosas-fucsia-rojo. Las colonias de otros colores (crema, blanco, verde) son falsos positivos interferentes o acompañantes.

Es mil veces mejor que el medio también ISO TBX, el cual destruye cerca del 50% de los E.coli presentes en cualquier muestra.

Ofrecemos el Agar MugPlus en todas sus presentaciones (deshidratado, tubos, frascos, placas, plaquis, DryPlates®…),

ya que es uno de los inventos de mayor éxito de MICROKIT, al llevar ya en el mercado desde 1.995: https://www.microkit.es/fichas/MUGPLUS%20COLIFORM-E.COLI%20AGAR%20CCA.pdf

Y una vez que hay colonias azules, para confirmar dichas colonias (que ya son muy altamente sospechosas de E.coli):

https://www.microkit.es/fichas/E-COLI-M-IDENT-KIT-UE-2-2019-ALIMENTOS-ISO-16649–ISO-9308.PDF

No olvide la ventaja principal de todos estos kits, a pesar de su rapidez (18-24 h desde la muestra): NO NECESITAN APARATOS LECTORES, ya que es el método clásico con medios de cultivo; el método MÁS ROBUSTO, el único validado y útil para todo tipo de alimentos

Puede solicitar los precios actualizados de todos estos productos en: microkit@microkit.es, para así poder realizar sus pedidos en: pedidos@microkit.es

 

Kit detección Listeria alimentos

Kit detección Listeria alimentos: sin necesidad de aparato alguno ¡y en sólo 36 horas! se descarta su presencia con el kit LISTERIQUICK

Existen varios kits para control de la ausencia o presencia de Listeria en 25 g de alimento…

…cada método rápido está representado con al menos un kit.

Sin embargo, faltaba el método más robusto, el que sirve para todo tipo de alimentos: el método clásico con medios de cultivo…

…y presentamos el método con medios de cultivo que además está modernizado:

1-con medios neutralizantes de los conservantes y metabolitos inhibidores,

2-con medios de enriquecimiento selectivo que no destruyen cepas de Listeria y las nutren mejor y

3-con medios cromogénicos de aislamiento

 

La clave del drástico acortamiento de tiempo está en los dos enriquecimientos, al ser simultáneos:

a) El pre-enriquecimiento revitalizador de células dañadas o letárgicas

b) El post-enriquecimiento selectivo

Además, muy mejorados con dos medios de cultivo que, en la validación de este kit, demostraron comportarse mucho mejor que los clásicos con los que se compararon:

a) Buffered Peptone Neutralizing Water (BPNW, APTN) frente al clásico Buffered Peptone Water (BPW, APT) o frente al Semi-Fraser

b) Listeria Lovett Broth (LEB) frente al clásico Fraser

 

En cuanto al aislamiento en placa, tambien se ha optimizado con el mejor medio que existe para obtener colonias de Listeria:

Ottaviani & Agosti Agar (ALOA) que nosotros llamamos Chromocytogenes Agar de la ISO 11290 y sus suplementos.

La confirmación de colonias sospechosas

se deja aparte de este kit que reúne estos 3 medios de cultivo y los suplementos, ya que sólo ha de usarse cuando crezcan colonias sospechosas

y se puede realizar bioquímicamente (por ejemplo, para seguir la ISO 11290, con M-Ident Rhamnosa/Xylosa y su equivalente en medios deshidratados, para ahorrarse las pruebas redundantes de las galerías de identificación)

https://www.microkit.es/fichas/LISTERIA-RHAMNOSA-XYLOSA-M-IDENT-KIT-ISO-11290.PDF

https://www.microkit.es/fichas/LISTERIA%20RHAMNOSE-XYLOSE%20BROTH.pdf

 

Para conocer mejor este fulminante kit,

consulte su folleto:

https://www.microkit.es/pdf/LISTERIQUICK.pdf

y para profundizar en su modo de empleo, consulte su prospecto:

https://www.microkit.es/fichas/LISTERIQUICK-UE-2-2019.pdf?v=2023

 

No olvide su ventaja principal sobre otros kits, a pesar de su rapidez: NO NECESITA APARATOS LECTORES, ya que es el método clásico con medios de cultivo; el método MÁS ROBUSTO, el único validado y útil para todo tipo de alimentos

Puede solicitar los precios actualizados de todos estos productos en: microkit@microkit.es, para así poder realizar sus pedidos en: pedidos@microkit.es