Archivo de la categoría: Microbiologia de Cosmeticos

Optimización en los análisis microbiológicos de
COSMÉTICOS. Nuevos métodos de análisis microbiológicos utilizados exitosamente en los laboratorios líderes

COSMETIKIT® WATER

KIT COMPLETO PARA MICROBIOLOGÍA DE AGUAS DE USO COSMÉTICO

Kit Microbiología Aguas Cosméticas para control completo de las aguas empleadas en la fabricación de productos cosméticos

COSMETIKIT® WATER es un KIT COMPLETO  para análisis directo de recuento de aerobios y de Presencia/Ausencia de patógenos en frascos toma-muestras, sin necesidad de aparato de filtración. Contiene inactivadores del cloro. Para control completo de las aguas empleadas en la fabricación de productos cosméticos

COSMETIKIT WATER

INTRODUCCIÓN

El control microbiológico del agua  es de la máxima importancia en la elaboración de productos cosméticos porque se trata de una de las materias primas usadas en mayor cantidad y también por usarse para tareas de limpieza, enjuague de envases, equipos, etc.

Una calidad deficiente en el agua de uso cosmético puede causar contaminaciones en el producto final con serias repercusiones en la salud del usuario final y en la estabilidad del producto.

La actual legislación garantiza la calidad del agua a la salida de la potabilizadora y a la salida de los grifos públicos, pero NO a la salida de los grifos privados que utilizan el consumidor y las industrias. Las continuas obras públicas, así como las internas de los edificios, ponen en grave peligro la seguridad final del agua, a menudo por infiltración de aguas fecales en la red potable; por ello es imprescindible su re-control privado.

SON KITS VALIDADOS

Los kits P/A de MICROKIT han sido validados en España, comparando durante años los datos de decenas de laboratorios mediante análisis clásico por Filtración de membrana y los resultados obtenidos mediante esta cómoda técnica. En nuestra página Web (www.laboratoriosmicrokit.com) encontrará las 4 publicaciones que respaldan esta validación y demuestran que el método no sólo es tan bueno como el de Filtración de membrana, sino incluso mejor.

Además, es mucho más sencillo y rápido de manejar, ahorrando el uso de aparatos de filtración y dejando el análisis microbiológico del agua al alcance de todo usuario, sin necesidad de un laboratorio especial.

Realice un análisis semanal (para mayor seguridad, uno diario) para verificar que el agua que sale de la potabilizadora municipal llega pura a sus instalaciones y se mantiene limpia en ellas, sin infiltración de aguas residuales ni otros serios problemas microbiológicos.

Según la reglamentación actual (R.D.140 de 2003) un agua sólo es apta para consumo humano o para uso en fábricas de alimentos, si no contiene patógenos o sus indicadores (Coliformes- E. coli, Enterococos fecales, Clostridium perfringens y sus esporas) en 100 ml y si el recuento total de aerobios asociados al hombre es inferior a 20 ufc/1 mililitro (incubando 24 h a 37 ºC) y el recuento total de aerobios saprófitos es inferior a 100 ufc/1 mililitro (incubado 72 h a 22 ºC), en ambos casos en medio nutritivo YEA. Sin embargo, no existen criterios específicos para aguas de uso cosmético.

AGUAS DE USO COSMÉTICO

Dada la especial idiosincrasia de la industria cosmética, la prudencia exige el control de los microorganismos que más frecuentemente dan problemas en el sector. Hemos elegido para este kit como único indicador fecal la detección de Enterococos fecales, ya que es el parámetro que demuestra ser mejor detectado en los laboratorios que participan en los intercomparativos SEILAGUA®.

La detección de Coliformes y E.coli puede considerarse redundante, ya que si están presentes, también lo van a estar los Enterococos fecales, que además nos indican una contaminación más amplia en el tiempo (E.coli en aguas sólo es viable 24 h mientras los Enterococos fecales resisten 1 semana). No obstante si desea añadir este parámetro a su control, utilice además el kit P/A RPL303.

Los clostridios son indicadores de posible presencia de enterovirus y protozoos en aguas naturales tratadas, lo cual no resulta muy probable de encontrar en el sector cosmético. No obstante si emplea aguas de pozo, utilice además el kit P/A RPL308.

Hemos elegido como parámetros adicionales en el kit, la detección de Pseudomonas aeruginosa y la detección de Burkholderia cepacia, los dos patógenos que dan problemas habituales tanto en aguas tratadas como en aguas purificadas.

Por fin, añadimos los dos recuentos de aerobios totales en las cómoda DryPlates®, medios preparados pero deshidratados, que absorben directamente 1 ml del agua de muestra sin necesidad de fundir medios sólidos. 

MODO DE EMPLEO DEL COSMETIKIT® WATER

1. Presencia o Ausencia de Enterococos fecales, de Pseudomonas aeruginosa y/o
de Burkholderia cepacia:

Añadir 100 ± 1 ml del agua de muestra a cada uno de los
tres frascos (RPL301, RPL302 y RPL323), sin llenar para dejar una cámara de aire,
agitando suavemente para diluir su contenido concentrado. Cerrar el tapón e incubar
18-72 horas a 35-37ºC.

Si el frasco de Enterococos (ámbar con menisco azul) se
vuelve negro y pierde su iridiscencia (Fig.1, izquierda), hay contaminación fecal por
infiltración de aguas residuales.

Si el frasco de Pseudomonas aeruginosa (incoloro)
se vuelve rosa o rojizo (Fig.2, izquierda), y/o el de Burkholderia cepacia
(anaranjado) se vuelve rojo vino tinto (Fig.3, izquierda), estos patógenos se han
infiltrado en nuestras aguas.

La presencia de cualquiera de estos microorganismos
impide el uso del agua para fabricación de productos cosméticos.

Añada cloro o lejía

hasta el borde de los botes usados, o bien autoclávelos, antes de desecharlos.

+ Fig.1 –                                                                   +Fig.2-                                                + Fig.3 –

2.Recuento de aerobios a dos temperaturas:

Añadir con una pipeta estéril 1 ml del
agua de muestra en el centro de una placa vacía y depositar encima el disco Dry-
Plate®-TC-R2. Dejar embeber el medio deshidratado y cerrar.

Repetir la operación
con otra Dry-Plate®-TC-R2. Incubar una placa 24 h a 35 ºC aprox. y otra 48-72 h a
22 ºC aprox.

Si se emplean incubadores, no voltear las placas, no dejar que toquen el
metal de la estufa (suelo, paredes y techo) y poner a incubar junto a un vaso lleno de
agua.

Contar todas las colonias, que gracias al cromógeno, crecen con colores de la
gama del rojo (rosa, naranja, rojo, Fig.4).

Para que el agua pueda considerarse apta
para consumo, debe haber menos de 20 colonias en la placa incubada 1 día a 35°C y
menos de 100 colonias en la placa incubada 2-3 días a 22°C.

Fig.4 (>100 colonias)

 CONTENIDO DEL KIT

CODIGO: KMT450                              

 PARA 10 TEST COMPLETOS de los 5 parámetros:

  • 10 Jeringas 50 ml estériles (sin aguja).

  • 10 Pipetas Pasteur estériles.

  • 10 Frascos P/A para deteccción de Pseudomonas aeruginosa, patógeno procedente de aguas mal purificadas.

  • 10 Frascos P/A para deteccción de Burkholderia cepacia, patógeno procedente del biofilm de aguas estancadas.

  • 10 Frascos P/A para deteccción de Enterococos, los mejores indicadores a largo plazo (1-7 días) de infiltración de aguas fecales.

  • 20 Compact Dry Plates ® TC para recuento total de aerobios a 22°C  y a 35 °C.

MANTENER LOS KITS A TEMPERATURA AMBIENTE (4-25ºC). ES MUY IMPORTANTE MANTENERLOS AL RESGUARDO DE LA LUZ.

MATERIAL CONVENIENTE NO INCLUÍDO:

  • Estufas a 22 y a 35ºC (VRP001) (imprescindibles).
  • Zona aséptica: Lámpara de alcohol (VLM068) o Portabunsen (ME2195) y Envirostéril (VJM002), si no se  dispone de cabina de flujo laminar.
  • Test confirmativos de frascos sospechosos (todos disponibles consultando en MICROKIT).
  • Cepas certificadas (ver lentículas cuantitativas MICROKIT).
  • Servicios  intercomparativos (SEILAGUA®).
  • Frascos  P/A STAPH para Staphylococcus aureus si se utilizan aguas de muy dudosa calidad (RPL320).
  • Frascos P/A MCC para Coliformes y E.coli si se desea saber si la contaminación por infiltración de aguas fecales es muy reciente (de hace sólo unas horas): RPL303
  • Frascos P/A Clostricult si el agua procede de pozos profundos y desea controlar la contaminación por clostridios, indicadores de enterovirus y patógenos (RPL308).
  • Si utiliza este kit a diario (o una o dos veces por semana), no es necesario realizar más análisis microbiológicos de las aguas, pero si lo utiliza sólo una vez al mes, añada al menos un control semanal (o mejor diario) de recuento de aerobios a ambas temperaturas mediante las Compact Dry Plates ® TC  (Ref: 1000166).

Kit Microbiología Aguas Cosméticas para control completo de las aguas empleadas en la fabricación de productos cosméticos

https://www.microkit.es/pdf/COSMETIKIT-Water.pdf

NOTA: Si realiza muchos análisis de aguas cosméticas puede crear su propio kit para que el coste sea de sólo 4 €/muestra. Pidiendo las DryPlates-R2A y los 3 kits P/A en su formato económico (botes de 100 g de polvo estéril con cucharilla para dosificar): Enterocult (o Colicult), Pseudocult y Burkholderia Cromogenic Broth.

El usuario es el único responsable de la eliminación de los microorganismos según la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.

Si desea más información sobre nuestro COSMETIKIT® WATER no dude en contactar con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es, o por teléfono en nuestro telefono 91-897 46 16.

COSMETIKIT ® CLASSIC

MICROKIT COSMETIKIT ® CLASSIC

cosmetikit-classic, kit completo para el análisis microbiológico estándar de productos cosméticos y sus materias primas

INTRODUCCION          

Con este kit y la simple ayuda de un Baño María y una estufa de cultivos, toda industria cosmética puede realizar el análisis microbiológico completo en 20 muestras diferentes, de la forma más eficiente que un laboratorio pueda realizar.

Si desea controlar también el agua, utilice nuestro COSMETIKIT-WATER (ref: KMT450). Si desea controlar también las superficies de trabajo, recipientes, etc, utilice nuestros laminocultivos DESINFECTEST® (Ej.ref: MBN407) y para las manos de operarios nuestros KITS PARA MANIPULADORES (ref: kmt020).

CONTENIDO (CADUCIDAD APROX. 1 AÑO DESDE FABRICACION)

  • 20 Jeringas 20ml estériles (sin aguja)COSMETIKIT CLASSIC
  • 20 Pipetas Pasteur estériles.
  • 2 x 10 Frascos 90ml c/perlas para tratamiento de la muestra (LPT100 Broth Incoloro  RPL054P).
  • 20 Tubos para recuento total (LPT100.Neutralizing Agar Purple TPL200).
  • 20 Tubos para levaduras y mohos (Rosa Bengala CAF agar TPL072).
  • 20 Tubos para Pseudomonas aeruginosa (Cetrimide Agar TPL100).
  • 20 Tubos para E.coli y demás Coliformes (MUGPLUS Cfs.Agar TPL400).
  • 20 Tubos para Staphylococcus aureus (Mannitol Salt Agar TPL066).
  • 20 Tubos inclinados para Candida albicans (Biggy Agar TPL062).
  • 20 Tubos para Burkholderia cepacia (BCPT Agar TPL005)
  • 120 Placas Petri  estériles de 90 mm.

MATERIAL NECESARIO NO INCLUIDO

1. Estufa a 35-37ºC (VRP001), Baño María, hervidor o microondas.

2. Zona aséptica: lámpara de alcohol (VLM068), portabunsen o envirostéril (VJM002).

3. Test confirmativos de colonias sospechosas

4. Cepas de referencia, de trabajo o cuantitativas para validar los reactivos una vez llegados a fábrica o tras almacenamiento prolongado o inadecuado

5. Participar en servicios intercomparativos como SEILAPARFUM para validar procedimientos y analistas.

 

MODO DE EMPLEO

(Seguir al pie de la letra para obtener resultados correctos y validados)

  1.  Añadir con una jeringa estéril, asépticamente, 10 gramos o 10 ml de muestra a un Frasco 90ml LPT Neutralizing  Broth con perlas. Cerrar el tapón. Mezclar agitando y dejar actuar no menos de 20 ni más de 30 minutos a 21-25°C aproximados. Así se obtiene la solución madre (muestra tratada).
  2. Con la ayuda de una Pipeta Pasteur estéril añadir de inmediato 1 ml de la muestra tratada recién agitada a una placa Petri estéril, en condiciones asépticas. Repetir la operación en otra placa, con la misma pipeta y para la misma muestra. Es conveniente realizar duplicados (Pida TPL200 y TPL072).
  3. Fundir al Baño María un tubo de LPT Neutralizing Agar y otro de Rosa Bengala CAF, hasta que estén  totalmente licuados (si duplica las placas, funda dos tubos de cada medio por muestra).
  4. Cuando se hayan enfriado lo suficiente para no quemar la mano, pero sigan líquidos, añadir cada uno a una placa con el mililitro de muestra tratada. Los mohos tambien se pueden sembrar en superficie, 0,1-0,33 ml mediante asa de Digralsky. Mejor sembrar en masa 1ml y en superficie 0,1ml.
  5. Hacer girar las placas sobre la mesa 10 veces en cada sentido para asegurar la mezcla del medio con la muestra, con cuidado para que no rebose el líquido ni llegue a la tapa de la placa. Dejar solidificar sin tocar (si la temperatura ambiente no es elevada, 10-15 minutos serán suficientes).
  6. Si prefiere usar un método más moderno y ahorrarse todas estas fusiones-enfriamientos de medios: UTILICE COSMETIKIT EASY-PLUS

  1. Incubar las placas en posición invertida y en total oscuridad, 3-5 días a 30-35 ºC (LPT Neutralizing Agar) y (3)-5 días a 20-25 ºC (Rosa Bengala Caf.Agar).
  2. A la vez que esas placas, incubar el resto de muestra tratada en LPT Broth durante 48 h a 30-35°C para obtener la muestra tratada y enriquecida,  necesaria para la búsqueda de patógenos.
  3. Añadir unas gotas (tras enriquecer no hace falta más precisión) de la muestra enriquecida, recién agitada, a un tubo inclinado Biggy Agar Candida, con una misma pipeta estéril y repartir, volteando.
  4. Añadir unas gotas de muestra tratada enriquecida, recien agitada, a una placa Petri estéril, en condiciones asépticas. Repetir en otra placa, con la misma pipeta y para la misma muestra.
  5. Fundir al Baño María un tubo de MUGPLUS Cfs.Agar, otro de Mannitol Salt Agar, otro de Cetrimide Agar y otro de BCPT Agar hasta que estén totalmente licuados.
  6. Cuando se hayan enfriado lo suficiente para no quemar la mano, pero sigan líquidos, añadir el contenido del MUGPLUS y del Mannitol a sendas placas con las gotas de muestra enriquecida.
  1. Puede usar un método más moderno y ahorrarse todas estas fusiones-enfriamientos de medios: UTILICE COSMETIKIT EASY-PLUS

  1. Hacer girar las placas sobre la mesa 10 veces en cada sentido para asegurar la mezcla del medio con la muestra, con cuidado para que no rebose el líquido ni llegue a la tapa de la placa. Dejar solidificar sin tocar. Esta siembra en masa es imprescindible en Coliformes-E.coli y en estafilococos.
  2. Verter el contenido del Cetrimida y del BCPT en sendas placas Petri estériles y dejar solidificar. Sembrar en zigzag sobre su superficie una gota de la muestra enriquecida recién agitada.
  3. Es una buena práctica sembrar además en otra placa de LPT Agar, en zigzag, una gota del enriquecimiento recién agitado para aislar colonias e identificarlas (¡no para contarlas!), a fin de aumentar la sensibilidad para cepas  estresadas, que podrían no crecer en los medios selectivos.
  4. Incubar las placas en posición invertida, y los tubos de Candida albicans en posición vertical, durante 24-72 horas a 30-35 ºC. No apilar más de 5 placas y dejar espacio entre las pilas, y entre éstas y las paredes de la estufa.

INTERPRETACION DE RESULTADOS

El recuento total (placas de Neutralizing Agar) no conviene que sea superior a 100-1000 ufc/ml ó gramo de muestra inicial, según las exigencias (cosmética infantil-general). De modo que no deben aparecer más de 10-100 colonias por placa, dada la dilución efectuada en la solución madre. Lo mismo para recuento de levaduras (colonias convexas) y mohos (colonias filamentosas) (Placas Rosa Bengala CAF Agar).  De lo contrario, y siempre que no haya patógenos, se puede reprocesar el lote.

No debe aparecer ninguna colonia de Escherichia coli (colonias azules en placas de MUGPLUS Cfs.Agar; las colonias rosas en este medio son indicadoras de coliformes, que sin ser patógenos, ni indicadores exclusivos de contaminación fecal, suelen provocar alteraciones en la muestra), de Pseudomonas aeruginosa (colonias amarillas-verdosas o pardo-rojizas en placas de Agar Cetrimida), de Burkholderia cepacia (colonias blancas o salmón, con medio virado a fucsia, en BCPT), ni de Staphylococcus aureus (colonias amarillas en placa de Agar Mannitol), patógenos procedentes de contaminación fecal, del agua, del biofilm del agua y de operarios-aire, respectivamente.

Si aparece alguna colonia parda (que no provoque viraje de color del medio a pardo-negro) en el tubo de Biggy Agar, será de Candida albicans, lo que demuestra contaminación por mucosas de operarios portadores. Si aparece cualquiera de los 5 patógenos, hay que destruir el lote.

Para confirmar definitivamente, consúltenos sobre nuestros kits de identificación de colonias sospechosas.

Para más información no dude en ponerse en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

Ver también el kit más moderno «COSMETIKIT EASY-PLUS» cuya ventaja es que no hay que fundir medios, manteniendo la larga caducidad del COSMETIKIT clásico.

https://www.microkit.es/pdf/cosmetikit.pdf

COSMETIKIT ® EASY-PLUS

COSMETIKIT ® EASY-PLUS

COSMETIKIT ® EASY-PLUS es el Kit análisis microbiológico cosméticos, todos los parámetros para un correcto análisis

 TOTALMENTE ACORDE  AL MANUAL DE MICROBIOLOGÍA COSMÉTICA DEL MINISTERIO DE SANIDAD Y A LAS DE  NORMAS  ISO SOBRE  MICROBIOLOGÍA COSMÉTICA, MEJORADAS

Kit análisis microbiológico de cosméticos. Con este kit y la simple ayuda de una estufa de cultivos, toda industria cosmética puede realizar el análisis microbiológico completo en 60 muestras diferentes, de la forma más eficiente que un laboratorio pueda realizar. CADUCIDAD: APROX. 1 AÑO DESDE FABRICACION 

Si desea controlar el agua, utilice nuestros kits Cosmetikit®-Water, especialmente diseñados para microbiología de aguas de uso cosmético. Si desea controlar también las superficies de trabajo, recipientes, etc., utilice nuestros laminocultivos DESINFECTEST®. Y para el control de operarios le ofrecemos nuestro MANIPULADORES-KIT. 

CONTENIDO (caja de 60 TEST completos) Kit análisis microbiológico cosméticos

–  60 Jeringas 20 ml estériles (sin aguja)

–  60 Pipetas Pasteur estériles

–  6 x 10 Frascos LPT 100 Broth Incoloro 90 ml CON PERLAS para tratamiento de 10 gramos de muestra

–  60 Dry Plates ® TC para recuento total de aerobios.

–  Otras 60 Dry Plates ® YM para recuento total de hongos (levaduras y mohos).

–  60 Dry Plates ® X-SA para detección de Staphylococcus aureus.

–  Otras 60 Dry Plates ®  EC para detección de coliformes y E. coli.

–  60 Dry Plates ®  CANDI para detección de Candida albicans

–  Otras 60 Dry Plates ®  PS para detección de Pseudomonas aeruginosa

–  60 Dry Plates ®  BCPT para detección de Burkholderia cepacia, el emergente de los cosméticos.

– Y 60 Dry Plates ®  CUP12A para detección de los demás patógenos «no especificados», que generan la mayoría de retiradas de mercado de los cosméticos, porque la mayoría de laboratorios aún cree que no necesitan contemplarlos.

MATERIAL NECESARIO NO INCLUÍDO

  • Estufa a 35-37 ºC (PT2499),
  • Ø   Zona aséptica: Portabunsen (ME2195+ME2196) y Envirostéril (VJM002) si no se dispone de cabina de flujo laminar.
  • Test confirmativos de colonias sospechosas (todos disponibles consultando en MICROKIT).
  • Cepas de referencia, de trabajo o cuantitativas para validar los reactivos una vez llegados a fábrica o tras almacenamientos prolongados o inadecuados (Ver lentejas cuantitativas MICROKIT)
  • Participar en servicios intercomparativos de microbiología de cosméticos para validar procedimientos y analistas en sus propias instalaciones.

MODO DE EMPLEO Kit análisis microbiológico cosméticos

1.- Añadir con una jeringa estéril, asépticamente, 10 gramos o 10 ml de muestra a un Frasco 90ml LPT Neutralizing Broth con perlas. Cerrar el tapón. Mezclar agitando y dejar actuar no menos de 20 ni más de 30 minutos a 21-25°C aproximados. Así se obtiene la solución madre (muestra tratada).

2.- Con la ayuda de una Pipeta Pasteur estéril añadir de inmediato 1 ml de la muestra tratada recién agitada al centro de la base de una Dry Plates ® TC, para recuento de aerobios, en condiciones asépticas. En todas las Dry Plates ®, añadir la muestra a la placa y luego dejar caer encima el disco con medio (nunca al revés). La muestra se auto-difundirá inmediatamente sin necesidad de asas o aplicadores. Es conveniente realizar duplicados de placas de recuento de aerobios, para poder incubar una a 35°C y otra a 25°C (pida una caja adicional de la referencia DPP001). Repetir la operación en una Dry Plates ® YM, para recuento de hongos (levaduras y mohos) con la misma pipeta y para la misma muestra.

3.- Incubar las placas Dry Plates ® en posición invertida y en total oscuridad, 1-3 días a 30-35 ºC (una de las TC) y 2-4 días a 20-25 ºC (la otra TC y la YM).

4.- A la vez que esas placas, incubar el resto de muestra tratada en LPT Broth durante 48 h a 30-35°C para obtener la muestra tratada y enriquecida,  necesaria para la búsqueda de patógenos.

SEGUIMOS CON EL ANÁLISIS

5.- Tras este enriquecimiento para patógenos, añadir 1 ml de la muestra enriquecida, recién agitada, al centro de la base de una Dry Plates ® X-SA para detección de Staphylococcus aureus. Repetir la operación en una Dry Plates ®  EC para detección de E.coli y demás Coliformes, con una misma pipeta estéril. Hacer lo mismo en una Dry Plates ®  CANDI para detección de Candida albicans. Repetir la operación en una Dry Plates ® PS   para detección de Pseudomonas aeruginosa.  hacer lo mismo en una Dry Plates ®  BCPT para detección de Burkholderia cepacia, el patógeno emergente de los cosméticos. En todas las Dry Plates ®, añadir la muestra a la placa y luego dejar caer encima el disco con medio (nunca al revés).

dry plates uso

6.- Es una buena práctica sembrar además en otra placa de Dry Plates ® TC, 1 ml del enriquecimiento recién agitado para aislar colonias e identificarlas (¡no para contarlas!), a fin de aumentar la sensibilidad para cepas  estresadas, que podrían no crecer en los medios selectivos.

7.- Incubar las placas Dry Plates ® en posición no-invertida, separándolas del calor del metal de la base (o gradilla) de la estufa, con una placa vacía, durante 24-72 horas a 30-35 ºC. No apilar más de 5 placas y dejar espacio entre las pilas, y entre éstas y las paredes de la estufa. Dejar en la estufa un vaso lleno de agua para evitar la desecación de los medios DryPlates ®.

 INTERPRETACION DE RESULTADOS 

El recuento total (Dry Plates ® TC, colonias rojas 1) no conviene que sea superior a 100-1000 ufc/ml ó gramo de muestra inicial, según las exigencias (cosmética infantil-general). De modo que no deben aparecer más de 10-100 colonias por placa, dada la dilución efectuada en la solución madre. Lo mismo para recuento de levaduras (Dry Plates ® YM, colonias no filamentosas 2a) y mohos (idem, colonias filamentosas 2b). De lo contrario, y siempre que no haya patógenos, se puede reprocesar el lote. Esta precisión no se puede obtener utilizando placas preparadas clásicas, ya que éstas no absorben 1 ml y en el mejor de los casos (que absorban bien 0,3 ml), su rango inferior de detección sería excesivo para estas necesidades (3 colonias están muy por debajo de la incertidumbre mínima necesaria en un recuento en placa).

No debe aparecer ninguna colonia de Escherichia coli (colonias o manchas azules 3a en Dry Plates ®  EC; las colonias o manchas rosas 3b en este medio son indicadoras de coliformes, que sin ser patógenos, ni indicadores exclusivos de contaminación fecal, suelen provocar alteraciones en la muestra),ni deStaphylococcus aureus (colonias o manchas azules 4 en Dry Plates ® X-SA), ni de Pseudomonas aeruginosa (colonias o manchas rojas con fluorescencia 5 en Dry Plates ®-PS),ni de Burkholderia cepacia (colonias o manchas blancas o salmón, con medio virado a fucsia 6, en Dry Plates ®  BCPT),ni de Candida albicans (colonias o manchas pardas que no provoquen viraje de color del medio a pardo-negro 7 en el Dry Plates ®CANDI, patógenos procedentes de contaminación fecal (coliformes yE.coli), del agua (Pseudomonas), del biofilm del agua (Burkholderia), de operarios portadores o del aire-superficies (Staphylococcus, Candida).

cosmetikit easy

Si aparece cualquiera de los 5 patógenos, hay que destruir el lote. Para confirmar definitivamente, consúltenos sobre nuestros kits de identificación de colonias sospechosas.

Si desea más información sobre nuestro COSMETIKIT EASY-PLUS rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16 

https://www.microkit.es/pdf/COSMETIKIT-EasyPlus.pdf

Solicite además las DryPlates-CUP12A, nuevo medio para la detección de los demás patógenos que crean retiradas de mercado de cosméticos, también en formato de placas preparadas deshidratadas, y que, junto a COSMETIKIT-EASY-PLUS, le permitirá seguir a rajatabla y completamente  la legislación actual en microbiología de cosméticos.

https://www.microkit.es/monograficos/23-Monograf–a-CURSO-DE-MICROBIOLOG–A-COSM–TICA-EN-LA-TERCERA-D–CADA-DEL-SIGLO-XXI.pdf

 

CRIOTECA®

 

VIALES CRIOTECA® – CONSERVACIÓN AVANZADA DE CEPAS MICROBIANAS

PRESENTACIÓN

Los viales CRIOTECA® están diseñados para una conservación eficaz, segura y prolongada de cepas microbianas. Estos viales, pioneros en su fabricación en España desde 1991, incorporan criobolas de porcelana porosa especialmente tratadas y un líquido criogénico optimizado, lo que permite:

  • Minimizar resiembras, contaminaciones y mutaciones.

  • Garantizar la preservación de la primera generación inoculada.

  • Mantener las cepas vivas durante años.

Gracias a la colaboración con uno de los centros oficiales que gestiona las cepas causantes de brotes alimentarios, hospitalarios e hídricos, hemos conseguido optimizar nuestros caldos criogénicos, marcando una clara diferencia frente a otras marcas del mercado.


Ventajas destacadas

  • Mayor seguridad: tapón alto que evita el contacto directo con la muestra.

  • Alta eficiencia: mayor cantidad de criobolas (25 por vial) para asegurar la recuperación de la cepa.

  • Máxima optimización: menor volumen por vial y cajas CRIOBOX ultracompactas, ahorrando espacio en almacenamiento.

  • Fórmula mejorada: líquido criogénico especialmente desarrollado para una mayor viabilidad y recuperación de las cepas.

  • Precio más competitivo frente a kits importados similares.

  • Cierre totalmente hermético y caducidad de 5 años desde la fabricación. Si se conservan en nitrógeno líquido, este periodo puede extenderse incluso más allá.


Resultados validados con numerosos microorganismos:

  • Gram positivos: Bacillus cereus, Staphylococcus aureus, Listeria monocytogenes, Lactobacillus plantarum, etc.

  • Gram negativos: Escherichia coli, Pseudomonas aeruginosa, Salmonella abony, Campylobacter jejuni, Legionella pneumophila, entre otros.

  • Levaduras: Saccharomyces cerevisiae, Candida albicans, Rhodotorula glutinis

  • Mohos: Aspergillus niger, Penicillium digitatum, Mucor racemosus, entre otros.


TIPOS DE CRIOTECA® DISPONIBLES

  • CRIOTECA® CLÁSICA (KPX006)
    Para bacterias en general, levaduras y mohos. Bolitas amarillas.

  • CRIOTECA® YM (KPX007)
    Formulada específicamente para hongos (levaduras y mohos). Bolitas blancas.

  • CRIOTECA® MARINA (KPX008)
    Especial para microorganismos halófilos como Vibrio. Bolitas marrones.

  • CRIOTECA® SKIM MILK (KPX003)
    Ideal para microorganismos exigentes, como micobacterias. También es excelente para bacterias comunes. Líquido blanco y bolitas verdes. (Es nuestra referencia más vendida, con 50 veces más demanda que la clásica).

  • CRIOTECA® CAMPY (KPX009)
    Óptima para Campylobacter y Helicobacter. Bolitas azules.

  • CRIOTECA® ACUÁTICA (KPX010)
    Especializada para bacterias presentes en el agua, incluyendo Legionella, Pseudomonas, Aeromonas, E. coli, Acinetobacter, Plesiomonas, entre otras. Bolitas rojas.


MODO DE EMPLEO – Conservación de cepas en criobolas

  1. Introduzca una suspensión espesa del cultivo (idealmente fresco, 18-24h) o una colonia directamente en el vial.

    • Para bacterias: Agar Sangre, TSA, BHI o TSB.

    • Para hongos: SDA, SDB o YMB.

  2. Si usa caldo en lugar de colonias, centrifugue y utilice el sedimento.

  3. Cierre el vial y agítelo suavemente (invertir 10 veces) para impregnar bien las bolitas.

  4. Espere un minuto, luego retire el exceso de líquido con una jeringa estéril.

  5. Etiquete el vial con rotulador indeleble.

  6. Golpee suavemente el vial contra la mesa para distribuir las bolitas a lo largo del tubo.

  7. Congele entre –20 °C y –60 °C. Se recomienda duplicar las muestras como medida preventiva.

  8. Para recuperar la cepa:

    • Extraiga una bolita con un palillo estéril (ref. VDP099).

    • Si la cepa es exigente: introducir en caldo tipo BHI antes de sembrar.

    • Si es fácil: sembrar directamente en medio sólido o líquido.

    • No espere a que la bolita se atempere.

    • No reutilice ni reintroduzca el palillo ni la bolita.


PRECAUCIONES

  • Evite cambios de temperatura: devuelva el vial al congelador inmediatamente tras su uso.

  • Uso exclusivo en laboratorio.

  • Trabaje siempre con técnicas asépticas.

  • Confirme previamente la compatibilidad de su cepa con este sistema, antes de abandonar métodos tradicionales de resiembra.

  • Deseche el material contaminado siguiendo los protocolos de bioseguridad habituales.


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BURKHOLDERIA CEPACIA-BCPT AGAR (BASE)

BURKHOLDERIA CEPACIA-BCPT AGAR (BASE)

BURKHOLDERIA CEPACIA-BCPT AGAR (BASE)  es el Agar para aislamiento selectivo y diferencial de Burkholderia cepacia en aguas, cosméticos y otras muestras.

Funciona mucho mejor que BCSA y que OFPBL, sobre todo en su versión cromogénica (Ver Cromokit BCPT Agar)

 

 COMPOSICIÓN

  • Polipeptona bacteriológica      6.00 gbcpt
  • Piruvato sódico                          6.00 g
  • Dihidrógeno fosfato potasio   4.35 g
  • Hidrógeno fosfato sodio         1.42 g
  • Sales biliares                             1.50 g
  • Amonio sulfato                         1.00 g
  • Magnesio sulfato                      0.20 g
  • Sulfato férrico amónico           0.01 g
  • Rojo fenol                                   0.02 g
  • Cristal violeta                             0,01 g
  • Agar-agar                                   12.0 g

(Fórmula por litro) pH final: ajustar a 6.2 ± 0.2

B. cepacia suplemento selectivo

  • Polimixina B               150.000 UI/L
  • Ticarcilina                   500,0 mg/L

Añadir cuando el medio esté a 45-50º C.

 

PREPARACIÓN

  1. Disolver 32,5 g de medio en 1 litro de agua bidestilada. Calentar hasta ebullición, agitando hasta la total homogeneización. No sobrecalentar.
  2. Autoclavar a 121 ºC durante 15 minutos.
  3. Enfriar a 45-50 °C y añadir 14 ml de solución BCPT Suplemento estéril selectivo (SMT301) para análisis de aguas (no es imprescindible para analizar muestras cosméticas de escasa carga microbiana, pero en tal caso toda colonia crecida debe identificarse para evitar falsos positivos). Para máxima selectividad y evitar falsos positivos de Sphingomonas spp. y Moraxella spp., se puede añadir Gentamicina, aunque forman colonias diminutas y diferentes a las típicas de Burkholderia cepacia. En cambio Ochrobactrum anthropi y Delftia acidovorans sólo resultan distinguibles mediante identificación molecular, ya que las galerías comerciales dan, igual que este medio, falso positivo de B.cepacia.

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO. AGITE EL BOTE ANTES DE USAR. MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO, EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO.

DESHIDRATADO CÓDIGO: DMT004

MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO, EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO. PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO.

NOTA:

Antes Pseudomonas cepacia, Burkholderia cepacia es una especie muy resistente que agrupa numerosas cepas de bacilos Gram negativos, Oxidasa positivos (a menudo oxidasa-lentos), No Fermentadores de Glucosa, Móviles.

Algunas cepas pueden crecer en Agar Cetrimida sin fluorescencia y en Agar CN.

Muchas cepas no crecen a más de 35°C.

En TSA crecen con colonias regulares, redondeadas, blanquecinas, crema o amarillas. Deben identificarse como tal con galerías miniaturizadas específicas para microorganismos no fermentadores (KBH262).

Debe el nombre genérico a su descubridor y el específico, a haber sido descubierta infectando cebollas, aunque se encuentra también en aguas y biofilms.

Es una de las bacterias más versátiles que se conocen, capaz de usar más de 200 compuestos como nutrientes, entre los cuales se encuentran antibióticos, desinfectantes, pesticidas, hidrocarburos aromáticos policíclicos (HPA), tricloroetileno, policlorobifenilos, ftalatos… además de producir sus propios antibióticos para suprimir el crecimiento de otros competidores, así como matrices especiales para generar biofilms, lo que la hace extremadamente difícil de erradicar.

Es frecuente como saprófito en aguas, ambientes húmedos y suelos. Se emplea en biorremediación de contaminaciones y en control de plagas fúngicas agrícolas,  pero tambien algunas cepas son serios patógenos oportunistas en infecciones nosocomiales.

Parece que junto a otros Pseudomonadinos esta bacteria fué, desde el Arcaico, corresponsable del paso de la vida a Tierra, al sintetizar ciertas macromoléculas que actúan como inductores de la lluvia.

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…).

DESHIDRATADO:Polvo, rosado

PREPARADO: Estéril, crema-anaranjado a menudo con precipitados negros del hierro

CONTROL DE CRECIMIENTO 24-48 h a 35°C aproximadamente:

  • Burkholderia cepacia MKTA 25416, Crece abundantemente y deprisa, con colonias blancas, amarillas o asalmonadas, vira el medio a rosa-fucsia. Con respecto a PCA estandarizado*, recuento medio 275-294 %.
  • Pseudomonas aeruginosa MKTA 9027, Inhibido o escaso, lento (1 semana) y sin viraje.
  • Pseudomonas fluorescens MKTA 13525, Inhibido o lento y sin viraje
  • Bacillus subtilis MKTA 6633, Inhibido
  • Staphylococcus aureus MKTA 6538, Inhibido
  • Escherichia coli MKTA 25922, Inhibido

* El que cumple con recuperación superior al 92-125% con respecto a cepas cuantitativas trazables a cepa tipo.

 

 

MODO DE EMPLEO Y LECTURA DE RESULTADOS

Sembrar 1 ml de cosmético (o de su dilución madre enriquecida) equitativamente en la superficie de 3 placas y repartir con asa de Digralsky (en agua, sembrar una membrana por la que se hayan filtrado 100 ml) e incubar a 30-35°C durante 24-72 horas, ideal 48 h. Contar las colonias de 1,5-2 mm de diámetro, blancas o salmón con halo fucsia en el medio (si se enriqueció, no contar, ya que las ufc iniciales se habrán multiplicado; tampoco en tal caso hace falta el triplicado de placas y basta con sembrar en una por estría de agotamiento). Identificar con galerías para No Fermentadores (KBH262). El recuento/ml será la suma de los recuentos de las tres placas (por filtración, el recuento será el número de colonias/los 100 ml filtrados). De todas formas, no debe aparecer ni una sola colonia confirmativa en 1 g de cosmético enriquecido ni en 100 ml de agua farmacéutica o cosmética.

PRESENTACIÓN

MEDIO DESHIDRATADO 500g (DMT004) y suplemento en frasco pinchable estéril 100 ml (SMT301) c.s.p.7 litros de medio final. Tubo 20 ml Agar Base (TPL005) para preparar una placa tras fundir, enfriar y añadir 0,3 ml de suplemento SMT301. Frascos Agar BASE 100 ml: RPL024 para preparar 5 placas tras fundir, enfriar y añadir 1,5 ml de suplemento SMT301. Plaquita 55 mm hermética (PLAQUIS ®), medio completo, ref: PPL920.

Si desea más información sobre nuestros MEDIO BURKHOLDERIA CEPACIA-BCPT AGAR (BASE), rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

 https://www.microkit.es/monograficos/8-Burkholderia-cepacia-complex-monograf–a.pdf

 

MICROKIT® MUG PLUS CCA CROMOGENIC AGAR AGAR CROMOGÉNICO COLIFORMES Y E.COLI

MICROKIT® MUG PLUS CCA CROMOGENIC AGAR (CROMOGÉNICO COLIFORMES Y E.COLI)  S/BOE 31-MARZO-2009

MICROKIT® MUG PLUS CCA cromogénico E.coli-coliformes. Agar selectivo para la detección simultánea confirmativa de coliformes totales/fecales y E.coli en aguas y alimentos (cromógenos según ISO 16649-1:2001, AFNOR V08053-4)

INTRODUCCION

Inventado por MICROKIT en 1995, es el primer medio cromogénico que ha entrado en una Norma ISO (la ISO 9308-1) de aguas de consumo humano y envasadas. Los substratos cromógenicos  Salmon-Gal y X-Glucurónido, permiten la detección simultánea de coliformes

MICROKIT® MUGPLUS: Agar cromogénico para E. coli (colonias azules -olas-) y demás coliformes (colonias rosas -surf-). Campylobacter y Shigella crecen con colonias verdes (hierba) y otros Gram negativos con colonias crema (Pseudomonas -montañas-).

E.coli (colonias azules -olas-) y demás coliformes (colonias rosas -surf-). Campylobacter y Shigella (colonias verdes-hierba) y otros Gram negativos con colonias crema (Pseudomonas -montañas-).

(colonias rojas) y E.coli (colonias azules) en el mismo medio de cultivo.
La acción simultánea de las peptonas seleccionadas en el medio, del piruvato y de los tampones fosfato, garantiza un rápido crecimiento colonial, incluso para los coliformes en estado subletal. El crecimiento de la flora acompañante Gram positiva, queda inhibido gracias al lauryl sulfato y a la mezcla de antibióticos Cefsulodina + Vancomicina.
El enzima Beta-D-galactosidasa, característica de los coliformes, actúa sobre el Salmon-GAL provocando la pigmentación roja o rosada en las colonias de coliformes.
E.coli, coliforme Beta-D-glucuronidasa positivo, actúa sobre el Salmon-GAL y sobre el X-Glucurónido (5-bromo-4-chloro-3-indoxyl Beta-D-glucurónido) de modo que sus colonias crecen de azul oscuro al añil.

COMPOSICION (g/l)

Inconfundibles colonias añil (no violetas ni esmeralda) de E.coli

Inconfundibles colonias añil (no violetas ni esmeralda) de E.coli

  • Peptonas 3´0
  • Cloruro Sódico 5´0
  • Dihidrógeno Fosfato Sódico 2´2
  • Hidrógeno Fosfato Disódico 2´7
  • Piruvato Sódico 1´0
  • Triptófano 1´0
  • Tergitol 7 0´15
  • Sorbitol 1´0
  • Mezcla cromogénica
  • (Salmon Gal 0,2 y X-Glu 0,2) 0´4
  • Agar-Agar 10´0
  • pH Final: 6´8 ± 0´2

MODO DE EMPLEO CCA cromogénico E.coli coliformes

Agitar el bote. Disolver 26,5 g en 1 litro de agua destilada, calentando hasta ebullición. Mantener durante 1 minuto. Agitar hasta su completa disolución. Añadir asépticamente, cuando el medio se haya enfriado a 55 ºC, 5 mg de Cefsulodina + 5 mg de Vancomicina (total 5 ml de solución estéril MICROKIT SMS400) para aumentar la selectividad del medio y eliminar la flora acompañante Gram positiva. No autoclavar. El medio final es blanquecino. No refundir más de una vez.
En alimentos, la siembra en profundidad elimina los Gram negativos no fermentadores, que en la técnica de Filtración de Membrana para análisis de aguas pueden dar lugar a falsos positivos y además reducir en un 50% la recuperación de los microorganismos diana; para evitarlo, añadir sobre la membrana una segunda capa de medio agarizado, previamente enfriado a 50 ºC. Esto no es tan necesario en aguas potables o poco contaminadas por flora acompañante.

LECTURA DE RESULTADOS

Nueva imagen (5)Tras 18-24 horas de incubación a 35-37 ºC aproximadamente (ó 44,5 ºC aproximadamente para C. fecales), los resultados son: E.coli: Colonias de azul oscuro a añil (Salmon GAL y X-Glucurónido positivo) que resultan indol positivas (puede comprobarse directo en la colonia). Coliformes: Colonias rosas- rojas (Salmon GAL positivo) + las azules (E.coli). Otras enterobacterias: Colonias incoloras, excepto cepas como las Salmonella o Shigella Beta-D glucuronidasa positivas, que aparecen de color azul claro a turquesa. Muchas cepas de Shigella y de Campylobacter crecen con colonias verdes, pero también es del máximo interés que sean detectados, al ser microorganismos patógenos.

Unas pocas cepas de Enterococcus durans crecen con colonias rojas, pero también indican contaminación fecal del agua. Ciertas cepas de Staphylococcus aureus y de Bacillus crecen con colonias naranjas, pero nunca rosas-rojas. Otras cepas crecen con colonias crema que no se han de tener en cuenta. Las colonias con colores intermedios (violáceo-lila) proceden de ufc mixtas: diluir y repetir el análisis, o mirar una placa sembrada con una dilución mayor.
Confirme E.coli pinchando ó cubriendo sus colonias con reactivo de Kovacs. Si éste
vira a rojo-cereza antes de 1 minuto, la reacción es, definitivamente, confirmativa.

Color de la colonia Salmon-GAL X-Glucurónido Indol Rto. PCA estandarizado*

CRECIMIENTOS TÍPICOS

  • E.coli Azul oscuro-añil o turquesa + + + 58-125% **
  • Citrobacter freundii Rojo-rosa + – – 98-106%
  • Klebsiella oxytoca Lila-Granate + – – >99%
  • Enterobacter cloacae Rojo-rosa + – – 58-104%
  • Salmonella enteritidis Incoloro – – – 29-202%
  • Shigella flexneri Incoloro (azul en superficie) – – –
  • Salmonella MUG+ Azul claro – + –
  • E. coli O157 : H7 Rojo-rosa + – + 230%
    * El que cumple con recuperación superior al 92-125% con respecto a cepas cuantitativas trazables a cepa tipo.
    Incertidumbres detectadas entre todos los lotes a lo largo de un año (la mayoría de la incertidumbre se debe a la cepa y a la proporción de cepas acompañantes inoculadas, no al medio).
    ** En superficie, ya que en masa recupera el 200% más que en superficie
    Un estudio comparativo independiente (*) de validación cuantitativa entre este medio, otros cromogénicos, Endo y MFC demuestra que MUG PLUS® es el mejor medio de recuento de E. coli en aguas. La validación interna realizada por MICROKIT con centenares de muestras y la revalidación trimestral en Seilagua ®, Seilalimentos y Seilaparfum, lo confirman para agua y para todo tipo de matrices alimentarias y cosméticas.

CCA cromogénico E.coli coliformes

VENTAJAS SOBRE OTRAS MARCAS

Ser los pioneros en el diseño de este medio nos da dos ventajas claras:

1-Gracias a ciertos secretos de fabricación, las colonias azules de presuntos E.coli se pueden confirmar directamente añadiendo reactivo de indol sobre la colonia, ya que en caso positivo, habrá un claro viraje del reactivo amarillo a rosa alrededor de las colonias del microorganismo diana.

2-Las colonias rosas de presuntos coliformes se pueden confirmar directamente añadiendo reactivo de la citocromo-oxidasa en goteros monodosis sobre las colonias, incluso bañando toda la placa, ya que en caso positivo (oxidasa positivo, no coliforme), habrá un claro viraje del reactivo incoloro a azul oscuro alrededor de las colonias del microorganismo diana.

PRESENTACIÓN

* Botes de 100 g de medio de cultivo deshidratado en polvo agarizado. Referencia DMT400-
* Suplemento en frasco de 100 ml, con 100 mg de solución estéril de Cefsulodina + Vancomicina, para 20 litros de medio (5 ml/l). Ref. SMS400.
* Frascos de 100 ml de agar MUG PLUS® preparado con Cefsulodina+Vancomicina. Referencia RPL444.
* Frascos de 200 ml de agar MUG PLUS® preparado con Cefsulodina+Vancomicina. Ref. RPL244.
* Tubos de 20 ml de agar MUG PLUS® preparado con Cefsulodina+Vancomicina. Referencia TPL400.
* Viales 2 ml de caldo MUG PLUS® de MF con Cefsulodina+Vancomicina. Ref. FPL400.
* Viales pinchables de 100 ml de caldo MUG PLUS® de MF con Cefsulodina+Vancomicina. Ref. RPL400.
* Plaquitas herméticas de Agar MUGLUS® preparado con Cefsulodina+Vancomicina . Referencia PPL902

El usuario es el único responsable de la eliminación de los microorganismos según la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.

https://www.microkit.es/pdf/mugplus-agar.pdf

https://www.microkit.es/monograficos/11-E.coli-y-dem–s-coliformes-monograf–a.pdf

Prepárese para más de una sorpresa informativa cuando vea nuestro video sobre los medios Cromogénicos: https://www.youtube.com/watch?v=-JVPVWxY8ZE&t=271s

CEPAS CUANTITATIVAS EN LENTÍCULAS

CEPAS EN LENTÍCULAS CUANTITATIVAS

CEPAS CUANTITATIVAS EN LENTÍCULAS: siga la Norma ISO 11133-2 de Control de calidad de medios de cultivo, realice sus validaciones y sus Challenge Test, gracias a las diferentes concentraciones de estas cepas cuantitativas.

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Las lentículas cuantitativas de MICROKIT contienen cantidades precisas de cepas microbianas (de colección o salvajes-nativas-in house), cantidades que se indican (exactitud y precisión del lote) en su certificado de control de calidad. Y todo ello en 2 (y a veces hasta 3) medios de cultivo diferentes (TSA o SDA como medio general y el medio selectivo o cromogénico más usado para la cepa en cuestión). En el mismo certificado aparece la trazabilidad y el pase desde la cepa TIPO (1, 2 ó 3), el color de las lentículas del lote y otros muchos datos de interés sobre la cepa.

Empleamos la nomenclatura de la ISO 11133-2: WDCM (colección Universal).

La caducidad

de estas cepas desde fabricación es excepcionalmente larga (2 años en casi todas ellas), lo cual hemos conseguido gracias al proceso de fabricación, que no las estresa como sucede con las cepas liofilizadas. Excepto en 2 cepas que solo tienen 1 año de caducidad, si se acerca la caducidad del lote (< 6 meses) y aun no hemos elaborado otro más reciente, le regalamos el 50% del valor en la misma cepa.

Vendemos docenas a precio de decena, para que las dos sobrantes las invierta en controlar con qué concentración han llegado a sus instalaciones, para que si hubiera variado significativamente con respecto a la concentración que certificamos, pueda calcular y aplicar su propio factor de corrección.

El espacio que ocupan

en el congelador de la nevera es ínfimo: cada lentícula está dentro de un tubito Eppendorf con silicagel, los 12 tubitos dentro de un tubo hermético con tapón de silicagel, y éste en sobrecito Faraday de aluminio de sólo 12 x 18 cm. Así, con este minimalismo en su packaging, en un cajón de congelador normal de nevera caben perfectamente hasta 100 cepas diferentes.

Ofrecemos la gama completa

que necesitará para seguir la Norma ISO 11133-2 (si no encuentra la cepa que busca, la podemos fabricar).

Tambien fabricamos lotes especialmente para algunos clientes que necesitan lentículas especiales para sus intercomparativos; así como cuantificadas a partir de sus microorganismos aislados de monitorización ambiental para realizar el test de promoción de crecimiento tal y como se indica en el Anexo 1 de fabricación de medicamentos estériles de las NCF.

Podemos fabricar a tres rangos: BAJO (aprox 1.000 ufc/lentícula, diluyéndola en 10 mL obtendremos 10 inóculos de <100 ufc/mL), MEDIO (>1.000 Y < 100.000 ufc/lentícula) y ALTO (>100.000 y <100.000.000 ufc/lentícula, para Challenge test y validaciones donde se emplean muchos inóculos en un mismo día de trabajo)

CEPAS CUANTITATIVAS EN LENTÍCULAS

https://youtu.be/4WJ8FQl6GIE

 

SEILASESORIA – VALIDACIÓN (Servicio de consultoría práctica con validación in situ)

SEILASESORIA – VALIDACIÓN (Servicio de consultoría práctica con validación in situ)

SEILASESORIA – VALIDACIÓN, CURSO de Formación que incluye la validación in situ del parámetro microbiológico que desee, por el método de pares

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Hay clientes, auditores e inspectores que le exigirán la validación de cualquier método, kit o medio de cultivo alternativo que emplee, AUNQUE YA ESTÉ VALIDADO por su diseñador y fabricante.

Esto implica realizar un experimento con un número concreto de muestras previamente contaminadas con los microorganismos diana, interferentes y acompañantes. En su propio laboratorio. Realizado por sus propios analistas. Comparando el método, kit o medio nuevo con el clásico universalmente aceptado. Y también implica aplicar estadística para evaluar parámetros muy concretos:

-En métodos cualitativos (detección o presencia/ausencia): sensibilidad, especificidad, eficacia, límite de detección, conformidad, concordancia…

-En métodos cuantitativos (recuentos): Límites de cuantificación o rango, Exactitud, Precisión, Linealidad, Inclusividad, Exclusividad, Robustez del parámetro, Incertidumbre de las medidas…

Nadie nos ha enseñado , ni en la carrera ni en masters o cursos posteriores, a validar correctamente.

Microkit lleva 3 décadas validando sus diseños (kits, medios y procedimientos) y por ello es de las únicas entidades que encontrará, capacitadas para impartir estos cursos prácticos, en los que además de formarse, tendrá validado el parámetro que elija, sea cualitativo, sea cuantitativo.

Es importante no confundir una validación microbiológica con una validación química, ya que no se parecen en nada, de modo que intentar realizar una validación microbiológica desde el punto de vista químico, con herramientas y mentalidad química, como propone la Norma ISO 16140, es perder el tiempo y el dinero.

Nuestros cursos de formación (iniciación, auditorías de optimización y validaciones) están avalados en el alcance de nuestro certificado ISO 9001 desde 1999.

En MICROKIT le ayudamos a demostrar, con pruebas estadísticamente significativas y con limites de aceptabilidad bien claros y argumentados, si el método que desea emplear o seguir empleando es válido porque detecta o enumera adecuadamente:

1-Diseñamos el experimento

2-Nos desplazamos a guiarle durante el mismo en una jornada completa de trabajo

3-Elaboramos el informe completo de hasta 40 páginas con los resultados del experimento, en el que se refleja todo lo indicado y las conclusiones absolutas.

4-Le enviamos un diploma externo que avala su participación en la validación

No lo piense más, contrátenos este servicio: sus análisis no tienen  por qué volver a ser sometidos a técnicas del siglo pasado. Avance con el I+D de sus proveedores de kits, medios y procedimientos.

http://SEILASESORIA-Validaciones-in-situ.pdf

EL METODO P/A (PRESENCIA/AUSENCIA) PARA ANALISIS DE AGUAS:  KITS PREPARADOS Y CONVERSIÓN A RECUENTO NMP

EL MÉTODO P/A (PRESENCIA AUSENCIA) Y RECUENTO NMP MEDIANTE LOS KITS P/A DE MICROKIT PARA TODOS LOS PARÁMETROS. NMP-RACKS

1- POTABILIDAD MICROBIOLOGICA DE LAS AGUAS MEDIANTE EL METODO DE PRESENCIA/AUSENCIA (Kits preparados sin necesidad de Filtración de Membrana ni de Número Más Probable)

Extraído de la Directiva Europea sobre aguas de consumo humano, (obligada desde el 3/XI/2001, y sobre todo desde su transcripción a B.O.E. 45 de fecha 21/2/2003).

Esta Normativa, además de afectar a las aguas potables y envasadas, también afecta a todas las aguas de uso en industrias alimentarias, para producción, lavado, etc.:

TIPO DE ANÁLISIS  PARÁMETRO                      NIVEL GUIA KIT P/A MICROKIT

Desde la publicación de estos datos, la técnica MPN para controlar la potabilidad de aguas queda obsoleta, quedando relegada sólo a recuento en productos no filtrables;

en efecto, al hablar la legislación de ausencia en 100 ml no se puede utilizar la técnica de MPN y extrapolar resultados a partir de una muestra significativamente inferior (33 ml) a los 100 ml requeridos.

Los recuentos en 100 ml pueden realizarse con la técnica de MF, pero en el caso que nos ocupa podemos utilizar las MPN-RACKS (Ref: 1001020) para convertir cualquier kit P/A en Número Más Probable.

Por todo ello surge con fuerza la nueva técnica de Presencia /Ausencia (P/A), útil tanto para trabajo de campo como para Laboratorio, cuando lo que se precisa no es recuento, sino detección de un microorganismo en grandes muestras.

Todos los kits P/A de MICROKIT en frascos preparados incorporan inactivadores de la eventual presencia de cloro en el agua, que actuaría como bacteriostático y enmascararía los resultados como falsos negativos.

El método P/A es mucho más sensible (tienen muchos menos falsos negativos) que el método MF, pero es menos específico (tienen más falsos positivos).

Por ello es tan útil como screening negativo, para poder procesar un gran número de muestras.

Si el kit da negativo, el resultado es negativo y no hace falta hacer nada más.

Y si el kit sale positivo, hay que confirmar esa muestra estriando en placa e identificando colonias aisladas.

Nuestros kits están validados para uso en aguas continentales, no marinas ni salinas.

NOTA: Para analizar agua de mar, se debe diluir ésta a razón 1:10 en agua destilada estéril, ya que la salinidad del mar (3,7-4,5%) sería excesiva para los kits.

Todos nuestros kits P/A permiten ahorrar 4-8 horas de incubación si, antes de inocularlos, se precalienta a 37°C la muestra de agua en un baño María.

 

EL MÉTODO P/A (PRESENCIA AUSENCIA) Y RECUENTO NMP MEDIANTE LOS KITS P/A DE MICROKIT PARA TODOS LOS PARÁMETROS. NMP-RACKS

1-A  KIT P/A DE DETECCION DE COLIFORMES (TOTALES Y/O FECALES) Y E.COLI EN 100 ml DE AGUA (Caldo MICROKIT® P/A MCC-COLICULT ® Cromofluorogénico) Referencia: RPL303

La legislación española (BOE 21/2/03) exige la ausencia de E.coli y de Coliformes totales en 100 ml de agua de consumo humano (la clásica potable y además la de uso en industria alimentaria).

Las dos posibilidades contempladas hasta ahora para este análisis (Número Más Probable ‑NMP‑ y Filtración de Membrana ‑FM‑) eran tediosas en su manipulación (9 tubos la primera, aparato de filtración la segunda)

y los resultados obtenidos en Coliformes implicaban un alto porcentaje de resultados falsamente negativos (18 % en el primer caso y 36 % en el segundo

según JACOBS & Co., Mayo ’86, Comparison of Membrane Filter, Multiple Fermentation Tube and Presence/Absense (P/A) Techniques for detecting Total Coliforms in Small Community Water Systems, App. Env. Microbiol., Vol. 51, n.º 5, pp. 1007-1012).

Con el nuevo método de Presencia/Ausencia, que ya es oficial en U.S.A., el porcentaje de falsos negativos se reduce considerablemente,

ya que la muestra es de 100 ml (muy superior que en la técnica NMP) y las bacterias no sufren como en la técnica de FM.

Además de su mayor sensibilidad, el método P/A es el más cómodo de inocular y el más simple de interpretar.

Cada vez son más los autores que coinciden en que no hay mejor parámetro indicador de la contaminación fecal de las aguas que la especie Escherichia coli.

Efectivamente, las enterobacterias son un grupo demasiado extenso que contiene muchos representantes naturales en las aguas, que no indican contaminación fecal.

Y los coliformes también cuentan con especies naturales en las aguas, además de ser un grupo artificial (hay especies como el mismo E. coli con cepas que son coliformes y con cepas que al no producir gas al fermentar la lactosa, ni tener galactosidasa, no son coliformes).

Su división en coliformes totales y coliformes fecales (parámetro éste más selectivo) no resolvía  totalmente el problema.

Por ello el kit de Coliformes y E. coli P/A resulta de gran interés para análisis de potabilidad como parámetro más estricto que el descrito en la legislación anterior a Febrero de 2003,

y cumple perfectamente con la nueva legislación, al haberse validado en ensayos intercolaborativos y en el intercomparativo SEILAGUA, realizados en España durante 1999-2003,

donde demuestra un 10% más de sensibilidad (escasez de falsos negativos) que el método MF para el parámetro E.coli.

El kit se basa en la moderna y reconocida técnica del MUG, o fluorescencia indicadora de E. coli.

Se incuba a 35 ó 44,5 ºC (según se busquen, además de E. coli, coliformes totales o fecales, respectivamente) durante sólo 24 (-48) horas.

Y del X-Gal que hace que los coliformes viren el agua a azul turquesa a aprtir de la fermentación del sorbitol, con lo cual no se escapan los coliformes lactosa negativos.

Haya o no coliformes (hay cepas de E. coli que no fermentan la lactosa ni el sorbitol ni, por tanto, pueden considerarse coliformes strictu sensu), observar en la oscuridad completa con luz U.V.A. de 366 nm (linterna MICROKIT).

Si aparece fluorescencia azul claro (comparar con un control positivo -kit inoculado con cepa de E. coli– y con un control negativo -kit inoculado con agua estéril-), añadir  1 ml de reactivo de Indol Kovacs (MICROKIT SBH056).

Si tras unos segundos aparece en superficie un anillo de color rojo-cereza, la presencia de E. coli es absolutamente confirmativa, por lo que no son necesarias identificaciones posteriores.

Como control positivo puede utilizarse la cepa E. coli en cómodas lentículas de MICROKIT.

Recomendamos asimismo la participación en servicios intercomparativos como SEILAGUAS FARMACOSMÉTICAS, para validar los procedimientos y los operarios.

MODO DE EMPLEO

  1. Añadir 100 ml de agua de muestra abriendo el tapón o bien pinchando en el obturador.
  2. Cerrar el tapón sin apretar a fondo (para que escape el exceso de gas que se pueda generar).
  3. Agitar para mezclar.
  4. Incubar en posición vertical a 35 ºC  0,5 durante 24‑48 horas.
  5. Si se buscan específicamente Coliformes fecales, incubar a 44,5 ºC (aunque si no había Coliformes totales, lógicamente tampoco habrá Coliformes fecales).

INTERPRETACION DE RESULTADOS

Observar la producción de turbidez (crecimiento bacteriano inespecífico),

el viraje del medio incoloro a azul (reacción positiva ONPG-XGal, típica de los coliformes)

y la fluorescencia en la oscuridad con luz ultravioleta de 366 nm (reacción positiva del MUG, típica de E.coli).

En este último caso añadir unas gotas de Kovacs (SBH056) directamente, para confirmar E.coli (formación de anillo rojo) con la prueba del indol.

PRESENTACION

Cajas con 10 frascos. Caducidad desde fabricación: 1 año.

Conservar entre 4 y 25 ºC, en la oscuridad.

Este kit sustituye, desde principios de 1998, al antiguo RPL303 de Coliformes + E.coli con campana Durham y al antiguo RPL300 de Coliformes totales + Coliformes Fecales con campana Durham.

Validación: Realizada durante 7 años de intercomparación de 70 laboratorios de toda España en más de 700 muestras duplicadas.

Se demuestra comparado con filtración de membrana en el medio oficial (Tergitol Chapman TTC Agar), una sensibilidad del 100% frente al 97,7% del método oficial para coliformes, así como una sensibilidad del 100% para E.coli frente al 95,65% del método oficial.

Una especificidad del 100% para coliformes frente al 94,25% del método oficial y del 100% para E.coli frente al 94,57% del método oficial.

Y un límite de detección de hasta 3±2 ufc/100 ml frente a 5±2 ufc/100 ml del método oficial.

Si analiza muchas muestras al día, vea las versiones viales P/A y Botes P/A.

 

EL MÉTODO P/A (PRESENCIA AUSENCIA) Y RECUENTO NMP MEDIANTE LOS KITS P/A DE MICROKIT PARA TODOS LOS PARÁMETROS. NMP-RACKS

1-B  KIT AUXILIAR PARA RECUENTO TOTAL EN 1 ml DE AGUA: TUBOS NUTRIENT AGAR TTC + PLACAS Petri (Agar Nutritivo TTC, Agar Común TTC)                   Referencia: RPL305

Según el B.O.E. 226 de 20/09/90, en un agua potable no han de aparecer más de 10 bacterias aerobias por mililitro (incubando a 37 ºC) ni más de 100 bacterias aerobias por mililitro (incubado a 22 ºC).

El recuento en 1 ml puede realizarse con la técnica MF (MICROKIT UFM006, UFM012), pero resulta más lógico utilizar la técnica tradicional como en alimentos,

dado que la técnica MF encuentra sus ventajas cuando el tamaño de la muestra es muy superior a 1 ml (de hecho, si se utiliza MF para 1 ml hay que añadir al menos 25 ml de Agua Peptonada estéril para que la filtración sea homogénea en toda la membrana).

Con el Kit que presentamos, Ud. ya no necesita autoclavar medios deshidratados, ni realizar recuentos aproximados.

El medio esta estéril y listo para su empleo, y el recuento es exacto.

Las colonias crecen rojas sobre el medio, blanquecino. No hace falta tratar la muestra contra el cloro, el medio ya incorpora Tiosulfato Sódico.

La caducidad de 2 años, permite mantener un stock sin riesgo de echar a perder reactivos, ventaja importante sobre las placas preparadas.

Para seguir más estrictamente el BOE 21/2/2003 (ISO 6222) usar tubos de Yeast Extract Agar (TPL060).

MODO DE EMPLEO E INTERPRETACION DE RESULTADOS

  1. Fundir 2 tubos al Baño María (98 ºC aproximadamente). No sobrecalentar o el medio virará a rosa-rojo.
  2. Añadir 1 ml de agua de muestra en una placa Petri estéril. Duplicar la operación.
  3. Trabajar junto a la llama de un mechero para conseguir unas condiciones asépticas en el ambiente.
  4. Verter el contenido de un tubo (atemperado hasta que no queme la mano), a una de las placas con muestra. Duplicar la operación en la otra placa con muestra.
  5. Cerrar las placas y hacerlas girar 10 veces en cada sentido para mezclar la muestra con el medio. Dejar solidificar.
  6. Incubar las placas con el agar arriba, una a 37 ºC durante 24 horas y otra a 22 ºC durante 72 horas.
  7. Contar todas las colonias, que habrán virado a rojo, contrastando estupendamente con el medio de cultivo y haciendo el recuento sumamente fácil.
  8. No deben aparecer más de 10 colonias en la primera placa, ni más de 100 en la segunda.

PRESENTACION

Kits de 40 tubos + 40 placas para 20 análisis dobles de recuento total en 1 ml de agua. Caducidad desde fabricación: 1 año. Conservar entre 2 y 25 ºC, en la oscuridad.

Como control positivo puede utilizarse una cepa de E.coli (CRIOSTRAIN MKTA 25922) o de

Como control positivo puede utilizarse la cepa E. coli, de Pseudomonas aeruginosa y/o de Enterococcus faecalis en cómodas lentículas de MICROKIT.

Recomendamos asimismo la participación en servicios intercomparativos como SEILAGUAS FARMACOSMÉTICAS, para validar los procedimientos y los operarios.

Material necesario no incluido: Estufa a 35-37 ºC (VRP001), Pipetas estériles 1 ml (VFR273), Zona aséptica:

Si no dispone de cabina de flujo laminar, puede usar el Portabunsen de MICROKIT.

NOTA: Desde la creación de las DryPlates®-TC-Water,

estas plaquitas resultan mucho más adecuadas para recuento total en 1 ml de agua porque absorben directamente el ml de muestra de agua sin necesidad de fundir medios como sucede en el método clásico, incluido el kit mencionado arriba.

Los resultados de la validación para aguas no pueden ser más alentadores y demuestran que la siembra por fusión en masa de agares calientes es un punto crítico más importante de lo que se cree.

Nos remitimos al folleto de las DryPlates®-TC y al certificado de validación intercolaborativa de Microkit sobre las mismas.

 

EL MÉTODO P/A (PRESENCIA AUSENCIA) Y RECUENTO NMP MEDIANTE LOS KITS P/A DE MICROKIT PARA TODOS LOS PARÁMETROS. NMP-RACKS

1-C KIT P/A PARA LA DETECCION DE ENTEROCOCOS FECALES GRUPO D DE LANCEFIELD EN 100 ml DE AGUA (ENTEROCULT MICROKIT® P/A modificado) Ref: RPL301

Bilis Aesculina Azida (BEA) es un medio ISO para detección de enterococos fecales en muestras de aguas.

Aplicado a la concentración adecuada, y con ciertas modificaciones (pasarlo de agar a caldo), permite la utilización en kits P/A.

MODO DE EMPLEO

  1. Añadir 100 ml del agua de muestra.
  2. Cerrar sin apretar a fondo.
  3. Agitar para mezclar.
  4. Incubar a 37 ºC (41°C) durante 24‑48 horas.

Como control positivo puede utilizarse la cepa Enterococcus faecalis en cómodas lentículas de MICROKIT.

Recomendamos asimismo la participación en servicios intercomparativos como SEILAGUAS FARMACOSMÉTICAS, para validar los procedimientos y los operarios.

INTERPRETAClON DE RESULTADOS

La aparición de turbidez con ennegrecimiento indica que la muestra tiene estreptococos fecales, sobre todo si el medio pierde su fluorescencia natural bajo luz de 366 nm (linterna MICROKIT). Además se vuelve opaco.

PRESENTACION: Cajas con 10 frascos. Caducidad desde fabricación: 1 año.

Conservar entre 2 y 25 ºC, en la oscuridad.

Validación: Realizada durante 7 años de intercomparación de 70 laboratorios de toda España en más de 700 muestras duplicadas.

Se demuestra comparado con filtración de membrana en el medio oficial para enterococos fecales (Slanetz-Bartley Agar + Bilis Esculina Azida Agar), una sensibilidad del 100% frente al 95,6%  del método oficial.

Una especificidad del 100%  frente al 61,0% del método oficial.

Y un límite de detección coincidente en ambos métodos.

Si analiza muchas muestras al día, vea las versiones viales P/A y Botes P/A.

 

EL MÉTODO P/A (PRESENCIA AUSENCIA) Y RECUENTO NMP MEDIANTE LOS KITS P/A DE MICROKIT PARA TODOS LOS PARÁMETROS. NMP-RACKS

1-D KIT AUXILIAR PARA RECUENTO DE CLOSTRIDIOS SULFITO REDUCTORES EN 20‑50 ml DE AGUA (Agar SPS parafinado modificado concentrado)                   Referencia: RPL062

Los anaerobios no crecen muy bien con el método de Filtración de Membrana (MICROKIT UFM014, UFM011) y el método P/A no es válido en muchas legislaciones, que admiten 1 UFC de Clostridio Sulfito-Reductor en 20-50 ml de agua.

Por ello, hemos diseñado un kit especialmente preparado para poder realizar recuento y P/A en muestras de gran volumen (hasta 50 ml).

MODO DE EMPLEO E INTERPRETACION DE RESULTADOS:

  1. Fundir al Baño María a 98 ºC.
  2. Inocular en profundidad, mediante una pipeta caliente, los 20-50 ml de agua de muestra calentada a 75 ºC (si la parafina solidifica antes de sacar la pipeta, recalentar el conjunto a 75 ºC durante el mínimo tiempo necesario para que la parafina vuelva a licuar).
  3. El shock térmico elimina las formas vegetativas y activa la germinación de las esporas.
  4. Voltear sin agitar para mezclar sin airear el medio, una sola vez.
  5. Incubar a 35‑37 ºC durante 24‑48 horas.

PRESENTACION: Cajas con 10 frascos. Caducidad desde fabricación: 1 año.

Como todos los kits para anaerobios, NO debe guardarse en nevera, para impedir que el medio se oxigene con el frío.

Conservar a 21-25 ºC, en la oscuridad.

Como control positivo puede utilizarse la cepa Clostridium perfringens en cómodas lentículas de MICROKIT.

Recomendamos asimismo la participación en servicios intercomparativos como SEILAGUAS FARMACOSMÉTICAS, para validar los procedimientos y los operarios.

NUEVO KIT:

Emplee Quanti-P/A Clostricult para detección y recuento de Clostridium perfringens con TSC (o bien de Clostridium sulfito redutores con SPS) y sus esporas, sin neesidad de alentar medios.

 

EL MÉTODO P/A (PRESENCIA AUSENCIA) Y RECUENTO NMP MEDIANTE LOS KITS P/A DE MICROKIT PARA TODOS LOS PARÁMETROS. NMP-RACKS

1-E KIT PARA P/A DE CLOSTRIDIUM PERFRINGENS Y SUS ESPORAS CLOSTRICULT MICROKIT® P/A Referencia: RPL 308

Elaborado a partir de caldo TSC (CLOSTRICULT-2) para adaptarse a las optimizaciones observadas mediante los servicios SEILAGUA®, desde Octubre de 2005, se optimiza de nuevo en Mayo 2007 para facilitar la anaerobiosis con más agentes reductores y con parafina líquida.

Añadir 100 ml de agua de muestra, dejando una cámara de aire de 5 cm de altura.

Cerrar el tapón sin apretar a fondo.

Voltear sin agitar, para mezclar sin oxigenar.

Incubar a (37 ºC) 44-46 ºC durante 18-48-(72) horas.

Si busca sólo esporas, realizar un shock térmico de 5-10 minutos a 86 ºC.

El viraje a negro (que suele expandirse de abajo arriba) a 44-46 ºC indica presencia de Clostridium perfringens (o de sus esporas si se realizó shock térmico).

El viraje a negro a 37 ºC indica sólamente presencia de Clostridios sulfito-reductores (o de sus esporas si se realizó shock térmico).

Como control positivo puede utilizarse la cepa Clostridium perfringens en cómodas lentículas de MICROKIT.

Recomendamos asimismo la participación en servicios intercomparativos como SEILAGUAS FARMACOSMÉTICAS, para validar los procedimientos y los operarios.

El usuario final es el único responsable de la destrucción de los microorganismos que se hayan multiplicado en el interior de cada tubo o frasco, de acuerdo con la legislación medioambiental vigente.

Añada cloro o lejía hasta el borde con cuidado de no tocar ni derramar el cultivo (si al abrir los botes sale gas a presión o líquido, lavar bien las manos con agua corriente y jabón), o bien autoclavar, antes de desechar a la basura.

Validación: Realizada durante 7 años de intercomparación de 70 laboratorios de toda España en más de 700 muestras duplicadas.

Se demuestra comparado con filtración de membrana en el medio oficial para Clostridium perfringens y sus esporas (mCP Agar y también frente a TSC Agar), una sensibilidad del 77,3 % frente al 14,33%  del método oficial y al 56,0% del TSC.

Una especificidad del 100%  frente al 100% del método oficial y del 95,8% del TSC.

Y un límite de detección de 3 a 10 veces más cercano a 1 ufc/100 ml que el método oficial: 2±1 ufc/100 ml con un 85% de detecciones frente a 8±7 ufc/100 ml en TSC Agar con sólo un 40% de detecciones.

Si analiza muchas muestras al día, vea las versiones viales P/A y Botes P/A de polvo estéril.

 

2- EL METODO MICROKIT® P/A PARA OTROS PARAMETROS (Kits preparados sin necesidad de Filtración de Membrana ni de número Más Probable)

Además del parámetro de POTABILIDAD en las aguas, existen otros de gran importancia en la industria y medio ambiente.

Presentamos los kits P/A diseñados especialmente para todos ellos.

Todos cuentan con 1 año de caducidad desde fabricación en frascos preparados, se presentan en cajas de 10 unidades e incorporan inactivadores de la eventual presencia de cloro en el agua.

Si analiza muchas muestras al día, vea las versiones viales P/A y Botes P/A de polvo estéril.

Se almacenan entre 2 y 25 ºC al abrigo de la luz.

El modo de empleo también es común a todos ellos: Añadir hasta 100 ml del agua o del líquido de muestra, agitar e incubar.

Se describen a continuación la utilidad, las condiciones de incubación y la interpretación de resultados de todos ellos:

 

EL MÉTODO P/A (PRESENCIA AUSENCIA) Y RECUENTO NMP MEDIANTE LOS KITS P/A DE MICROKIT PARA TODOS LOS PARÁMETROS. NMP-RACKS

2-A  MICROKIT® P/A PARA LA DETECCION DE PSEUDOMONAS sp. (Y AEROMONAS / PLESIOMONAS) EN 100 ml DE AGUA (Caldo GSP modificado)      Referencia: RPL309

La presencia de estos microorganismos es indicadora de infiltración de aguas naturales, residuales o no, y puede provocar la formación de limos obstructores de circuitos.

En ciertos países, como Holanda, la legislación exige la ausencia de Aeromonas en las aguas potables.

La aparición de Pseudomonas diminuta en aguas filtradas por 0,22 µm implica la rotura de los filtros.

Además distintas especies como Pseudomonas aeruginosa son patógenas para el hombre;

ciertas especies de Aeromonas son patógenos animales muy indeseables en piscifactorías:

y algunas cepas de Aeromonas hydrophila han provocado enfermedad en el hombre;

y Plesiomonas shigelloides provoca en el hombre cuadros gastroenteríticos similares a los de Shigella o Vibrio.

Este kit es útil para análisis de aguas purificadas en laboratorios cercanos al mar, a cauces de ríos y lagos, a pozos…, así como para análisis de aguas de piscinas y playas, aguas de barcos, acuicultura, etc.

El kit se incuba a 30-37 ºC durante 24-72 horas.

El viraje a naranja o amarillo es indicador presuntivo de Aeromonas/Plesiomonas.

El viraje a azulado o violáceo es indicador presuntivo de especies de Pseudomonas.

Cualquier turbidez sin viraje es sospechosa.

Turbidez y/o viraje deben confirmarse sembrando una gota del líquido del kit en la superficie de una placa de GSP Agar (MICROKIT DMT148) e identificando las colonias crecidas (MICROKIT KBH262).

Como control positivo puede utilizarse la cepa Pseudomonas aeruginosa en cómodas lentículas de MICROKIT.

Recomendamos asimismo la participación en servicios intercomparativos como SEILAGUAS FARMACOSMÉTICAS, para validar los procedimientos y los operarios.

 

EL MÉTODO P/A (PRESENCIA AUSENCIA) Y RECUENTO NMP MEDIANTE LOS KITS P/A DE MICROKIT PARA TODOS LOS PARÁMETROS. NMP-RACKS

2-B  MICROKIT® P/A PSEUDOCULT PARA LA DETECCION DE PSEUDOMONAS AERUGINOSA EN 100 ml DE AGUA (Caldo Cetrimida altamente selectivo y muy modificado, con cromógenos)

Referencia: RPL302

Este patógeno debe estar ausente en el agua de cualquier laboratorio, sobre todo si es de una fábrica de medicamentos o productos cosméticos, de aguas envasadas o en quirófanos y uvis en los hospitales.

El frasco se cierra, se pincha en la parte elástica del tapón una aguja provista de filtro y se introduce a incubar en estufa a 37±1ºC de 18 horas a 5 días.

El viraje a rosa en 18-24h, con fluorescencia en 48h bajo luz UVA de 366 nm (linterna MICROKIT VMT050) es altamente presuntivo de Pseudomonas aeruginosa, aunque tras las 48h puede virar a rojo.

El viraje a salmón es presuntivo de Burkholderia cepacia.

Un viraje a rojo intenso, opaco y rápido (24h), puede ser ocasionado por E.coli y, en aguas marinas, por ciertas especies de Aeromonas y de Vibrio.

Debe confirmarse aislando colonias, estriando en Agar Cetrimida (MICROKIT DMT034, PPL011, TPL100, RPL010) e identificando las mismas (MICROKIT 245000).

Como control positivo puede utilizarse la cepa Pseudomonas aeruginosa en cómodas lentículas de MICROKIT.

Recomendamos asimismo la participación en servicios intercomparativos como SEILAGUAS FARMACOSMÉTICAS, para validar los procedimientos y los operarios.

La validación interna del kit demuestra su excelente capacidad de detección, que resulta incluso del 100% de sensibilidad para inóculos de 1-2 ufc de P.aeruginosa/100-250 ml de agua, lo cual es un límite de detección inmejorable.

En 7 años de intercomparación de 70 laboratorios de toda España en más de 700 muestras duplicadas, se demuestra comparado con filtración de membrana en el medio oficial (Cetrimida CN Agar) una sensibilidad y una especificidad del 100% frente al 73,4%  y al 91,3% respectivamente del método oficial,

así como un límite de detección 50 veces más cercano a 1 ufc/100 ml que el método oficial.

Si analiza muchas muestras al día, vea las versiones viales P/A y Botes P/A.

 

EL MÉTODO P/A (PRESENCIA AUSENCIA) Y RECUENTO NMP MEDIANTE LOS KITS P/A DE MICROKIT PARA TODOS LOS PARÁMETROS. NMP-RACKS

2-B-BIS: MICROKIT® P/A PARA LA DETECCION DE BURKHOLDERIA CEPACIA EN 100 ml DE AGUA (Caldo BCPT  selectivo, color anaranjado) Referencia: RPL323

Este oportunista del biofilm del agua se detecta incubando el kit a 35 ºC durante 24 horas.

Sólo B.cepacia es capaz de crecer tan deprisa en este caldo cromogénico, provocando el viraje a rojo tinto.

Como siempre, confirme los positivos estriando en placa de agar selectivo  e identificando las colonias (MICROKIT 245000).

A las 48-72 horas otros microorganismos pueden provocar falsos positivos con virajes tardíos del mismo tono.

Puede conseguir que el kit sea muy selectivo añadiendo a cada frasco 0,14 ml del suplemento SMT301.

Como control positivo puede utilizarse la cepa Burkholderia cepacia en cómodas lentículas de MICROKIT.

Recomendamos asimismo la participación en servicios intercomparativos como SEILAGUAS FARMACOSMÉTICAS, para validar los procedimientos y los operarios.

Si analiza muchas muestras al dia, vea las versiones viales P/A y Botes P/A.

 

EL MÉTODO P/A (PRESENCIA AUSENCIA) Y RECUENTO NMP MEDIANTE LOS KITS P/A DE MICROKIT PARA TODOS LOS PARÁMETROS. NMP-RACKS

2-C  MICROKIT® P/A PARA LA DETECCION DE VIBRIO HALÓFILOS  EN 100 ml DE AGUA (Caldo Alcalino HiperSalino MICROKIT)          Referencia: RPL310P

Las especies Vibrio alginolyticus, Vibrio vulnificus y Vibrio parahaemolyticus pueden producir intoxicaciones alimentarias e infecciones graves en heridas.

Por ello, este kit es muy necesario para análisis de aguas de piscifactorías, ríos, cetareas, viveros, barcos, playas, piscinas y demás aguas naturales.

El kit se incuba antes de que transcurran 8 horas desde la inoculación, a 35 ºC durante 24 horas para los Vibrio halófilos.

El viraje del medio de azul oscuro a azul-verdoso es presuntivo, por lo que debe confirmarse aislando en TCBS Agar (MICROKIT DMT119, PPL048) y Vibrio Saline TSAT ISO 8914 (MICROKIT DMT172).

Las colonias verdes, azules y amarillas en TCBS y rojas en TSAT son de distintas especies patógenas de Vibrio, que se identificarán con kits adecuados (MICROKIT KBH262).

En TSAT, Vibrio parahaemolyticus crece con colonias de 2-3 mm y color rojo oscuro.

Confirmar con TSI Agar: Vibrio parahaemolyticus provoca pico rojo, fondo amarillo, sin ennegrecimiento ni gas.

Vibrio alginolyticus crece con colonias rojas o blancas, pero muy grandes y lobuladas.

Vibrio cholerae y V.vulnificus crecen con colonias incoloras-crema.

 

EL MÉTODO P/A (PRESENCIA AUSENCIA) Y RECUENTO NMP MEDIANTE LOS KITS P/A DE MICROKIT PARA TODOS LOS PARÁMETROS. NMP-RACKS

2-C Bis  MICROKIT® P/A PARA LA DETECCION DE VIBRIO CHOLERAE EN 100 ML DE AGUA (Caldo TCBS modificado) Referencia: RPL312

Vibrio choleare es el agente causal del cólera, desgraciadamente cada vez más extendido en su cepa menos conocida y peligrosa a países desarrollados.

Otras muchas especies de Vibrio son inocuas y muy didácticas.

Este patógeno es frecuente en países tropicales y en la ruta de inmigración de africanos a Francia a través de España.

El  kit se incuba 24 horas a  28 ºC, que es la temperatura ideal para este microorganismo, cuyo hábitat son los peces, de sangre fría. El viraje a amarillo es presuntivo de Vibrio cholerae.

Confirmar en Agar TCBS (DMT119, TPL503) e identificar las colonias con KBH262 y antisueros (ZM05, ZM06, ZM07, BAA001).

El servicio SEILAGUA 2002-2003 demuestra que este kit es infinitamente más sensible (ausencia total de falsos negativos) que el método MF en TCBS Agar (con 100% de falsos negativos!!!).

Sin embargo es poco específico, con frecuentes falsos positivos (por ej. E.coli), de ahi la necesidad de confirmar en placa:

A diferencia de las Enterobacterias, Vibrio cholerae es oxidasa positivo.

Como diferencia de los Coliformes, es lactosa negativo.

A diferencia de otros Vibrio, no crece con >6% (60 g/l) de ClNa.

NUEVO: V.cholerae P/A Cromogénico,

los positivos viran a rojizo (naranja, púrpura, ámbar) en 36h (y hasta en  5 dias para detectar los casos de estress extremo). Referencia: RPL312C

 

EL MÉTODO P/A (PRESENCIA AUSENCIA) Y RECUENTO NMP MEDIANTE LOS KITS P/A DE MICROKIT PARA TODOS LOS PARÁMETROS. NMP-RACKS

2-D  MYCOKIT P/A PARA LA DETECCION DE HONGOS (LEVADURAS Y MOHOS) EN 100 ml DE AGUA (Caldo Rosa Bengala Cloranfenicol modificado)      Referencia: RPL315

Izda: Mohos en superficie y fondo, Dcha: Levaduras enturbiando

Los laboratorios, industrias de refrescos y las aguas naturales pueden verse invadidas por distintas especies de hongos que a menudo son alterativas de las propiedades organolépticas de los productos fabricados.

Por ello, este kit resulta de gran interés en industria alimentaria y cosmética, sobre todo, así como en aguas de baños (hongos dermatofitos), como piscinas, playas, duchas…

Conviene que la muestra de agua sea de la superficie, sobre todo si hay espuma o suciedad, pues es ahí donde se acumulan estos microorganismos y sus esporas.

El kit se incuba a 21-25 ºC durante 3-7 días.

La turbidez demuestra presencia de levaduras, al ser el medio selectivo contra bacterias.

Los fieltros superficiales o floculantes indican presencia de mohos.

Si se desea, se pueden identificar las especies de levaduras (Rapid-Yeast) y de mohos (microscopio y claves MICROKIT).

Como control positivo puede utilizarse la cepa Candida albicans como levadura y Aspergillus niger como moho, en cómodas lentículas de MICROKIT.

Recomendamos asimismo la participación en servicios intercomparativos como SEILAGUAS FARMACOSMÉTICAS, para validar los procedimientos y los operarios.

NUEVO: MYCOKIT P/A Cromogénico,

los positivos viran a verde desde las primeras 48h (y hasta 3 dias para los más lentos). Ref: Viales FPA950 (no se puede elaborar en frascos preparados tomamuestras P/A)

 

EL MÉTODO P/A (PRESENCIA AUSENCIA) Y RECUENTO NMP MEDIANTE LOS KITS P/A DE MICROKIT PARA TODOS LOS PARÁMETROS. NMP-RACKS

2-E  MICROKIT® P/A PARA LA DETECCION DE ESTAFILOCOCOS EN 100 ml DE AGUA (Caldo Mannitol hipersalino muy modificado)      Referencia: RPL320

La presencia de estafilococos en agua es muy frecuente en aguas de baño, que pueden quedar contaminadas por personas portadoras.

Por ello, este kit es necesario para completar el análisis de aguas de piscinas, playas y baño en general, según la legislación actual, además de su interés en Laboratorios Farmacéuticos y cosméticos.

El kit se incuba a 37 ºC durante 24-48 horas.

La turbidez prueba la presencia de estafilococos.

El viraje de rojo a naranja o amarillo es presuntivo de presencia de Staphylococcus aureus, con cepas patógenas del hombre.

Dada la posible presencia de falsos positivos (y a pesar de la adición de numerosos agentes selectivos al caldo Mannitol, que se ha optimizado en Mayo de 2007 mediante la adición de más agentes reductores y parafina líquida, que disminuyen el nivel de falsos positivos de micrococos y otros aerobios halófilos)…

…confirmar estriando en Agar Baird Parker (MICROKIT DMT016, PPL002, TPL125, RPL003, MBN106)

y si aparecen colonias negras con borde blanco y halo, se trata de S. aureus;

o bien en Agar Mannitol (DMT078, TPL066, RPL023, PPL907…) y si aparecen colonias amarillas, se trata de S.aureus.

Confirmar si es cepa patógena con la prueba de la coagulasa (MICROKIT KWD094).

El servicio SEILAGUA 2002-2003 demostró que este kit, incluso antes de su optimización de Mayo de 2007, es sumamente más sensible (ausencia total de falsos negativos) que el método MF en  Baird Parker o en Mannitol Salt Agar (con 29% de falsos negativos!!!).

Sin embargo es poco específico, con frecuentes falsos positivos, de ahi la necesidad de confirmar estriando en placa selectiva.

Como control positivo puede utilizarse la cepa Staphylococcus aureus, en cómodas lentículas de MICROKIT.

Recomendamos asimismo la participación en servicios intercomparativos como SEILAGUAS FARMACOSMÉTICAS, para validar los procedimientos y los operarios.

Validación: En 7 años de intercomparación de 70 laboratorios de toda España en más de 700 muestras duplicadas, se demuestra comparado con filtración de membrana en el medio oficial (Baird Parker Agar y Mannitol Salt Agar)…

…una sensibilidad del 100% frente al 71,0%  y al 60,0% respectivamente del método oficial,

así como una especificidad 96,0% frente al 65,0% y 83,0% respectivamente.

El límite de detección resulta un 70% más cercano a 1 ufc/100 ml que el del método oficial.

 

EL MÉTODO P/A (PRESENCIA AUSENCIA) Y RECUENTO NMP MEDIANTE LOS KITS P/A DE MICROKIT PARA TODOS LOS PARÁMETROS. NMP-RACKS

2-F  FICOKIT (MICROKIT® P/A PARA LA DETECCION DE ALGAS MICROSCOPICAS EN 100 ml DE AGUA) (Caldo Algas Modificado) Referencia: RPL307

Para la detección de todo tipo de algas microscópicas en aguas (Cianofíceas, Clorofíceas, Diatomeas, etc.), desarrollamos FICOKIT, test de presencia / ausencia en 100 ml de muestra.

De gran interés en acuicultura, piscinas, aguas envasadas, aguas naturales, aguas de refrigeración y lavado, etc,

FICOKIT contiene un caldo de cultivo especialmente formulado para microorganismos fotosintéticos en general, a alta concentración, estéril y listo para su uso,

al que se han añadido agentes que aceleran el crecimiento vegetal.

Tomar la muestra de agua (50‑100 ml) rascando las superficies bañadas por la misma y agitando.

Es recomendable que la muestra sea lo más representativa posible, por lo que pueden añadirse pequeños trozos del medio ambiente cercano

y, si el agua de muestra es muy limpia, un filtro enrollado de 0,45 um de poro por el que se hayan filtrado 5 litros o más del agua de muestra.

Pero siempre añadiendo directamente al kit un mínimo de 50 ml de agua, ya que el medio está a alta concentración y un máximo de 100 ml de agua, ya que hay que dejar una cámara de aire.

Incubar junto a una ventana con cortina traslúcida donde no incida directamente la luz del sol,

durante 2‑30 días (los resultados serán siempre más rápidos en primavera, dado el fotoperiodo ideal).

La temperatura ambiente ideal es de 21‑25 ºC.

Sobre todo en lugares poco soleados y en invierno, pueden reproducirse artificialmente estas condiciones…

…con fotoperiodo de 16 horas de luz/8 horas de oscuridad

mediante fluorescentes de menos de 3.200 LUX situados a 4,5 metros de los frascos de FICOKIT.

La aparición de fieltros, mucosidades, filamentos o turbidez con los colores  propios de la fotosíntesis (verde, verde azulado, verde amarillento, rojizo, pardo…), indica presencia de microorganismos fotosintéticos en la muestra.

Estos microorganismos alteran las propiedades organolépticas, producen limos obturadores y en algunos casos (cianobacterias) son tóxicos.

Solicite con su pedido de FICOKIT las claves de microalgas MICROKIT para diferenciar cianofíceas, clorofíceas, diatomeas, etc. al microscopio y poder identificar incluso a nivel de géneros.

Como control positivo puede pedir a MICROKIT la cepa Chlorella vulgaris.

No se pierda nuestro video de Ficokit y Cianokit:

https://www.youtube.com/watch?v=TZYC3ZKcSQM&t=252s

 

EL MÉTODO P/A (PRESENCIA AUSENCIA) Y RECUENTO NMP MEDIANTE LOS KITS P/A DE MICROKIT PARA TODOS LOS PARÁMETROS. NMP-RACKS

2-G  CIANOKIT (MICROKIT® P/A PARA LA DETECCION DE ALGAS CIANOFICEAS O CIANOBACTERIAS Y OTRAS BACTERIAS FOTOSINTETICAS EN 100 ml DE AGUA)    (Caldo Algas con suplemento para cianobacterias)   Referencia: RPL306

De gran interés para acuicultura, piscinas, aguas minerales, aguas estancadas, aguas de abastecimiento, etc., este kit diseñado por MICROKIT, contiene un medio de cultivo especial para cianofíceas, estéril y listo para su uso.

Las cianofíceas/cianobacterias son algas/bacterias muy primitivas que pueden provocar problemas de toxicidad en las aguas donde proliferan.

Oscillatoria erythraea, especie planctónica marina, produce una toxina mortal para los peces, cuando su concentración es elevada, y que intoxica la cadena alimenticia, pudiendo ser mortal para el hombre (enfermedad tropical «ciguatera»).

Lyngbya majuscula puede provocar dermatitis necrótica a los bañistas de playas contaminadas por ella.

En aguas continentales, sobre todo, Aphanizomenon flos-aquae, Anabaena flos-aquae, Schizothrix calcicola, Lyngybya gracilis, Oscillatoria nigroviridis, Calothrix crustacea, Nostoc muscorum, Symploca muscorum, Tolypothrix byssoidea y Microcoleus lyngbyaceus son varias especies que se ha comprobado producen una amplia gama de cianotoxinas.

Anabaena circinalis, Symploca hydroides y algunas especies de Microcystis, provocan dermatitis por simple baño en aguas donde proliferan.

Recientemente Paul R. Hunter (Sept.1995, Cyanobacteria in fresh waters, Microbiology Europe Vol. 3, Nº 5) recopila los ultimos casos de mayor relevancia internacional,

con dolor de cabeza, diarrea, vómitos, conjuntivitis, otitis, fiebre, urticaria, asma…

provocados en personas tras 2-48 horas del contacto

(a veces simple baño, ni siquiera consumo) con aguas donde se ha dado un bloom algal de cianofíceas en Inglaterra.

En cualquier caso, un agua con abundantes cianofíceas jamás debe ser consumida.

Incluso deben cerrarse las aguas con blooms de cianofíceas a las actividades recreativas, pues se han dado casos de neumonía a canoistas que navegaban sobre un bloom algal de Microcystis aeruginosa.

Se establece una clasificación de la polución de las aguas, en función de los grupos de cianocífeas existentes:

En aguas extremadamente polutas, proliferan especies de Spirulina y Anabaena.

En cambio en aguas polutas, proliferan especies de Oscillatoria y Phormidium.

Y en aguas moderadamente polutas, proliferan Anabaena flos-aquae, Aphanizomenon flos-aquae, y diversas especies de Nostoc y Oscillatoria.

Se consideran puras las aguas ricas en especies de la Stigonematácea Hapalosiphon.

En aguas estancadas de verano, sobre todo, las sustancias nitrogenadas se agotan y las cianofíceas, capaces de fijar nitrógeno atmosférico (con heterocistes, sobre todo), libres de competencia, proliferan.

Esto es más frecuente en aguas continentales que en aguas marinas.

Y cada vez más frecuente en aguas europeas, por el aporte fosfatado que proporcionan los vertidos de fertilizantes en agricultura.

Con CIANOKIT puede detectarse la presencia de cianofíceas antes de que sea demasiado tarde.

Con las claves de identificación de géneros de cianobacterias que pueden solicitarse a MICROKIT con sus pedidos de CIANOKIT, puede, además, avanzarse en el pronóstico de la toxicidad del agua.

Las algas acuáticas pueden encontrarse en superficie, flotando como NEUSTON (sus proliferaciones se denominan «flores de agua» y pueden crear anoxia en las aguas inferiores);

o bien en la masa de agua, formando el PLANCTON;

o bien adheridas a superficies y en el fondo, o BENTOS.

A menudo colorean el agua de diversos tonos azulados (cianofíceas),

rojos (dinofíceas-mareas rojas- y cianofíceas),

pardos (diatomeas)

o verde-amarillentos (clorofíceas) cuando se encuentran en grandes concentraciones.

Una buena recolección de muestras, debe incluir los tres tipos de hábitats descritos: El NEUSTON se recoge dejando entrar agua superficial en un bote, sin agitar. Si es visible se toma con pinzas.

El PLANCTON se puede coger con una red de 20-60µm de poro, aunque si su concentración es suficientemente alta, bastará con tomar una muestra de 250 ml en un frasco, entre dos aguas, sin agitar y sin rapidez.

El BENTOS se tomará rascando la superficie sólida con una navaja o pasando un tubo de recolección suavemente por la zona superficial del sedimento.

Sembrar cada tipo de muestra (Neuston, Plancton y Bentos) en un frasco de CIANOKIT.

El Plancton es preferible sembrarlo tras dejar sedimentar el frasco de muestra de 3 a 24 horas, y tomando la muestra del fondo con una pipeta o jeringa.

Dejar una buena cámara de aire (medio frasco). Cerrar. Agitar para mezclar la muestra con el medio de cultivo.

La incubación se realizará junto a una ventana.

En zonas poco soleadas y en invierno, se hará mejor en una habitación con una temperatura de 20ºC,

con fluorescentes de luz blanca fría, situados a 4’5 metros de los frascos (intensidad jamás superior a 3.200 LUX),

con un fotoperiodo de 16 horas de luz/8 horas de oscuridad,

durante 2-30 días.

Nunca se debe dejar que la luz directa del sol incida sobre los frascos, aunque si es indirecta ayudará a acelerar los resultados.

Debe realizarse, al menos, un análisis semanal, para que la prevención sea eficaz.

Las cianofíceas se denominan también «algas azules», pero muchas especies son verdes, rojas, violetas, negras…

Cualquiera de estos colores, desarrollado en el líquido o en las paredes y fondo de CIANOKIT, son indicadores de presencia de cianofíceas,

independientemente del aspecto afieltrado, mucoso, turbio o filamentoso que pueda adquirir.

Debe confirmarse al microscopio, pues otras algas pueden dar lugar a falsos positivos.

Otras bacterias fotosintéticas también pueden proliferar en CIANOKIT, aunque es difícil porque precisan las condiciones anaerobias que consiguen en los sedimentos de los lagos.

NOTA: PARA RECUENTO, UTILICE EL MEDIO DESHIDRATADO O LAS PLAQUIS® HERMETICAS DE CIANAGAR.

Control de calidad positivo:  Pida el mix e cianobacterias de MICROKIT.

https://www.microkit.es/fichas/PRESENCIA-AUSENCIA-KITS-INTRODUCCION.pdf

 

EL MÉTODO P/A (PRESENCIA AUSENCIA) Y RECUENTO NMP MEDIANTE LOS KITS P/A DE MICROKIT PARA TODOS LOS PARÁMETROS. NMP-RACKS

PUEDE CONVERTIR TODOS LOS KITS P/A DE MICROKIT EN RECUENTO NMP GRACIAS A LAS CUBETAS NMP-RACKS  https://www.microkit.es/fichas/MPN-RACK.pdf

El usuario final es el único responsable de la destrucción de los microorganismos que se hayan multiplicado en el interior de cada frasco, de acuerdo con la legislación medioambiental vigente. Añada cloro o lejía hasta el borde, con cuidado de no tocar ni derramar  el cultivo, antes de desechar a la basura. Si al abrir los botes sale gas a presión o líquido y se salpica, lavar las manos con agua corriente y jabón.

¿Necesita asesoría sobre los kits y formatos (frascos, viales o botes) que se adaptan mejor a su caso? consulte en el email consultastecnicas@microkit.es

Si desea más información sobre nuestros KITS P/A, póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es

Haga sus pedidos de kits P/A en pedidos@mirokit.es

https://www.microkit.es/monograficos/21-Monograf–a-M–todos-alternativos-en-Control-microbiol–gico-de-aguas.pdf1

No se pierda nuestro vídeo de los viales P/A:

https://youtu.be/6OfsD7zU_8U

 

M-IDENT®- Burkholderia cepacia

M-IDENT® Burkholderia cepacia

Burkholderia cepacia: Kit de confirmación en aguas y cosméticos

La confirmación de colonias de Burkholderia cepacia se ha convertido en el gran hándicap de los laboratorios cosméticos y a menudo la única solución era enviar las colonias a Identificación molecular (MICROKIT SFI004). Aunque ésta siga siendo la mejor opción, el mercado pedía un kit con el que poder orientarse antes de decidir.

El Agar BCPT 

se basa en la asimilación del piruvato como fuente de C y el rojo fenol como indicador de la acidificación, por crecimiento de B.cepacia con viraje del medio de naranja a fucsia alrededor de las colonias diana.

El Agar OFPBL es un O/F modificado con lactosa como fuente de C y azul de bromotimol como indicador de la acidificación por crecimiento de B.cepacia con viraje de azul a amarillo. Es menos selectivo que el Agar BCPT.

El BCPT Cromogénico de MICROKIT es un BCPT al que se ha añadido un cromógeno que permite un mayor contraste de las colonias, que crecen de color rojo intenso, con los mismos virajes del medio que el BCPT clásico.

El Agar BCSA es el recomendado por USP, pero en él las colonias crecen con menos potencia que en BCPT

PASO PREVIO

Antes de emplear el kit M-Ident-B.cepacia, cercíorese que las colonias son oxidasa positivas y no son fluorescentes bajo luz UV de 366 nm

Burkholderia cepacia es citocromo-oxidasa positiva (viraje a azul de las tiras estables MICROKIT KOT050)

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Burkholderia cepacia no provoca fluorescencia (luz azul-verde-amarilla) en BCPT ni en OFPBL ni siquiera cuando se observa bajo luz UVA de 366 nm (linterna MICROKIT VMT050)

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

BASE DE DATOS BACDIVE

Según Bacdive, estas son las pruebas que distinguen las cepas que hemos detectado capaces de crecer en BCPT o que podrían ser confundidas con B.cepacia al ser también oxidasa positivas:

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

El kit M-IDENT B.cepacia

distingue no solo la B.cepacia, sino además todas las Burkholderias declaradas como patógenas, con las mismas características de B.cepacia: Ox+ ADH- MNE+ PAC+ (B.ambifaria, B.arboris, B.cenocepacia, B.contaminans, B.diffusa, B.dolosa, B.gladioli, B.latens, B.metallica, B.multivorans, B.pseudomultivorans, B.seminalis, B.stabilis) y también las patógenas que a diferencia de las demás, son  ADH+ (B.oklahomensis, B.thailandensis y B.ubonensis).

En nuestros controles, la prueba que distingue claramente las especies de Burkholderia de las de Pseudomonas es el ADH: Pseudomonas deja el medio rojo mientras Burkholderia lo vira  a naranja o amarillo, según la cepa (por ejemplo la B.cepacia DSMZ 50181 vira a amarillo, mientras la B.cepacia ATCC™ 25416 y la B.cepacia NCTC 10743 viran a naranja, en 24 horas de incubación.

PRESENTACION:

M-IDENT®-Burkholderia cepacia, kit 4 test para confirmar 5 colonias sospechosas de este patógeno y otras Burkholderias patógenas en agares BCPT/BCSA/OFPBL. Todas ellas coinciden en estas pruebas diferenciales: Oxidasa + (azul), ADH- (amarillo), MNE+ (amarillo), PAC+ (amarillo).

Kit 4 test suficiente para confirmar 5 colonias. Caducidad 1 año

– 5 tiras estables para el test de la Citocromo-oxidasa (KOT0505)

– 5 tubos  líquidos de Caldo ADH (rojo).

– Y 5 tubos  líquidos de Caldo MNE (verde).

– 5 tubos  líquidos de Caldo PAC  (verde).

CODIGO: KMT006

EL KIT NO INCLUYE:

  • Cepas cuantitativas MICROKIT para validar los reactivos una vez llegados a fábrica o tras almacenamientos prolongados o inadecuados.
  • Participación en servicios intercomparativos como SEILAGUA® y SEILAPARFUM para validar los procedimientos y los operarios
  • Lámpara de luz ultravioleta de 366 nm (ver Linterna MICROKIT VMT050)

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO. MANTENGA LA CAJA CERRADA, EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO

VENTAJA: Su extremadamente larga caducidad, de 1 año asegurado.

CONTROL DE CALIDAD DEL KIT

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

TIRAS Citocromo-oxidasa: NO estéril, color rosa pálido

TUBOS PREPARADOS de Caldo ADH: Estéril, líquido, rojo, transparente.

Y TUBOS PREPARADOS de Caldo MNE: Estéril, líquido, verde, transparente.

TUBOS PREPARADOS de Caldo PAC: Estéril, líquido, verde, transparente.

CONTROL DE CRECIMIENTO a 37°C durante 24 horas, en aerobiosis:

  • Tiras oxidasa: Burkholderia cepacia ATCC™ 25416 vira a azul oscuro de inmediato.
  • Caldo ADH: Pseudomonas aeruginosa WDCM00026, crece con turbidez y permanece de color rojo. Burkholderia cepacia ATCC™ 25416, crece con turbidez y vira de rojo a naranja o amarillo.
  • Caldo MNE: Pseudomonas aeruginosa WDCM00026, crece con turbidez y permanece de color verde. Burkholderia cepacia ATCC™ 25416, crece con turbidez y permanece de color verde, igual que Burkholderia cepacia NCTC 10743. Algunas otras cepas de Burkholderia cepacia (ej: ATCC™ 17759, DSMZ 50181) viran de verde a amarillo.
  • Caldo PAC: Pseudomonas aeruginosa, WDCM00114 crece con turbidez y permanece de color verde. Otras cepas de Pseudomonas aeruginosa (ej: WDCM00026) viran de verde a amarillo. Burkholderia cepacia ATCC™ 25416, crece con turbidez y vira de verde a verde-amarillento o amarillo, igual que Burkholderia cepacia NCTC 10743. Algunas otras cepas de Burkholderia cepacia (ej: DSMZ 50181) permanece verde.

IZQDA: P.aeruginosa WDCM00114
DCHA: B.cepacia ATCC™ 25416

MODO DE EMPLEO E INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS

-Inocular una porción de la colonia sospechosa, procedente de Agar BCPT  o OFPBL, en la zona reactiva de la tira de oxidasa.

-Sembrar por dilución otra porción de colonia en un tubo de caldo ADH, otra en un tubo de caldo MNE y otra en un tubo de caldo PAC.

-Incubar a 36 ± 2º C durante 20 ± 4 horas, en aerobiosis.

-Burkholderia cepacia es toda colonia típica en BCPT o en OFPBL, no fluorescente, oxidasa positiva (viraje a azul oscuro), ADH positivo (vira de rojo a naranja o amarillo). Además, según sea la cepa, virará o no de verde a amarillo en MNE y en PAC.

El usuario es el único responsable de la eliminación de los microorganismos según la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.

Si desea más información sobre nuestro  M-IDENT®- Burkholderia cepacia rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

https://www.microkit.es/monograficos/8-Burkholderia-cepacia-complex-monograf–a.pdf