Archivo de la categoría: Microbiología de Alimentos

Optimización en los análisis microbiológicos de ALIMENTOS.
Nuevos métodos de análisis microbiológicos utilizados exitosamente en los laboratorios líderes

BACILLUS COAGULANS (Thermoacidurans) AGAR

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BACILLUS COAGULANS (Thermoacidurans) AGAR permite realizar el recuento de este microorganismo en alimentos y probióticos

Medio sólido diseñado para aislar y enumerar Bacillus coagulans (ahora llamado Bacillus thermoacidurans).

COMPOSICIÓN COAGULANS

  • Glucosa                                                 5 g/L
  • Peptona proteosa de carne              5 g/L
  • Extracto de Levadura                         5 g/L
  • K2HPO4                                                4 g/L
  • Agar-agar                                             20 g/L
  • pH final:  5 ± 0,2

 

Suplementos termolábiles:

  • MnSO4.4H2O                                      0,05 mg en 10 mL de agua, esterilizar por MF y añadir al medio tras autoclavarlo
  • CaCl2                                                     0,045 mg en 10 mL de agua, esterilizar por MF y añadir al medio tras autoclavarlo

 

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO. MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO. AGITE EL BOTE ANTES DE USAR.

PREPARACIÓN

Disolver 39 g de medio en 990 ml de agua bidestilada. Calentar hasta ebullición, agitando, para su total homogeneización. Autoclavar a 121 ºC durante 15 minutos. Enfriar a 48 ºC y añadir asépticamente 10 ml del suplemento SMT041. Mezclar y repartir en placas, sin recalentar.

PRESENTACIÓN

Medio deshidratado (100 g, 500 g, 5 Kg): DMT241

Suplemento en frasco pinchable 100 mL, esterilizado por filtración, para 10 L de medio, contiene 0,05 mg MnSO4.4H2O y 0,045 mg CaCl2 cada 10 mL de agua: SMT041

 NOTA

Este microorganismo es uno de los mejores probióticos que existen, porque produce ácido láctico pero, a diferencia de los lactobacilos, forma esporas resistentes. Se toma contra los trastornos intestinales (diarreas, incluyendo las diarreas de tipo infeccioso como son la diarrea por rotavirus en los niños y la diarrea del viajero; también se usa para la diarrea producida por el uso de antibióticos. El Bacillus coagulans se utiliza también para problemas digestivos en general, para el síndrome del intestino irritable (SII), para las enfermedades inflamatorias intestinales (EII, la enfermedad de Crohn y la colitis ulcerosa), para la colitis por Clostridium difficile, contra el crecimiento excesivo de bacterias «malas» en el síndrome de intestino corto y para una infección debida al Helicobacter pylori que es el que produce úlceras. Algunas personas utilizan el Bacillus coagulans para prevenir las infecciones respiratorias y para reforzar el sistema inmunológico.

Sin embargo, puede contaminar conservas alimenticias y darles un gusto ácido. Esto incluye la comida que es normalmente demasiado ácida para la mayor parte de bacterias; el B. coagulans (thermoacidurans) puede crecer en un pH tan bajo como 4,2. Este medio también sirve para detectar Clostridios acidófilos que estropean ciertos alimentos envasados.

CONTROL DE CALIDAD DEL AGAR BACILLUS COAGULANS

Es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

DESHIDRATADO: Polvo grueso, Color crema.               PREPARADO: Estéril, Color paja.

EVALUACIÓN DEL RENDIMIENTO ISO/TS 11133-2: 24-48 h a 30-37 ºC, aplicando el método ISO 7932, o el indicado en el Manual MICROKIT actualizado:

  • Bacillus coagulans (thermoacidurans) WDCM 00002, Excelente, PR > 90% de colonias respecto al número de ufc certificadas e inoculadas en TSA
  • Bacillus subtillis MKTA 6633, crecimiento excelente.

SIEMBRA

Sembrar 0,1 ml de la muestra y su serie de diluciones decimales,  en superficie, repartiendo con el asa de Digralsky (VRR154, desechables VCL155). Incubar a 37 ºC aproximadamente, durante 24-72 horas. Al no ser un medio selectivo, deben identificarse las colonias que, si proceden de conservas ácidas, es muy probable que se trate de esta especie y si proceden de inóculos puros, el medio sirve para enumerar y conocer la concentración del preparado probiótico.

El usuario es el único responsable de la eliminación de los microorganismos según la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.

https://www.microkit.es/fichas/BACILLUS-COAGULANS-THERMOACIDURANS-AGAR.pdf

Si desea más información sobre nuestros BACILLUS COAGULANS (Thermoacidurans) AGAR rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

https://www.microkit.es/monograficos/10-Bacillus-monograf–a.pdf

 

KITS P/A DE AGUAS USO EN ALIMENTOS

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KITS P/A DE AGUAS: USO EN ALIMENTOS. Los kits Presencia/Ausencia pueden emplearse no solo para control de patógenos en aguas

El método P/A (Presencia/Ausencia) fué inventado durante la segunda guerra mundial para evitar que los soldados murieran por beber aguas contaminadas. Desde la década de los 1990, MICROKIT ha ido desarrollando numerosos Kits P/A cromogénicos para control de patógenos en aguas. Estos kits no sólo triunfan en todo el mundo gracias a las ONG que trabajan en la mejora del agua de bebida de los países tropicales, sino que además están reconocidos como el método más fiable, de acuerdo con sus numerosas validaciones.

En el caso de las aguas y muestras líquidas incoloras, simplemente se agrega a los 100 ml de muestra el contenido de 1 vial de medio en polvo estéril adecuado para el microorgansimo que se busca; se incuba; y al dia siguiente, si no ha cambiado de color, se demuestra la ausencia del patógeno (sin falsos negativos) y si ha cambiado al color indicado, se demuestra su presencia. Así de sencillo. Y más efectivo que ningún otro método.

Extendemos desde 2016 su uso para alimentos, líquidos opacos no coloreados y otras muestras donde se desee comprobar la ausencia de patógenos en 1 gramo, de la forma más fácil, cómoda y fiable:

1-Tratar la muestra en solución madre como de costumbre. Por ejemplo, si es un alimento con conservantes, diluir 1 g en 90-100 ml de Buffered Peptone Neutralizing Water (MICROKIT RPL112), si es un cosmético diluir 1 g en 90-100 ml de LPT Neutralizing Broth (MICROKIT RPL054), etc. Dejar actuar 25 minutos para neutralizar la acción de los conservantes que no dejarían detectar el microorganismo diana. Puede emplearse el medio deshidratado (MICROKIT DMT011, DMT217) y un frasco esterilizado, un bote estéril (MICROKIT VML155) o una bolsa StandUp (B2787B).

 

2-Añadir el contenido del vial P/A elegido para el microorganismo buscado. O bien las cucharadas necesarias de la nueva presentación económica de medios P/A en polvo estéril en botes de 100 g.

 

3-Agitar, incubar y ver al día siguiente si hay cambio de color (positivo presunto) o no (negativo confirmado). En caso positivo hacer pruebas de confirmación adecuadas. En caso negativo declarar la muestra como ausente del patógeno en 1 g de producto.

 

GAMA (3 años de caducidad desde fabricación):

Podemos diseñar kits P/A para otros parámetros, sólo solicítenoslo!

Laboratorios MICROKIT tiene el honor de ser desde 1994 el diseñador y fabricante exclusivo de esta gama de kits P/A, un “producto con estrella” para el laboratorio y el trabajo de campo. Numerosos países lo aplican ya no sólo en aguas sino además en alimentos y otros productos.

El usuario final es el único responsable de la destrucción de los organismos que se hayan desarrollado, según la legislación medioambiental vigente.

Si desea más información sobre nuestros KITS P/A DE AGUAS USO EN ALIMENTOS rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

No se pierda nuestro vídeo de los viales P/A:

https://youtu.be/6OfsD7zU_8U

KIT P/A COLICULT MCC BOTE 100 g ESTÉRIL

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COLICULT P/A EN FORMATO ECONÓMICO

detección económica E.coli/Coliformes aguas: Con los botes de 100 g de Colicult podrá buscar E.coli/Coliformes en aguas por sólo 1 €

El método P/A

(Presencia/Ausencia) fue inventado durante la segunda guerra mundial para evitar que los soldados murieran por beber aguas contaminadas. Desde la década de los 1990, MICROKIT ha ido desarrollando numerosos Kits P/A cromogénicos para control de patógenos en aguas. Estos kits no sólo triunfan en todo el mundo gracias a las ONG que trabajan en la mejora del agua de bebida de los países tropicales, sino que además están reconocidos como el método más fiable, de acuerdo con sus numerosas validaciones y participaciones en servicios intercomparativos. Se pueden emplear en trabajo de campo y en el laboratorio y ahorran tanto el trabajo de filtración de membrana (MF) o de NMP, como su coste. Con ellos se puede decir:

¡de la muestra a la estufa en 10 segundos!

En el caso de las aguas y muestras líquidas incoloras, simplemente se agrega a los 100 (ó 250 ml) de muestra de agua el medio estéril adecuado para el microorganismo que se busca; se incuba; y al día siguiente, si no ha cambiado de color, se demuestra la ausencia del patógeno (sin falsos negativos) y si ha cambiado al color indicado, se demuestra su presencia. Así de sencillo. Y más efectivo que ningún otro método. Porque el método P/A no estresa los microorganismos como sucede con la MF, que obtiene recuperaciones muy deficientes.

La legislación europea exige el recuento de E.coli (y demás coliformes), Enterococos fecales y Clostridium perfringens y sus esporas en aguas de consumo humano para demostrar que no hay ni una sola célula en 100 mL; y en aguas envasadas, el recuento de E.coli (y demás coliformes), Enterococos fecales, Clostridium sulfito reductores y Pseudomonas aeruginosa para demostrar que no hay ni una sola célula en 250 mL. Dado que más del 99,99% de las muestras que Ud. analiza, están exentas de estos microorganismos,

está gastando enormes cantidades de tiempo y de dinero en “contar ceros”.

Cambie al método P/A y todas las ausencias las debe informar como “cero”, ya que no existen células decimales, por lo que en microbiología, ausencia es exactamente lo mismo que cero. Y cuando tenga alguna presencia, repita el análisis por MF e informe del recuento que obtenga. De este modo tan sencillo de “screening negativo”, va a ahorrar ingentes cantidades de tiempo y de dinero, pero además, va a aumentar la fiabilidad de sus análisis, ya que

el método P/A detecta numerosas presencias que el método MF encuentra como “cero”,

que son los peligrosos falsos negativos. ¡Se acepta en la bibliografía internacional que cerca del 21% de las aguas que contienen coliformes-E.coli, no son detectadas como positivas mediante el método MF!

Hasta ahora la presentación del método P/A MICROKIT era en frascos estériles con medio líquido para agregar dentro 100 ml de muestra de agua (referencias RPL3..). O bien la versión económica en viales de medio en polvo estéril para añadir un vial a 100 ml de muestra de agua (no incluido el bote estéril, referencias FPA9..). Por petición de nuestros mayores usuarios, extendemos desde finales de 2016 su uso en una

nueva presentación extraordinariamente económica: Botes de 100 g de polvo estéril con cucharilla esterilizable

(referencias DMTI9..-).

En esta nueva presentación, que le llega estéril, debe abrir el bote cada vez que lo use, en cabina o junto a un Bunsen, extraer con la cucharilla esterilizada (o sumergida en alcohol y tras dejar que se seque) el volumen indicado de medio, y cerrar el bote inmediatamente para evitar que se contamine. A pesar de que es difícil que esto suceda, ya que ninguno de los microorganismos implicados habitan en el aire. Use guantes estériles al manipularlo, para no contaminar el resto del polvo interior de eventuales células todavía viables de coliformes-E.coli que pudiera portar en sus manos.

MODO DE EMPLEO

1-Añada una cucharadita (1 gramo) de P/A Colicult MCC para buscar E.coli y demás coliformes en 100 ml de agua (dos cucharaditas para buscarlos en 250 ml de agua). No hace falta enrasar ni ser muy estricto en el volumen de medio añadido, ya que el medio funciona perfectamente incluso a la mitad y al doble de la concentración  indicada. Si el agua es clorada, añadir el tiosulfato sódico correspondiente para neutralizarlo.

2-Agitar, incubar a 37ºC y ver al día siguiente si hay cambio de color paja a azul-verdoso (presunto positivo de coliforme) o no (negativo confirmado de coliforme).  Y si hay fluorescencia azul celeste (presunto positivo de E.coli) o no (negativo confirmado de E.coli) al mirar en la oscuridad bajo luz UVA de 366 nm (linterna MICROKIT VMT050).

3-En caso positivo hacer pruebas de confirmación adecuadas (oxidasa para coliformes, indol para E.coli). En caso negativo declarar la muestra como ausente de estos patógenos/indicadores en 100 (ó 250 mL) de muestra de agua.

REFERENCIA

Bote de polvo estéril 100g y cucharilla para E.coli y demás Coliformes, Ref: DMTI900- para 50-100 muestras, con ¡3 años de caducidad!

detección económica E.coli/Coliformes aguas: Con los botes de 100 g de Colicult podrá buscar E.coli/Coliformes en aguas por sólo 1 €

El usuario final es el único responsable de la destrucción de los organismos que se hayan desarrollado, según la legislación medioambiental vigente.

Si desea más información sobre nuestros KIT P/A COLICULT MCC BOTE 100 g ESTÉRIL rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

https://www.microkit.es/monograficos/11-E.coli-y-dem–s-coliformes-monograf–a.pdf

https://www.microkit.es/monograficos/21-Monograf–a-M–todos-alternativos-en-Control-microbiol–gico-de-aguas.pdf

No se pierda nuestro vídeo de los viales P/A:

https://youtu.be/6OfsD7zU_8U

SEILA-PLUS VALIDACIÓN

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intercomparativo microbiología alimentos efecto matriz: Seilaplus-validación, mucho más que un inter, el primero que evalúa el efecto matriz

https://www.microkit.es/fichas/SEILA-PLUS-VALIDACION.pdf

Ayuda en la validación de sus métodos

Las autoridades sanitarias, a través de sus inspecciones, y la Normativa vigente en alimentos (reglamento CE 2073/2005) y en cosméticos (GMPs-BPFs ISO 22716) exigen que los métodos analíticos que emplea su laboratorio estén adecuadamente contrastados externamente.

Esto se traduce en la obligatoriedad de participar en un mínimo de 3 rondas intercomparativas de muestras ciegas al año.

El tema quedó resuelto con Seilalimentos (SMT003) y Seilaparfum (SMT005) que muchos clientes de MICROKIT llevan ya muchos años empleando.

Pero hay inspectores que exigen, ADEMÁS, la VALIDACIÓN de los métodos (que solemos proporcionar los proveedores a petición de los clientes interesados) y algunos,

ADEMÁS, exigen  la validación de los métodos en SUS PROPIAS MUESTRAS, con buen criterio profesional, ya que hay métodos poco robustos que no sirven aplicados tal cual en ciertas muestras.

CURSOS PRÁCTICOS DE VALIDACIÓN DE MÉTODOS MICROBIOLÓGICOS

De aquí surgió el servicio MICROKIT de validación (SIM005), en las instalaciones y con las muestras de cada laboratorio, que muchos clientes de MICROKIT ya han utilizado.

La revalidación es obligatoria en cada parámetro microbiológico cada vez que su fábrica diseñe un nuevo producto que salga al mercado y además cada 5 años.

Eso supone un importante trabajo extra añadido.

Por eso MICROKIT, siempre fiel a sus clientes, diseña en Octubre de 2017, un nuevo servicio que les permitirá validar y revalidar periódicamente cuantas muestras desee y de la forma más fácil imaginable:

Seila-Plus Validación

Mediante el presente servicio, su laboratorio será capaz de validar o revalidar periódicamente sus métodos microbiológicos en su propias muestras de alimentos o de cosméticos,

gracias a nuestra ayuda, al proporcionarle inóculos idénticos de cepas (cualitativa y cuantitativamente ciegas para Ud hasta que reciba el informe final de resultados)

para que añada al inter y, en  paralelo, a sus propias muestras; y al incluir sus resultados en los informes SEILA.

Tambien podría pedir los inóculos sin participar en SEILA, pero entonces sus resultados no estarán garantizados y certificados por un tercero (MICROKIT).

Lo ideal es que cada vez que participe en una ronda SEILA, añada el pedido que desee de Seila-Plus Validación (el número de inóculos extra que desee para añadir a sus propias muestras).

Cuando nos remita los resultados, las tablas 1 y 2 están reservadas para el SEILA clásico, de modo que deberá rellenar una nueva tabla por cada muestra (matriz) que analice,

indicar de qué matriz se trata para respetar la trazabilidad e indicar tras su número secreto el número de muestra.

Por ej, si su número secreto cuando participa en Seila es 4572 y además participa en Seila-Plus Validación para 5 muestras propias,

la primera tabla Seila será la 4572-1, la segunda será la 4572-2, la primera tabla Seila-Plus Validación con su primera muestra será la 4572-V1,

la segunda tabla Seila-Plus Validación con su segunda muestra será la 4572-V2, y así hasta la 4572-V5.

Le recomendamos adquiera, si no lo tiene ya, el informe-tipo de validación de MICROKIT (SIM009 para parámetros microbiológicos cualitativos de presencia/ausencia

y SIM010 para parámetros microbiológicos cuantitativos de recuento), los va a necesitar utilice o no este nuevo servicio Seila-Plus-Validación.

En resumen ¿qué es Seila-Plus Validación?

Cada vez que participa en una ronda Seila, Ud. contrata el número extra de inóculos de cepas, ciegos e idénticos, que necesite (uno para cada una de sus propias muestras que desea validar en dicha ronda),

nos envía los resultados Seila en las dos tablas habituales y nos envía además los resultados Seila-Plus Validación que haya obtenido en cada una de sus muestras (una tabla extra por cada muestra).

Recibirá el informe Seila con todos sus resultados incluidos (los Seila y los Seila-Plus Validación).

No deje de consultarnos por email cualquier duda sobre este nuevo servicio.

AHORRO DE TRABAJO

Atención, le ahorramos trabajo, pero no todo:

Si un parámetro (ej: E.coli) de una ronda concreta (ej: Nov-2017) se considera negativo en el informe final Seila,

pero a Ud. en su muestra le sale positivo,

debe controlar si se trata de un falso positivo de su análisis o si, por el contrario, es que su muestra lo contenía en origen.

Igualmente, un recuento en Seila-Plus validación mucho más alto que el valor consensuado o que el valor inóculo,

puede deberse a una mala práctica en su análisis o, por el contrario, a que su muestra ya tenía un recuento de ese microorganismo, que se ha sumado al inóculo.

Este problema no puede suceder en Seila, ya que las muestras que enviamos son estériles y solo se contaminan momentos antes del análisis exclusivamente con el inóculo que le enviamos.

Pero si puede suceder aquí, y Ud. debe preverlo con un análisis paralelo de su muestra sin nuestro inóculo.

Por ello, en los informes SEILA, los resultados de Seila-Plus Validación no pueden ser calificados por nosotros, sino que actuamos como meros “Notarios” de sus resultados, al incluirlos.

Y por eso, cuando reúna suficientes tablas de resultados de sus propios productos (todos los que quiera/deba validar a lo largo de un año, 30 es el número mínimo estadísticamente significativo),

deberá elaborar su propio informe de validación (ayúdese de nuestros informes-tipo antes indicados al final de la página anterior).

De este modo, zanjamos un problema que, por falta de tiempo, la mayoría de laboratorios de nuestro país está incumpliendo,

y que puede llevar a retiradas de mercado, desprestigio mediático y sanciones por parte de las autoridades sanitarias.

Desde ahora, todos los laboratorios pueden validar de forma periódica sus métodos en sus propios productos de forma muy sencilla y económica.

Hay un antes y un después de  Seila-Plus Validación. Precios 2017:

intercomparativo microbiología alimentos efecto matriz: Seilaplus-validación, mucho más que un inter, el primero que evalúa el efecto matriz

PLATE COUNT MILK AGAR

2 respuestas

PCA MILK – PLATE COUNT MILK AGAR , medio de cultivo Standard Methods para recuento total de aerobios en productos lácteos

Recuento total de bacterias en productos lácteos (DIS 6610, D.I.N. 10192, UNE 34-819-:1985, UNE 34-810:1984, UNE 34-805:1983, UNE 34-812:1985)

COMPOSICIÓN

  • Triptona                                   5,00 g
  • Extracto de levadura                2,50 g
  • Dextrosa                                  1,00 g
  • Leche en polvo desnatada
  • (exenta de antibióticos)            1,00 g
  • Agar-agar                               10,00 g

(Fórmula por litro)

pH final: 6,9 ± 0,2

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PARA USO EN LABORATORIO.

MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO. AGITE EL BOTE ANTES DE USAR.

PRESENTACIÓN: MEDIO DESHIDRATADO. CODIGO: BCD115. Tambien en frascote preparado (RPL215) 200 ml con Reactivo cromogénico, para fundir y elaborar placas en las que las colonias se distinguirán muy bien del medio y de las partículas de muestra, por colorearse de rosa-rojo-púrpura sobre fondo blanco.

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PREPARACIÓN

Disolver 19,5 gramos de medio en 1 litro de agua bidestilada. Calentar hasta  ebullición, agitando hasta su completa disolución. Autoclavar durante 15 minutos a 121 ºC.

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

DESHIDRATADO: Polvo blanco

PREPARADO: Blanco traslúcido

CONTROL DE CRECIMIENTO 24-48 h a 37°C aproximadamente (o bien 72 h a temperatura ambiente 21-28°C aproximadamente):

  • Escherichia coli MKTA 25922, Excelente. Con respecto a PCA estandarizado*, recuento 108 %.
  • Enterococcus faecalis MKTA 29212, Excelente. Con respecto a PCA estandarizado*, recuento 97 %.
  • Staphylococcus aureus MKTA 6538P, Excelente. Con respecto a PCA estandarizado*, recuento 156 %.
  • Pseudomonas aeruginosa MKTA 9027, Excelente. Con respecto a PCA estandarizado*, recuento 95 %.

* El que cumple con recuperación superior al 92-125% con respecto a cepas cuantitativas trazables a la cepa tipo.

 SIEMBRA E INTERPRETACIÓN

Inocular 1 ml de muestra y su serie de diluciones decimales en masa. Si se desea un recuento más claro, añadir 2 ml/l de Reactivo cromogénico (SDA018) tras refundir y enfriar el medio a 55 ºC; de este modo, las colonias serán rojas. Incubar 72 horas a 30 ºC aproximadamente para los aerobios mesófilos, a 55 ºC aproximadamente para los termófilos y a 7 ºC aproximadamente para los psicrófilos. Contar todas las colonias y multiplicar por el factor de dilución para expresar los resultados en UFC/ml. Este medio está diseñado para siembra en masa. Si desea sembrar en superficie, añada 3 g/l de Agar-Agar (BCB006).

El usuario es el único responsable de la eliminación de los microorganismos según la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.

Si desea más información sobre nuestros PLATE COUNT MILK AGAR  rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

PLATE COUNT MILK AGAR CROMOGÉNICO

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PCA MILK CROMOGÉNICO PLATE COUNT MILK AGAR  con cromógenos que diferencia las colonias (rojas) del medio (turbio y con partículas de muestra)

Recuento total de bacterias en productos lácteos (DIS 6610, D.I.N. 10192, UNE 34-819-:1985, UNE 34-810:1984, UNE 34-805:1983, UNE 34-812:1985) diferenciando las colonias, incluso las más diminutas, de las partículas y del medio

COMPOSICIÓN

  • Triptona                               5,00 g
  • Extracto de levadura            2,50 g
  • Dextrosa                               1,00 g
  • Leche en polvo desnatada
  • (exenta de antibióticos)        1,00 g
  • Agar-agar                           10,00 g
  • cromógeno termoestable     c.s.

(Fórmula por litro)

pH final: 6,9 ± 0,2

Con este novedoso medio de MICROKIT, distinguirá a simple vista las colonias, rojas, de las partículas de muestra y del medio, agilizando los recuentos sin desgastar su vista.

Con este novedoso medio de MICROKIT, distinguirá a simple vista las colonias, rojas, de las partículas de muestra y del medio, agilizando los recuentos sin desgastar su vista.

PARA USO EN LABORATORIO.

MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO. AGITE EL BOTE ANTES DE USAR.

PRESENTACIÓN: MEDIO DESHIDRATADO. CODIGO: BCD115Z. Tambien en frascote preparado (RPL215) 200 ml con Reactivo cromogénico termoestable, para fundir y elaborar placas en las que las colonias se distinguirán muy bien del medio y de las partículas de muestra, por colorearse de rosa-rojo-púrpura sobre fondo blanco.

PREPARACIÓN

Disolver 19,5 gramos de medio en 1 litro de agua bidestilada. Calentar hasta  ebullición, agitando hasta su completa disolución. Autoclavar a 121 ºC durante 15 min o preferiblemente a 116°C durante 15 minutos. No sobrecalentar ni mantener fundido mucho tiempo. Refundir sólo una vez. El color final del medio es blanco-crema. A veces, por sobrecalentamiento, adquiere un tono rosado que retorna al crema cuando se vuelve a enfríar el medio y no afecta los resultados.

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

DESHIDRATADO: Polvo blanco.    PREPARADO: Blanco traslúcido

CONTROL DE CRECIMIENTO 24-48 h a 37°C aproximadamente (o bien 72 h a temperatura ambiente 21-28°C aproximadamente):

  • Escherichia coli MKTA 25922, Excelente. Con respecto a PCA estandarizado*, recuento 108 %.
  • Enterococcus faecalis MKTA 29212, Excelente. Con respecto a PCA estandarizado*, recuento 97 %.
  • Staphylococcus aureus MKTA 6538P, Excelente. Con respecto a PCA estandarizado*, recuento 156 %.
  • Pseudomonas aeruginosa MKTA 9027, Excelente. Con respecto a PCA estandarizado*, recuento 95 %.

* El que cumple con recuperación superior al 92-125% con respecto a cepas cuantitativas trazables a la cepa tipo.

Los recuentos medios son más altos que en el medio sin cromógeno, porque el color rojo permite ver muy bien las colonias diminutas.

 SIEMBRA E INTERPRETACIÓN

Inocular 1 ml de muestra y su serie de diluciones decimales en masa. Incubar 72 horas a 30 ºC aproximadamente para los aerobios mesófilos, a 55 ºC aproximadamente para los termófilos y a 7 ºC aproximadamente para los psicrófilos. Contar todas las colonias y multiplicar por el factor de dilución para expresar los resultados en UFC/ml. Este medio está diseñado para siembra en masa. Si desea sembrar en superficie, añada 3 g/l de Agar-Agar (BCB006). Algunas levaduras y bacterias acidolácticas pueden crecer, como en PCA-Milk normal, sin coloración roja, por lo que este medio los distingue de los aerobios.

El usuario es el único responsable de la eliminación de los microorganismos según la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.

Si desea más información sobre nuestros PLATE COUNT MILK AGAR  CROMOGÉNICO póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es

Prepárese para más de una sorpresa informativa cuando vea nuestro video sobre los medios Cromogénicos: https://www.youtube.com/watch?v=-JVPVWxY8ZE&t=271s

PLATE COUNT AGAR (PCA) POLVO AERÓBICO

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PLATE COUNT AGAR (PCA) POLVO

Medio Standard Methods para el recuento total de aerobios
Nueva fórmula ISO 4833:2003

Aplicaciones: Recuento total en alimentos (FIL, IDF, AOAC, APHA, ICMSF)
Referencia normativa: ISO 4833:2003 – ISO 2293:1983 – UNE-EN ISO 4833

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Micrococcus luteus. Crece mejor en PCA y a temperatura ambiente.

Micrococcus luteus. Crece mejor en PCA y a temperatura ambiente.

DESCRIPCIÓN

El Plate Count Agar (PCA) es el medio estándar internacionalmente aceptado para el recuento total de microorganismos aerobios mesófilos en alimentos, productos farmacéuticos, cosméticos y otras matrices.
Su nueva fórmula ISO 4833:2003, con menor contenido de agar, mejora la oxigenación y aumenta la sensibilidad del medio frente a microorganismos aerobios más lábiles.

COMPOSICIÓN (por litro de medio)

Componente Cantidad (g)
Triptona 5,0
Extracto de levadura 2,5
Glucosa 1,0
Agar-agar 10,5

pH final: 7,0 ± 0,2

Código deshidratado: BCD010
Uso exclusivo en laboratorio.

PREPARACIÓN

  1. Disolver 19 g de medio en 1 litro de agua destilada.

  2. Calentar con agitación hasta ebullición para su completa disolución.

  3. Repartir en tubos o frascos.

  4. Autoclavar 15 minutos a 121 °C.

  5. El medio presenta color blanco-crema.

Conservación: Mantener el envase bien cerrado, en lugar seco, fresco y oscuro.
Agitar antes de usar para homogeneizar.

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Aspecto del medio:

  • Deshidratado: Polvo grueso, color crema.

  • Preparado: Estéril, blancuzco.

Evaluación del rendimiento: ISO/TS 11133-2
Incubación: 24–48 h a 37 °C o preferiblemente 72 h a 30 °C.

Microorganismo (MKTA) Resultado esperado Productividad (PR%)
E. coli 25922 Excelente 76–157 %
Staphylococcus aureus 6538P Excelente 81–145 %
Bacillus subtilis 6633 Excelente 93–107 %
Micrococcus luteus 9341 Excelente, colonias amarillas, crecimiento óptimo a temperatura ambiente —
Enterococcus faecalis 29212 Excelente —
Pseudomonas aeruginosa 9027 Excelente —

Las cepas MKTA son directamente trazables a las colecciones tipo.
La variabilidad observada depende de la composición y carga de la flora acompañante inoculada.

MODO DE EMPLEO

  1. Inocular 1 ml de muestra y su serie de diluciones decimales en masa.

  2. Verter el medio fundido y enfriado sobre la muestra.

  3. Dejar solidificar y, si se desea, cubrir con una segunda capa del mismo medio.

Condiciones de incubación:

  • 30 °C / 48 h → Aerobios mesófilos.

  • 6 °C / 10 días → Flora psicrótrofa.

  • 55 °C / 48 h → Flora termófila.

Interpretación: Contar todas las colonias desarrolladas.

NOTAS Y OPCIONES COMPLEMENTARIAS

  • Para recuento más visual: añadir 2 ml/L de TTC estéril (SDA018) al medio enfriado a 55 °C (colonias rojas).

  • Para siembra en superficie, aumentar la concentración de agar a 25–27 g/L, o usar PCA Standard Methods (DMT094).

  • Alternativas: TSA (BCD011), Nutrient Agar (DMT089), Neutralizing Agar (DMT066), Yeast Extract Agar (DMT152).

  • Para minimizar desecación en muestreos de aire o Spiral Plating, añadir 2 gotas/L de antiburbujas (SBL001) antes de autoclavar.

  • Para diferenciar bacterias de hongos, añadir a un duplicado 0,05–0,5 g/L de cicloheximida (SKM200):

    • Con CEX → sólo bacterias.

    • Sin CEX → bacterias + levaduras y mohos.

PRESENTACIÓN

  • Tubos 20 ml

  • Frascos 100 ml y 200 ml

  • Medio deshidratado en polvo

ELIMINACIÓN

Autoclavar antes de desechar, conforme a la legislación medioambiental vigente.

CONTACTO

microkit@microkit.es
91 897 46 16
Monográfico Aerobios Totales

 

PLATE COUNT AGAR (PCA) STANDARD METHODS AGAR GRANULADO

2 respuestas

PLATE COUNT AGAR EN ECOGRÁNULOS

STANDARD METHODS AGAR para recuento de aerobios
En gránulos para evitar la inhalación de polvos

Referencia normativa: FIL, IDF, AOAC, APHA, ICMSF, UNE 34-553:1983, ISO 2293:1983, UNE-EN ISO 4833:2003

Recuento total con colonias hemisféricas (por siembra en superficie) y ovaladas (por siembra en masa).

Recuento total con colonias hemisféricas (por siembra en superficie) y ovaladas (por siembra en masa).

DESCRIPCIÓN

El Plate Count Agar (PCA) es el medio estándar recomendado internacionalmente para el recuento total de microorganismos aerobios mesófilos.
La presentación en ecográ­nulos evita la generación de polvo durante su manipulación, mejorando la seguridad y comodidad del usuario.

COMPOSICIÓN (por litro de medio)

Componente Cantidad (g)
Triptona 5,0
Extracto de levadura 2,5
Glucosa 1,0
Agar-agar 15,0

pH final: 7,0 ± 0,2

PREPARACIÓN

  1. Disolver 23,5 g de medio en 1 litro de agua bidestilada.

  2. Calentar con agitación hasta ebullición para su completa disolución.

  3. Repartir en tubos o frascos.

  4. Autoclavar 15 minutos a 121 °C.

  5. El medio preparado presenta color blanco-crema.

Conservación: Mantener el frasco bien cerrado, en lugar seco, fresco y oscuro.
Código deshidratado: DMT094
Uso exclusivo en laboratorio.

CONTROL DE CALIDAD

Aspecto del medio:

  • Deshidratado: Granulado, color crema.

  • Preparado: Estéril, blancuzco.

Condiciones de incubación: 24-48 h a 37 °C (o 72 h a 21-28 °C).

Microorganismo (MKTA) Resultado esperado Recuperación media
Bacillus subtilis 6633 Excelente 165 %
E. coli 25922 Correcto 24–123 %
Enterococcus faecalis 29212 Excelente 104–119 %
Staphylococcus aureus 6538P Excelente, dorado 97–125 %
Aspergillus niger 16404 Excelente, filamentos crema-negros 114–200 %
Candida albicans 10231 Excelente, colonias blancas 58–127 %
(Ver ficha completa para más cepas testadas.)    

Este es el medio estándar al que se trazan cuantitativamente los resultados de otros medios de recuento.

MODO DE EMPLEO

  • Siembra en superficie: Para aislamiento de colonias.

  • Siembra en masa (pour plate):

    1. Fundir tubos o frascos (20 ml/100–250 ml).

    2. Verter 15 ml del medio atemperado sobre la muestra (1 ml) en placa Petri.

    3. Dejar solidificar y cubrir con 5 ml adicionales.

    4. Repetir con las diluciones decimales.

Condiciones de incubación:

  • 30 °C / 48–72 h → aerobios mesófilos.

  • 55 °C → termófilos.

  • 7 °C → psicrófilos.

Interpretación: Contar todas las colonias desarrolladas.

NOTAS Y OPCIONES AVANZADAS

  • Añadir 2 ml/L de TTC estéril (SDA018) a 55 °C para teñir colonias de rojo y facilitar el recuento.

  • Para mayor sensibilidad, usar PCA más aeróbico (BCD010) con menor concentración de agar.

  • Añadir antiburbujas (SBL001) para siembras por Spiral o muestreos de aire.

  • Para diferenciar bacterias de levaduras y mohos, añadir a un duplicado 0,05–0,5 g/L de cicloheximida (SKM200):

    • Con CEX → sólo bacterias.

    • Sin CEX → bacterias + levaduras y mohos.

  • En lácteos, añadir 1 g/L de SKIM MILK MICROKIT para detectar halos de caseólisis.

PRESENTACIÓN

  • Tubos 20 ml

  • Frascos 100 ml y 250 ml

  • Medio deshidratado (ecográ­nulos)

ELIMINACIÓN

Autoclavar antes de desechar, conforme a la legislación medioambiental vigente.

CONTACTO

microkit@microkit.es
91 897 46 16
Ficha técnica completa (PDF)
Monográfico Aerobios Totales

 

PLATE COUNT AGAR (PCA) CROMOGÉNICO

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PLATE COUNT AGAR CROMOGÉNICO: STANDARD METHODS AGAR PARA RECUENTO DE AEROBIOS CON CROMOGENO TERMOESTABLE QUE ACELERA Y CONTRASTA

Recuento total en alimentos (FIL,IDF,AOAC,APHA,ICMSF), diferenciando las colonias, incluso las más diminutas, de las partículas y del medio

COMPOSICIÓN

  • Triptona                                5,0 g
  • Extracto de Levadura          2,5 g
  • Glucosa                                1,0 g
  • Agar‑agar                             10,5 g
  • Cromógeno termoestable c.s.
  • (Fórmula por litro)
  • pH final: 7,0 ± 0,2

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Con este novedoso medio de MICROKIT, distinguirá a simple vista las colonias, rojas, de las partículas de muestra y del medio, agilizando los recuentos sin desgastar su vista.

Con este novedoso medio de MICROKIT, distinguirá a simple vista las colonias, rojas, de las partículas de muestra y del medio, agilizando los recuentos sin desgastar su vista.

 

 

 

 

 

 

 

 

PREPARACIÓN

Disolver 19 g de medio en 1 litro de agua destilada.

Calentar hasta ebullición, agitando para su completa disolución.

Repartir en tubos o frascos. Autoclavar a 121 ºC durante 15 min o preferiblemente a 116°C durante 15 minutos. No sobrecalentar ni mantener fundido mucho tiempo. Refundir sólo una vez. El color final del medio es blanco-crema. A veces, por sobrecalentamiento, adquiere un tono rosado que retorna al crema cuando se vuelve a enfríar el medio y no afecta los resultados.

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO.

MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO. AGITE EL BOTE ANTES DE USAR.

DESHIDRATADO CODIGO: BCD510

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…). DESHIDRATADO: Polvo grueso, Crema    PREPARADO: Estéril, Crema

EVALUACIÓN DEL RENDIMIENTO ISO/TS 11133-2  24-48 h a 37 ºC  o mejor 72 h a 30 ºC, aplicando el método ISO 4833, ISO 2293, o el indicado en el Manual MICROKIT:

FERTILIDAD

  • E.coli MKTA 25922, Excelente, colonias rojas, PR >70% en concreto 76-163 % * de colonias respecto al número de ufc certificadas e inoculadas en TSA.
  • Staphylococcus aureus MKTA 6538P, Excelente, colonias rojas, PR >70% en concreto 81-145 % * de colonias respecto al número de ufc certificadas e inoculadas en TSA.
  • Bacillus subtilis MKTA 6633, Excelente, colonias rojas, PR >70% en concreto 93-107 % * de colonias respecto al número de ufc certificadas e inoculadas en TSA.
  • Micrococcus luteus MKTA 9341, Excelente, Colonias rojas en 48 h, crecen mucho más rápido y mejor que en TSA, y mejor a temperatura ambiente.
  • Enterococcus faecalis MKTA 29212, Excelente, colonias rojas, PR >70% en concreto 171 % *de colonias respecto al número de ufc certificadas e inoculadas en TSA.
  • Pseudomonas aeruginosa MKTA 9027, Excelente, colonias rojas.

* Esta variabilidad de la productividad depende de la composición y carga de la flora acompañante inoculada.

Las colecciones TIPO prohiben el uso de su referencia por lo que indicamos la nuestra, directamente trazable a la colección TIPO.

MEJOR QUE EL PCA CLÁSICO Y DEPENDIENDO DEL AGAR-AGAR

Dos años de participación en ensayos intercomparativos de alimentos, con 10 matrices alimentarias diferentes, demuestran que no existen diferencias en los recuentos en contra del PCA cromogénico de MICROKIT respecto a los PCA standard, sino al revés; ejemplo: en hamburguesas, recuento medio en PCA clásico 9,0 x 104, en PCA cromogénico 2,6 x 105 (ya que el color permite ver muy bien las colonias diminutas), otros medios (Nutrient Agar, R2, LPT Agar, YEA… no indicados para matrices alimentarias) 8,5 x 103.

   Comparando la recuperación de diferentes microorganismos en PCA cromogénico, fabricado con diferentes agares, observamos que el Agar Europeo MICROKIT es el que mejores resultados obtiene, con diferencias significativas de 1 log (36-39 veces más colonias), respecto a los demás agares y respecto a TSA, y por ello es el que empleamos, para máximas recuperación y exactitud:

Cepa con concentración certificada en TSA

PCA cromogénico fabricado a partir de PCA de otra marca de reconocido prestigio

PCA cromogénico fabricado con agar americano MICROKIT

PCA cromogénico fabricado con agar Europeo MICROKIT

E. coli   1.79 x 103

6×103 (335 %)

1×104 (559 %)

1.8×104  (1000 %)

Klebsiella oxytoca   7.10 x 103

6×103 (84,51 %)

1×103 (14 %)

1.7×104  (239 %)

Shigella sonnei   1.37 x 103

7×103 (511 %)

7×103 (511 %)

1.6×104 (11.678 %)

Enterococcus faecalis   2.46 x 103

1×104 (406 %)

6×103 (244 %)

1.5×104 (6.098 %)
Candida albicans   3.19 x 103 5×103 (157 %) 8×103  (251 %)

1.8×104  (564 %)

TOTAL RECUENTO 1,59 x 104

298 % respecto a TSA

316 % respecto a TSA

106 % respecto al anterior

3.916 % respecto a TSA

3.694 % respecto a los anteriores

PRESENTACIÓN:

TUBOS 20 ml, FRASCOS 100 ml, MEDIO DESHIDRATADO.

Recuento total standard de bacterias aerobias en alimentos, productos farmacéuticos, cosméticos y otros productos. Las colonias crecen en distintos tonos del rojo: rosa, naranja, purpura…. sobre el tono crema del medio (excepto ciertos acidolácticos y ciertas levaduras, que crecen con colonias blancas, sin viraje, por lo que este medio los distingue de los aerobios). El color no afecta a las pruebas de identificación posteriores que quisiera realizar.

 MODO DE EMPLEO E INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS

Inocular 1 ml de muestra y su serie de diluciones decimales, en masa. Incubar a 30 ºC aproximadamente durante 48 horas. Con flora psicotrofa, incubar a 6 ºC aproximadamente durante 10 días y con flora termófila, incubar a 55 ºC aproximadamente durante 48 horas.

Contar todas las colonias.

Esta fórmula, con menos agar, aumenta la sensibilidad del medio frente a los aerobios más lábiles, al permitir una mejor oxigenación del fondo. Este medio está diseñado para siembra en masa. Si desea sembrar en superficie, añada 3-5 g/l de Agar-Agar (BCB006), o utilice 25-27 g/l de este mismo medio.

NOTAS

Para minimizar la desecación en muestreos de aire y superficies, o para siembra en Spiral, añadir 2 gotas de antiburbujas (SBL001) por cada litro de agua, antes de añadir el medio y antes de autoclavar.

Para contar por separado las bacterias, de las levaduras y mohos, añadir a un duplicado, enfriado a 45°C, 0,05-0,5 g/l de  Cicloheximida (SKM200): En la placa con CEX  sólo crecerán las bacterias y en la placa sin CEX , la suma de bacterias + levaduras y mohos.

PLATE COUNT AGAR CROMOGÉNICO: STANDARD METHODS AGAR PARA RECUENTO DE AEROBIOS CON CROMOGENO TERMOESTABLE QUE ACELERA Y CONTRASTA

https://www.microkit.es/pdf/pca-cromogenico.pdf

El usuario es el único responsable de la eliminación de los microorganismos según la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.                                            Diseñado  en Enero 2007,  revisado en Nov, 2014

Si desea más información sobre nuestros PLATE COUNT AGAR (PCA) CROMOGÉNICO póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es 

PCA cromogénico de MICROKIT: Incorpora un cromógeno similar al TTC pero con una gran diferencia sobre éste: es termoestable y se puede autoclavar el medio completo. Colonias de diversos aspectos de aerobios, todas ellas rojas, lo que contrasta con el color del medio y facilita su recuento, descansando la vista del analista. Además impide contar como falsos positivos las partículas de muestra, burbujas y demás artefactos. Y encima, gracias al contraste de color colonia/medio, permite ver las colonias 1 día antes, aunque sean más pequeñas y no se aprecien en el PCA clásico.
https://www.microkit.es/pdf/pca-cromogenico.pdf

https://www.microkit.es/monograficos/2-Aerobios-Totales-monograf–a.pdf

Prepárese para más de una sorpresa informativa cuando vea nuestro video sobre los medios Cromogénicos: https://www.youtube.com/watch?v=-JVPVWxY8ZE&t=271s

OSMOTOLERANT-YEASTS AGAR (OYA)

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OSMOTOLERANTES-YEASTS AGAR (OYA) medio IFU 3 para la detección de levaduras que soportan altas presiones osmóticas

Fórmula IFU Method Nº 3. Medio de cultivo para detección y recuento de levaduras osmotolerantes, que soportan altas presiones osmóticas.

 COMPOSICIÓN

  • Extracto de levadura              10,0 g
  • Fructosa                                 200,0 g
  • Sacarosa                                 200,0 g
  • Agar‑agar                               10,0 g

(Fórmula por litro)

pH final: 5,5 ± 0,2

PREPARACIÓN

Disolver 420 gramos de medio en 580 m1 de agua bidestilada. Calentar, agitando, hasta  ebullición, para la total homogeneización. La turbidez es normal y se minimiza al plaquear.  Repartir en tubos o en frascos. Autoclavar a 110º C durante 10 minutos en un autoclave pequeño, minimizando los tiempos de calentamiento y enfriamiento. O bien a 116°C, 5 minutos. El color final del medio es ámbar.  No sobrecalentar o podría destruirse la macromolécula de Agar, perdiéndose su capacidad solidificante.  Si  se desea crecimiento exclusivo de hongos (levaduras y mohos), añadir antes de autoclavar 0.5 g/l de Cloranfenicol (SMS195). Sembrar 1 ml de muestra y su serie de diluciones decimales, en masa o bien  0,1 ml en superficie con asa de Digralsky. Incubar en atmósfera húmeda a 29ºC durante 3-5 días. Contar todas las colonias y expresar los resultados en ufc/g de muestra. Para contar por separado las bacterias, de las levaduras y mohos, añadir a un duplicado, enfriado a 45ºC, 0,05-0,5 g/l de Cicloheximida (SKM200): En la placa con CEX sólo crecerían las bacterias osmotolerantes y en la placa sin CEX, la suma de bacterias + levaduras y mohos osmotolerantes. Identificar las colonias con el servicio de identificación molecular SFI004+ de MICROKIT

MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO. AGITE EL BOTE ANTES DE USAR.

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO.

DESHIDRATADO: SÓLO SE PREPARA BAJO PEDIDO EN BIDÓN DE 5 Kg (ó 10 botes de 500 g): DMT216

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

DESHIDRATADO: Polvo fino, Beige

PREPARADO: Estéril, Paja-Ambar

CONTROL DE CRECIMIENTO 3-5 días a temperatura ambiente (21-28°C aproximadamente):

  • Staphylococcus aureus MKTA 6538P, inhibido.
  • E.coli MKTA 25922, inhibido.
  • Saccharomyces cerevisiae MKTA 9763, Crece con dificultad
  • Zygosaccharomyces rouxi MKTN 381, Correcto

PRESENTACIÓN: MEDIO DESHIDRATADO

MODO DE EMPLEO E INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS

Fundir al baño María los frascos que se hayan estocado a partir del medio deshidratado, sin sobrecalentar. Si se desea, se puede reajustar el pH hasta 5,5 con Acido Tartárico estéril para mejorar la selectividad. No recalentar.

Sembrar en masa 1 ml de muestra e incubar 3-7 días a 21-25 ºC aproximadamente, o mejor incubar el tiempo y a la temperatura para los que se puedan esperar problemas (las del almacenamiento y transporte). Contar todas las colonias como bacterias y/o levaduras (según proceda mediante el cloranfenicol o la cicloheximida) osmotolerantes.

El usuario es el único responsable de la eliminación de los microorganismos según la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.

https://www.microkit.es/fichas/OSMOTOLERANT-YEAST-AGAR.pdf

Si desea más información sobre nuestros OSMOTOLERANT-YEASTS AGAR (OYA) rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16