Archivo de la categoría: medios de cultivo

informacion, novedades, nuevos métodos relacionados con los medios de cultivo, Microbiología de alimentos, aguas, medicamentos, cosméticos y ambiente:

SLANETZ-BARTLEY AGAR BASE (SIN TTC)

Enterococos fecales SLANETZ-BARTLEY AGAR , medio ISO 7899 para detección y recuento de Enterococos fecales en aguas

Selección de enterococos fecales  por filtración de membrana (ISO 7899-2:2001, UNE 77-076:1991, BOE 45 de 21/2/2003 de aguas de consumo humano, BOE 259 de 29/X/2003 de aguas de bebida envasadas).

COMPOSICIÓN

 

  • Triptosa                        20,00 g
  • Extracto de levadura              5,00 g     SLANETZ SIN ttc
  • Glucosa                         2,00 g
  • Hidrog.Fosfato di-K              4,00 g
  • Azida sódica (Na N3)              0,40 g
  • Agar-agar                      12,00 g
  • (Fórmula por litro)
  • pH final: 7,2 ± 0,2

 PREPARACIÓN

Disolver 43.5 g de medio en 1 litro de agua bidestilada. Calentar, agitando, hasta ebullición para su total homogeneización y dejar 5 minutos más en agua hirviendo. Evitar el excesivo calentamiento y enfriar rápidamente. No autoclavar. Una vez enfriado a 50-60°C, añadir 10 ml de una solución de TTC al 1% (MICROKIT SDA018). El color final del medio es incoloro-paja. Este medio sustituye al Slanetz-Bartley completo, sin tener que preocuparse de los eventuales sobrecalentamientos que vuelven de color rosa a éste.

 PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO. AGITE EL BOTE ANTES DE USAR. MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO.

DESHIDRATADO CODIGO: DMT117

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

DESHIDRATADO: Polvo fino, Amarillo     PREPARADO: Estéril, Crema

CONTROL DE CRECIMIENTO CUANTITATIVO 48 h a 37°C aprox.:

E.coli MKTA 25922, Inhibido.

Bacillus subtilisMKTA 6633, Inhibido.

Enterococcus duransMKTA 10541, Bueno, Colonias rosas-granates, pequeñas. Con respecto a TSA estandarizado*, recuento 120-133%, pero de forma selectiva.

Enterococcus faecalis MKTA 29212, Bueno, Colonias rosas-granates, pequeñas. Con respecto a PCA estandarizado*, recuento 111-270%, pero de forma selectiva.

* El que cumple con recuperación superior al 92-125% con respecto a cepas cuantitativas trazables a la cepa tipo. Incertidumbres detectadas entre todos los lotes a lo largo de un año (la mayoría de la incertidumbre se debe a la cepa y a la proporción de cepas acompañantes inoculadas, no al medio).

 PRESENTACIÓN: MEDIO DESHIDRATADO. NUEVO: PLAQUIS ® PREPARADAS HERMÉTICAS PARA M.F. con TTC: Ref. PPL909

En caldo preparado con TTC: Viales 2 ml, Viales Pinchables 100 ml.

Medio selectivo indicado para aislamiento y recuento de estreptococos fecales en agua y en alimentos, con la técnica de filtración de membrana o con el método de siembra en superficie. 

SIEMBRA.

Sembrar en superficie 0.1 ml de muestra y extender con asa de Digralsky, o bien la membrana filtrada. Incubar a 36 ºC aproximadamente, 44 horas (para mejor selectividad, a 44-45 ºC aproximadamente, preferiblemente tras 4h a 36°C aproximadamente). 

INTERPRETACIÓN.

 Las colonias rojas, rosas o castañas, elevadas y diminutas se consideran presuntivas de estreptococos fecales del subgrupo de los Enterococos. El color rojizo es menos intenso cuanto más viejo es el medio. Deben confirmarse resembrándolas en Agar Bilis Esculina Azida (MICROKIT DMT160), donde crecen con halo tostado-negro en sólo 2 horas adicionales. Resembrando la membrana, se confirma el 100% de las colonias. Tambien es diferencial la prueba rápida del PYR (KWD103).

Si desea más información sobre nuestro MEDIO SLANETZ BARTLEY BASE,  rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

https://www.microkit.es/fichas/SLANETZ-BARTLEY-AGAR-BASE-SIN-TTC.pdf

Si necesita mayor rapidez, consulte estos otros dos medios para siembra directa en ellos:

https://www.microkit.es/fichas/BILE-ESCULIN-AZIDE-AGAR.pdf

https://www.microkit.es/fichas/CROMOKIT-ENTEROCOCCUS-AGAR.pdf

https://www.microkit.es/monograficos/16-Enterococos-fecales-monograf–a.pdf

 

R2A CROMOGENIC AGAR

R2A CROMOGENIC AGAR (A.P.H.A, Pharmacopea medio S, mejorado) permite obtener recuentos muy superiores de aerobios oligotrofos en aguas

Recuento total en aguas potables, con máxima recuperación , al continuar las células en un medio tan oligotrófico como la muestra de agua. Recomendado para recuento en aguas cloradas y farmacéuticas. La adición de un cromógeno termoestable permite el contraste de las colonias, rojas, con el color del medio con el de la membrana.

COMPOSICIÓN.

  • Extracto de levadura       0,50 g         r2 cromog
  • Extracto de carne            0,50 g
  • Hidrolizado de caseina    0,50 g
  • Dextrosa-Glucosa           0,50 g
  • Almidón soluble              0,50 g
  • Di-K Hidrógeno Fosfato0,30 g
  • Sulfato de Magnesio       0,024 g
  • Piruvato de Sodio           0,30 g
  • Mezcla cromogénica        c.s.
  • Agar-Agar                       15,00 g
  • (Fórmula por litro)
  • pH final: 7,2 ± 0,2

 

PREPARACIÓN

Disolver 19 gramos de medio en 1 litro de agua bidestilada .

Agitar, calentando hasta ebullición,hasta la total homogeneización.

Autoclavar a 121 ºC durante 15 minutos. No sobrecalentar y enfriar rápidamente para evitar que el medio vire a rosa, lo que haría contrastar peor a las colonias rojas.

MANTENER EL BOTE BIEN CERRADO, EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO.   AGITE EL BOTE ANTES DE USAR.

PARA USO EN LABORATORIO.

DESHIDRATADO CODIGO: DMT545

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

DESHIDRATADO: Polvo grueso, Beige.

PREPARADO: Estéril, Blanquecino.

CONTROL DE CRECIMIENTO CUANTITATIVO 72 h a 37°C aproximadamente (o bien 5 días a Tª ambiente 21-28°C aproximadamente):

Escherichia coliMKTA 25922, Correcto, colonias rojas. Con respecto a PCA estandarizado*, recuento 132-161%

Enterococcus faecalisMKTA 29212, Correcto, colonias rojas. Con respecto a PCA estandarizado*, recuento 166-177 %

Pseudomonas aeruginosaMKTA 9027, Correcto, colonias rojas. Con respecto a PCA estandarizado*, recuento 85-143%

Staphylococcus aureus MKTA 6538P, Correcto, colonias rojas. Con respecto a PCA estandarizado*, recuento 111-133%

Aeromonas hydrophilaMKTA 49141, Correcto, colonias rojas. Con respecto a PCA estandarizado*, recuento >100%.

* El que cumple con recuperación superior al 92-125% con respecto a cepas cuantitativas trazables a la cepa tipo. Incertidumbres detectadas entre todos los lotes a lo largo de un año (la mayoría de la incertidumbre se debe a la cepa y a la proporción de cepas acompañantes inoculadas, no al medio).

PRESENTACIÓN: MEDIO DESHIDRATADO, FRASCOS PREPARADOS, PLAQUITAS HERMETICAS MF.

MODO DE EMPLEO E INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS.

Inocular 1 ml en profundidad o mejor 0,1 ml en superficie, o aún mejor una membrana en superficie por la que se hayan filtrado 1-250 ml de muestra. Duplicar la muestra. Incubar una placa 5-7 días a 22 ºC aprox. para mesófilos y la otra 3 días a 30-37 ºC aprox. para termófilos. Contar todas las colonias, que serán rojas y muchas más que en medios normales como PCA, TSA, Nutrient Agar, LPT Neutralizing Agar… (Sanchís, 9/99, Interlaboratorio sobre la recuperación de medios nutritivos para recuento total en aguas, XVII Congreso S.E.M.). La flora termófila se asocia a procedencia humana. La mesófila al proceso de depuración. Este medio no es adecuado para recuento en alimentos, superficies o aire, sólo es mucho más sensible en aguas puras.

Si desea más información sobre nuestro R2 CROMOGENIC AGAR, rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

Mejora del R2A para el recuento de aerobios en aguas oligotróficas

https://www.microkit.es/fichas/CROMOKIT-R2-AGAR.pdf

Prepárese para más de una sorpresa informativa cuando vea nuestro video: https://youtu.be/qE2gNZH9KWQ?si=sAKHe8KqtGkBua9V

CEPAS CUANTITATIVAS

CEPAS EN LENTÍCULAS CUANTITATIVAS Y ESTABLES, para sus controles de calidad de medios, sus validaciones, sus Challenge Test, etc.

Con las cepas cuantitativas en lentículas estabilizadas de MICROKIT, obtiene grandes ventajas:

1-Nomenclatura de la colección universal WDCM (ISO 11133-2)

2-Caducidad de 2 años desde fabricación en el 98% de cepas

3-Gama completa excepto las que se resisten a este formato (Legionella, Campylobacter y Vibrio)

4-Son tan estables, que viajan a temperatura ambiente y al exportarlas resisten retenciones aduaneras de hasta una semana a temperatura ambiente en países tropicales, sin afectar a su viabilidad ni a sus recuentos

5-La incertidumbre se dispara mucho mas en cepas fabricadas a concentración baja, que en las diluciones que pueda Ud. hacer de cepas a concentraciones más altas

6-Las concentraciones medias y altas permiten darle a una sola lentícula muchos más usos  (en el mismo día) que las concentraciones bajas. Y son las únicas válidas en ciertas validaciones y en el Challenge Test

7-Por cada tubo que nos compra con 10 lentículas de una cepa, le regalamos 2 adicionales para sus controles de recepción (ofrecemos docenas a precio de decenas)

8-El sobre Faraday de aluminio protege a las cepas de radiaciones durante el transporte y durante su almacenamiento

9-Hemos minimizado el tamaño de su presentación (la mitad que otras marcas) para que ahorre en el espacio más costoso del laboratorio: el congelador

10-Únicas lentículas de cepas cuantitativas fabricadas en España, con inmenso stock para entrega inmediata

Solicite el listado actualizado en microkit@microkit,es, ya que se cambia cada mes

Diapositiva1Diapositiva2Diapositiva3Diapositiva4Diapositiva5Si desea más información sobre nuestro LISTADO DE CEPAS no dude en contactar con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es, o por teléfono en nuestro telefono 91-897 46 16.

Consulte el folleto:

https://www.microkit.es/pdf/CEPAS-CUANTITATIVAS.pdf

Y el video:

https://youtu.be/4WJ8FQl6GIE

 

M-IDENT NEOGRAM

Neogram provoca la filamentación inmediata de las colonias de los Gram negativos, por lo que ahorra tiempo y trabajo en la pre-identificación de las colonias

GRAM INMEDIATO NEOGRAM FILAMENTA TODA COLONIA GRAM NEGATIVA Y NO FILAMENTA TODA COLONIA GRAM POSITIVA, EN SEGUNDOS

M-IDENT NEOGRAM es un test rápido para la diferenciación inmediata de Gram en colonias bacterianas in vitro.

 

M-IDENT NEOGRAM altera la pared de las bacterias Gram Negativas, transformando instantáneamente la colonia bacteriana en un filamento muy parecido a la fibrina, bien visible a simple vista.

Cuando el aspecto de la colonia no permite estar seguro del grupo bacteriano al que pertenece, es necesario realizar la clásica y larga tinción de Gram.

NEOGRAM permite conocer en 20 escasos segundos la diferenciación de Gram de las colonias aisladas en los medios de cultivo. La correlación con la tinción de Gram es total.

El ahorro de tiempo es notorio en la fase previa a la elección de las galerías o pruebas a utilizar en la identificación.

Si es necesario concretar la morfología celular, NEOGRAM puede complementarse con un examen microscópico.

La formación de un filamento elástico que une la gota de NEOGRAM o el palillo con la colonia es indicadora de bacteria Gram Negativa.

La no formación de dicho filamento es indicadora de bacteria Gram Positiva. En este caso, es recomendable repetir la prueba para confirmar.

El reactivo destruye la colonia, por lo que si se requieren pruebas posteriores, hay que haberla repicado antes.

Precaución: corrosivo, no tocar ni inhalar. Contiene bases fuertes.

nEOGRAM

GRAM INMEDIATO NEOGRAM FILAMENTA TODA COLONIA GRAM NEGATIVA Y NO FILAMENTA TODA COLONIA GRAM POSITIVA, EN SEGUNDOS

https://www.microkit.es/fichas/NEOGRAM-M-IDENT-REACTIVO-GRAM-KIT.pdf

 

Tambien en video:

https://youtu.be/knxE5wH-kCI

Para más información sobre nuestros kit M-IDENT NEOGRAM,  no dude en ponerse en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16. 

 

LPT NEUTRALIZING BROTH INCOLORO

LPT Neutralizing Broth: La Solución Definitiva para la Neutralización de Conservantes

LPT Neutralizing Broth (incoloro) es una modificación avanzada del medio Letheen/Eugon ISO. Está diseñado para ofrecer la máxima recuperación de microorganismos en muestras que contienen componentes que interfieren con la flora, superando las limitaciones de los medios tradicionales.

Propósito Clave: Neutralización y Dispersión

LPT Broth es el medio de elección para la solución madre, diluciones y pre-enriquecimiento en matrices problemáticas.

Funcionalidad Beneficio Específico
Neutralización Universal Inactiva TODO TIPO de conservantes modernos y residuos desinfectantes (incluidos los que inactivan los medios clásicos con Lecitina/Tween) y metabolitos microbianos.
Emulsión de Grasas Emulsiona eficientemente los productos grasos, asegurando una buena dispersión del inóculo.
Aplicación Ideal Cosméticos, desinfectantes, y alimentos grasos y/o con conservantes (naturales o añadidos).

El Poder de la Neutralización Total

LPT Neutralizing Broth garantiza que la viabilidad del microorganismo no se vea comprometida por los compuestos presentes en la muestra. Neutraliza una amplia gama de agentes, incluyendo:

  • Derivados de Amonio Cuaternario
  • Conservantes Modernos: Parabenos e Isotiazolinona
  • Compuestos Fenólicos: Fenoxietanol, Feniletanol, Anilidos, etc.
  • Agentes Oxidantes: Peróxidos, Halógenos (Cloro, Iodo, etc.) y Lejía.
  • Aldehídos: Formaldehído, Glutaraldehído y compuestos liberadores de formol.
  • Otros: Imidazoles, Clohexidina, Biguanida, y Sales Metálicas (Cu, Zn, Hg).

Además, inactiva los metabolitos generados por la flora acompañante, que en otros caldos pueden enmascarar o impedir el crecimiento del organismo diana.

Rendimiento Comprobado y Validado

La eficacia de LPT Broth no es solo teórica; está respaldada por estudios y comparaciones interlaboratoriales:

  • Recuperación General: En un estudio intercolaborativo (SANCHIS, 1998), LPT Broth fue el medio que más flora total recuperó entre todos los caldos generales evaluados.
  • Recuperación de Patógenos: Fue el segundo medio que más patógenos recuperó (solo por detrás de BHI Broth).
  • Validación Externa: Demuestra ser el mejor medio inicial para recuentos (diluciones) y para la búsqueda de patógenos (revitalización/pre-enriquecimiento) en los servicios intercomparativos SEILAPARFUM y SEILALIMENTOS.

Documentación:

Puede descargar la validación actualizada para microbiología cosmética en la web de www.microkit.es (pestaña publicaciones y validaciones

En este link tiene el folleto actualizado, incluida su validación y un estudio de máximo interés sobre los tiempos ideales de incubación de los enriquecimientos para aislamiento de patógenos:

https://microkit.org/wp-content/uploads/2026/06/LPT-NEUTRALIZING-BROTH-INCOLORO.pdf

ValidadoLPT Neutralizing

Izda: Sin inocular.

Dcha: Tubo turbio, con crecimiento a pesar de los conservantes

 Para más información sobre nuestros medios de cultivo y kits,  no dude en ponerse en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16.

Ver tambien el LPT Neutralizing Broth Purple, basado en D/E Neutralizing Broth ISO pero tambien actualizado para neutralizar todos los conservantes que se usan en la actualidad en cosmética:

https://www.microkit.es/fichas/LPT-NEUTRALIZING-BROTH-PURPLE.pdf

Olvide los caldos obsoletos ISO (Eugon, Letheen, D/E…) y use los caldos neutralizantes validados del Siglo XXI

M-IDENT®-Bacillus cereus

KIT DE CONFIRMACIÓN DE COLONIAS DE PRESUNTOS BACILLUS CEREUS

Confirmación Bacillus cereus en KIT, para alimentos, según ISO 7932. Incluye todo lo necesario para la confirmación de colonias sospechosas: M-IDENT®-Bacillus cereus

m.ident bacillus

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO MANTENGA LA CAJA CERRADA, EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO.

CODIGO: KMT009

VENTAJA: Su extremadamente larga caducidad, de 1 año asegurado.

PRESENTACION: 

KIT DE 6 TEST para la confirmación de colonias sospechosas de Bacillus cereus:

– 6 tubos sólidos de color violeta de Agar DTA-Polimixina (TPL092)

– 6 tubos líquidos incoloros de MRVP (TPL025).

– 1 kit de reactivos de Voges Proskauer 1 + 2 de 5 ml cada uno, suficiente para las 6 pruebas (SRH083).

– 6 tubos semisólidos e incoloros de Medio Nitratos-Movilidad (TPL079).

– 1 kit de Reactivos de Nitratos A + B de 5 ml cada uno, suficiente para las 6 pruebas (SMN001).

EL KIT NO INCLUYE:

  • Cepas de reserva, de trabajo o cuantitativas para validar los reactivos una vez llegados a fábrica o tras almacenamientos prolongados o inadecuados.
  • Participación en servicios intercomparativos como SEILALIMENTOS para validar los procedimientos y los operarios

CONTROL DE CALIDAD DEL KIT

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

TUBOS PREPARADOS DTA-polimixin Agar: Estéril, violeta-púrpura, sólido, inclinado.

Y TUBOS PREPARADOS MRVP Broth: Estéril, líquido, incoloro-paja.

TUBOS PREPARADOS Nitratos-Movilidad: Estéril, incoloro, semisólido.

KIT VP: NO estéril, goteros 1 + 2 con 5 ml cada uno. IRRITANTE.

KIT Nitratos: NO estéril, goteros 1 + 2 con 5 ml cada uno. IRRITANTE.

CONTROL DE CRECIMIENTO a 30°C durante 24 horas, en aerobiosis:

En el tubo violeta de DTA-polimixina, Bacillus cereus MKTA10876 crece con viraje del medio a amarillo-crema.

Y en el tubo líquido incoloro de MRVP Broth, Bacillus cereus MKTA10876 crece y tras añadir los reactivos VP vira a rosa.

En el tubo crema de Buffered Nitrate-Motility Medium, Bacillus cereus MKTA10876 crece con difusión/movilidad y reduce el nitrato a nitrito con viraje a rojo tras añadir los reactivos de Nitratos.

MODO DE EMPLEO E INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS

Inocular una porción de colonia sospechosa pura, procedente, de B.cereus Agar Mossel, en estría en el tubo violeta de DTA-Polimixina; por dilución en el tubo de caldo MRVP y por picadura en el tubo semisólido crema de Buffered Nitrate-Motility Medium. Incubar los tres tubos a 30+2º C durante 21+3 horas, en condiciones aerobias. Observar el viraje a amarillo del DTA, el viraje a rosa de MRVP 1 hora después de añadir 0,5 ml de los reactivos VP, el viraje a rojo de los Nitratos 15 minutos después de añadir 0,5 ml de los reactivos de Nitratos, y la movilidad, positiva si hay crecimiento difuso desde la línea de picadura.

Bacillus cereus, según Norma ISO 7932:1998 adaptada, es toda colonia sospechosa procedente de Agar Mossel, que crece en DTA-polimixina con viraje del medio violeta a amarillo, que provoca test positivo de VP en MRVP (viraje a rosa),  que provoca test positivo de Nitratos en el medio de Nitratos-Movilidad  (viraje a rojo) y que crece difuso, por movilidad, a partir de la picadura en el medio de Nitratos-Movilidad.

NOTA:

La versión más moderna de esta Norma no habla de Bacillus cereus, sino de presuntos B.cereus, por lo que no la aplicamos.

 

Si desea más información sobre nuestros M-IDENT®-Bacillus cereus, rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

https://www.microkit.es/fichas/Bacillus-cereus-M-IDENT-KIT-UE-2-2019-alimentos.pdf

https://www.microkit.es/monograficos/10-Bacillus-monograf–a.pdf

 

AGAR SANGRE DE CORDERO

 

Agar Sangre de Cordero (Base Columbia)

agar sangre de cordero

Descripción General y Aplicaciones Críticas

El Agar Sangre de Cordero con base Columbia es un medio de cultivo altamente nutritivo, diseñado para la detección de la actividad hemolítica en una amplia variedad de microorganismos patógenos.

Su fórmula enriquecida permite el crecimiento de especies tanto exigentes como no exigentes, superando la capacidad del agar sangre con base clásica. Esto lo convierte en el medio de elección en entornos donde se requiere el aislamiento de microorganismos con requerimientos nutricionales complejos.

Aplicaciones Fundamentales:

  • Detección de Hemólisis: Visualización precisa de los halos de hemólisis $(\alpha, \beta, \gamma)$ para la identificación de especies bacterianas.
  • Aislamiento y Confirmación: Ideal para patógenos clave como Listeria monocytogenes, Clostridium perfringens, Bacillus cereus, y Legionella pneumophila.
  • Entornos Clínicos: Su riqueza nutritiva lo hace indispensable para el aislamiento de microorganismos en ambientes frecuentados por personas enfermas o inmunodeprimidas (hospitales, quirófanos, UVIs).

 

Composición de Calidad Superior al Agar Sangre típico

La formulación Columbia se caracteriza por la variedad de peptonas que ofrecen un suministro óptimo de nitrógeno, aminoácidos y péptidos de cadena larga, garantizando un crecimiento robusto.

El medio una vez preparado incluye 5 mL de sangre desfibrinada de cordero por cada 100 mL, para observar claramente las reacciones de hemólisis.

Componente Cantidad por Litro (g)
Peptona de Caseína 10 g
Peptona de Carne 5 g
Extracto de Levadura 3 g
Extracto de Corazón 3 g
Cloruro Sódico 5 g
Almidón de Maíz 1 g
Agar Bacteriológico 15 g
Sangre de Cordero 50 mL

Fórmula por Litro: pH 7.2 +/- 0.2


 

Control de Calidad y Crecimiento

Garantizamos un estricto control de calidad en nuestras instalaciones. Le recomendamos encarecidamente repetir estas pruebas si observa cambios en las condiciones de almacenamiento (ej. más de 3 meses sin usar, fluctuaciones de temperatura).

  • Estado Deshidratado: Polvo, color Beige.
  • Estado Preparado (Placa): Estéril, color Rojo Cereza por la sangre.

Control de Crecimiento Cuantitativo (48 horas a $\mathbf{37 °C}$):

Cepa de Referencia (MKTA) Resultado de Crecimiento Actividad Hemolítica
Clostridium sporogenes 11437 Crecimiento Correcto (crecimiento > 50% con inoculación < 100 ufc) –
Streptococcus viridans Crecimiento Excelente alpha-Hemolítico
Listeria monocytogenes 7644 Buen Crecimiento beta-Hemolítico
Enterococcus faecalis 29212 Buen Crecimiento gamma-Hemolítico (No hemolítico)

 

Siembra e Interpretación de Resultados

Para obtener resultados óptimos, asegúrese de que las placas hayan alcanzado la temperatura ambiente y presenten una superficie húmeda, pero sin condensación excesiva.

 

1. Métodos de Siembra

  • Análisis de Muestras: ESTRÍE la muestra diluida o enriquecida en la superficie de la placa hasta obtener colonias aisladas por agotamiento.
  • Análisis Cualitativos de Aire: Deje las placas abiertas en los puntos de muestreo críticos durante 10 a 30 minutos.
  • Análisis Cuantitativos de Aire (Recomendación profesional): Utilice un muestreador tipo Microflow con cabezal para placas Petri de $\text{90 mm}$.
    • Mantenga el flujo de aire perpendicular a la superficie del medio.
    • Se recomienda analizar $\text{200 L}$ de aire a un caudal de $\text{0.5 L/seg}$ para máxima recuperación.
    • Cálculo: Multiplique el recuento de colonias en la placa por 5 para obtener el recuento total por metro cúbico. Para ambientes limpios, sume los resultados de 5 muestras de $\text{200 L}$ para obtener el recuento por metro cúbico.

 

2. Incubación y Lectura

  • Condiciones: La incubación estándar es en atmósfera aerobia a la temperatura óptima de crecimiento del microorganismo buscado o, por defecto, a $\text{37 °C}$ (aprox.).
    • Nota: Ciertas especies, como Campylobacter spp., requieren una atmósfera enriquecida con 5-10% de $\text{CO}_2$.
  • Tiempos: La lectura debe realizarse entre las $\mathbf{18}$ y $\mathbf{48}$ horas. Las reacciones de hemólisis se aprecian mejor entre las $\mathbf{18}$ y $\mathbf{24}$ horas.

Es fundamental que las reacciones hemolíticas y el aspecto de las colonias (ej. umbilicación en neumococo) se ajusten a las descripciones típicas para una identificación certera.


 

Información de Producto

  • Presentación: Dada la inestabilidad de la sangre, este medio completo solo está disponible en placa preparada.
  • Para Uso Exclusivo en Laboratorio.
  • Conservación: Las placas preparadas deben conservarse en refrigeración (entre 4 y 15 °C y manipularse con cuidado para evitar choques térmicos. Respete rigurosamente la fecha de caducidad.
  • Código de Producto: PPLS01
  • Medio Deshidratado (Base Columbia): Consulte la referencia DMT308.

 

CONSULTAS

Para consultas y precios actualizados sobre AGAR SANGRE DE CORDERO o cualquiera de nuestros productos no dude en ponerse en contacto con nosotros a través del teléfono 91-897 46 16 o el correo electrónico microkit@microkit.es.

https://www.microkit.es/fichas/BLOOD-AGAR-BASE.pd

Tambien en placas preparadas con la sangre ya añadida:

https://www.microkit.es/fichas/BLOOD-AGAR-SHEEP-PREPARADO.pdf

MICROKIT® P/A-LEGIONELLA

KIT P/A LEGIONELLA

LEGIONELLA revitalización P/A (Caldo GVPC ó BCYE Modif) para detección o revitalización en 1L de agua cuando Legionella está estresada.

GVPC Broth para aguas de refrigeración (con alta carga acompañante)

BCYE Broth para aguas de consumo humano (con baja carga acompañante)

Legionella pneumophila

causa la legionelosis o enfermedad del legionario y la fiebre de Pontiac, males tristemente extendidos POR TODO nuestro país a causa de torres de refrigeración y sistemas de acondicionamiento mal mantenidos.

Afectan a personas inmunodeprimidas y al turismo, sobre todo, llegando a producir varios muertos cada año.

Un país donde la principal riqueza es el turismo no puede permitirse esta fama por causa de la Legionella.

El método Presencia/Ausencia (P/A)

ha demostrado ser más fiable que el de Filtración de Membrana (MF) a causa del exceso de falsos negativos de este último método (Jacobs & Co, 1986, App.Env.Microbiol.Vol.51, 5).

Además es mucho más cómodo cuando no se requiere recuento, sino absoluta ausencia, como es el caso de Legionella pneumophila.

MICROKIT diseñó desde Noviembre de 1997 un kit P/A para enriquecimiento selectivo de Legionella en 500 ml de agua.

El medio era una modificación en caldo del BCYE+GVPC ISO 11731, lo que justificó su elevado coste.

La ausencia de Agar permite su utilización como Caldo de Enriquecimiento Selectivo Directo sin necesidad de filtración, ahorrando la manipulación y el riesgo de generación de aerosoles propios de la filtración de membrana.

Desde Noviembre/2001,  la adición de otro componente, diseñado por MICROKIT,  mejora el carácter diferencial del kit…

…que ya  no sólo es  un excelente screening en aguas de red sino también para aguas sucias, como son las aguas de las torres de refrigeración.

Y el rediseño de su concentración,  permite su uso en 1000 ml de agua.

Tras el imperativo legal R.D. 865/2003, que exige efectuar recuentos de Legionella pneumophila, el kit se readaptó para ser usado como caldo revitalizante;

para evitar multiplicación celular, se comprobó que aplicándolo durante 24 horas a 25°C y siguiendo después el método ISO  11731…

…no había multiplicación celular pero sí detección incluso para recuentos con lentículas de 40 ± 10 ufc/l.

Incubaciones a temperaturas mayores o menos prolongadas no dan buenos resultados.

Referencia: RPL330 Caja 20 test  (tubos + swabs) o bien TPL016 (sólo tubos) TPL017 (tubos de sólo BCYE broth para aguas con poca flora acompañante)

MODO DE EMPLEO:

Atemperar a 37°C y agitar vigorosamente el tubo para homogeneizar (puede estar sólido o cristalizado por su elevada concentración, y con el carbón granulado precipitado).

Añadir todo su contenido a un recipiente estéril con Tiosulfato (DCPJC1N) donde se hayan recolectado 1000 ml del agua de muestra.

Raspar fuertemente con una de las torundas estériles incluidas en el kit (se pueden pedir aparte como VSN251), el biofilm y las costras calcificadas u oxidadas…

…de las paredes del depósito, la alcachofa de la ducha o de los conductos donde el agua se estanca.

Se debe agitar la torunda con limos dentro del agua de muestra, de modo que parte de dichos limos pase de la torunda al líquido,

ya que L.pneumophila es bentónica y su presencia en el plancton es sólo su forma de dispersión.

Este paso es fundamental para evitar un gran número de resultados falsamente negativos.

Guardar la torunda en su  tubo, transportarla a temperatura ambiente, y guardarla a 4-8°C para posteriores envíos que eventualmente puedan realizarse

a laboratorios de referencia y/o para siembra directa de los limos diluidos en placa, según Norma ISO 11731.

Si se desea analizar una muestra mayor de agua, pueden filtrarse los litros deseados por  membranas estériles de 0,2µm (VAC022)

y añadir éstas a los 1000ml del agua en los que se realizará el test, o enrollarlas en el tubo del kit.

Agitar el conjunto, aplicarle un shock térmico de 30 minutos a 60 ºC (y/o bien acidificar la muestra 5 minutos a pH 2,2,

aunque no recomendamos esta ultima práctica por ser el mayor punto crítico de eliminación de Legionella pneumophila además de la flora acompañante) a fin eliminar la flora competitiva (falsos positivos,

demostrados sobre todo si la turbidez se da antes de 72 h), e incubar a (>25)-36-(<45) ºC, 1-5-(14) días.

El carbón granulado se depositará después de la inoculación, en el fondo del frasco, absorbiendo metabolitos, residuos de biocidas y otros inhibidores de Legionella pneumophila.

No volver a agitar.

preenriquecimiento revitalizador

Este Kit resulta incluso aún más útil que como P/A, como preenriquecimiento revitalizador y selectivo de muestras de agua:

Incubar en 1 litro de agua de muestra a 25°C durante 24 horas y seguir la técnica ISO 11731 (o bien, si no se desea recuento, sino enriquecimiento selectivo,

incubar 5 días a 37°C

y luego sembrar en estría una gota del fondo con carbón, en GVPC Agar, por agotamiento, a fin de evitar el solapamiento de colonias).

Los servicios intercompartivos SEILAGUA están demostrando que este método,

seguido de siembra en BCYE +GVPC Agar

recupera contundentemente más Legionella que el método ISO 11731 por filtración de membrana:

SENSIBILIDAD (escasez falsos-) por métodos según Servicio Intercomparativo de Aguas (SEILAGUA) AÑO 2002 (el P/A MICROKIT Legionella se usaba como enriquecimiento selectivo 5-14 días)

pa legionella2

El uso del Caldo Legionella GVPC de Laboratorios MICROKIT, antes usado como kit Presencia/Ausencia o como enriquecimiento selectivo,

está obteniendo unos resultados impresionantes como paso revitalizador, para seguir la ultima Normativa, Y PODER REALIZAR RECUENTOS.

Nadie puede reprobar el uso de este  kit como pre-enriquecimiento revitalizador 24 h a 25°C,  previo a la decantación y posterior filtración de membrana del litro,

ya que Legionella pneumophilla en 24 h se revitaliza contundentemente, máxime con el bombardeo de biocidas que se utiliza últimamente.

Los resultados comparativos cualitativos (cuantitativos no existen porque los participantes no los han dado) con y sin este nuevo protocolo de preenriquecimiento previo a la técnica ISO 11731,

en los informes del servicio intercomparativo SEILAGUA 2003-2004 (para los servicios en los que se inoculó Legionella pneumophila),

han sido aún más contundentes que en 2002 (en que se obtuvo una Sensibilidad 41,61% con MF y 77,50% con este kit usado como P/A o como enriquecimiento 5-14 días),

con estos resultados de revitalización de 24 horas:

palegionella 1

* Destacamos que el inóculo en ese servicio era de sólo 30-50 ufc/litro, cuando en los otros servicios siempre era de 103 –106 ufc/litro.

A pesar de estos resultados tan impresionantes…

…el número de usuarios del caldo GVPC de MICROKIT ha ido disminuyendo contundentemente incluso dentro de los participantes de SEILAGUA,

lo que demuestra el daño que la aplicación estricta de la legislación puede hacer en la calidad de los resultados de un análisis.

La posibilidad purista de que las células se repliquen en un preenriquecimiento de 24h a temperatura ambiente,

es mucho menos alarmante que el hecho de que el método MF esté dando tantos falsos negativos a nivel global por no aplicar revitalización previa.

El límite de detección en los laboratorios acreditados con el método ISO 11731, de cerca de hasta incluso 800 ufc/l, mejora contundentemente a, al menos, 40 ±10 ufc/l si intercalamos el caldo Legionella GVPC RPL330 durante 24 horas a 25°C.

 INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS:

      En el método P/A, toda muestra turbia se considera presuntamente positiva.

Las muestras sin turbidez se consideran negativas, por lo que este kit actúa como screening negativo, ahorrando la metódica clásica en todas las muestras sin Legionella.

En el nuevo diseño 11/2001, Legionella crece sin flóculos en el fondo y los falsos positivos, con el fondo floculado.

Así, el kit pasa a ser más sensible en aguas con alta carga de flora acompañante.

En caso de presunto positivo, lleve la muestra incubada a un laboratorio especializado, o bien:

Si incubó 5-14 días, sembrar 0,1 ml de la zona profunda con carbón, donde se concentra la Legionella,

tambien por ser microaerófila (ahorrando así falsos positivos de las Pseudomonas, Micrococos y Bacillus acompañantes capaces de crecer en GVPC),

sobre sendas placas de Legionella GVPC Selective Agar

(MICROKIT placas PPL030, plaquitas PPL908, frascos preparados RPL018 o deshidratado DMT007 + suplemento SBL604),

por extensión con asa de Digralsky (VRR154) o agotamiento.

Incubar en las mismas condiciones que el  kit, en atmósfera húmeda (un vaso de agua dentro de la estufa, al menos).

Las colonias de Legionella son, tras 2-15 días de incubación, pequeñas (1-2 mm), de color blanco-gris-azulado, brillantes, cristalinas, circulares, lisas, suavemente elevadas y con los bordes enteros.

Como control positivo puede utilizarse una cepa Legionella pneumophila.

Confirmar las colonias Oxidasa + (lento) (MICROKIT KOT050), Catalasa + (MICROKIT KMT299) (y, si se puede esperar, sin crecimiento enAgar Sangre u otro medio general: TSA, PCA, YEA, Nutrient Agar…),

con látex M-Legionella (KMB301) serogr.1-15 o más actualizado, con el stick (inmunocromatograma) M-Ident Virapid Legionella

Si incubó 24 horas a 25°C aprox., pase el litro de agua revitalizada, decantando el carbón, y calentando justo antes de filtrar, al método ISO 11731.

PRECAUCIONES:

Legionella no es patógeno de alto riesgo (=clase III), pero evite la inhalación de aerosoles durante su incubación, sobre todo por parte de personas inmunodeprimidas.

Esterilice el material y los kits utilizados, añadiéndoles abundantes carbón activo (MICROKIT SMT975) y lejía.

El usuario es el único responsable de la eliminación de los microorganismos según la legislación medioambiental vigente.

Autoclavar antes de desechar a la basura.

Material necesario no incluído:

Frascos 1000 ml estériles para la incubación. Pueden utilizarse frascos tomamuestras de 1 litro con Tiosulfato (DCPJC1N).

Cepas de control de Legionella pneumophila. Participación en servicios intercomparativos.

Para más información sobre nuestro KIT P/A LEGIONELLA, no dude en ponerse en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

Estos tubos preparados  suponen el mayor éxito de ventas de MICROKIT en países donde aun no se ha establecido un recuento máximo y sólo se busca su Presencia o Ausencia, como sucedía en España hace 20 años, donde ahora se emplea sólo como revitalizante de las Legionellas estresadas

https://www.microkit.es/fichas/LEGIONELLA-PA-KIT-CALDO.pdf

https://www.microkit.es/monograficos/9-Legionella-monograf–a.pdf

https://www.microkit.es/monograficos/21-Monograf–a-M–todos-alternativos-en-Control-microbiol–gico-de-aguas.pdf

No se pierda nuestro vídeo de los viales P/A:

https://youtu.be/6OfsD7zU_8U

 

KITS PREPARADOS MICROKIT® P/A

EL MÉTODO  MICROKIT P/A (PRESENCIA/AUSENCIA) PARA ANALISIS DE AGUAS: KITS PREPARADOS MICROKIT® P/A EN FRASCOS TOMAMUESTRAS

P-A 1

KITS PREPARADOS MICROKIT® P/A

Métodos clásicos

Tradicionalmente el análisis microbiológico de aguas y otros productos que requieren una muestra mínima de 100 ml, se ha realizado por el método de los tubos múltiples por Número Más Probable (MPN) o por Filtración de Membrana (MF).

Ambos métodos suponen importantes manipulaciones, tiempo y un alto coste relativo; además, el segundo requiere aparataje de filtración.

Un tercer método,

el de Presencia/Ausencia (P/A), hace ya casi 3 décadas que fue introducido por MICROKIT en nuestro país y ha demostrado no sólo ser el más cómodo de inocular y el más simple de interpretar…

…sino además el más fiable,  por su mayor sensibilidad;

en efecto, publicaciones americanas anteriores (JACOBS & Co., Mayo/1986, App.Env.Microbiol., Vol. 51, nº 5, pp.1007-1012) ya demostraban una importante ventaja:

nada menos que el 36% de detecciones por P/A, eran falsos negativos con MF y un 18% de detecciones por P/A, eran falsos negativos con MPN.

Kits P/A para aguas de consumo y para las aguas de la industria alimentaria

La nueva Directiva Europea de aguas de consumo humano (3/XI/1998) y el BOE 21/02/2003 obligan a la ausencia de E.coli, Enterococos y Clostridium perfringens y sus esporas en 100 ml de toda agua de consumo, incluidas las que intervienen en fabricación de alimentos. Ello permite aplicar el método más sencillo y sensible (P/A) a partir de ahora.

Validación

Un estudio intercolaborativo realizado en España entre Enero de 1998 y Mayo del 2000, coordinado por esta empresa, con 10 Laboratorios participantes, y 500 muestras comparativas (XII Congreso Nacional de Microbiología de los alimentos, Oviedo, 9/2000), valida las grandes ventajas del método:

No necesita manipulaciones ni aparataje, es más sensible, los microorganismos no se estresan a causa de una filtración o de un cambio de hábitat (aguas salobres o marinas que en filtración dejan de rodear al microorganismo…).

El servicio intercomparativo SEILAGUA 2002-2003 demuestra que el método P/A, con los kits de MICROKIT es, en conjunto, y a la vista de su extraordinaria sensibilidad…

…hasta 5 veces más fiable que el método de Filtración de Membrana, en conjunto  entre los 11 parámetros microbiológicos comparados.

Todos los kits preparados por MICROKIT para P/A, incluyen inactivadores del cloro que pueda contener el agua de muestra.

Se incuban, en general 24 horas a 37 ºC y se leen por virajes de color o turbidez.

Son altamente selectivos pero, como todos los medios de cultivo, y como los otros métodos, no son específicos, por lo que los positivos son presuntos:  requieren posteriores confirmaciones bioquímicas y/o inmunológicas.

Su única limitación es que no permiten recuento sino, como su nombre indica, si es positivo o no el parámetro buscado.

Presentación de los kits P/A MICROKIT.

La presentación de los kits P/A MICROKIT, la gama más completa a nivel internacional, varía en tres formatos (en la imagen, frascos y tubos preparados y estériles, y kits en polvo irradiado prepesado, para economizar costes):

1. Frascos preparados estériles (líquidos).P-A2

 

 

 

 

 

2. Viales o tubos de polvos prepesados irradiados.P-A3

 

 

 

 

 

3. Tubos preparados estériles (líquidos).

4. Botes de 100 g de polvo estéril con cucharilla dosificadora

Para los mayores usuarios de los kits P/A, creamos esta versión muy económica

 

P/A (PRESENCIA/AUSENCIA) COMO MÉTODO DE ANÁLISIS DE AGUAS

Tradicionalmente, las muestras, en la mayoría de productos alimentarios, químicos y cosméticos se consideran suficientes si son de 1 ml (ó 1 g) porque la contaminación microbiana es relativamente elevada.

Cuando hablamos de productos limpios, como los farmacéuticos, las aguas potables y los refrescos, la muestra mínima representativa pasa a ser de 100 ml ó más, dada la baja concentración microbiana esperable, y los métodos tradicionales no sirven.

NMP

De ahí surgió hace muchas décadas el método del Número Más Probable (MPN), para realizar recuentos en líquidos presuntamente poco contaminados con métodos estadísticos.

MF

Posteriormente, la técnica de Filtración de Membrana (MF), desarrollada ya durante la Segunda Guerra Mundial, substituyó a la antedicha…

…por ser más representativa la muestra realmente analizada (100 ml frente a 33 ml, en general), entre otras importantes razones (ver kits UFM de MICROKIT).

Pero cuando en el producto no debe de haber ni un solo microorganismo, como es el caso, por ejemplo, de los coliformes totales, de los coliformes fecales y de los estreptococos fecales en aguas potables…

…entonces el método MPN es inadecuado  y el de MF tambien lo es: dan un exceso de información innecesaria.

P/A

Surge así el método de Presencia/Ausencia (P/A), ideal para detectar la presencia (1 ó más células) o ausencia (ninguna célula) en muestras de hasta 100 ml.

El método P/A es mucho más sensible (tienen muchos menos falsos negativos) que el método MF, pero es menos específico (tienen más falsos positivos).

Por ello es tan útil como screening negativo, para poder procesar un gran número de muestras.

Si el kit da negativo, el resultado es definitivamente negativo.

Pero si el kit sale positivo, hay que confirmar esa muestra aislando en placa e identificando colonias aisladas. 

Todos nuestros kits P/A permiten ahorrar 4-8 horas de incubación si, antes de inocularlos, se precalienta a 37°C la muestra de agua en un baño María.

Nuestros kits están validados para uso en aguas continentales, no marinas ni salinas.

Diseñado y fabricado por LABORATORIOS  MICROKIT, S.L. desde 1.994.

Vídeo sobre los kits P/A:

https://www.youtube.com/watch?v=RTXggKQzPt0

Más actual:

https://youtu.be/6OfsD7zU_8U

Para más información sobre nuestras KITS PREPARADOS MICROKIT® P/A no dude en ponerse en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

https://www.microkit.es/pdf/KITS-PA-AGUAS-EN-FRASCOS-TOMAMUESTRAS.pdf

https://www.microkit.es/monograficos/21-Monograf–a-M–todos-alternativos-en-Control-microbiol–gico-de-aguas.pdf

VIALES PINCHABLES MICROKIT

VIALES PINCHABLES PARA MICROBIOLOGIA DE AGUAS Y OTROS LÍQUIDOS POR FILTRACION DE MEMBRANA (MF): AMPOLLAS MUY ECONÓMICAS.

VIALES PINCHABLES

INTRODUCCION

MICROKIT le ofrece la gama más completa de medios preparados para análisis microbiológicos de aguas por filtración de membrana, mediante sus ya clásicas UFM (Unidades de Filtración Microkit) y sus conocidos viales de 2 ml. (Véanse, también los medios deshidratados y los kits de Presencia/Ausencia).

Ahora todos los parámetros pueden también se analizados mediante los cómodos estandarizados y extraordinariamente económicos VIALES PINCHABLES de 100 ml.

Se trata de frascos estériles con 100 ml de caldos de cultivo especiales (por su composición y concentración) para el método de análisis por filtración de membrana (MF) con cartones absorbentes. Su tapón pinchable permite realizar tantas introducciones de aguja como se desee sin riesgo de contaminación, por lo que 100 ml de medio permiten realizar desde 50 análisis en el mismo día hasta los 50 análisis a lo largo de un año, que es su periodo de caducidad desde fabricación.

El protocolo de trabajo simplifica la manipulación y además reduce el material de desecho que originan los viales de 2 ml. Frente a las placas preparadas, ofrecen una muy superior caducidad (1-2 años desde fabricación).

Todas las cajas de 10 viales pinchables del mismo medio (500 test) incluyen el certificado de control de calidad del lote y con las cepas crecidas y las inhibidas. Se incluyen jeringas y agujas estériles si se solicitan, sin coste adicional.

El usuario es el único responsable de la destrucción de los microorganismos generados en el interior del kit durante su uso, de acuerdo con la legislación medioambiental vigente. Destruir por inmersión en lejía. Mantener fuera del alcance de los niños. No ingerir.

MODO DE EMPLEO

1) En zona lo más aséptica posible, o junto a la llama de un Bunsen, insertar, si se desea, entre la jeringa y la aguja, un filtro estéril de carcasa, para dificultad la posibilidad de contaminación. En tal caso, respetar siempre la misma dirección del flujo estéril.

2) Clavar el conjunto en el tapón del vial pinchable.

3) Extraer los mililitros necesarios (por ejemplo, para realizar 7 análisis, extraer 14 ml, es decir 7 separaciones de la escala graduada en la jeringa).

4) Dejando clavada la aguja con filtro en el vial pinchable, que gracias al filtro no puede contaminarse con aire exterior, extraer la jeringa con el medio estéril que contiene. O bien extraer todo el conjunto y guardar la aguja en su funda.

5) Añadir 2 ml (1 separación de la escala de la jeringa) de medio a cada placa. (Si se utilizan sistemas compactos automatizados pueden introducirse los 2 ml por el orificio luer de la placa destinada a tal fin o por encima del cartón absorbente). Volver a colocar la jeringa en el conjunto aguja-filtro. Puede dejarse el conjunto pinchado en el vial de medio o bien extraerse, (en tal caso, guardando la aguja en su funda,) según se prefiera. Preservar siempre la esterilidad del conjunto aguja-filtro-jeringa.

6) Abrir un envoltorio de membrana con cartón, colocar el cartón en la placa con medio y la membrana en el aparato de filtración.

7) Mientras se filtra la muestra, el cartón absorberá los 2 ml de caldo, convirtiéndolo en un nutriente sólido.

8) Depositar la membrana sobre el cartón embebido en medio, sin que se formen cámaras de aire entre ambos.

9) Incubar el tiempo y a la temperatura adecuados.

10) Observar el crecimiento de colonias características y realizar el recuento si es necesario.

 PRESENTACION.

– Cajas de 10 viales pinchables de 100 ml cada uno, con jeringas, agujas y filtros de jeringa incluidos.

– Cajas de 100 membranas estériles con cartón absorbente.

– Cajas de 540 placas Petri estériles de 60 mm de diámetro.

Recomendamos el uso de cepas de referencia, de trabajo o cuantitativas para validar los reactivos una vez llegados a fábrica o tras almacenamientos prolongados o inadecuados. Y la participación en servicios intercomparativos como SEILAGUA para validar los procedimientos y los operarios.

 GAMA

Consulte nuestro catálogo actualizado de precios. Encontrará más de 30 medios de cultivo en esta presentación.

Si desea más información sobre nuestros VIALES PINCHABLES MICROKIT, rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

https://www.microkit.es/fichas/VIALES-PINCHABLES-MF.pdf