Archivo de la categoría: medios de cultivo

informacion, novedades, nuevos métodos relacionados con los medios de cultivo, Microbiología de alimentos, aguas, medicamentos, cosméticos y ambiente:

RAPIDSWAB-BACTERIAS

                    RAPIDSWAB-BACTERIAS
Tubos preparados y swabbs para la valoración
rápida del contenido bacteriano en superficies

Bacterias superficies detección rápida: valoración del contenido bacteriano en superficies. La presencia de bacterias provoca viraje a rojo.

Diseñado para una rápida orientación de la carga bacteriana en superficies. La presencia de bacterias provoca viraje del medio paja a rojizo, más rápido cuantas más bacterias haya (4-18h).

Modo de empleo e interpretación:

RAPIDSWAB-BACTERIAS
1-Extraer un escobillón, torunda, hisopo o swabb de su tubo de plástico.

2-Sumergirlo en agua destilada estéril (no incluida, si no tiene, pida viales FPL111)

3-Barrer la superficie de muestreo, rascándola con fuerza con el algodón.

Cuanta más superficie barramos más rápido será el viraje indicador, en el caso de que haya bacterias.

4-Sumergir el escobillón barrido en el tubo de vidrio, varias veces, batir con energía. Cerrar su tapón de aluminio a rosca.

5-Desechar del escobillón con su tubo de plástico.

6-Mejor aún, cortar el escobillón con tijeras para dejarlo dentro del tubo de vidrio, antes de cerrar el tapón.

7-Marcar los datos en el tubo de vidrio con rotulador indeleble.

8-Incubar el tubo de vidrio cerrado, a 37ºC durante 12-24 horas.

El viraje a rosa, naranja o rojo indica presencia de bacterias.

Cuantas más bacterias haya en la superficie analizada, más rápido y más potente será el viraje de color.

Si prefiere realizar recuentos, en vez de incubar el tubo, incube 1 ml del punto 4) añadido a una DryPlates-TC o a una placa con medio para recuento de aerobios.

Y multiplique por 5 el número de colonias obtenidas para conocer el recuento por toda la superficie barrida.

Caducidad y presentación:

La caducidad es de 6 meses tras su fabricación. Ver la fecha exacta impresa en cada caja.

La presentación es de cajas de 50 tubos. Referencia: TPLE003.

La temperatura de conservación no es muy importante, aunque es preferible que sea de 4 a 15 ºC. Lo que sí es imprescindible es MANTENER PROTEGIDO DE LA LUZ!

(No sacar los tubos de la caja cerrada hasta el momento de uso y mantener ésta en un armario oscuro o en una nevera). Ni congelar.

Exento de agentes nocivos.

El usuario es el único responsable de la destrucción de los microorganismos generados en el interior del kit durante su uso, de acuerdo con la legislación medioambiental vigente.

Destruir por inmersión en lejía.

Mantener fuera del alcance de los niños.

No ingerir.

Diseñado y fabricado por MICROKIT desde 1995. Revisado en Enero de 2020

Bacterias superficies detección rápida: valoración del contenido bacteriano en superficies.

La presencia de bacterias provoca viraje a rojo.

https://www.microkit.es/pdf/Rapidtest.pdf

KITS DIDÁCTICOS ENSEÑANZA 1-MICROCOSMOS INICIACIÓN ECO

KITS ENSEÑANZA MICROCOSMOS INICIACIÓN: INICIE A SUS ALUMNOS EN EL MUNDO DE LOS MICROBIOS GRACIAS A ESTE CÓMODO KIT

¿Sabes por qué hay microbios de colores?

 Muchos microbios que viven en el medio ambiente (agua, aire, superficies…) necesitan pigmentos para protegerse de las radiaciones del sol. Ellos llevan 3.500 millones de años en La Tierra (35.000 veces más que nosotros) y se las saben todas. Te presentamos dos:

  1. a) La bacteria Micrococcus luteus, amarilla
  2. b) La levadura Rhodotorula mucilaginosa, fucsia

 Conócelas dibujando en una placa una bandera de España, o lo que tu imaginación te pida. Si quieres dibujar la de tu Comunidad Autónoma, consúltanos qué cepas inocuas adicionales te recomendamos.

 Los microbios incluidos en este kit son de riesgo 1, es decir, 100% inocuos, incluso aunque accidentalmente nos los comamos (pero no lo hagas, están horribles de sabor).

 El kit para 20 alumnos consta de 40 placas TSA (por si hay más de 20 alumnos; si no, cada uno puede hacer dos intentos), 2 frascos BHI Broth de 100 mL, 1 lentícula de máxima concentración de cada una de las dos cepas inocuas, 40 jeringas de 1 ml sin aguja y 40 asas Digralsky. Guardar todo FUERA DE LA NEVERA pero las dos cepas EN EL CONGELADOR. Caducidad: 2 meses. Referencia  KJM001ECO

 Modo de empleo:

 1-El profesor, 3-5 dias antes de realizar la práctica, debe abrir el tubito eppendorf y dejar caer la lentícula de Micrococcus luteus en uno de los dos frascos de BHI cuidando que la bolita grande, la de color, no se quede en las paredes del frasco, sino que caiga al fondo y asi se disuelva en un rato (las bolitas incoloras pueden caer sin problema, es sólo silicagel inerte). Identificar este frasco como “cepa Amarilla”, o “A”. Y meter la lentícula de Rhodotorula mucilaginosa en el otro frasco de BHI e identificarlo como “cepa Roja”, o “R”, verificando que cae al fondo. Incubar ambos frascos a 25ºC (estos saprófitos crecen mejor a 25 que a 37ºC) durante esos 3-5 días. Los frascos deberán estar muy turbios el día del inicio de la práctica; si no, algo ha fallado y debe pedir una nueva cepa.

 2-Los alumnos, el día de la práctica, tomarán con una de sus dos jeringas, 0,2 ml del frasco “R” y lo añadirán en un extremo de la placa y otros 0,2 ml del mismo frasco “R” y lo añadirán en el extremo opuesto de la placa. Y tomarán con su otra jeringa 0,2 ml del frasco “A” y lo añadirán en el centro de la placa.

 3-Con una de sus asas Digralsky, cada alumno debe repartir con cuidado la zona amarilla de la futura bandera y con la otra asa repartir con cuidado las dos zonas rojas de la futura bandera. ¡No mezclar las asas! Cuanto más cuidadoso seas, sobre todo en no solapar los márgenes amarillos con los rojos, más bonita será tu obra de arte. Los más rápidos pueden repetir con las mismas jeringas y asas en otra placa de TSA, hasta que las placas se agoten.

 4-Deja secar la superficie de la placa un rato y una vez la notes sin restos de líquido, tápala, dale la vuelta e incúbala 2-3 días a 25ºC, sí a 25ºC, recuerda que son bacterias ambientales y esa es su temperatura ideal, de hecho a 37ºC quizá no te crezcan, ya que es la temperatura a la que crecen las bacterias patógenas y asociadas al hombre y animales de sangre caliente. Si no tenéis estufa incubadora no pasa nada, a temperatura ambiente tardarán más días, pero crecerán igual.

 5-Compara los resultados con los de los compañeros. La placa que el profesor decida que más se parece a la bandera de España, merece premio. Hacedle una foto, enviadla a microkit@microkit.es y participareis en el sorteo a final del curso, de un regalo sorpresa. Preguntad a este email en Junio qué instituto ha sido el ganador del año.

KITS ENSEÑANZA MICROCOSMOS INICIACIÓN: INICIE A SUS ALUMNOS EN EL MUNDO DE LOS MICROBIOS GRACIAS A ESTE CÓMODO KIT

https://www.microkit.es/fichas/Microcosmos-1-iniciacion.pdf

Si desea más información sobre nuestros rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto. O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

RAPIDSWABBS-HONGOS

SWABBS HONGOS

Tubos preparados y swabbs para la valoración rápida del contenido fúngico (levaduras + mohos)

Diseñado para una rápida orientación de la carga fúngica en superficies. La presencia de hongos provoca viraje del medio lila-violeta a crema, tanto más rápido cuantas más hongos haya.

 

Modo de empleo e interpretación:

1-Extraer un escobillón, torunda, hisopo o swabb de su tubo de plástico.

2-Sumergirlo en agua destilada estéril  (no incluida, si no tiene, pida viales FPL111)

3-Barrer la superficie de muestreo, rascándola con fuerza con el algodón. Cuanta más superficie barramos más rápido será el viraje indicador, en el caso de que haya hongos.

4-Sumergir el escobillón barrido en el tubo de vidrio, varias veces, batir con energía. Cerrar su tapón de aluminio a rosca.

5-Desechar del escobillón con su tubo de plástico.

6-Mejor aún, cortar el escobillón con tijeras para dejarlo dentro del tubo de vidrio, antes de cerrar el tapón.

7-Marcar los datos en el tubo de vidrio con rotulador indeleble.

8-Incubar el tubo de vidrio cerrado, a 30ºC durante 24-48 horas.

El viraje a crema indica presencia de hongos. Cuantos más hongos haya en la superficie analizada, más rápido y más potente será el viraje de color. El viraje a verde antes de incubar indica que la superficie es muy ácida: tamponar el tubo con NaOH 0,1 N hasta que revierta a lila, antes de incubar. Ciertas bacterias también provocan viraje a crema. Si no desea detectar bacterias, añada Cloranfenicol (SMT990 estéril, SMS195 no estéril).

Si prefiere realizar recuentos, en vez de incubar el tubo, incube 1 ml del punto 4) añadido a una DryPlates-YM o a una placa con medio para recuento de hongos (mejor Rosa Bengala Caf Agar que Sabouraud) y multiplique por 9 el número de colonias obtenidas para conocer el recuento por toda la superficie barrida.

Caducidad y presentación SWABBS HONGOS:

La caducidad es de 12 meses tras su fabricación. Ver la fecha exacta impresa en cada caja.

La presentación es de cajas de 40 tubos.  Referencia: TPLE004.

La temperatura de conservación no es muy importante, aunque es preferible que sea de 4 a 15 ºC. Lo que sí es imprescindible es MANTENER PROTEGIDO DE LA LUZ! (No sacar los tubos de la caja cerrada hasta el momento de uso y mantener ésta en un armario oscuro o en una nevera). No congelar.

No contiene agentes nocivos. El usuario es el único responsable de la destrucción de los microorganismos generados en el interior del kit durante su uso, de acuerdo con la legislación medioambiental vigente. Destruir por inmersión en lejía. Mantener fuera del alcance de los niños. No ingerir.

Si desea más información sobre nuestros rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto. O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

https://www.microkit.es/monograficos/4-Levaduras-y-mohos-monograf–a.pdf

 

MICROCOSMOS CROMOGÉNICO

MICROCOSMOS CROMOGÉNICO

KIT enseñanza microcosmos cromogenico, conjunto de productos necesarios para que los alumnos comprendan el uso de medios de cultivo modernos

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Los temas tratados en las prácticas de microbiología, en los Institutos de enseñanza, han avanzado mucho más lentamente que la microbiología empleada en las industrias y hospitales.

Los alumnos salen convencidos de que están muy bien formados, pero cuando entran a trabajar se estrellan con productos que no han estudiado.

Durante la ultima década del siglo XX comenzaron a desarrollarse medios de cultivo que, a diferencia de todos los clásicos, detectaban enzimas específicos de los microorganismos diana. Por lo que las pruebas de identificación, tan necesarias en los medios clásicos (bioquímicos y fisiológicos, no enzimáticos), empezaron a caer en desuso. Y los usuarios apostaron por obtener resultados más fiables y más rápidos.

Uno de los primeros medios cromogénicos (enzimáticos) desarrollados por MICROKIT, en 1995, fué el que denominamos MUGPLUS Agar en alusión al MUG de los medios fluorogénicos (también enzimáticos pero más arcaicos que los cromogénicos y hoy casi en desuso)  que se habían estado desarrollando en la década anterior.

Este medio hoy se denomina CCA en las Normas ISO de aguas, pero tambien es universalmente empleado en muestras de alimentos y cosméticos.

Y es el medio que incluye este kit y permitirá a los alumnos adentrarse en este espectacular mundo de los modernos medios cromogénicos, cuya eficiencia roza el 100% en vez del 50-70% de los medios clásicos, que siguen necesitando confirmaciones y la pérdida de tiempo que eso supone, inaceptable tanto en industria como en microbiología clínica.

https://www.microkit.es/fichas/Microcosmos-2-cromogenico.pdf

 

 

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Rapidtest

Rapidtest detección rápida microbios: Tubos de caldo cromogénico para la detección rápida de contaminación bacteriana

El primer medio cromogénico del mundo fué inventado por MICROKIT en 1995, antes incluso que el famoso MugPlus Agar que ahora todo el mundo llama CCA por su aceptación en la ISO 9308-1 de E.coli-coliformes  en aguas. Y ese primer medio cromogénico es precisamente Rapidtest.

A mayor concentración bacteriana del producto analizado, más rápido vira el tubo de Rapidtest. Por ejemplo, una materia prima, agua, alimento, orina… con una carga microbiana de 10.000.000 ufc/g ó mL, virará a rojo en aproximadamente 2-3 horas, una con 100.000 ufc/g ó mL, virará a rojo en aproximadamente 7 horas, y una con 1.000 ufc/g ó mL, virará aproximadamente en 13 horas.

Si por ejemplo, nuestro producto no debe tener más de 1.000 ufc/g ó mL, con mirar la estufa a las 13 horas y ver si ha virado a rojo, tendremos una estimación de que el producto anda mal, mucho antes de esperar el recuento de colonias en placa.

El kit funciona mejor y más rápido cuanto más carga microbiana es aceptable en el producto (ej: aguas residuales, petróleo, taladrinas…)

Rapidtest detección rápida microbios

Vídeo sobre el Modo de empleo de Rapidtest:

https://www.youtube.com/watch?v=ri7B9aauoPc

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LISTERIA CHROMOCYTOGENES AGAR

LISTERIA CHROMOCYTOGENES (Ottaviani and Agosti) MICROKIT AGAR

LISTERIA CHROMOCYTOGENES MICROKIT AGAR es el medio diseñado por Ottaviani and Agosti que especifica la Norma ISO 11290

https://www.microkit.es/fichas/LISTERIA-CROMOCYTOGENES-OTTAVIANI-AGOSTI-AGAR.pdf

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Cuando se hizo necesario el control de Listeria monocytogenes en alimentos, allá por los años 80 el siglo pasado, el medio de cultivo para detectarla se llamaba McBride Agar.

Este medio enseguida fué sustituido por los agares Oxford y Palcam.

Pero ninguno de los tres medios funcionaba lo suficientemente bien para buscar el microorganismo que años después se convirtió en el más buscado junto a E.coli y Salmonella.

En Microkit desarrollamos el Agar Microblue que era mucho más específico y tuvo un gran éxito en España, hasta el punto de que tuvimos que implantar turnos de producción para poder abastecer las necesidades de tantos usuarios.

Pero en 2004 dos italianos nos sorprendieron con un nuevo medio de cultivo que arrasó, al salir en una addenda de la Norma ISO 11290, y desde entonces sería el medio empleado por excelencia para detectar y enumerar este microorganismo.

Aunque actualmente todas las casas comerciales lo tienen (agar cromogénico para Listeria), con muy diferentes nombres según la casa comercial (el nuestro se llama Cromocytogenes), Microkit fué el primero en desarrollarlo en medio deshidratado + suplementos, para que los laboratorios dejaran de verse obligados a emplearlo en placas preparadas.

Si desea más información sobre nuestros productos, rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

https://www.microkit.es/monograficos/3-Listeria-monocytogenes-monograf–a.pdf

 

 

LISTERISWABS GREEN

Listeria escobillones Listeriswabs green para la toma de muestras y detección de Listeria en superficies de las fábricas de alimentos

Listeria escobillones Listeriswabs green para la toma de muestras y detección de Listeria en superficies de las fábricas de alimentos

https://www.microkit.es/pdf/listeriswabbs-green.pdf

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

El reglamento UE 2073-2005

exige desde el año 2005 el control de Listeria no sólo en el producto final, sino además en las superficies de las fábricas e instalaciones de alimentos, para ver, en la filosofía HACCP, donde se «esconde» y acumula este peligroso patógeno:

 

 

 

 

 

 

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El kit

Gracias a estos escobillones, que llevan en el mismo kit  los viales con el medio ISO 11290 para Listeria, cualquier usuario puede analizar in situ sus superficies y convertirse en protagonista, no mero espectador, de la detección o descarte de este temible microorganismo. Sin tener que esperar los resultados de laboratorios externos.

Según ANSES, cualquier toma de superficie debe ir precedida de una humectación de la misma (pulverizador de Ringer estéril KMT035). Y debe rascarse con fuerza (no simplemente barrer) para arrancar biofilm.

Acto seguido se clava el escobillón en el medio del vial, se cierra y se incuba hasta el dia siguiente a 30-37ºC.

Se puede realizar esta labor de clavado del escobillón en el medio del vial, fuera de las instalaciones de producción, para no meter en ellas el vidrio del vial, simplemente guardando el escobillón muestreado en su tubo original de plástico y llevándolo  al laboratorio de autocontrol.

Éste sólo necesita tener una la estufa de cultivos (SIL12AR muy económico o INCULINE-23 profesional).

Según nuestros clientes, este kit es el que mejor funciona de cuantos se han diseñado para control de Listeria en superficies.

La gran diferencia

La mayoría de ellos, contienen un derivado del Palcam, que proporciona innumerables resultados falsamente positivos por viraje de marrón a negro.

Listeriswabs green vira de crema a verde sólo en presencia de Listeria. Y si no hay Listeria, no hay Listeria monocytogenes: sólo hay que confirmar los tubos que hayan virado a verde tras la incubación de 24h, con el Kit M-Ident X/R (ref: KMT012).

Vídeo Listeriswabbs-Green, el modo de empleo es el mismo:

https://youtu.be/gfGHksTSXCs

Si desea más información sobre nuestros rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

https://www.microkit.es/pdf/listeriswabbs-green.pdf

https://www.microkit.es/monograficos/6-Control-de-superficies-monograf–a.pdf

 

CEPAS CUANTITATIVAS EN LENTÍCULAS

CEPAS EN LENTÍCULAS CUANTITATIVAS

CEPAS CUANTITATIVAS EN LENTÍCULAS: siga la Norma ISO 11133-2 de Control de calidad de medios de cultivo, realice sus validaciones y sus Challenge Test, gracias a las diferentes concentraciones de estas cepas cuantitativas.

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Las lentículas cuantitativas de MICROKIT contienen cantidades precisas de cepas microbianas (de colección o salvajes-nativas-in house), cantidades que se indican (exactitud y precisión del lote) en su certificado de control de calidad. Y todo ello en 2 (y a veces hasta 3) medios de cultivo diferentes (TSA o SDA como medio general y el medio selectivo o cromogénico más usado para la cepa en cuestión). En el mismo certificado aparece la trazabilidad y el pase desde la cepa TIPO (1, 2 ó 3), el color de las lentículas del lote y otros muchos datos de interés sobre la cepa.

Empleamos la nomenclatura de la ISO 11133-2: WDCM (colección Universal).

La caducidad

de estas cepas desde fabricación es excepcionalmente larga (2 años en casi todas ellas), lo cual hemos conseguido gracias al proceso de fabricación, que no las estresa como sucede con las cepas liofilizadas. Excepto en 2 cepas que solo tienen 1 año de caducidad, si se acerca la caducidad del lote (< 6 meses) y aun no hemos elaborado otro más reciente, le regalamos el 50% del valor en la misma cepa.

Vendemos docenas a precio de decena, para que las dos sobrantes las invierta en controlar con qué concentración han llegado a sus instalaciones, para que si hubiera variado significativamente con respecto a la concentración que certificamos, pueda calcular y aplicar su propio factor de corrección.

El espacio que ocupan

en el congelador de la nevera es ínfimo: cada lentícula está dentro de un tubito Eppendorf con silicagel, los 12 tubitos dentro de un tubo hermético con tapón de silicagel, y éste en sobrecito Faraday de aluminio de sólo 12 x 18 cm. Así, con este minimalismo en su packaging, en un cajón de congelador normal de nevera caben perfectamente hasta 100 cepas diferentes.

Ofrecemos la gama completa

que necesitará para seguir la Norma ISO 11133-2 (si no encuentra la cepa que busca, la podemos fabricar).

Tambien fabricamos lotes especialmente para algunos clientes que necesitan lentículas especiales para sus intercomparativos; así como cuantificadas a partir de sus microorganismos aislados de monitorización ambiental para realizar el test de promoción de crecimiento tal y como se indica en el Anexo 1 de fabricación de medicamentos estériles de las NCF.

Podemos fabricar a tres rangos: BAJO (aprox 1.000 ufc/lentícula, diluyéndola en 10 mL obtendremos 10 inóculos de <100 ufc/mL), MEDIO (>1.000 Y < 100.000 ufc/lentícula) y ALTO (>100.000 y <100.000.000 ufc/lentícula, para Challenge test y validaciones donde se emplean muchos inóculos en un mismo día de trabajo)

CEPAS CUANTITATIVAS EN LENTÍCULAS

https://youtu.be/4WJ8FQl6GIE

 

SEILASESORIA – VALIDACIÓN (Servicio de consultoría práctica con validación in situ)

SEILASESORIA – VALIDACIÓN (Servicio de consultoría práctica con validación in situ)

SEILASESORIA – VALIDACIÓN, CURSO de Formación que incluye la validación in situ del parámetro microbiológico que desee, por el método de pares

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Hay clientes, auditores e inspectores que le exigirán la validación de cualquier método, kit o medio de cultivo alternativo que emplee, AUNQUE YA ESTÉ VALIDADO por su diseñador y fabricante.

Esto implica realizar un experimento con un número concreto de muestras previamente contaminadas con los microorganismos diana, interferentes y acompañantes. En su propio laboratorio. Realizado por sus propios analistas. Comparando el método, kit o medio nuevo con el clásico universalmente aceptado. Y también implica aplicar estadística para evaluar parámetros muy concretos:

-En métodos cualitativos (detección o presencia/ausencia): sensibilidad, especificidad, eficacia, límite de detección, conformidad, concordancia…

-En métodos cuantitativos (recuentos): Límites de cuantificación o rango, Exactitud, Precisión, Linealidad, Inclusividad, Exclusividad, Robustez del parámetro, Incertidumbre de las medidas…

Nadie nos ha enseñado , ni en la carrera ni en masters o cursos posteriores, a validar correctamente.

Microkit lleva 3 décadas validando sus diseños (kits, medios y procedimientos) y por ello es de las únicas entidades que encontrará, capacitadas para impartir estos cursos prácticos, en los que además de formarse, tendrá validado el parámetro que elija, sea cualitativo, sea cuantitativo.

Es importante no confundir una validación microbiológica con una validación química, ya que no se parecen en nada, de modo que intentar realizar una validación microbiológica desde el punto de vista químico, con herramientas y mentalidad química, como propone la Norma ISO 16140, es perder el tiempo y el dinero.

Nuestros cursos de formación (iniciación, auditorías de optimización y validaciones) están avalados en el alcance de nuestro certificado ISO 9001 desde 1999.

En MICROKIT le ayudamos a demostrar, con pruebas estadísticamente significativas y con limites de aceptabilidad bien claros y argumentados, si el método que desea emplear o seguir empleando es válido porque detecta o enumera adecuadamente:

1-Diseñamos el experimento

2-Nos desplazamos a guiarle durante el mismo en una jornada completa de trabajo

3-Elaboramos el informe completo de hasta 40 páginas con los resultados del experimento, en el que se refleja todo lo indicado y las conclusiones absolutas.

4-Le enviamos un diploma externo que avala su participación en la validación

No lo piense más, contrátenos este servicio: sus análisis no tienen  por qué volver a ser sometidos a técnicas del siglo pasado. Avance con el I+D de sus proveedores de kits, medios y procedimientos.

http://SEILASESORIA-Validaciones-in-situ.pdf

EL METODO P/A (PRESENCIA/AUSENCIA) PARA ANALISIS DE AGUAS:  KITS PREPARADOS Y CONVERSIÓN A RECUENTO NMP

EL MÉTODO P/A (PRESENCIA AUSENCIA) Y RECUENTO NMP MEDIANTE LOS KITS P/A DE MICROKIT PARA TODOS LOS PARÁMETROS. NMP-RACKS

1- POTABILIDAD MICROBIOLOGICA DE LAS AGUAS MEDIANTE EL METODO DE PRESENCIA/AUSENCIA (Kits preparados sin necesidad de Filtración de Membrana ni de Número Más Probable)

Extraído de la Directiva Europea sobre aguas de consumo humano, (obligada desde el 3/XI/2001, y sobre todo desde su transcripción a B.O.E. 45 de fecha 21/2/2003).

Esta Normativa, además de afectar a las aguas potables y envasadas, también afecta a todas las aguas de uso en industrias alimentarias, para producción, lavado, etc.:

TIPO DE ANÁLISIS  PARÁMETRO                      NIVEL GUIA KIT P/A MICROKIT

Desde la publicación de estos datos, la técnica MPN para controlar la potabilidad de aguas queda obsoleta, quedando relegada sólo a recuento en productos no filtrables;

en efecto, al hablar la legislación de ausencia en 100 ml no se puede utilizar la técnica de MPN y extrapolar resultados a partir de una muestra significativamente inferior (33 ml) a los 100 ml requeridos.

Los recuentos en 100 ml pueden realizarse con la técnica de MF, pero en el caso que nos ocupa podemos utilizar las MPN-RACKS (Ref: 1001020) para convertir cualquier kit P/A en Número Más Probable.

Por todo ello surge con fuerza la nueva técnica de Presencia /Ausencia (P/A), útil tanto para trabajo de campo como para Laboratorio, cuando lo que se precisa no es recuento, sino detección de un microorganismo en grandes muestras.

Todos los kits P/A de MICROKIT en frascos preparados incorporan inactivadores de la eventual presencia de cloro en el agua, que actuaría como bacteriostático y enmascararía los resultados como falsos negativos.

El método P/A es mucho más sensible (tienen muchos menos falsos negativos) que el método MF, pero es menos específico (tienen más falsos positivos).

Por ello es tan útil como screening negativo, para poder procesar un gran número de muestras.

Si el kit da negativo, el resultado es negativo y no hace falta hacer nada más.

Y si el kit sale positivo, hay que confirmar esa muestra estriando en placa e identificando colonias aisladas.

Nuestros kits están validados para uso en aguas continentales, no marinas ni salinas.

NOTA: Para analizar agua de mar, se debe diluir ésta a razón 1:10 en agua destilada estéril, ya que la salinidad del mar (3,7-4,5%) sería excesiva para los kits.

Todos nuestros kits P/A permiten ahorrar 4-8 horas de incubación si, antes de inocularlos, se precalienta a 37°C la muestra de agua en un baño María.

 

EL MÉTODO P/A (PRESENCIA AUSENCIA) Y RECUENTO NMP MEDIANTE LOS KITS P/A DE MICROKIT PARA TODOS LOS PARÁMETROS. NMP-RACKS

1-A  KIT P/A DE DETECCION DE COLIFORMES (TOTALES Y/O FECALES) Y E.COLI EN 100 ml DE AGUA (Caldo MICROKIT® P/A MCC-COLICULT ® Cromofluorogénico) Referencia: RPL303

La legislación española (BOE 21/2/03) exige la ausencia de E.coli y de Coliformes totales en 100 ml de agua de consumo humano (la clásica potable y además la de uso en industria alimentaria).

Las dos posibilidades contempladas hasta ahora para este análisis (Número Más Probable ‑NMP‑ y Filtración de Membrana ‑FM‑) eran tediosas en su manipulación (9 tubos la primera, aparato de filtración la segunda)

y los resultados obtenidos en Coliformes implicaban un alto porcentaje de resultados falsamente negativos (18 % en el primer caso y 36 % en el segundo

según JACOBS & Co., Mayo ’86, Comparison of Membrane Filter, Multiple Fermentation Tube and Presence/Absense (P/A) Techniques for detecting Total Coliforms in Small Community Water Systems, App. Env. Microbiol., Vol. 51, n.º 5, pp. 1007-1012).

Con el nuevo método de Presencia/Ausencia, que ya es oficial en U.S.A., el porcentaje de falsos negativos se reduce considerablemente,

ya que la muestra es de 100 ml (muy superior que en la técnica NMP) y las bacterias no sufren como en la técnica de FM.

Además de su mayor sensibilidad, el método P/A es el más cómodo de inocular y el más simple de interpretar.

Cada vez son más los autores que coinciden en que no hay mejor parámetro indicador de la contaminación fecal de las aguas que la especie Escherichia coli.

Efectivamente, las enterobacterias son un grupo demasiado extenso que contiene muchos representantes naturales en las aguas, que no indican contaminación fecal.

Y los coliformes también cuentan con especies naturales en las aguas, además de ser un grupo artificial (hay especies como el mismo E. coli con cepas que son coliformes y con cepas que al no producir gas al fermentar la lactosa, ni tener galactosidasa, no son coliformes).

Su división en coliformes totales y coliformes fecales (parámetro éste más selectivo) no resolvía  totalmente el problema.

Por ello el kit de Coliformes y E. coli P/A resulta de gran interés para análisis de potabilidad como parámetro más estricto que el descrito en la legislación anterior a Febrero de 2003,

y cumple perfectamente con la nueva legislación, al haberse validado en ensayos intercolaborativos y en el intercomparativo SEILAGUA, realizados en España durante 1999-2003,

donde demuestra un 10% más de sensibilidad (escasez de falsos negativos) que el método MF para el parámetro E.coli.

El kit se basa en la moderna y reconocida técnica del MUG, o fluorescencia indicadora de E. coli.

Se incuba a 35 ó 44,5 ºC (según se busquen, además de E. coli, coliformes totales o fecales, respectivamente) durante sólo 24 (-48) horas.

Y del X-Gal que hace que los coliformes viren el agua a azul turquesa a aprtir de la fermentación del sorbitol, con lo cual no se escapan los coliformes lactosa negativos.

Haya o no coliformes (hay cepas de E. coli que no fermentan la lactosa ni el sorbitol ni, por tanto, pueden considerarse coliformes strictu sensu), observar en la oscuridad completa con luz U.V.A. de 366 nm (linterna MICROKIT).

Si aparece fluorescencia azul claro (comparar con un control positivo -kit inoculado con cepa de E. coli– y con un control negativo -kit inoculado con agua estéril-), añadir  1 ml de reactivo de Indol Kovacs (MICROKIT SBH056).

Si tras unos segundos aparece en superficie un anillo de color rojo-cereza, la presencia de E. coli es absolutamente confirmativa, por lo que no son necesarias identificaciones posteriores.

Como control positivo puede utilizarse la cepa E. coli en cómodas lentículas de MICROKIT.

Recomendamos asimismo la participación en servicios intercomparativos como SEILAGUAS FARMACOSMÉTICAS, para validar los procedimientos y los operarios.

MODO DE EMPLEO

  1. Añadir 100 ml de agua de muestra abriendo el tapón o bien pinchando en el obturador.
  2. Cerrar el tapón sin apretar a fondo (para que escape el exceso de gas que se pueda generar).
  3. Agitar para mezclar.
  4. Incubar en posición vertical a 35 ºC  0,5 durante 24‑48 horas.
  5. Si se buscan específicamente Coliformes fecales, incubar a 44,5 ºC (aunque si no había Coliformes totales, lógicamente tampoco habrá Coliformes fecales).

INTERPRETACION DE RESULTADOS

Observar la producción de turbidez (crecimiento bacteriano inespecífico),

el viraje del medio incoloro a azul (reacción positiva ONPG-XGal, típica de los coliformes)

y la fluorescencia en la oscuridad con luz ultravioleta de 366 nm (reacción positiva del MUG, típica de E.coli).

En este último caso añadir unas gotas de Kovacs (SBH056) directamente, para confirmar E.coli (formación de anillo rojo) con la prueba del indol.

PRESENTACION

Cajas con 10 frascos. Caducidad desde fabricación: 1 año.

Conservar entre 4 y 25 ºC, en la oscuridad.

Este kit sustituye, desde principios de 1998, al antiguo RPL303 de Coliformes + E.coli con campana Durham y al antiguo RPL300 de Coliformes totales + Coliformes Fecales con campana Durham.

Validación: Realizada durante 7 años de intercomparación de 70 laboratorios de toda España en más de 700 muestras duplicadas.

Se demuestra comparado con filtración de membrana en el medio oficial (Tergitol Chapman TTC Agar), una sensibilidad del 100% frente al 97,7% del método oficial para coliformes, así como una sensibilidad del 100% para E.coli frente al 95,65% del método oficial.

Una especificidad del 100% para coliformes frente al 94,25% del método oficial y del 100% para E.coli frente al 94,57% del método oficial.

Y un límite de detección de hasta 3±2 ufc/100 ml frente a 5±2 ufc/100 ml del método oficial.

Si analiza muchas muestras al día, vea las versiones viales P/A y Botes P/A.

 

EL MÉTODO P/A (PRESENCIA AUSENCIA) Y RECUENTO NMP MEDIANTE LOS KITS P/A DE MICROKIT PARA TODOS LOS PARÁMETROS. NMP-RACKS

1-B  KIT AUXILIAR PARA RECUENTO TOTAL EN 1 ml DE AGUA: TUBOS NUTRIENT AGAR TTC + PLACAS Petri (Agar Nutritivo TTC, Agar Común TTC)                   Referencia: RPL305

Según el B.O.E. 226 de 20/09/90, en un agua potable no han de aparecer más de 10 bacterias aerobias por mililitro (incubando a 37 ºC) ni más de 100 bacterias aerobias por mililitro (incubado a 22 ºC).

El recuento en 1 ml puede realizarse con la técnica MF (MICROKIT UFM006, UFM012), pero resulta más lógico utilizar la técnica tradicional como en alimentos,

dado que la técnica MF encuentra sus ventajas cuando el tamaño de la muestra es muy superior a 1 ml (de hecho, si se utiliza MF para 1 ml hay que añadir al menos 25 ml de Agua Peptonada estéril para que la filtración sea homogénea en toda la membrana).

Con el Kit que presentamos, Ud. ya no necesita autoclavar medios deshidratados, ni realizar recuentos aproximados.

El medio esta estéril y listo para su empleo, y el recuento es exacto.

Las colonias crecen rojas sobre el medio, blanquecino. No hace falta tratar la muestra contra el cloro, el medio ya incorpora Tiosulfato Sódico.

La caducidad de 2 años, permite mantener un stock sin riesgo de echar a perder reactivos, ventaja importante sobre las placas preparadas.

Para seguir más estrictamente el BOE 21/2/2003 (ISO 6222) usar tubos de Yeast Extract Agar (TPL060).

MODO DE EMPLEO E INTERPRETACION DE RESULTADOS

  1. Fundir 2 tubos al Baño María (98 ºC aproximadamente). No sobrecalentar o el medio virará a rosa-rojo.
  2. Añadir 1 ml de agua de muestra en una placa Petri estéril. Duplicar la operación.
  3. Trabajar junto a la llama de un mechero para conseguir unas condiciones asépticas en el ambiente.
  4. Verter el contenido de un tubo (atemperado hasta que no queme la mano), a una de las placas con muestra. Duplicar la operación en la otra placa con muestra.
  5. Cerrar las placas y hacerlas girar 10 veces en cada sentido para mezclar la muestra con el medio. Dejar solidificar.
  6. Incubar las placas con el agar arriba, una a 37 ºC durante 24 horas y otra a 22 ºC durante 72 horas.
  7. Contar todas las colonias, que habrán virado a rojo, contrastando estupendamente con el medio de cultivo y haciendo el recuento sumamente fácil.
  8. No deben aparecer más de 10 colonias en la primera placa, ni más de 100 en la segunda.

PRESENTACION

Kits de 40 tubos + 40 placas para 20 análisis dobles de recuento total en 1 ml de agua. Caducidad desde fabricación: 1 año. Conservar entre 2 y 25 ºC, en la oscuridad.

Como control positivo puede utilizarse una cepa de E.coli (CRIOSTRAIN MKTA 25922) o de

Como control positivo puede utilizarse la cepa E. coli, de Pseudomonas aeruginosa y/o de Enterococcus faecalis en cómodas lentículas de MICROKIT.

Recomendamos asimismo la participación en servicios intercomparativos como SEILAGUAS FARMACOSMÉTICAS, para validar los procedimientos y los operarios.

Material necesario no incluido: Estufa a 35-37 ºC (VRP001), Pipetas estériles 1 ml (VFR273), Zona aséptica:

Si no dispone de cabina de flujo laminar, puede usar el Portabunsen de MICROKIT.

NOTA: Desde la creación de las DryPlates®-TC-Water,

estas plaquitas resultan mucho más adecuadas para recuento total en 1 ml de agua porque absorben directamente el ml de muestra de agua sin necesidad de fundir medios como sucede en el método clásico, incluido el kit mencionado arriba.

Los resultados de la validación para aguas no pueden ser más alentadores y demuestran que la siembra por fusión en masa de agares calientes es un punto crítico más importante de lo que se cree.

Nos remitimos al folleto de las DryPlates®-TC y al certificado de validación intercolaborativa de Microkit sobre las mismas.

 

EL MÉTODO P/A (PRESENCIA AUSENCIA) Y RECUENTO NMP MEDIANTE LOS KITS P/A DE MICROKIT PARA TODOS LOS PARÁMETROS. NMP-RACKS

1-C KIT P/A PARA LA DETECCION DE ENTEROCOCOS FECALES GRUPO D DE LANCEFIELD EN 100 ml DE AGUA (ENTEROCULT MICROKIT® P/A modificado) Ref: RPL301

Bilis Aesculina Azida (BEA) es un medio ISO para detección de enterococos fecales en muestras de aguas.

Aplicado a la concentración adecuada, y con ciertas modificaciones (pasarlo de agar a caldo), permite la utilización en kits P/A.

MODO DE EMPLEO

  1. Añadir 100 ml del agua de muestra.
  2. Cerrar sin apretar a fondo.
  3. Agitar para mezclar.
  4. Incubar a 37 ºC (41°C) durante 24‑48 horas.

Como control positivo puede utilizarse la cepa Enterococcus faecalis en cómodas lentículas de MICROKIT.

Recomendamos asimismo la participación en servicios intercomparativos como SEILAGUAS FARMACOSMÉTICAS, para validar los procedimientos y los operarios.

INTERPRETAClON DE RESULTADOS

La aparición de turbidez con ennegrecimiento indica que la muestra tiene estreptococos fecales, sobre todo si el medio pierde su fluorescencia natural bajo luz de 366 nm (linterna MICROKIT). Además se vuelve opaco.

PRESENTACION: Cajas con 10 frascos. Caducidad desde fabricación: 1 año.

Conservar entre 2 y 25 ºC, en la oscuridad.

Validación: Realizada durante 7 años de intercomparación de 70 laboratorios de toda España en más de 700 muestras duplicadas.

Se demuestra comparado con filtración de membrana en el medio oficial para enterococos fecales (Slanetz-Bartley Agar + Bilis Esculina Azida Agar), una sensibilidad del 100% frente al 95,6%  del método oficial.

Una especificidad del 100%  frente al 61,0% del método oficial.

Y un límite de detección coincidente en ambos métodos.

Si analiza muchas muestras al día, vea las versiones viales P/A y Botes P/A.

 

EL MÉTODO P/A (PRESENCIA AUSENCIA) Y RECUENTO NMP MEDIANTE LOS KITS P/A DE MICROKIT PARA TODOS LOS PARÁMETROS. NMP-RACKS

1-D KIT AUXILIAR PARA RECUENTO DE CLOSTRIDIOS SULFITO REDUCTORES EN 20‑50 ml DE AGUA (Agar SPS parafinado modificado concentrado)                   Referencia: RPL062

Los anaerobios no crecen muy bien con el método de Filtración de Membrana (MICROKIT UFM014, UFM011) y el método P/A no es válido en muchas legislaciones, que admiten 1 UFC de Clostridio Sulfito-Reductor en 20-50 ml de agua.

Por ello, hemos diseñado un kit especialmente preparado para poder realizar recuento y P/A en muestras de gran volumen (hasta 50 ml).

MODO DE EMPLEO E INTERPRETACION DE RESULTADOS:

  1. Fundir al Baño María a 98 ºC.
  2. Inocular en profundidad, mediante una pipeta caliente, los 20-50 ml de agua de muestra calentada a 75 ºC (si la parafina solidifica antes de sacar la pipeta, recalentar el conjunto a 75 ºC durante el mínimo tiempo necesario para que la parafina vuelva a licuar).
  3. El shock térmico elimina las formas vegetativas y activa la germinación de las esporas.
  4. Voltear sin agitar para mezclar sin airear el medio, una sola vez.
  5. Incubar a 35‑37 ºC durante 24‑48 horas.

PRESENTACION: Cajas con 10 frascos. Caducidad desde fabricación: 1 año.

Como todos los kits para anaerobios, NO debe guardarse en nevera, para impedir que el medio se oxigene con el frío.

Conservar a 21-25 ºC, en la oscuridad.

Como control positivo puede utilizarse la cepa Clostridium perfringens en cómodas lentículas de MICROKIT.

Recomendamos asimismo la participación en servicios intercomparativos como SEILAGUAS FARMACOSMÉTICAS, para validar los procedimientos y los operarios.

NUEVO KIT:

Emplee Quanti-P/A Clostricult para detección y recuento de Clostridium perfringens con TSC (o bien de Clostridium sulfito redutores con SPS) y sus esporas, sin neesidad de alentar medios.

 

EL MÉTODO P/A (PRESENCIA AUSENCIA) Y RECUENTO NMP MEDIANTE LOS KITS P/A DE MICROKIT PARA TODOS LOS PARÁMETROS. NMP-RACKS

1-E KIT PARA P/A DE CLOSTRIDIUM PERFRINGENS Y SUS ESPORAS CLOSTRICULT MICROKIT® P/A Referencia: RPL 308

Elaborado a partir de caldo TSC (CLOSTRICULT-2) para adaptarse a las optimizaciones observadas mediante los servicios SEILAGUA®, desde Octubre de 2005, se optimiza de nuevo en Mayo 2007 para facilitar la anaerobiosis con más agentes reductores y con parafina líquida.

Añadir 100 ml de agua de muestra, dejando una cámara de aire de 5 cm de altura.

Cerrar el tapón sin apretar a fondo.

Voltear sin agitar, para mezclar sin oxigenar.

Incubar a (37 ºC) 44-46 ºC durante 18-48-(72) horas.

Si busca sólo esporas, realizar un shock térmico de 5-10 minutos a 86 ºC.

El viraje a negro (que suele expandirse de abajo arriba) a 44-46 ºC indica presencia de Clostridium perfringens (o de sus esporas si se realizó shock térmico).

El viraje a negro a 37 ºC indica sólamente presencia de Clostridios sulfito-reductores (o de sus esporas si se realizó shock térmico).

Como control positivo puede utilizarse la cepa Clostridium perfringens en cómodas lentículas de MICROKIT.

Recomendamos asimismo la participación en servicios intercomparativos como SEILAGUAS FARMACOSMÉTICAS, para validar los procedimientos y los operarios.

El usuario final es el único responsable de la destrucción de los microorganismos que se hayan multiplicado en el interior de cada tubo o frasco, de acuerdo con la legislación medioambiental vigente.

Añada cloro o lejía hasta el borde con cuidado de no tocar ni derramar el cultivo (si al abrir los botes sale gas a presión o líquido, lavar bien las manos con agua corriente y jabón), o bien autoclavar, antes de desechar a la basura.

Validación: Realizada durante 7 años de intercomparación de 70 laboratorios de toda España en más de 700 muestras duplicadas.

Se demuestra comparado con filtración de membrana en el medio oficial para Clostridium perfringens y sus esporas (mCP Agar y también frente a TSC Agar), una sensibilidad del 77,3 % frente al 14,33%  del método oficial y al 56,0% del TSC.

Una especificidad del 100%  frente al 100% del método oficial y del 95,8% del TSC.

Y un límite de detección de 3 a 10 veces más cercano a 1 ufc/100 ml que el método oficial: 2±1 ufc/100 ml con un 85% de detecciones frente a 8±7 ufc/100 ml en TSC Agar con sólo un 40% de detecciones.

Si analiza muchas muestras al día, vea las versiones viales P/A y Botes P/A de polvo estéril.

 

2- EL METODO MICROKIT® P/A PARA OTROS PARAMETROS (Kits preparados sin necesidad de Filtración de Membrana ni de número Más Probable)

Además del parámetro de POTABILIDAD en las aguas, existen otros de gran importancia en la industria y medio ambiente.

Presentamos los kits P/A diseñados especialmente para todos ellos.

Todos cuentan con 1 año de caducidad desde fabricación en frascos preparados, se presentan en cajas de 10 unidades e incorporan inactivadores de la eventual presencia de cloro en el agua.

Si analiza muchas muestras al día, vea las versiones viales P/A y Botes P/A de polvo estéril.

Se almacenan entre 2 y 25 ºC al abrigo de la luz.

El modo de empleo también es común a todos ellos: Añadir hasta 100 ml del agua o del líquido de muestra, agitar e incubar.

Se describen a continuación la utilidad, las condiciones de incubación y la interpretación de resultados de todos ellos:

 

EL MÉTODO P/A (PRESENCIA AUSENCIA) Y RECUENTO NMP MEDIANTE LOS KITS P/A DE MICROKIT PARA TODOS LOS PARÁMETROS. NMP-RACKS

2-A  MICROKIT® P/A PARA LA DETECCION DE PSEUDOMONAS sp. (Y AEROMONAS / PLESIOMONAS) EN 100 ml DE AGUA (Caldo GSP modificado)      Referencia: RPL309

La presencia de estos microorganismos es indicadora de infiltración de aguas naturales, residuales o no, y puede provocar la formación de limos obstructores de circuitos.

En ciertos países, como Holanda, la legislación exige la ausencia de Aeromonas en las aguas potables.

La aparición de Pseudomonas diminuta en aguas filtradas por 0,22 µm implica la rotura de los filtros.

Además distintas especies como Pseudomonas aeruginosa son patógenas para el hombre;

ciertas especies de Aeromonas son patógenos animales muy indeseables en piscifactorías:

y algunas cepas de Aeromonas hydrophila han provocado enfermedad en el hombre;

y Plesiomonas shigelloides provoca en el hombre cuadros gastroenteríticos similares a los de Shigella o Vibrio.

Este kit es útil para análisis de aguas purificadas en laboratorios cercanos al mar, a cauces de ríos y lagos, a pozos…, así como para análisis de aguas de piscinas y playas, aguas de barcos, acuicultura, etc.

El kit se incuba a 30-37 ºC durante 24-72 horas.

El viraje a naranja o amarillo es indicador presuntivo de Aeromonas/Plesiomonas.

El viraje a azulado o violáceo es indicador presuntivo de especies de Pseudomonas.

Cualquier turbidez sin viraje es sospechosa.

Turbidez y/o viraje deben confirmarse sembrando una gota del líquido del kit en la superficie de una placa de GSP Agar (MICROKIT DMT148) e identificando las colonias crecidas (MICROKIT KBH262).

Como control positivo puede utilizarse la cepa Pseudomonas aeruginosa en cómodas lentículas de MICROKIT.

Recomendamos asimismo la participación en servicios intercomparativos como SEILAGUAS FARMACOSMÉTICAS, para validar los procedimientos y los operarios.

 

EL MÉTODO P/A (PRESENCIA AUSENCIA) Y RECUENTO NMP MEDIANTE LOS KITS P/A DE MICROKIT PARA TODOS LOS PARÁMETROS. NMP-RACKS

2-B  MICROKIT® P/A PSEUDOCULT PARA LA DETECCION DE PSEUDOMONAS AERUGINOSA EN 100 ml DE AGUA (Caldo Cetrimida altamente selectivo y muy modificado, con cromógenos)

Referencia: RPL302

Este patógeno debe estar ausente en el agua de cualquier laboratorio, sobre todo si es de una fábrica de medicamentos o productos cosméticos, de aguas envasadas o en quirófanos y uvis en los hospitales.

El frasco se cierra, se pincha en la parte elástica del tapón una aguja provista de filtro y se introduce a incubar en estufa a 37±1ºC de 18 horas a 5 días.

El viraje a rosa en 18-24h, con fluorescencia en 48h bajo luz UVA de 366 nm (linterna MICROKIT VMT050) es altamente presuntivo de Pseudomonas aeruginosa, aunque tras las 48h puede virar a rojo.

El viraje a salmón es presuntivo de Burkholderia cepacia.

Un viraje a rojo intenso, opaco y rápido (24h), puede ser ocasionado por E.coli y, en aguas marinas, por ciertas especies de Aeromonas y de Vibrio.

Debe confirmarse aislando colonias, estriando en Agar Cetrimida (MICROKIT DMT034, PPL011, TPL100, RPL010) e identificando las mismas (MICROKIT 245000).

Como control positivo puede utilizarse la cepa Pseudomonas aeruginosa en cómodas lentículas de MICROKIT.

Recomendamos asimismo la participación en servicios intercomparativos como SEILAGUAS FARMACOSMÉTICAS, para validar los procedimientos y los operarios.

La validación interna del kit demuestra su excelente capacidad de detección, que resulta incluso del 100% de sensibilidad para inóculos de 1-2 ufc de P.aeruginosa/100-250 ml de agua, lo cual es un límite de detección inmejorable.

En 7 años de intercomparación de 70 laboratorios de toda España en más de 700 muestras duplicadas, se demuestra comparado con filtración de membrana en el medio oficial (Cetrimida CN Agar) una sensibilidad y una especificidad del 100% frente al 73,4%  y al 91,3% respectivamente del método oficial,

así como un límite de detección 50 veces más cercano a 1 ufc/100 ml que el método oficial.

Si analiza muchas muestras al día, vea las versiones viales P/A y Botes P/A.

 

EL MÉTODO P/A (PRESENCIA AUSENCIA) Y RECUENTO NMP MEDIANTE LOS KITS P/A DE MICROKIT PARA TODOS LOS PARÁMETROS. NMP-RACKS

2-B-BIS: MICROKIT® P/A PARA LA DETECCION DE BURKHOLDERIA CEPACIA EN 100 ml DE AGUA (Caldo BCPT  selectivo, color anaranjado) Referencia: RPL323

Este oportunista del biofilm del agua se detecta incubando el kit a 35 ºC durante 24 horas.

Sólo B.cepacia es capaz de crecer tan deprisa en este caldo cromogénico, provocando el viraje a rojo tinto.

Como siempre, confirme los positivos estriando en placa de agar selectivo  e identificando las colonias (MICROKIT 245000).

A las 48-72 horas otros microorganismos pueden provocar falsos positivos con virajes tardíos del mismo tono.

Puede conseguir que el kit sea muy selectivo añadiendo a cada frasco 0,14 ml del suplemento SMT301.

Como control positivo puede utilizarse la cepa Burkholderia cepacia en cómodas lentículas de MICROKIT.

Recomendamos asimismo la participación en servicios intercomparativos como SEILAGUAS FARMACOSMÉTICAS, para validar los procedimientos y los operarios.

Si analiza muchas muestras al dia, vea las versiones viales P/A y Botes P/A.

 

EL MÉTODO P/A (PRESENCIA AUSENCIA) Y RECUENTO NMP MEDIANTE LOS KITS P/A DE MICROKIT PARA TODOS LOS PARÁMETROS. NMP-RACKS

2-C  MICROKIT® P/A PARA LA DETECCION DE VIBRIO HALÓFILOS  EN 100 ml DE AGUA (Caldo Alcalino HiperSalino MICROKIT)          Referencia: RPL310P

Las especies Vibrio alginolyticus, Vibrio vulnificus y Vibrio parahaemolyticus pueden producir intoxicaciones alimentarias e infecciones graves en heridas.

Por ello, este kit es muy necesario para análisis de aguas de piscifactorías, ríos, cetareas, viveros, barcos, playas, piscinas y demás aguas naturales.

El kit se incuba antes de que transcurran 8 horas desde la inoculación, a 35 ºC durante 24 horas para los Vibrio halófilos.

El viraje del medio de azul oscuro a azul-verdoso es presuntivo, por lo que debe confirmarse aislando en TCBS Agar (MICROKIT DMT119, PPL048) y Vibrio Saline TSAT ISO 8914 (MICROKIT DMT172).

Las colonias verdes, azules y amarillas en TCBS y rojas en TSAT son de distintas especies patógenas de Vibrio, que se identificarán con kits adecuados (MICROKIT KBH262).

En TSAT, Vibrio parahaemolyticus crece con colonias de 2-3 mm y color rojo oscuro.

Confirmar con TSI Agar: Vibrio parahaemolyticus provoca pico rojo, fondo amarillo, sin ennegrecimiento ni gas.

Vibrio alginolyticus crece con colonias rojas o blancas, pero muy grandes y lobuladas.

Vibrio cholerae y V.vulnificus crecen con colonias incoloras-crema.

 

EL MÉTODO P/A (PRESENCIA AUSENCIA) Y RECUENTO NMP MEDIANTE LOS KITS P/A DE MICROKIT PARA TODOS LOS PARÁMETROS. NMP-RACKS

2-C Bis  MICROKIT® P/A PARA LA DETECCION DE VIBRIO CHOLERAE EN 100 ML DE AGUA (Caldo TCBS modificado) Referencia: RPL312

Vibrio choleare es el agente causal del cólera, desgraciadamente cada vez más extendido en su cepa menos conocida y peligrosa a países desarrollados.

Otras muchas especies de Vibrio son inocuas y muy didácticas.

Este patógeno es frecuente en países tropicales y en la ruta de inmigración de africanos a Francia a través de España.

El  kit se incuba 24 horas a  28 ºC, que es la temperatura ideal para este microorganismo, cuyo hábitat son los peces, de sangre fría. El viraje a amarillo es presuntivo de Vibrio cholerae.

Confirmar en Agar TCBS (DMT119, TPL503) e identificar las colonias con KBH262 y antisueros (ZM05, ZM06, ZM07, BAA001).

El servicio SEILAGUA 2002-2003 demuestra que este kit es infinitamente más sensible (ausencia total de falsos negativos) que el método MF en TCBS Agar (con 100% de falsos negativos!!!).

Sin embargo es poco específico, con frecuentes falsos positivos (por ej. E.coli), de ahi la necesidad de confirmar en placa:

A diferencia de las Enterobacterias, Vibrio cholerae es oxidasa positivo.

Como diferencia de los Coliformes, es lactosa negativo.

A diferencia de otros Vibrio, no crece con >6% (60 g/l) de ClNa.

NUEVO: V.cholerae P/A Cromogénico,

los positivos viran a rojizo (naranja, púrpura, ámbar) en 36h (y hasta en  5 dias para detectar los casos de estress extremo). Referencia: RPL312C

 

EL MÉTODO P/A (PRESENCIA AUSENCIA) Y RECUENTO NMP MEDIANTE LOS KITS P/A DE MICROKIT PARA TODOS LOS PARÁMETROS. NMP-RACKS

2-D  MYCOKIT P/A PARA LA DETECCION DE HONGOS (LEVADURAS Y MOHOS) EN 100 ml DE AGUA (Caldo Rosa Bengala Cloranfenicol modificado)      Referencia: RPL315

Izda: Mohos en superficie y fondo, Dcha: Levaduras enturbiando

Los laboratorios, industrias de refrescos y las aguas naturales pueden verse invadidas por distintas especies de hongos que a menudo son alterativas de las propiedades organolépticas de los productos fabricados.

Por ello, este kit resulta de gran interés en industria alimentaria y cosmética, sobre todo, así como en aguas de baños (hongos dermatofitos), como piscinas, playas, duchas…

Conviene que la muestra de agua sea de la superficie, sobre todo si hay espuma o suciedad, pues es ahí donde se acumulan estos microorganismos y sus esporas.

El kit se incuba a 21-25 ºC durante 3-7 días.

La turbidez demuestra presencia de levaduras, al ser el medio selectivo contra bacterias.

Los fieltros superficiales o floculantes indican presencia de mohos.

Si se desea, se pueden identificar las especies de levaduras (Rapid-Yeast) y de mohos (microscopio y claves MICROKIT).

Como control positivo puede utilizarse la cepa Candida albicans como levadura y Aspergillus niger como moho, en cómodas lentículas de MICROKIT.

Recomendamos asimismo la participación en servicios intercomparativos como SEILAGUAS FARMACOSMÉTICAS, para validar los procedimientos y los operarios.

NUEVO: MYCOKIT P/A Cromogénico,

los positivos viran a verde desde las primeras 48h (y hasta 3 dias para los más lentos). Ref: Viales FPA950 (no se puede elaborar en frascos preparados tomamuestras P/A)

 

EL MÉTODO P/A (PRESENCIA AUSENCIA) Y RECUENTO NMP MEDIANTE LOS KITS P/A DE MICROKIT PARA TODOS LOS PARÁMETROS. NMP-RACKS

2-E  MICROKIT® P/A PARA LA DETECCION DE ESTAFILOCOCOS EN 100 ml DE AGUA (Caldo Mannitol hipersalino muy modificado)      Referencia: RPL320

La presencia de estafilococos en agua es muy frecuente en aguas de baño, que pueden quedar contaminadas por personas portadoras.

Por ello, este kit es necesario para completar el análisis de aguas de piscinas, playas y baño en general, según la legislación actual, además de su interés en Laboratorios Farmacéuticos y cosméticos.

El kit se incuba a 37 ºC durante 24-48 horas.

La turbidez prueba la presencia de estafilococos.

El viraje de rojo a naranja o amarillo es presuntivo de presencia de Staphylococcus aureus, con cepas patógenas del hombre.

Dada la posible presencia de falsos positivos (y a pesar de la adición de numerosos agentes selectivos al caldo Mannitol, que se ha optimizado en Mayo de 2007 mediante la adición de más agentes reductores y parafina líquida, que disminuyen el nivel de falsos positivos de micrococos y otros aerobios halófilos)…

…confirmar estriando en Agar Baird Parker (MICROKIT DMT016, PPL002, TPL125, RPL003, MBN106)

y si aparecen colonias negras con borde blanco y halo, se trata de S. aureus;

o bien en Agar Mannitol (DMT078, TPL066, RPL023, PPL907…) y si aparecen colonias amarillas, se trata de S.aureus.

Confirmar si es cepa patógena con la prueba de la coagulasa (MICROKIT KWD094).

El servicio SEILAGUA 2002-2003 demostró que este kit, incluso antes de su optimización de Mayo de 2007, es sumamente más sensible (ausencia total de falsos negativos) que el método MF en  Baird Parker o en Mannitol Salt Agar (con 29% de falsos negativos!!!).

Sin embargo es poco específico, con frecuentes falsos positivos, de ahi la necesidad de confirmar estriando en placa selectiva.

Como control positivo puede utilizarse la cepa Staphylococcus aureus, en cómodas lentículas de MICROKIT.

Recomendamos asimismo la participación en servicios intercomparativos como SEILAGUAS FARMACOSMÉTICAS, para validar los procedimientos y los operarios.

Validación: En 7 años de intercomparación de 70 laboratorios de toda España en más de 700 muestras duplicadas, se demuestra comparado con filtración de membrana en el medio oficial (Baird Parker Agar y Mannitol Salt Agar)…

…una sensibilidad del 100% frente al 71,0%  y al 60,0% respectivamente del método oficial,

así como una especificidad 96,0% frente al 65,0% y 83,0% respectivamente.

El límite de detección resulta un 70% más cercano a 1 ufc/100 ml que el del método oficial.

 

EL MÉTODO P/A (PRESENCIA AUSENCIA) Y RECUENTO NMP MEDIANTE LOS KITS P/A DE MICROKIT PARA TODOS LOS PARÁMETROS. NMP-RACKS

2-F  FICOKIT (MICROKIT® P/A PARA LA DETECCION DE ALGAS MICROSCOPICAS EN 100 ml DE AGUA) (Caldo Algas Modificado) Referencia: RPL307

Para la detección de todo tipo de algas microscópicas en aguas (Cianofíceas, Clorofíceas, Diatomeas, etc.), desarrollamos FICOKIT, test de presencia / ausencia en 100 ml de muestra.

De gran interés en acuicultura, piscinas, aguas envasadas, aguas naturales, aguas de refrigeración y lavado, etc,

FICOKIT contiene un caldo de cultivo especialmente formulado para microorganismos fotosintéticos en general, a alta concentración, estéril y listo para su uso,

al que se han añadido agentes que aceleran el crecimiento vegetal.

Tomar la muestra de agua (50‑100 ml) rascando las superficies bañadas por la misma y agitando.

Es recomendable que la muestra sea lo más representativa posible, por lo que pueden añadirse pequeños trozos del medio ambiente cercano

y, si el agua de muestra es muy limpia, un filtro enrollado de 0,45 um de poro por el que se hayan filtrado 5 litros o más del agua de muestra.

Pero siempre añadiendo directamente al kit un mínimo de 50 ml de agua, ya que el medio está a alta concentración y un máximo de 100 ml de agua, ya que hay que dejar una cámara de aire.

Incubar junto a una ventana con cortina traslúcida donde no incida directamente la luz del sol,

durante 2‑30 días (los resultados serán siempre más rápidos en primavera, dado el fotoperiodo ideal).

La temperatura ambiente ideal es de 21‑25 ºC.

Sobre todo en lugares poco soleados y en invierno, pueden reproducirse artificialmente estas condiciones…

…con fotoperiodo de 16 horas de luz/8 horas de oscuridad

mediante fluorescentes de menos de 3.200 LUX situados a 4,5 metros de los frascos de FICOKIT.

La aparición de fieltros, mucosidades, filamentos o turbidez con los colores  propios de la fotosíntesis (verde, verde azulado, verde amarillento, rojizo, pardo…), indica presencia de microorganismos fotosintéticos en la muestra.

Estos microorganismos alteran las propiedades organolépticas, producen limos obturadores y en algunos casos (cianobacterias) son tóxicos.

Solicite con su pedido de FICOKIT las claves de microalgas MICROKIT para diferenciar cianofíceas, clorofíceas, diatomeas, etc. al microscopio y poder identificar incluso a nivel de géneros.

Como control positivo puede pedir a MICROKIT la cepa Chlorella vulgaris.

No se pierda nuestro video de Ficokit y Cianokit:

https://www.youtube.com/watch?v=TZYC3ZKcSQM&t=252s

 

EL MÉTODO P/A (PRESENCIA AUSENCIA) Y RECUENTO NMP MEDIANTE LOS KITS P/A DE MICROKIT PARA TODOS LOS PARÁMETROS. NMP-RACKS

2-G  CIANOKIT (MICROKIT® P/A PARA LA DETECCION DE ALGAS CIANOFICEAS O CIANOBACTERIAS Y OTRAS BACTERIAS FOTOSINTETICAS EN 100 ml DE AGUA)    (Caldo Algas con suplemento para cianobacterias)   Referencia: RPL306

De gran interés para acuicultura, piscinas, aguas minerales, aguas estancadas, aguas de abastecimiento, etc., este kit diseñado por MICROKIT, contiene un medio de cultivo especial para cianofíceas, estéril y listo para su uso.

Las cianofíceas/cianobacterias son algas/bacterias muy primitivas que pueden provocar problemas de toxicidad en las aguas donde proliferan.

Oscillatoria erythraea, especie planctónica marina, produce una toxina mortal para los peces, cuando su concentración es elevada, y que intoxica la cadena alimenticia, pudiendo ser mortal para el hombre (enfermedad tropical «ciguatera»).

Lyngbya majuscula puede provocar dermatitis necrótica a los bañistas de playas contaminadas por ella.

En aguas continentales, sobre todo, Aphanizomenon flos-aquae, Anabaena flos-aquae, Schizothrix calcicola, Lyngybya gracilis, Oscillatoria nigroviridis, Calothrix crustacea, Nostoc muscorum, Symploca muscorum, Tolypothrix byssoidea y Microcoleus lyngbyaceus son varias especies que se ha comprobado producen una amplia gama de cianotoxinas.

Anabaena circinalis, Symploca hydroides y algunas especies de Microcystis, provocan dermatitis por simple baño en aguas donde proliferan.

Recientemente Paul R. Hunter (Sept.1995, Cyanobacteria in fresh waters, Microbiology Europe Vol. 3, Nº 5) recopila los ultimos casos de mayor relevancia internacional,

con dolor de cabeza, diarrea, vómitos, conjuntivitis, otitis, fiebre, urticaria, asma…

provocados en personas tras 2-48 horas del contacto

(a veces simple baño, ni siquiera consumo) con aguas donde se ha dado un bloom algal de cianofíceas en Inglaterra.

En cualquier caso, un agua con abundantes cianofíceas jamás debe ser consumida.

Incluso deben cerrarse las aguas con blooms de cianofíceas a las actividades recreativas, pues se han dado casos de neumonía a canoistas que navegaban sobre un bloom algal de Microcystis aeruginosa.

Se establece una clasificación de la polución de las aguas, en función de los grupos de cianocífeas existentes:

En aguas extremadamente polutas, proliferan especies de Spirulina y Anabaena.

En cambio en aguas polutas, proliferan especies de Oscillatoria y Phormidium.

Y en aguas moderadamente polutas, proliferan Anabaena flos-aquae, Aphanizomenon flos-aquae, y diversas especies de Nostoc y Oscillatoria.

Se consideran puras las aguas ricas en especies de la Stigonematácea Hapalosiphon.

En aguas estancadas de verano, sobre todo, las sustancias nitrogenadas se agotan y las cianofíceas, capaces de fijar nitrógeno atmosférico (con heterocistes, sobre todo), libres de competencia, proliferan.

Esto es más frecuente en aguas continentales que en aguas marinas.

Y cada vez más frecuente en aguas europeas, por el aporte fosfatado que proporcionan los vertidos de fertilizantes en agricultura.

Con CIANOKIT puede detectarse la presencia de cianofíceas antes de que sea demasiado tarde.

Con las claves de identificación de géneros de cianobacterias que pueden solicitarse a MICROKIT con sus pedidos de CIANOKIT, puede, además, avanzarse en el pronóstico de la toxicidad del agua.

Las algas acuáticas pueden encontrarse en superficie, flotando como NEUSTON (sus proliferaciones se denominan «flores de agua» y pueden crear anoxia en las aguas inferiores);

o bien en la masa de agua, formando el PLANCTON;

o bien adheridas a superficies y en el fondo, o BENTOS.

A menudo colorean el agua de diversos tonos azulados (cianofíceas),

rojos (dinofíceas-mareas rojas- y cianofíceas),

pardos (diatomeas)

o verde-amarillentos (clorofíceas) cuando se encuentran en grandes concentraciones.

Una buena recolección de muestras, debe incluir los tres tipos de hábitats descritos: El NEUSTON se recoge dejando entrar agua superficial en un bote, sin agitar. Si es visible se toma con pinzas.

El PLANCTON se puede coger con una red de 20-60µm de poro, aunque si su concentración es suficientemente alta, bastará con tomar una muestra de 250 ml en un frasco, entre dos aguas, sin agitar y sin rapidez.

El BENTOS se tomará rascando la superficie sólida con una navaja o pasando un tubo de recolección suavemente por la zona superficial del sedimento.

Sembrar cada tipo de muestra (Neuston, Plancton y Bentos) en un frasco de CIANOKIT.

El Plancton es preferible sembrarlo tras dejar sedimentar el frasco de muestra de 3 a 24 horas, y tomando la muestra del fondo con una pipeta o jeringa.

Dejar una buena cámara de aire (medio frasco). Cerrar. Agitar para mezclar la muestra con el medio de cultivo.

La incubación se realizará junto a una ventana.

En zonas poco soleadas y en invierno, se hará mejor en una habitación con una temperatura de 20ºC,

con fluorescentes de luz blanca fría, situados a 4’5 metros de los frascos (intensidad jamás superior a 3.200 LUX),

con un fotoperiodo de 16 horas de luz/8 horas de oscuridad,

durante 2-30 días.

Nunca se debe dejar que la luz directa del sol incida sobre los frascos, aunque si es indirecta ayudará a acelerar los resultados.

Debe realizarse, al menos, un análisis semanal, para que la prevención sea eficaz.

Las cianofíceas se denominan también «algas azules», pero muchas especies son verdes, rojas, violetas, negras…

Cualquiera de estos colores, desarrollado en el líquido o en las paredes y fondo de CIANOKIT, son indicadores de presencia de cianofíceas,

independientemente del aspecto afieltrado, mucoso, turbio o filamentoso que pueda adquirir.

Debe confirmarse al microscopio, pues otras algas pueden dar lugar a falsos positivos.

Otras bacterias fotosintéticas también pueden proliferar en CIANOKIT, aunque es difícil porque precisan las condiciones anaerobias que consiguen en los sedimentos de los lagos.

NOTA: PARA RECUENTO, UTILICE EL MEDIO DESHIDRATADO O LAS PLAQUIS® HERMETICAS DE CIANAGAR.

Control de calidad positivo:  Pida el mix e cianobacterias de MICROKIT.

https://www.microkit.es/fichas/PRESENCIA-AUSENCIA-KITS-INTRODUCCION.pdf

 

EL MÉTODO P/A (PRESENCIA AUSENCIA) Y RECUENTO NMP MEDIANTE LOS KITS P/A DE MICROKIT PARA TODOS LOS PARÁMETROS. NMP-RACKS

PUEDE CONVERTIR TODOS LOS KITS P/A DE MICROKIT EN RECUENTO NMP GRACIAS A LAS CUBETAS NMP-RACKS  https://www.microkit.es/fichas/MPN-RACK.pdf

El usuario final es el único responsable de la destrucción de los microorganismos que se hayan multiplicado en el interior de cada frasco, de acuerdo con la legislación medioambiental vigente. Añada cloro o lejía hasta el borde, con cuidado de no tocar ni derramar  el cultivo, antes de desechar a la basura. Si al abrir los botes sale gas a presión o líquido y se salpica, lavar las manos con agua corriente y jabón.

¿Necesita asesoría sobre los kits y formatos (frascos, viales o botes) que se adaptan mejor a su caso? consulte en el email consultastecnicas@microkit.es

Si desea más información sobre nuestros KITS P/A, póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es

Haga sus pedidos de kits P/A en pedidos@mirokit.es

https://www.microkit.es/monograficos/21-Monograf–a-M–todos-alternativos-en-Control-microbiol–gico-de-aguas.pdf1

No se pierda nuestro vídeo de los viales P/A:

https://youtu.be/6OfsD7zU_8U