PCA MILK – PLATE COUNT MILK AGAR , medio de cultivo Standard Methods para recuento total de aerobios en productos lácteos

Recuento total de bacterias en productos lácteos (DIS 6610, D.I.N. 10192, UNE 34-819-:1985, UNE 34-810:1984, UNE 34-805:1983, UNE 34-812:1985)

COMPOSICIÓN

• Triptona                                   5,00 g
• Extracto de levadura                2,50 g
• Dextrosa                                  1,00 g
• Leche en polvo desnatada
• (exenta de antibióticos)            1,00 g
• Agar-agar                               10,00 g

(Fórmula por litro)

pH final: 6,9 ± 0,2

PARA USO EN LABORATORIO.

MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO. AGITE EL BOTE ANTES DE USAR.

PRESENTACIÓN: MEDIO DESHIDRATADO. CODIGO: BCD115. Tambien en frascote preparado (RPL215) 200 ml con Reactivo cromogénico, para fundir y elaborar placas en las que las colonias se distinguirán muy bien del medio y de las partículas de muestra, por colorearse de rosa-rojo-púrpura sobre fondo blanco.

PREPARACIÓN

Disolver 19,5 gramos de medio en 1 litro de agua bidestilada. Calentar hasta  ebullición, agitando hasta su completa disolución. Autoclavar durante 15 minutos a 121 ºC.

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

DESHIDRATADO: Polvo blanco

PREPARADO: Blanco traslúcido

CONTROL DE CRECIMIENTO 24-48 h a 37°C aproximadamente (o bien 72 h a temperatura ambiente 21-28°C aproximadamente):

• Escherichia coli MKTA 25922, Excelente. Con respecto a PCA estandarizado*, recuento 108 %.
• Enterococcus faecalis MKTA 29212, Excelente. Con respecto a PCA estandarizado*, recuento 97 %.
• Staphylococcus aureus MKTA 6538P, Excelente. Con respecto a PCA estandarizado*, recuento 156 %.
• Pseudomonas aeruginosa MKTA 9027, Excelente. Con respecto a PCA estandarizado*, recuento 95 %.

* El que cumple con recuperación superior al 92-125% con respecto a cepas cuantitativas trazables a la cepa tipo.

 SIEMBRA E INTERPRETACIÓN

Inocular 1 ml de muestra y su serie de diluciones decimales en masa. Si se desea un recuento más claro, añadir 2 ml/l de Reactivo cromogénico (SDA018) tras refundir y enfriar el medio a 55 ºC; de este modo, las colonias serán rojas. Incubar 72 horas a 30 ºC aproximadamente para los aerobios mesófilos, a 55 ºC aproximadamente para los termófilos y a 7 ºC aproximadamente para los psicrófilos. Contar todas las colonias y multiplicar por el factor de dilución para expresar los resultados en UFC/ml. Este medio está diseñado para siembra en masa. Si desea sembrar en superficie, añada 3 g/l de Agar-Agar (BCB006).

El usuario es el único responsable de la eliminación de los microorganismos según la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.

Si desea más información sobre nuestros PLATE COUNT MILK AGAR  rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

PCA MILK CROMOGÉNICO PLATE COUNT MILK AGAR  con cromógenos que diferencia las colonias (rojas) del medio (turbio y con partículas de muestra)

Recuento total de bacterias en productos lácteos (DIS 6610, D.I.N. 10192, UNE 34-819-:1985, UNE 34-810:1984, UNE 34-805:1983, UNE 34-812:1985) diferenciando las colonias, incluso las más diminutas, de las partículas y del medio

COMPOSICIÓN

• Triptona                               5,00 g
• Extracto de levadura            2,50 g
• Dextrosa                               1,00 g
• Leche en polvo desnatada
• (exenta de antibióticos)        1,00 g
• Agar-agar                           10,00 g
• cromógeno termoestable     c.s.

(Fórmula por litro)

pH final: 6,9 ± 0,2

Con este novedoso medio de MICROKIT, distinguirá a simple vista las colonias, rojas, de las partículas de muestra y del medio, agilizando los recuentos sin desgastar su vista.

PARA USO EN LABORATORIO.

MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO. AGITE EL BOTE ANTES DE USAR.

PRESENTACIÓN: MEDIO DESHIDRATADO. CODIGO: BCD115Z. Tambien en frascote preparado (RPL215) 200 ml con Reactivo cromogénico termoestable, para fundir y elaborar placas en las que las colonias se distinguirán muy bien del medio y de las partículas de muestra, por colorearse de rosa-rojo-púrpura sobre fondo blanco.

PREPARACIÓN

Disolver 19,5 gramos de medio en 1 litro de agua bidestilada. Calentar hasta  ebullición, agitando hasta su completa disolución. Autoclavar a 121 ºC durante 15 min o preferiblemente a 116°C durante 15 minutos. No sobrecalentar ni mantener fundido mucho tiempo. Refundir sólo una vez. El color final del medio es blanco-crema. A veces, por sobrecalentamiento, adquiere un tono rosado que retorna al crema cuando se vuelve a enfríar el medio y no afecta los resultados.

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

DESHIDRATADO: Polvo blanco.    PREPARADO: Blanco traslúcido

CONTROL DE CRECIMIENTO 24-48 h a 37°C aproximadamente (o bien 72 h a temperatura ambiente 21-28°C aproximadamente):

• Escherichia coli MKTA 25922, Excelente. Con respecto a PCA estandarizado*, recuento 108 %.
• Enterococcus faecalis MKTA 29212, Excelente. Con respecto a PCA estandarizado*, recuento 97 %.
• Staphylococcus aureus MKTA 6538P, Excelente. Con respecto a PCA estandarizado*, recuento 156 %.
• Pseudomonas aeruginosa MKTA 9027, Excelente. Con respecto a PCA estandarizado*, recuento 95 %.

* El que cumple con recuperación superior al 92-125% con respecto a cepas cuantitativas trazables a la cepa tipo.

Los recuentos medios son más altos que en el medio sin cromógeno, porque el color rojo permite ver muy bien las colonias diminutas.

 SIEMBRA E INTERPRETACIÓN

Inocular 1 ml de muestra y su serie de diluciones decimales en masa. Incubar 72 horas a 30 ºC aproximadamente para los aerobios mesófilos, a 55 ºC aproximadamente para los termófilos y a 7 ºC aproximadamente para los psicrófilos. Contar todas las colonias y multiplicar por el factor de dilución para expresar los resultados en UFC/ml. Este medio está diseñado para siembra en masa. Si desea sembrar en superficie, añada 3 g/l de Agar-Agar (BCB006). Algunas levaduras y bacterias acidolácticas pueden crecer, como en PCA-Milk normal, sin coloración roja, por lo que este medio los distingue de los aerobios.

El usuario es el único responsable de la eliminación de los microorganismos según la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.

Si desea más información sobre nuestros PLATE COUNT MILK AGAR  CROMOGÉNICO póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es

Prepárese para más de una sorpresa informativa cuando vea nuestro video sobre los medios Cromogénicos: https://www.youtube.com/watch?v=-JVPVWxY8ZE&t=271s

PLATE COUNT AGAR (PCA) POLVO

Medio Standard Methods para el recuento total de aerobios
Nueva fórmula ISO 4833:2003

Aplicaciones: Recuento total en alimentos (FIL, IDF, AOAC, APHA, ICMSF)
Referencia normativa: ISO 4833:2003 – ISO 2293:1983 – UNE-EN ISO 4833

Micrococcus luteus. Crece mejor en PCA y a temperatura ambiente.

DESCRIPCIÓN

El Plate Count Agar (PCA) es el medio estándar internacionalmente aceptado para el recuento total de microorganismos aerobios mesófilos en alimentos, productos farmacéuticos, cosméticos y otras matrices.
Su nueva fórmula ISO 4833:2003, con menor contenido de agar, mejora la oxigenación y aumenta la sensibilidad del medio frente a microorganismos aerobios más lábiles.

COMPOSICIÓN (por litro de medio)

pH final: 7,0 ± 0,2

Código deshidratado: BCD010
Uso exclusivo en laboratorio.

PREPARACIÓN

1. Disolver 19 g de medio en 1 litro de agua destilada.

2. Calentar con agitación hasta ebullición para su completa disolución.

3. Repartir en tubos o frascos.

4. Autoclavar 15 minutos a 121 °C.

5. El medio presenta color blanco-crema.

Conservación: Mantener el envase bien cerrado, en lugar seco, fresco y oscuro.
Agitar antes de usar para homogeneizar.

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Aspecto del medio:

• Deshidratado: Polvo grueso, color crema.

• Preparado: Estéril, blancuzco.

Evaluación del rendimiento: ISO/TS 11133-2
Incubación: 24–48 h a 37 °C o preferiblemente 72 h a 30 °C.

Las cepas MKTA son directamente trazables a las colecciones tipo.
La variabilidad observada depende de la composición y carga de la flora acompañante inoculada.

MODO DE EMPLEO

1. Inocular 1 ml de muestra y su serie de diluciones decimales en masa.

2. Verter el medio fundido y enfriado sobre la muestra.

3. Dejar solidificar y, si se desea, cubrir con una segunda capa del mismo medio.

Condiciones de incubación:

• 30 °C / 48 h → Aerobios mesófilos.

• 6 °C / 10 días → Flora psicrótrofa.

• 55 °C / 48 h → Flora termófila.

Interpretación: Contar todas las colonias desarrolladas.

NOTAS Y OPCIONES COMPLEMENTARIAS

• Para recuento más visual: añadir 2 ml/L de TTC estéril (SDA018) al medio enfriado a 55 °C (colonias rojas).

• Para siembra en superficie, aumentar la concentración de agar a 25–27 g/L, o usar PCA Standard Methods (DMT094).

• Alternativas: TSA (BCD011), Nutrient Agar (DMT089), Neutralizing Agar (DMT066), Yeast Extract Agar (DMT152).

• Para minimizar desecación en muestreos de aire o Spiral Plating, añadir 2 gotas/L de antiburbujas (SBL001) antes de autoclavar.

• Para diferenciar bacterias de hongos, añadir a un duplicado 0,05–0,5 g/L de cicloheximida (SKM200):

  • Con CEX → sólo bacterias.

  • Sin CEX → bacterias + levaduras y mohos.

PRESENTACIÓN

• Tubos 20 ml

• Frascos 100 ml y 200 ml

• Medio deshidratado en polvo

ELIMINACIÓN

Autoclavar antes de desechar, conforme a la legislación medioambiental vigente.

CONTACTO

microkit@microkit.es
91 897 46 16
Monográfico Aerobios Totales

PLATE COUNT AGAR EN ECOGRÁNULOS

STANDARD METHODS AGAR para recuento de aerobios
En gránulos para evitar la inhalación de polvos

Referencia normativa: FIL, IDF, AOAC, APHA, ICMSF, UNE 34-553:1983, ISO 2293:1983, UNE-EN ISO 4833:2003

Recuento total con colonias hemisféricas (por siembra en superficie) y ovaladas (por siembra en masa).

DESCRIPCIÓN

El Plate Count Agar (PCA) es el medio estándar recomendado internacionalmente para el recuento total de microorganismos aerobios mesófilos.
La presentación en ecográ­nulos evita la generación de polvo durante su manipulación, mejorando la seguridad y comodidad del usuario.

COMPOSICIÓN (por litro de medio)

pH final: 7,0 ± 0,2

PREPARACIÓN

1. Disolver 23,5 g de medio en 1 litro de agua bidestilada.

2. Calentar con agitación hasta ebullición para su completa disolución.

3. Repartir en tubos o frascos.

4. Autoclavar 15 minutos a 121 °C.

5. El medio preparado presenta color blanco-crema.

Conservación: Mantener el frasco bien cerrado, en lugar seco, fresco y oscuro.
Código deshidratado: DMT094
Uso exclusivo en laboratorio.

CONTROL DE CALIDAD

Aspecto del medio:

• Deshidratado: Granulado, color crema.

• Preparado: Estéril, blancuzco.

Condiciones de incubación: 24-48 h a 37 °C (o 72 h a 21-28 °C).

Este es el medio estándar al que se trazan cuantitativamente los resultados de otros medios de recuento.

MODO DE EMPLEO

• Siembra en superficie: Para aislamiento de colonias.

• Siembra en masa (pour plate):

  1. Fundir tubos o frascos (20 ml/100–250 ml).

  2. Verter 15 ml del medio atemperado sobre la muestra (1 ml) en placa Petri.

  3. Dejar solidificar y cubrir con 5 ml adicionales.

  4. Repetir con las diluciones decimales.

Condiciones de incubación:

• 30 °C / 48–72 h → aerobios mesófilos.

• 55 °C → termófilos.

• 7 °C → psicrófilos.

Interpretación: Contar todas las colonias desarrolladas.

NOTAS Y OPCIONES AVANZADAS

• Añadir 2 ml/L de TTC estéril (SDA018) a 55 °C para teñir colonias de rojo y facilitar el recuento.

• Para mayor sensibilidad, usar PCA más aeróbico (BCD010) con menor concentración de agar.

• Añadir antiburbujas (SBL001) para siembras por Spiral o muestreos de aire.

• Para diferenciar bacterias de levaduras y mohos, añadir a un duplicado 0,05–0,5 g/L de cicloheximida (SKM200):

  • Con CEX → sólo bacterias.

  • Sin CEX → bacterias + levaduras y mohos.

• En lácteos, añadir 1 g/L de SKIM MILK MICROKIT para detectar halos de caseólisis.

PRESENTACIÓN

• Tubos 20 ml

• Frascos 100 ml y 250 ml

• Medio deshidratado (ecográ­nulos)

ELIMINACIÓN

Autoclavar antes de desechar, conforme a la legislación medioambiental vigente.

CONTACTO

microkit@microkit.es
91 897 46 16
Ficha técnica completa (PDF)
Monográfico Aerobios Totales

PLATE COUNT AGAR CROMOGÉNICO: STANDARD METHODS AGAR PARA RECUENTO DE AEROBIOS CON CROMOGENO TERMOESTABLE QUE ACELERA Y CONTRASTA

Recuento total en alimentos (FIL,IDF,AOAC,APHA,ICMSF), diferenciando las colonias, incluso las más diminutas, de las partículas y del medio

COMPOSICIÓN

• Triptona                                5,0 g
• Extracto de Levadura          2,5 g
• Glucosa                                1,0 g
• Agar‑agar                             10,5 g
• Cromógeno termoestable c.s.
• (Fórmula por litro)
• pH final: 7,0 ± 0,2

Con este novedoso medio de MICROKIT, distinguirá a simple vista las colonias, rojas, de las partículas de muestra y del medio, agilizando los recuentos sin desgastar su vista.

PREPARACIÓN

Disolver 19 g de medio en 1 litro de agua destilada.

Calentar hasta ebullición, agitando para su completa disolución.

Repartir en tubos o frascos. Autoclavar a 121 ºC durante 15 min o preferiblemente a 116°C durante 15 minutos. No sobrecalentar ni mantener fundido mucho tiempo. Refundir sólo una vez. El color final del medio es blanco-crema. A veces, por sobrecalentamiento, adquiere un tono rosado que retorna al crema cuando se vuelve a enfríar el medio y no afecta los resultados.

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO.

MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO. AGITE EL BOTE ANTES DE USAR.

DESHIDRATADO CODIGO: BCD510

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…). DESHIDRATADO: Polvo grueso, Crema    PREPARADO: Estéril, Crema

EVALUACIÓN DEL RENDIMIENTO ISO/TS 11133-2  24-48 h a 37 ºC  o mejor 72 h a 30 ºC, aplicando el método ISO 4833, ISO 2293, o el indicado en el Manual MICROKIT:

FERTILIDAD

• E.coli MKTA 25922, Excelente, colonias rojas, PR >70% en concreto 76-163 % * de colonias respecto al número de ufc certificadas e inoculadas en TSA.
• Staphylococcus aureus MKTA 6538P, Excelente, colonias rojas, PR >70% en concreto 81-145 % * de colonias respecto al número de ufc certificadas e inoculadas en TSA.
• Bacillus subtilis MKTA 6633, Excelente, colonias rojas, PR >70% en concreto 93-107 % * de colonias respecto al número de ufc certificadas e inoculadas en TSA.
• Micrococcus luteus MKTA 9341, Excelente, Colonias rojas en 48 h, crecen mucho más rápido y mejor que en TSA, y mejor a temperatura ambiente.
• Enterococcus faecalis MKTA 29212, Excelente, colonias rojas, PR >70% en concreto 171 % *de colonias respecto al número de ufc certificadas e inoculadas en TSA.
• Pseudomonas aeruginosa MKTA 9027, Excelente, colonias rojas.

* Esta variabilidad de la productividad depende de la composición y carga de la flora acompañante inoculada.

Las colecciones TIPO prohiben el uso de su referencia por lo que indicamos la nuestra, directamente trazable a la colección TIPO.

MEJOR QUE EL PCA CLÁSICO Y DEPENDIENDO DEL AGAR-AGAR

Dos años de participación en ensayos intercomparativos de alimentos, con 10 matrices alimentarias diferentes, demuestran que no existen diferencias en los recuentos en contra del PCA cromogénico de MICROKIT respecto a los PCA standard, sino al revés; ejemplo: en hamburguesas, recuento medio en PCA clásico 9,0 x 10⁴, en PCA cromogénico 2,6 x 10⁵ (ya que el color permite ver muy bien las colonias diminutas), otros medios (Nutrient Agar, R2, LPT Agar, YEA… no indicados para matrices alimentarias) 8,5 x 10³.

   Comparando la recuperación de diferentes microorganismos en PCA cromogénico, fabricado con diferentes agares, observamos que el Agar Europeo MICROKIT es el que mejores resultados obtiene, con diferencias significativas de 1 log (36-39 veces más colonias), respecto a los demás agares y respecto a TSA, y por ello es el que empleamos, para máximas recuperación y exactitud:

PRESENTACIÓN:

TUBOS 20 ml, FRASCOS 100 ml, MEDIO DESHIDRATADO.

Recuento total standard de bacterias aerobias en alimentos, productos farmacéuticos, cosméticos y otros productos. Las colonias crecen en distintos tonos del rojo: rosa, naranja, purpura…. sobre el tono crema del medio (excepto ciertos acidolácticos y ciertas levaduras, que crecen con colonias blancas, sin viraje, por lo que este medio los distingue de los aerobios). El color no afecta a las pruebas de identificación posteriores que quisiera realizar.

 MODO DE EMPLEO E INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS

Inocular 1 ml de muestra y su serie de diluciones decimales, en masa. Incubar a 30 ºC aproximadamente durante 48 horas. Con flora psicotrofa, incubar a 6 ºC aproximadamente durante 10 días y con flora termófila, incubar a 55 ºC aproximadamente durante 48 horas.

Contar todas las colonias.

Esta fórmula, con menos agar, aumenta la sensibilidad del medio frente a los aerobios más lábiles, al permitir una mejor oxigenación del fondo. Este medio está diseñado para siembra en masa. Si desea sembrar en superficie, añada 3-5 g/l de Agar-Agar (BCB006), o utilice 25-27 g/l de este mismo medio.

NOTAS

Para minimizar la desecación en muestreos de aire y superficies, o para siembra en Spiral, añadir 2 gotas de antiburbujas (SBL001) por cada litro de agua, antes de añadir el medio y antes de autoclavar.

Para contar por separado las bacterias, de las levaduras y mohos, añadir a un duplicado, enfriado a 45°C, 0,05-0,5 g/l de  Cicloheximida (SKM200): En la placa con CEX  sólo crecerán las bacterias y en la placa sin CEX , la suma de bacterias + levaduras y mohos.

PLATE COUNT AGAR CROMOGÉNICO: STANDARD METHODS AGAR PARA RECUENTO DE AEROBIOS CON CROMOGENO TERMOESTABLE QUE ACELERA Y CONTRASTA

https://www.microkit.es/pdf/pca-cromogenico.pdf

El usuario es el único responsable de la eliminación de los microorganismos según la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.                                            Diseñado  en Enero 2007,  revisado en Nov, 2014

Si desea más información sobre nuestros PLATE COUNT AGAR (PCA) CROMOGÉNICO póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es 

https://www.microkit.es/monograficos/2-Aerobios-Totales-monograf–a.pdf

Prepárese para más de una sorpresa informativa cuando vea nuestro video sobre los medios Cromogénicos: https://www.youtube.com/watch?v=-JVPVWxY8ZE&t=271s

OSMOTOLERANTES-YEASTS AGAR (OYA) medio IFU 3 para la detección de levaduras que soportan altas presiones osmóticas

Fórmula IFU Method Nº 3. Medio de cultivo para detección y recuento de levaduras osmotolerantes, que soportan altas presiones osmóticas.

 COMPOSICIÓN

• Extracto de levadura              10,0 g
• Fructosa                                 200,0 g
• Sacarosa                                 200,0 g
• Agar‑agar                               10,0 g

(Fórmula por litro)

pH final: 5,5 ± 0,2

PREPARACIÓN

Disolver 420 gramos de medio en 580 m1 de agua bidestilada. Calentar, agitando, hasta  ebullición, para la total homogeneización. La turbidez es normal y se minimiza al plaquear.  Repartir en tubos o en frascos. Autoclavar a 110º C durante 10 minutos en un autoclave pequeño, minimizando los tiempos de calentamiento y enfriamiento. O bien a 116°C, 5 minutos. El color final del medio es ámbar.  No sobrecalentar o podría destruirse la macromolécula de Agar, perdiéndose su capacidad solidificante.  Si  se desea crecimiento exclusivo de hongos (levaduras y mohos), añadir antes de autoclavar 0.5 g/l de Cloranfenicol (SMS195). Sembrar 1 ml de muestra y su serie de diluciones decimales, en masa o bien  0,1 ml en superficie con asa de Digralsky. Incubar en atmósfera húmeda a 29ºC durante 3-5 días. Contar todas las colonias y expresar los resultados en ufc/g de muestra. Para contar por separado las bacterias, de las levaduras y mohos, añadir a un duplicado, enfriado a 45ºC, 0,05-0,5 g/l de Cicloheximida (SKM200): En la placa con CEX sólo crecerían las bacterias osmotolerantes y en la placa sin CEX, la suma de bacterias + levaduras y mohos osmotolerantes. Identificar las colonias con el servicio de identificación molecular SFI004+ de MICROKIT

MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO. AGITE EL BOTE ANTES DE USAR.

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO.

DESHIDRATADO: SÓLO SE PREPARA BAJO PEDIDO EN BIDÓN DE 5 Kg (ó 10 botes de 500 g): DMT216

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

DESHIDRATADO: Polvo fino, Beige

PREPARADO: Estéril, Paja-Ambar

CONTROL DE CRECIMIENTO 3-5 días a temperatura ambiente (21-28°C aproximadamente):

• Staphylococcus aureus MKTA 6538P, inhibido.
• E.coli MKTA 25922, inhibido.
• Saccharomyces cerevisiae MKTA 9763, Crece con dificultad
• Zygosaccharomyces rouxi MKTN 381, Correcto

PRESENTACIÓN: MEDIO DESHIDRATADO

MODO DE EMPLEO E INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS

Fundir al baño María los frascos que se hayan estocado a partir del medio deshidratado, sin sobrecalentar. Si se desea, se puede reajustar el pH hasta 5,5 con Acido Tartárico estéril para mejorar la selectividad. No recalentar.

Sembrar en masa 1 ml de muestra e incubar 3-7 días a 21-25 ºC aproximadamente, o mejor incubar el tiempo y a la temperatura para los que se puedan esperar problemas (las del almacenamiento y transporte). Contar todas las colonias como bacterias y/o levaduras (según proceda mediante el cloranfenicol o la cicloheximida) osmotolerantes.

El usuario es el único responsable de la eliminación de los microorganismos según la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.

https://www.microkit.es/fichas/OSMOTOLERANT-YEAST-AGAR.pdf

Si desea más información sobre nuestros OSMOTOLERANT-YEASTS AGAR (OYA) rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16