Archivo de la categoría: Microbiología de Alimentos

Optimización en los análisis microbiológicos de ALIMENTOS.
Nuevos métodos de análisis microbiológicos utilizados exitosamente en los laboratorios líderes

SABOURAUD DEXTROSE CAF (CLORANFENICOL) AGAR CROMOGÉNICO

SABOURAUD DEXTROSE CAF (CLORANFENICOL) AGAR CROMOGÉNICO

sabouraud-dextrose-caf-(cloranfenicol)-agar-cromogenico para la mejor detección y recuento de hongos (levaduras y mohos)

Recuento selectivo de Levaduras y Mohos con mayor contraste de las colonias, que de este modo se detectan antes de aparecer, más rápidamente por su actividad metabólica anterior al crecimiento de sus células (verdes sobre medio crema), en base a UNE 34 821:1986 e ISOS cosméticas: NF T75-611 (Poder inhibitorio intrínseco), ISO 16212 (recuento de hongos), ISO 18416 (Candida albicans).

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

https://www.microkit.es/fichas/SABOURAUD-DEXTROSE-CAF-AGAR-CROMOGENICO.pdf

COMPOSICIÓN 

sabouraud-dextrose-caf-(cloranfenicol)-agar-cromogenico

  • Polipeptona micológica 10,00 g
  • Dextrosa                      40,00 g
  • Cloranfenicol       0,50 g
  • Agar‑agar   15,00 g

Mezcla cromogénica      c.s

(Fórmula por litro)

pH final: 5,6 ± 0,2

Irritante a causa del cloranfenicol

 

 

 

 

 

 

PREPARACIÓN 

sabouraud-dextrose-caf-(cloranfenicol)-agar-cromogenico

Disolver 65,5 g de medio en 1 litro de agua destilada. Calentar hasta ebullición, agitando para su completa disolución. NO Autoclavar. Si se autoclava, hacerlo a sólo 116ºC durante 1 minuto, o las colonias perderán mucho color.

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO.

MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO. AGITE EL BOTE ANTES DE USAR.

DESHIDRATADO CODIGO: DMT503

Dos levaduras, Izda: Candida albicans Dcha: Saccharomyces cerevisiae

 

 

 

 

 

 

 

 

sabouraud-dextrose-caf-(cloranfenicol)-agar-cromogenico

CONTROL DE CALIDAD

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

DESHIDRATADO: Polvo grueso, Crema       PREPARADO: Estéril, Crema

CONTROL DE CRECIMIENTO CUANTITATIVO 3-5 días a temperatura ambiente (21-28°C aproximadamente):

  • Aspergillus niger MKTA 16404, Correcto, Colonias verdes y esporuladas de negro en 5 días. Con respecto a PCA estandarizado*, recuento 73-475 %, pero de forma selectiva.
  • Saccharomyces cerevisiae MKTA 9763, Correcto, colonias verde-oscuras. Con respecto a PCA estandarizado*, recuento 95-170 %, pero de forma selectiva.
  • Candida albicans MKTA 10231, Excelente, colonias verde-claro. Con respecto a PCA estandarizado*, recuento medio 122-144 %, pero de forma selectiva.
  • Staphylococcus aureus MKTA 6538P, Inhibido.
  • E.coli MKTA 25922, Inhibido.

* El que cumple con recuperación superior al 92-125% con respecto a cepas cuantitativas trazables a la cepa tipo. Incertidumbres detectadas entre todos los lotes a lo largo de un año (la mayoría de la incertidumbre se debe a la cepa y a la proporción de cepas acompañantes inoculadas, no al medio).

PRESENTACIÓN: MEDIO DESHIDRATADO,

sabouraud-dextrose-caf-cloranfenicol-agar-cromogenicol

NOTA:

Medio base (SDA Caf) de uso muy extendido para el aislamiento y recuento de hongos (levaduras y mohos) en la industria alimentaria.

El cloranfenicol actúa como antibacteriano termoestable de amplio espectro, lo que da al medio una excelente selectividad con respecto al Sabouraud Dextrose Agar.

La mezcla cromogénica que hemos añadido al medio base, permite una visión más rápida de las colonias incipientes de levaduras y mohos, al contrastar su color verde sobre el medio crema. Si los colores que obtiene son más tenues que los de las fotografías, es porque se ha sobrecalentado el medio, debe tener más cuidado la próxima vez. Esto también le sirve de indicador de que ha caramelizado los azúcares por sobrecalentamiento, lo cual en el medio base sólo se aprecia por un color caramelo en vez de crema, y esto repercute también en la fertilidad (% de recuperación de ufcs).

 SIEMBRA 

sabouraud-dextrose-caf-(cloranfenicol)-agar-cromogenico

En placas se siembra en superficie, extendiendo con un asa de Digralsky. Se puede sembrar en masa enfriando el medio a 45ºC, pero entonces los mohos y algunas levaduras crecerán más lentamente por falta de oxígeno. El medio se incuba a 20-25 ºC aproximadamente, durante 3-5 días.

 

INTERPRETACIÓN 

sabouraud-dextrose-caf-(cloranfenicol)-agar-cromogenico

Las levaduras aparecen como colonias verdes no filamentosas, a menudo mucosas. Los mohos crecen con colonias filamentosas, verdes y de margen difuso. Identificar al microscopio los mohos; para levaduras y mejores identificaciones de mohos, enviar las placas de cultivos puros a nuestro servicio de Identificación molecular.

El usuario final es el único responsable de la destrucción de los organismos que se hayan desarrollado, según la legislación medioambiental vigente. 

Si desea más información sobre nuestro SABOURAUD DEXTROSE CAF (CLORANFENICOL) AGAR CROMOGÉNICO rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

sabouraud-dextrose-caf-cloranfenicol-agar-cromogenicol

NUEVO:

Sabouraud Rapid YM Agar. Los hongos (levaduras y mohos) han sido hasta ahora el eslabón más débil de la cadena del análisis microbiológico, al tardar 3-5 días en obtener resultados fiables. MICROKIT ha inventado durante la pandemia de 2020, el medio de cultivo del siglo XXI para detección y recuento rápidos (18-48h) y fiables (ver validaciones internas) de estos microorganismos. En 18 horas ya hay viraje de color del medio (de violeta a amarillo) de las levaduras y mohos  que en las próximas horas crecerán en forma de colonias típicas; y en 48 horas ya han crecido todas las colonias típicas que en Sabouraud clásico y demás medios habituales, tardan hasta 5 días en crecer. Minimice sus stocks de producto terminado en cuarentena, gracias a Rapid YM Agar de MICROKIT.

https://www.microkit.es/monograficos/4-Levaduras-y-mohos-monograf–a.pdf

Prepárese para más de una sorpresa informativa cuando vea nuestro video sobre los medios Cromogénicos: https://www.youtube.com/watch?v=-JVPVWxY8ZE&t=271s

MICROKIT® P/A ENTEROCULT

ENTEROCOCOS MICROKIT® P/A ENTEROCULT para la detección Presencia/Ausencia de Enterococos fecales en 100 mL de muestra de agua 

Enterococos fecales: Detección Presencia / Ausencia (P/A) en 100 (250) ml de agua

            INTRODUCCIÓN:

Medio estéril ENTEROCULT diseñado por MICROKIT con base BEA para detección P/A (o recuento en su formato Quanti-P/A Ref: QPA-ETC) de Enterococos fecales (el agua vira de ámbar a negro opaco y pierde su iridiscencia), que puede elegir en tres formatos diferentes:

  • RPL301 Frascos tomamuestras con caldo estéril hidratado y tapón a rosca para añadir en ellos 100 mL de la muestra de agua. Cajas 10u ó 9x10u

 

  • FPA901 Viales prepesados de polvo estéril con tapón a rosca para añadir a 100 mL de la muestra de agua (no incluido bote 100 mL VML155 o bolsa standup 100 mL B2787B estériles). Cajas 40u ó 10x40u

 

 

  • DMTI901- Botes 100 g de polvo estéril y cucharilla dosificadora para añadir a 100 mL de la muestra de agua (no incluido bote 100 mL VML155 o bolsa standup 100 mL B2787B estériles), Bote para 100 test

 

 

Screening negativo

De gran utilidad como screening negativo de muestras rutinarias, al ser un método más fácil de emplear que la filtración de membrana y más fiable (escasez de falsos positivos y de falsos negativos, que en filtración de membrana es de nada menos que el 6% de las muestras analizadas en el mundo, por el estrés provocado durante la filtración).

Festivos y fines de semana

También muy útil para que las potabilizadoras no dejen de analizar en festivos y fines de semana, ya que este método puede ser empleado por personal no especialista en microbiología, el mismo guarda de la depuradora puede hacerlo. La única precaución es que el operario no toque ni el agua ni el polvo con sus manos, para evitar contaminaciones artificiales.

 

MODO DE EMPLEO:

Es necesario tratar previamente el agua clorada, mediante Tiosulfato Sódico, para que las células dañadas subletalmente se recuperen, excepto en los frascos tomamuestras RPL301, que ya lo incluyen.

Añadir los 100 mL de agua de muestra en el frasco o en el recipiente estéril que se va a utilizar; en el caso de los viales, añadir todo el contenido sobre el agua; en el caso de los botes de 100g, añadir tres cucharaditas rasas sobre el agua y cerrar el bote con la cucharilla dentro para los posteriores usos. Agitar para mezclar. Incubar 18-24 horas a 35-37° C.

La muestra inoculada sirve también de medio de transporte, por lo que no es necesario incubar inmediatamente después de la toma de la muestra, pudiendo transcurrir varias horas entre toma e incubación.

Para aguas envasadas o de baño, se analizan 250 mL, por lo que debe añadir 2 viales ó dos cucharaditas por muestra (no se pueden usar los frascos RPL301 para 250 mL, al haber sido diseñados sólo para 100 mL). El medio funciona correctamente desde mitad hasta el doble de concentración, por lo que no es necesario afinar 2,5 viales ó 2,5 cucharaditas)

 

INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS:

El viraje del color ámbar inicial, transparente e iridiscente, a color negro-opaco (y pérdida de la iridiscencia que adquiere el agua en este medio) demuestra la Presencia de Enterococos fecales en la muestra de agua. Puede confirmar observando al microscopio que son cadenas de cocos Gram positivos y/o que son microorganismos catalasa negativos.

Es necesaria la ausencia (no viraje), que equivale a 0 ufc/100 mL (ó en 50 mL). Sólo en caso positivo debería repetirse la muestra por método cuantitativo si se requiere un recuento concreto, aunque la legislación exige 0 y por tanto no importa si hay 2 ó 950, en ambos casos el agua no es potable. Si aún asi debe cuantificar (muestras positivas con Enterocult P/A), utilice Quanti-P/A-ETC (Ref: QPA-ETC), que contienen este mismo medio con gelificantes en frío en una bolsa hermética.

     Material necesario no incluído:

Tiosulfato Sódico para eliminar el cloro (SMT976) excepto en los frascos tomamuestras RPL301, que ya lo incluyen. Bote estéril 100ml (VML155), o bolsa estéril autosellable Stand-Up (B2787B). Estufa o incubador 35-37ºC (SIL12AR ó SIL24AR).

En homenaje a nuestro querido amigo, el Dr. Juan José Marcén, que falleció antes de conocer el éxito mundial de la fantástica idea que nos regaló en los años 90, el kit de coliformes/E.coli se regala a todas las ONGs que nos los pidan junto con otros parámetros P/A.

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO O PARA ANÁLISIS DE CAMPO. MANTENER FUERA DEL ALCANCE Y DE LA VISTA DE LOS NIÑOS Y ANIMALES.

EXTREMADAMENTE HIGROSCÓPICO: MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO. AGITE EL BOTE ANTES DE USAR. EN ZONAS DE ELEVADA HUMEDAD AMBIENTAL, GUARDAR EL BOTE BIEN CERRADO EN UN TUPPER HERMÉTICO CON SILICAGEL.

 

CONTROL DE CALIDAD:

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras largos fletes, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

DESHIDRATADO: Polvo crema    PREPARADO: Ámbar, transparente

CONTROL DE CRECIMIENTO 18-24 h a 37°C aproximadamente:

Enterococcus faecalis MKTA 29212, Correcto, medio opaco y negro, sin iridiscencia en el menisco
Escherichia coli MKTA 25922, inhibido completamente.

Bacillus subtillis MKTA 6633, Inhibido completamente.

Staphylococcus aureus MKTA 6538P, Inhibido completamente.

 

El usuario es el único responsable de la eliminación de los microorganismos según la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.

https://www.microkit.es/fichas/P-A-ENTEROCULT-UE2-2019.pdf

Si desea más información sobre nuestro MICROKIT® P/A ENTEROCULT rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

https://www.microkit.es/monograficos/21-Monograf–a-M–todos-alternativos-en-Control-microbiol–gico-de-aguas.pdf

No se pierda nuestro vídeo de los viales P/A:

https://youtu.be/6OfsD7zU_8U

MYCOKIT-PLUS: VIALES P/A HONGOS (CALDO CROMOGÉNICO)

MYCOKIT-PLUS: VIALES P/A CROMOGÉNICOS para la detección Presencia/Ausencia más fiable de levaduras y mohos en 100 mL de agua

HONGOS

El método P/A

(Presencia/Ausencia) fue inventado durante la segunda guerra mundial para evitar que los soldados murieran por beber aguas contaminadas. Desde la década de los 1990, MICROKIT ha ido desarrollando numerosos

Kits P/A cromogénicos

para control de patógenos en aguas. Estos kits no sólo triunfan en todo el mundo gracias a las ONG que trabajan en la mejora del agua de bebida de los países tropicales, sino que además están reconocidos como el método más fiable, de acuerdo con sus numerosas validaciones y participaciones en servicios intercomparativos. Se pueden emplear en trabajo de campo y en el laboratorio y ahorran tanto el trabajo de filtración de membrana (MF) o de NMP, como su coste. Con ellos se puede decir

¡de la muestra a la estufa en 10 segundos!

 

MODO DE EMPLEO:

  • Se agrega 1 vial a los 100 mL de muestra de agua (ó 2 viales a los 250 mL, ya que el medio funciona perfectamente incluso a la mitad y al doble de la concentración indicada), vial que contiene pre-pesado el medio cromogénico estéril adecuado para los hongos en 100 mL de muestra líquida. Agitar para homogeneizar. Si el agua es clorada, añadir el tiosulfato sódico correspondiente para neutralizarlo.
  • Se incuba 2-3 días a 25ºC con una buena cámara de aire o con el tapón del recipiente sin cerrar, para que entre oxígeno del aire exterior

LECTURA DE RESULTADOS:

  • Si no ha cambiado de amarillo a color verdoso, se demuestra la ausencia de levaduras y mohos (sin falsos negativos) y si ha cambiado a cualquier gama del verde (depende de la actividad metabólica de cada cepa de levadura o de moho), se demuestra su presencia (sin falsos positivos, gracias al Cloranfenicol).

Así de sencillo. Y más efectivo que ningún otro método. Porque el método P/A no estresa los microorganismos como sucede con la MF, que obtiene recuperaciones muy deficientes. ¡Se acepta en la bibliografía internacional que cerca del 21% de las aguas que contienen coliformes-E.coli, cerca del 33 % de las aguas que contienen Pseudomonas aeruginosa y cerca del 49 % de las aguas que contienen Clostridios no son detectadas como positivas mediante el método MF!

 

 

 

 

 

Ventajas frente al clásico Hongos P/A (liquido rosa) de MICROKIT:

Mayor rapidez de resultados (2-3 días), ya que la actividad metabólica (viraje a verde) se ve mucho antes que el crecimiento celular (turbidez, flóculos en 3-7 días), crecimiento que no obstante, también sirve aquí como confirmativo y para posterior identificación de la cepa. El medio cromogénico es igual de selectivo para hongos que el clásico, al incluir la cantidad adecuada de cloranfenicol.

 

PRESENTACIÓN: 

Caja de 40 viales, cada uno con 4 gramos de caldo en polvo cromogénico estéril para hongos (levaduras y mohos) en 100 mL de muestra líquida, Ref: FPA950, con ¡3 años de caducidad!

Si desea más información sobre nuestro MYCOKIT-PLUS rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

https://www.microkit.es/monograficos/4-Levaduras-y-mohos-monograf–a.pdf

https://www.microkit.es/monograficos/21-Monograf–a-M–todos-alternativos-en-Control-microbiol–gico-de-aguas.pdf

No se pierda nuestro vídeo de los viales P/A:

https://youtu.be/6OfsD7zU_8U

LISTERIQUICK

Detección rápida y fiable de Listeria monocytogenes en alimentos

 

 

 

 

detección rápida Listeria alimentos

INTRODUCCIÓN:   

El método ISO 11290 tiene como desventajas la lentitud de obtención de resultados y la no neutralización de los conservantes de la muestra, que conlleva a resultados falsamente negativos.

En dicha Norma se realiza un pre-enriquecimiento revitalizador de 25 g de la muestra, 18-24 h a 30-35ºC en 225 ml de Caldo Semifraser. Al día siguiente se toma una alícuota (0,1 ó 1 mL) y se incuba en un post-enriquecimiento selectivo en 10 ml de Fraser Broth otras 18-24 h. Y de ahí se estría en placas de medio cromogénico Ottaviani & Agosti (que destronó al Oxford y al Palcam, que daban excesivos falsos positivos), incubando otras 18-24 h.

De modo que todas las muestras (incluso las negativas) llevan un mínimo de 3 días (72 h) de demora en la obtención de los resultados presuntivos.

Se emplean en total 3 medios y 4 suplementos de los cuales dos (Semifraser y Fraser) viran presuntivamente a negro con una proporción impresionante de falsos positivos y de falsos negativos, por lo que hay que seguir hasta el final.

Otro que se emplea en otros protocolos, el BPW, no inactiva los conservantes, ni los metabolitos creados por la flora acompañante, permitiendo la aparición demasiado a menudo de resultados falsamente negativos.

LISTERIQUICK

ha sido diseñado por Laboratorios MICROKIT, en 4 años de estudios tras el diseño de su homólogo Salmoquick, basándose en la Norma ISO 11290 pero optimizándola; el método varía, ahorrando 2 suplementos y acortando el tiempo de obtención de resultados a menos de dos días, sólo 36 horas!

En este caso se realiza el pre-enriquecimiento revitalizador (e inactivador de conservantes y de metabolitos generados por el resto de la flora acompañante, que podrían interferir en el crecimiento de Listeria en un sinfín de matrices alimentarias) de 25 g de la muestra en 225 ml de Agua de Peptona Tamponada Neutralizante (BPNW), 20-30 minutos a temperatura ambiente.

Se añaden al mismo 18 ml de LEB Broth a [x5] (una optimización del Fraser), se mezcla y se incuba el conjunto 18 h a 30-35ºC, constituyéndose así en un solo paso la revitalización de las Listeria dañadas, la inactivación de los graves problemas que no contempla la ISO 11290 y el aumento de la selectividad para la multiplicación de las Listeria presentes. En este medio mixto, las muestras con Listeria enturbian el caldo, por lo que de entrada en las primeras 18h ya tenemos una alerta de posible presencia de Listeria si el caldo está turbio. Pero otras bacterias también pueden crecer, por lo que hay que continuar con el segundo paso:

Al día siguiente se estría en placas de Cromocytogenes (Ottaviani & Agosti) Agar, incubando otras 18h. De modo que las muestras sin crecimientos típicos de Listeria monocytogenes (colonias verdes con halo) son liberadas en sólo 36h.

PRECAUCIÓN:

La validación de LISTERIQUICK ha sido realizada con los medios indicados, y de la marca MICROKIT. Cualquier variación sobre los medios o la marca invalida nuestra validación, de hecho este protocolo se ha probado y ¡NO FUNCIONA con BPW, ni con Fraser, ni con LEB de otras marcas, ni con Ottaviani & Agosti Agar + suplementos de otras marcas! Verificar si todo funciona bien en muestras de pollo, ya que en la validación retrasaban 18 h los resultados (también en el método ISO).

LISTERIQUICK es una herramienta simple, rápida y fiable, diseñada especialmente para simplificar y agilizar al máximo el control de alimentos con contaminación por Listeria, que es uno de los puntos más críticos y que más retrasan la liberación del lote en la industria alimentaria.

SIMPLE:

Ahorra un medio de cultivo de dudosa utilidad (Semi-Fraser) y los dos suplementos del Fraser por los más modernos y eficientes medios que no necesitan suplemento alguno (BPNW y LEB Broth).

RÁPIDA:

De la muestra a la liberación del lote en sólo 36 horas (frente a las 72 h habituales).

FIABLE:

Validado en base a la Norma UNE-EN-ISO 16140 por el método de pares frente a la Norma ISO 11290, con inóculos muy bajos de distintas cepas de Listeria, variada flora interferente, matrices de todo tipo y 100% de eficiencia (ver publicación en bibliografía). Cuidado con las muestras de pollo.

Se presenta de dos formas: como kit preparado y listo para usar y como un conjunto de los 3 medios de cultivo deshidratados y suplementos necesarios para que el mismo laboratorio se lo pueda preparar.

  1. LISTERIQUICK-Estéril,

  2. Ref: KMT040: kit listo para emplear, incluye los 3 medios necesarios para detección rápida de Listeria (en sólo 36h), en presentación estéril y lista para su uso.
  3. 4×20 Tubotes prepesados y estériles BPNW (Ref: KBB002, con Cad: 2 años desde fabricación) para añadir a 225 ml de agua estéril,
  4. 4×20 tubos LEB Broth 18 ml [x5] (Ref: TPL0335, con Cad: 1 año desde fabricación) para añadir 25 minutos después al anterior,
  5. 2×45 Plaquis herméticas Cromocytogenes suplementadas (Ref: PPL970, con 6 meses de caducidad el día de su envío, para analizar al menos 14 muestras/mes).
  6. Ninguno de los componentes necesita nevera. Conservar en lugar fresco y seco, con una temperatura de entre 5ºC y 25ºC, eso sí, al abrigo de la luz. No congelar. Kit de 80 test (Emplee las 10 plaquis que le sobran para duplicados, verificaciones… no se le han cobrado)

 

 

 

 

  1. LISTERIQUICK-Iniciación,
  2. Ref: KMT041: conjunto de los 3 medios deshidratados y doble suplemento del agar, necesarios para detección rápida de Listeria (en sólo 36 h), para que cada laboratorio se lo prepare:
  3. 1x 500g BPNW (Ref: DMT011, para hacerse 62 frascos o bolsas Stomacher con 225 ml),
  4. 1x500g LEB Broth (Ref: DMT070, para hacerse 154 tubos de 18 ml a [x5],
  5. 1x500g Cromocytogenes Agar Ref: DMT700 Ref: SMT700+ (para hacerse 355 placas de 20 mL ó 473 placas de 15 mL) y su doble suplemento SMT700+ (para hacerse 250 placas de 20 mL ó 33 placas de 15 mL).
  6. En conjunto es más económico (2,31 €/test) que la adquisición de cada uno de los 3 medios por separado (3,13 €/test),
  7. para que el laboratorio se inicie en este método y pueda pedir después por separado los medios conforme vaya necesitando cada uno
  8. (Para alcanzar el mínimo precio de 2,31 €/test, pida 10 botes de cada uno de los 3 medios y 10 suplementos).

MODO DE EMPLEO E INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS

detección rápida Listeria alimentos

1.- Tomar 25 g del alimento en una bolsa Stomacher o en un frasco estéril

2.- Añadir 225 ml de Agua Peptonada Tamponada Neutralizante (Microkit DMT011)

3.- Homogeneizar durante 2 minutos y dejar actuar 20-30 minutos

4.- Añadir 18 ml de LEB Broth (Microkit DMT070) a concentración [x5]

5.- Homogeneizar e incubar 18 h a 30-35ºC

6.- Pueden leerse los resultados presuntivos desde las primeras 18 horas:

la turbidez del caldo es tan presuntiva de presencia de Listeria como el ennegrecimiento del caldo ISO 11290; debe confirmarse con el siguiente paso:

7.- Estriar sobre placas de Cromocytogenes Agar (Microkit DMT700 + Suplemento SMT700+).

8.- Incubar las placas 18 h a 30-37ºC

9.- La aparición de colonias verdes, es altamente presuntiva de presencia de Listeria.

Si están rodeadas de un halo opaco, son altamente presuntivas de L.monocytogenes (sólo algunas cepas de L.ivanovii producen también halo).

Las colonias verdes (con o sin halo, igual que debería hacerse en el método ISO)  deben confirmarse en laboratorio mediante los kits bioquímicos e inmunológicos habituales,

a elegir (X/R Broth DMT167 y sus dos suplementos DMT169 y DMT171, lo mismo en kit preparado KMT012)

Muchas colonias presuntivas de la mayoría de medios de aislamiento de Listeria (Oxford, Palcam, McBride…) acaban siendo confirmadas como Micrococcus, Enterococcus o Staphylococcus ambientales;

esto no sucede en Cromocytogenes, donde Listeria spp. crece con colonias verdes, L.monocytogenes con colonias verdes con halo y los demás microorganismos no suelen crecer.

Bolsas Stomacher con 25 g de alimento, 225 ml de BPNW y 18 ml LEB Broth [x5] antes de incubar

BIBLIOGRAFÍA:

Norma ISO 11290: Microbiología de los alimentos para consumo humano y alimentación animal. Método horizontal para la detección y recuento de Listeria monocytogenes.

Sanchis, J. Doble enriquecimiento simultáneo para detección rápida de Listeria monocytogenes en matrices alimentarias.  XXI Congreso SEM de Microbiología de los alimentos. Tarragona, IX-2018.

El usuario es el único responsable de la destrucción de los microorganismos generados en el interior del kit durante su uso…

…de acuerdo con la legislación medioambiental vigente. Sumerja en lejía o alcohol, o mejor autoclávelos, antes de desecharlos a la basura. Mantener fuera del alcance de los niños. No ingerir.           

Si desea más información sobre nuestro LISTERIQUICK rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

 

 

 

USO DEL SALMOQUICK Y EL LISTERIQUICK EN OTRAS MATRICES

¿PUEDO USAR  SALMOQUICK Y /O LISTERIQUICK EN OTRAS MATRICES?

LISTERIA: LISTERIQUICK, uso en otras matrices que no son alimentos; SALMONELLA: SALMOQUICK, uso en otras matrices que no son alimentos

https://www.microkit.es/pdf/LISTERIQUICK.pdf

https://www.microkit.es/pdf/Salmoquick-2016.pdf

Aunque SALMOQUICK y LISTERIQUICK han sido diseñados para alimentos (25 g de muestra), se puede extender su uso a otras matrices:

  • AGUAS

Dado que en aguas puede requerirse, para la búsqueda de Salmonella o Listeria, una muestra mínima muy superior a 25 mL (normalmente de 100 mL, 250 mL e incluso de 1 L) se debe filtrar por membrana de 0,45 µm la cantidad de muestra de agua necesaria, extremando la precaución de no dejar la membrana con la bomba encendida una vez se ha filtrado toda la muestra de agua, para evitar estresar las posibles Salmonella o Listeria presentes. Se añade la membrana filtrada a 25 ml de agua y con esta muestra concentrada (membrana en agua) se procede como explica el folleto SALMOQUICK ó LISTERIQUICK en alimentos, como si de una muestra de 25 g de alimento se tratase.

  • COSMÉTICOS

Se debe sustituir el Agua de Peptona Tamponada y Neutralizante (PBNW) por el caldo LPT Neutralizing Broth de MICROKIT. Por lo demás, el protocolo es idéntico al de alimentos explicado en los folletos SALMOQUICK y LISTERIQUICK.

  • ALIMENTOS INFANTILES

Dado que las legislaciones de numerosos países exigen la ausencia de Salmonella y/o de Listeria en alimentación infantil, no en 25 g sino en cantidades mucho mayores (hasta 5 Kg en algunos casos), deberemos emplear la cantidad de Agua de Peptona Tamponada y Neutralizante que sea necesaria para crear la dilución 1:10 con la cantidad de muestra requerida. Y el caldo SS o LEB también a la concentración necesaria para mantener el mismo ratio Agua de Peptona Tamponada y Neutralizante/ SS Broth o LEB que indican los folletos SALMOQUICK y LISTERIQUICK.

  • SUPERFICIES

Tanto Salmonella como Listeria se multiplican en las superficies de ciertos puntos críticos, formando biofilms, los cuales además incrementan su patogenicidad. Estos biofilms las encapsulan en grandes poblaciones (monoespecíficas o no) que suelen pasar desapercibidas al método de contacto (Rodac, laminocultivos) e incluso al rascado del método de barrido con escobillón o balleta. Se necesitan esponjas realmente abrasivas (MICROKIT VMT037) para arrancar las células y poder así detectarlas. Pulverice la superficie a analizar con agua estéril, espere 60 segundos, rasque con fuerza con una esponja abrasiva estéril MICROKIT, devuélvala a su bolsa original, llévela al laboratorio y trate dicha esponja como si de los 25 g de alimento se tratase, pasándola completa a los 225 ml de BPNW y siguiendo las instrucciones de los folletos SALMOQUICK y LISTERIQUICK.

El usuario es el único responsable de la eliminación de los microorganismos según la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.

Si desea más información sobre nuestro MICROKIT® P/A PSEUDOCULT rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

LISTA DE MEDIOS ESPECIALES MICROKIT – ALIMENTOS

 

ALIMENTOS: MEDIOS DE CULTIVO ESPECIALES DE LAS NORMAS ISO 

medios ISO alimentos

MEDIOS DE CULTIVO ISO ESPECIALES, PARA ALIMENTOS

Muchos de los medios (sobre todo de confirmación) que aparecen en Normas ISO son difíciles de encontrar y los laboratorios que desconocen esta particularidad de MICROKIT, se los han de formular a partir de sus componentes o emplear suplementos de difícil esterilización. Es el caso de: Listeria X/R Broth, Shigella Broth, Buffeerd Nitrate-Movility Medium, Lactose-Gelatin Medium, Vibrio TSAT Agar, O/F Glucose Medium, Listeria TSB-YE Agar y Broth, Caldo Acetamida, las diferentes fórmulas de Nutrient Agar según sean para Enterobacterias, Vibrio, Pseudomonas…

MEDIOS DE CULTIVO ALTERNATIVOS MEJORADOS POR MICROKIT

Otros de los medios de la lista son raros por haber sido creados por nuestro departamento de I+D ante las necesidades de algunos de nuestros clientes. Es el caso del Buffered Peptone Neutralizing Water para neutralizar el efecto matriz de la mayoría de muestras alimentarias, del Salmonella-Shigella Broth para sustituir al Rappaport (que provoca falsos negativos) y al Selenito (que es muy tóxico) en la búsqueda de Salmonella spp., del Brochothrix STAA Agar para detectar este alterativo de productos cárnicos antes de que sea demasiado tarde, del Clostridium botulinum agar para ahorrarse estabularios y la muerte de ratones, del Agar Tributirina para mantequilla, del Vibrio cholerae MPT Broth que provoca el milagro de la revitalización en este microorganismo tan delicado, del PCA cromogénico que mima la vista del analista y además ofrece resultados un día antes que el PCA clásico, de decenas de medios cromogénicos…

medios ISO especiales alimentos

https://www.microkit.es/monograficos/22-Monograf–a-Neutralizaci–n-de-conservantes-y-aditivos-en-producto-final–para-minimizar-falsos-negativos-en-alimentos.-Otras-soluciones.pdf 

MICROKIT® P/A PSEUDOCULT

Detección Presencia / Ausencia (P/A) de Pseudomonas aeruginosa en 100 (250) ml de agua

Pseudomonas aguas detección NMP

https://www.microkit.es/fichas/P-A-PSEUDOCULT-UE2-2019.pdf

INTRODUCCIÓN:

Medio estéril PSEUDOCULT Cromofluorogénico diseñado por MICROKIT muchos años antes que otros (sólo fluorogénicos) más conocidos,  para detección P/A (o recuento NMP empleando cubetas NMP-Racks Ref:1001020 ó Quantitry de Idexx) de Pseudomonas aeruginosa (viraje del agua a rosa-rojo y además fluorescente azul bajo luz de 366 nm VMT050 e indol – con reactivo de Kovacs SBH056), que puede elegir en tres formatos diferentes:

RPL302 Frascos tomamuestras con caldo estéril hidratado y tapón a rosca para añadir en ellos 100 mL de la muestra de agua. Cajas 10u ó 9x10u

FPA908 Viales prepesados de polvo estéril con tapón a rosca para añadir a 100 mL de la muestra de agua (no incluido bote 100 mL VML155 o bolsa standup 100 mL B2787B estériles). Cajas 40u ó 10x40u. Para 250 mL d agua, ref: FPA903

DMTI908- Botes 100 g de polvo estéril y cucharilla dosificadora para añadir a 100 mL de la muestra de agua (no incluido bote 100 mL VML155 o bolsa standup 100 mL B2787B estériles), Bote para 50 test

SCREENING PARA DESCARTAR MUESTRAS NEGATIVAS

De gran utilidad como screening negativo de muestras rutinarias, al ser un método más fácil de emplear que la filtración de membrana y más fiable (escasez de falsos positivos y de falsos negativos, que en filtración de membrana es de nada menos que el 33% de las muestras analizadas en el mundo, por el estrés provocado durante la filtración).

También muy útil para que las potabilizadoras no dejen de analizar en festivos y fines de semana, ya que este método puede ser empleado por personal no especialista en microbiología, el mismo guarda de la depuradora puede hacerlo. La única precaución es que el operario no toque ni el agua ni el polvo con sus manos, para evitar contaminaciones artificiales.

MODO DE EMPLEO:

Es necesario tratar previamente el agua clorada, mediante Tiosulfato Sódico, para que las células dañadas subletalmente se recuperen, excepto en los frascos tomamuestras RPL302, que ya lo incluyen.

Añadir los 100 mL de agua de muestra en el frasco o en el recipiente estéril que se va a utilizar; en el caso de los viales, añadir todo el contenido sobre el agua; en el caso de los botes de 100g, añadir dos cucharaditas rasas sobre el agua y cerrar el bote con la cucharilla dentro para los posteriores usos. Agitar para homogeneizar. Incubar 24-72 horas (la rapidez del viraje depende del estado metabólico/estrés de la cepa) a 35-37° C. La muestra inoculada sirve también de medio de transporte, por lo que no es necesario incubar inmediatamente después de la toma de la muestra, pudiendo transcurrir varias horas entre toma e incubación.

Para aguas envasadas o de baño, se analizan 250 mL, por lo que debe añadir 1 vial FPA903 ó 4 cucharaditas por muestra (no se pueden usar los frascos RPL302 para 250 mL, al haber sido diseñados sólo para 100 mL). El medio funciona correctamente desde mitad hasta el doble de concentración, por lo que no es necesario afinar a 5 cucharaditas

INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS:

El viraje a color rosa-rojo demuestra la Presencia de P.aeruginosa en la muestra de agua. La Fluorescencia azul que se observa en la oscuridad bajo U.V.A. de 366 nm (linterna VMT050) confirma que se trata de P.aeruginosa (además con 0,5 ml de KOVACS-SBH056, NO hay anillo rojo de Indol en superficie). Ya que hay otros microorganismos  capaces de virar a rosa, pero no son fluorescentes ni indol -.

Es necesaria la ausencia (no viraje), que equivale a 0 ufc/100 mL (ó en 250 mL). Sólo en caso positivo debería repetirse la muestra por método cuantitativo si se requiere un recuento concreto, aunque la legislación exige 0 y por tanto no importa si hay 2 ó 950, en ambos casos el agua no es potable.

Material necesario no incluído:

Tiosulfato Sódico para eliminar el cloro (SMT976) excepto en los frascos tomamuestras RPL302, que ya lo incluyen. Bote estéril 100ml (VML155), o bolsa estéril autosellable Stand-Up (B2787B). Estufa o incubador 35-37ºC (SIL12AR ó SIL24AR).

En homenaje a nuestro querido amigo, el Dr. Juan José Marcén, que falleció antes de conocer el éxito mundial de esta fantástica idea que nos regaló en los años 90, el kit de coliformes/E.coli se regala a todas las ONGs que nos los pidan junto con otros parámetros P/A.

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO O PARA ANÁLISIS DE CAMPO. MANTENER FUERA DEL ALCANCE Y DE LA VISTA DE LOS NIÑOS Y ANIMALES.

EXTREMADAMENTE HIGROSCÓPICO: MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO. AGITE EL BOTE ANTES DE USAR. EN ZONAS DE ELEVADA HUMEDAD AMBIENTAL, GUARDAR EL BOTE BIEN CERRADO EN UN TUPPER HERMÉTICO CON SILICAGEL.

CONTROL DE CALIDAD:

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras largos fletes, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

DESHIDRATADO: Polvo crema    PREPARADO: Paja

CONTROL DE CRECIMIENTO 24-72 h a 37°C aproximadamente:

  • Pseudomonas aeruginosa WDCM 00026, vira a rosa, da fluorescencia azul en la oscuridad bajo 366 nm y no genera anillo rosa de indol, en las primeras 24h si el inóculo es alto y no procede de muestras estresadas, en 48-72h en caso contrario.
  • E.coli WDCM 000013, vira a rojo, no da fluorescencia azul en la oscuridad bajo 366 nm y genera anillo rosa de indol.
  • Enterococcus faecalis WDCM 00009: Inhibido.

El usuario es el único responsable de la eliminación de los microorganismos según la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.

Si desea más información sobre nuestro MICROKIT® P/A PSEUDOCULT rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

Pseudomonas aguas detección NMP

https://www.microkit.es/monograficos/13-Pseudomonas-aeruginosa-monograf–a.pdf

https://www.microkit.es/monograficos/21-Monograf–a-M–todos-alternativos-en-Control-microbiol–gico-de-aguas.pdf

No se pierda nuestro vídeo de los viales P/A:

https://youtu.be/6OfsD7zU_8U

TOTAL OCEANOGRAPHIC MICROKIT®AGAR (MARINE AGAR)

TOTAL OCEANOGRAPHIC MICROKIT®AGAR (MARINE AGAR ZOBELL)

AGAR MARINO ZOBELL (TOTAL OCEANOGRAPHIC MICROKIT® AGAR) fué diseñado para recuento total de microorganismos en productos del mar y aguas marinas.

Por ello, en su composición se emula el contenido en sales del agua de mar, al que se añaden peptonas, factores dopping de oligoelementos y agar-agar

En la imagen: Photobacterium phosphoreum, bioluminiscente, en Marine Agar. Foto en oscuridad con 1 minuto de exposición

 

COMPOSICIÓN

Mezcla de peptonas     6,000 g

Citrato Fe                     0,100 g

Cloruro Sódico            19,450 g

Cloruro de Magnesio   8,800 g

Sulfato Sódico             3,200 g

Fosfato Disódico         0,008 g

Glucosa                       2,000 g

Cloruro de Calcio        1,800 g

Cloruro de Potasio       0,550 g

Bicarbonato Sódico     0,160 g

Bromuro potásico    0,080 g

Cloruro de Estroncio   0,034 g

Silicato de Sodio         0,004 g

Fluoruro de Sodio        0,002 g

Acido Bórico               0,022 g

Nitrato amónico           0,020 g

Factores dopping          c.s.

Agar-Agar                   15,000 g

 

(Fórmula por litro)

pH: 7,6 ± 0,2

 

PREPARACIÓN

Disolver 56 gramos en 1 litro de agua bidestilada, calentando hasta ebullición y agitando hasta la completa homogeneización.

Es preferible añadir 5 g/L de glicerol (SDA073) para retrasar la precipitación de las sales.

Autoclavar a 121 ºC, durante 15 minutos. No sobrecalentar.

Para que el medio sea selectivo para bacterias y no crezcan hongos, añadir 0,2 g/L de Cicloheximida (SKM200 no estéril, o mejor SKM255 estéril).

PARA USO EXCLUSIVO  EN LABORATORIO. MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO, EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO. AGITE EL BOTE ANTES DE USAR.

DESHIDRATADO CODIGO: DMT334

 

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

DESHIDRATADO: Polvo grueso, Tostado

PREPARADO: Estéril, Ambar, Precipitado

CONTROL DE CRECIMIENTO 72 h a temperatura ambiente (21-28°C aproximadamente), ya que los microorganismos marinos son termolábiles:

Staphylococcus aureus WDCM00033, Correcto.

Listeria monocytogenes WDCM 00021, Correcto.

Aeromonas hydrophila MKTA49141**, Excelente.

Pseudomonas aeruginosa WDCM00026, Correcto, Colonias verde-amarillentas.

Escherichia coli WDCM00013, Correcto.

**Las colecciones TIPO prohíben el uso de su referencia por lo que indicamos la nuestra, directamente trazable a la colección TIPO.

 

PRESENTACIÓN:

MEDIO DESHIDRATADO, MEDIOS PREPARADOS A CONVENIENCIA DEL USUARIO

 

NOTA:

Medio optimizado para recuento total de bacterias, (y levaduras y mohos si no se añade cicloheximida) procedentes de ambiente marino. Es por ello, ideal como sustituto del PCA en agua de mar y productos de la pesca. Para anaerobios y microbiota marina especial, solicite nuevos diseños a MICROKIT.

La placa preparada de este medio debe consumirse cuanto antes, para evitar la precipitación de su alto contenido en sal marina.

 

SIEMBRA E INTERPRETACIÓN

Sembrar la membrana de filtración en la superficie de una placa preparada, o bien 1 ml de muestra y su serie de diluciones decimales, en placas en masa, o bien en estría en superficie. Incubar en condiciones adecuadas para saprófitos (72 h a 25°C aproximadamente) o para psicotrofos (10 días a 6°C aproximadamente). Contar todas las colonias (no filamentosas: bacterias no autótrofas y levaduras; filamentosas: hongos).

El usuario final es el único responsable de la eliminación de los microorganismos según la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.

Fabricado en la UE por MICROKIT desde 1994  bajo ISO 9001, ISO 11133 y GMPs, revisado en Nov-2025

Para más información y precios actualizados contacte con microkit@microkit.es

TRIBUTIRIN AGAR (BASE)

TRIBUTIRIN AGAR LIPOLÍTICOS MANTEQUILLA: Detección de microorganismos lipolíticos en mantequilla y otros productos lipídicos https://www.microkit.es/fichas/TRIBUTIRIN-LIPOLITIC-AGAR.pdf

COMPOSICIÓN

  • Peptona untuosa      5,5 g
  • Extracto de levadura 3,5 g
  • Agar‑agar                15,0 g
  • (Fórmula por litro)
  • pH final: 7,5 ± 0,2

Tributirin Agar (Base). Nótese el aspecto graso del medio deshidratado.

Tributirato de glicerilo (Tributirina) en frasco suplemento 100 ml

EL ASPECTO GRASO Y GRUMOSO DEL MEDIO ES NORMAL, a causa de la «Peptona untuosa».

PREPARACIÓN

Disolver 24 gramos del polvo en 1 litro de agua destilada que contenga 10 ml de tributirina (SDA078), llevando a ebullición y agitando vigorosamente hasta la completa suspensión.

Autoclavar a 121 ºC durante 10 minutos.

Agitar para eliminar grumos y verter en placas a unos 50 ºC sobre la muestra

halos de lipolisis de ambas especies, vistos por debajo

St.aureus y Yarrowia lypolitica.

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO.  MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO.

DESHIDRATADO CODIGO: DMT125

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

DESHIDRATADO: Untuoso, crema

PREPARADO: Estéril, Crema opalescente

CONTROL DE CRECIMIENTO 48-72 h a temperatura ambiente (21-28°C aproximadamente):

  • Bacillus subtillis MKTA 6633, Bueno, No forma halo.
  • Staphylococcus aureus MKTA 6538P, Bueno, dorado, en 48 horas forma halo.
  • Staphylococcus epidermidis MKTA 12228, Bueno, en 48 horas no forma halo.
  • Pseudomonas aeruginosa MKTA 9027, Excelente, pigmenta en 48 horas y  forma halo.
  • Yarrowia lypolitica MKTC 1468, Bueno,  Forma halo.

PRESENTACIÓN: FRASCOS 100 ml, MEDIO DESHIDRATADO BASE (UNTUOSO) Y SUPLEMENTO.

NOTA: Medio de cultivo diseñado para detectar microorganismos lipolíticos (bacterias: Staphylococcus aureus, Pseudomonas aeruginosa…. y levaduras: Candida lypolitica, Yarrowia lypolytica….) en productos lácteos, cosméticos y otros productos. Se trata de una base nutritiva sencilla con el sustrato graso tributirato de glicerilo (tributirina). Este producto puede substituirse por mantequilla, pero los resultados en tal caso serán lentos y poco claros.

SIEMBRA

Inocular 1 ml de la muestra y su serie de diluciones decimales en placas preparadas o, mejor aún, en placas Petri sobre las que se añaden 20 ml del medio en frasco, fundido y enfriado a unos 45‑50 ºC. Incubar a 30 ºC aproximadamente, durante 2‑3 días

INTERPRETACIÓN

Contar las colonias que hayan producido un halo transparente de lipolisis a su alrededor. Los microorganismos que han atacado la tributirina también lo harán sobre la mantequilla.

TRIBUTIRIN AGAR LIPOLÍTICOS MANTEQUILLA

El usuario final es el único responsable de la eliminación de los microorganismos según la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.

Si desea más información sobre nuestro TRIBUTIRIN AGAR (BASE) rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

TOMATO JUICE BROTH (BASE) (MODIFICADO)

TOMATO JUICE BROTH (BASE) (MODIFICADO), caldo para el enriquecimiento o para el recuento en placa con cartón de flora acidoláctica

Detección y recuento M.F. de flora acido-láctica

 COMPOSICIÓN Tomato Juice Broth

  •  Polisorbato Tween 80 1,00 g
  • Extracto de carne        20,00 g
  • Extracto de levadura   5,00 g
  • Glucosa                       20,00 g
  • Fosfato dipotásico       2,00 g
  • Acetato de sodio          5,00 g
  • Citrato triamonio        2,00 g
  • Sulfato de Magnesio    0,20 g
  • Sulfato de Manganeso 0,05 g
  • (Fórmula por litro)
  • pH final: 5’5 ± 0,5

 PREPARACIÓN 

 Disolver 55 g en 1 litro de agua destilada que contenga 50 ml del suplemento SDA500 (suero de tomate). Si es necesario ajustar el pH a 5’5  ± 0’5.

Autoclavar a 121 ºC durante 15 minutos. Evitar el sobrecalentamiento.

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO.

MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO. AGITE EL BOTE ANTES DE USAR

DESHIDRATADO CODIGO: DMT222

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO Tomato Juice Broth

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

DESHIDRATADO: Polvo grueso, Beige

PREPARADO: Estéril, Ambar, Turbio

CONTROL DE CRECIMIENTO 72 h a 37°C aproximadamente, en microaerofilia:

  • Lactobacillus plantarum MKTA 8014, Excelente.
  • Lactobacillus casei MKTA 7830, Excelente.
  • Staphylococcus aureus MKTA 6538P, Inhibido.

PRESENTACIÓN: MEDIO DESHIDRATADO (BASE), FRASCOS PREPARADOS 100 y viales de 2 ml.

 MODO DE EMPLEO E INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS 

Añadir 2 ml de medio a cada cartón para la técnica M.F. y depositar la membrana sin que se formen burbujas. Incubar a 37 ºC aproximadamente, durante 2-3 días o bien a 30 ºC aproximadamente, durante 3-5 días. Todas las colonias blancas son de Lactobacilos y demás flora acidoláctica. Identificar con M-Acidificantes (KUS801).

El usuario final es el único responsable de la eliminación de los microorganismos según la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.

https://www.microkit.es/fichas/MRS-LACTOBACILLUS-BROTH.pdf

Si desea más información sobre nuestro TOMATO JUICE BROTH rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16