Archivo de la categoría: Microbiología de Alimentos

Optimización en los análisis microbiológicos de ALIMENTOS.
Nuevos métodos de análisis microbiológicos utilizados exitosamente en los laboratorios líderes

MINI-DRINKING WATER: lleve un laboratorio de aguas en su bolsillo

KIT MICROBIOLOGIA AGUAS MINI-DRINKING-WATER KIT: control sencillo y eficaz de la potabilidad microbiológica del agua sin necesidad de un laboratorio

KIT MICROBIOLOGÍA AGUAS DE CONSUMO HUMANO, COMPLETO. USO «DE CAMPO» Y DE LABORATORIO. 

Así de sencillo y así de efectivo

Para control completo de las aguas que bebemos.

KIT para el análisis microbiológico directo y completo (recuento de bacterias y Presencia/Ausencia de patógenos) sin necesidad de aparato de filtración.

Contiene inactivadores del cloro. Idéntico al clásico DRINKWATER KIT de MICROKIT pero en formato económico y de volumen minimizado para ahorro de fletes en exportación.

Uso para particulares y para profesionales.

Este kit no es sólo una solución portátil para poder conocer in situ si podemos beber cualquier agua presuntamente potable cuando estamos de viaje, en fincas, etc. Además, funciona mejor que los métodos oficiales de filtración de membrana, al emplear el método validado como el mejor: Presencia/Ausencia.

No te pierdas el vídeo que lo explica: https://youtu.be/Y3dy5M0iJCQ?si=GHEcQAYS1c1Z-QkZ

INTRODUCCIÓN

La actual legislación Europea (R.D.140 de 2003) garantiza la calidad del agua a la salida de la potabilizadora y, teóricamente (aunque raramente se cumple), a la salida de los grifos públicos y en las fábricas de alimentos.

Pero en ningún caso a la salida de los grifos privados que utiliza el consumidor, ni de las industrias no alimentarias, ni de los pozos, manantiales u otras fuentes naturales de agua supuestamente potable.

Las continuas obras públicas sobre la red de aguas residuales, así como las obras internas de los edificios, ponen en grave peligro la seguridad final del agua.

Por otra parte, las catástrofes naturales y las inundaciones mantienen en jaque la potabilidad del agua durante semanas e incluso meses en las zonas afectadas.

Por ello es imprescindible su control por parte de todo usuario comprometido con la salud de los suyos.
Los kits P/A de MICROKIT están validados en España (ver 3 publicaciones en la web: www.microkit.es) y demuestran que el método no sólo es tan bueno como el estándar de Filtración de membrana, sino incluso mucho mejor en sensibilidad., especificidad y límite de detección.

Además, es mucho más sencillo y rápido de manejar, ahorrando el uso de aparatos de filtración y permitiendo que el análisis microbiológico del agua esté ya al alcance de todo usuario, sin necesidad de profesionales ni de laboratorios.

La adición en el MINI-DRINKING-WATER KIT de las Dry Plates ® para aerobios, permite el análisis completo.

Realice un análisis semanal (o al menos uno mensual) para verificar que el agua que sale de la potabilizadora municipal llega pura a sus instalaciones y a su casa y se mantiene limpia en ellas, sin infiltración de aguas residuales ni otros serios problemas microbiológicos.

En fincas, pozos, manatiales y en casos de catástrofe, realice un análisis cada día que vaya a beber nueva agua.
Según la reglamentación actual un agua sólo es apta para consumo humano o para uso en fabricación de alimentos, si no contiene patógenos o sus indicadores (Coliformes- E. coli, Enterococos fecales, Clostridium perfringens y sus esporas) en 100 ml y si el recuento total de bacterias aerobias asociadas al hombre es inferior a 20 ufc/1 mililitro (incubando 24 h a 37 ºC) y el recuento total de bacterias aerobias saprófitas es inferior a 100 ufc/1 mililitro (incubado 72 h a 22 ºC), en ambos casos en medio nutritivo YEA. Todo ello se comprueba con este kit.


CONSERVACIÓN:

MANTENER LOS KITS A TEMPERATURA AMBIENTE (4-25ºC). ES MUY IMPORTANTE MANTENERLOS AL RESGUARDO DE LA LUZ Y DE LA HUMEDAD. NO TOCAR CON LOS DEDOS LOS CALDOS NI EL INTERIOR DE LAS PLAQUITAS, Y MENOS AÚN TRAS SER UTILIZADOS.


CÓMO PEDIR ESTE KIT TAN INTERESANTE:

CODIGO KMT005, cajas con 3 test completos.

CONTENIDO: 3 viales P/A Coliformes- E. coli, 3 viales P/A Enterococos, 3 viales P/A Clostridium perfringens + sus esporas), 6 Dry-Plates®-TC Water en sus placas, 3 jeringas estériles de 1 ml, 9 bolsas tomamuestras estériles con tiosulfato sódico para eliminar las trazas de cloro.

CADUCIDAD APROX: 1 año tras fabricación

MODO DE EMPLEO COMPONENTES PRESENCIA/AUSENCIA

1.Kits para Presencia o Ausencia de Coliformes-E.coli, Enterococos, Clostridium perfringens y sus esporas:

Añadir aprox.100 ml del agua de muestra a cada una de 3 de las 9 bolsas incluidas, hasta la línea indicada, la bolsa llena se quedará de pie.

Añadir a una el polvo contenido en un vial MCC, a otra el de un vial Enterocult y a otra de un vial Clostricult.

Cerrar enrollando varias vueltas la zona de arriba de la bolsa y después doblando el alambre apretado hacia ambos lados.

Mezclar el polvo con el agua agitando y dejar 1 día en una zona cálida (a temperatura ambiente entre 30-40ºC, si se dispone de estufa, poner a 35°C aprox).

INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS COMPONENTES PRESENCIA/AUSENCIA

Si la bolsa de Coliformes – E.coli (paja) se vuelve azul, la de Enterococos (ámbar con superficie azul iridiscente) se vuelve negra y/o la de Clostridium perfringens y sus esporas (paja) se vuelve negra, hay contaminación fecal por infiltración de aguas residuales.

Con que una de las tres bolsas vire al color indicado, el agua está contaminada y no se puede beber.

En caso contrario, siga incubando hasta dos días más por si acaso la contaminación es muy débil o la temperatura ambiente de incubación es demasiado baja.

La presencia de cualquiera de estos microorganismos impide el uso del agua para consumo humano.

No vierta el contenido en la naturaleza para que los microorganismos no contaminen los alrededores: añada lejía en las bolsas usadas, antes de desecharlas a la basura.

Si el kit indica negativo, puede verter el agua sin cambios de color por el desagüe del baño o en un agujero en tierra.

MODO DE EMPLEO RECUENTOS

2.Plaquitas para Recuento de aerobios:

Añadir con una jeringa 1 ml del agua de muestra en el centro de una placa vacía, tras abrir la tapa. Depositar encima el disco Dry-Plate ®. Dejar embeber y cerrar. Repetir con otra placa y la misma jeringa.

Dejar una placa 1-2 días en una zona templada (aprox 22ºC) y otra en una zona cálida (aprox 35ºC). Si se emplea incubador (ej: Microkit PT2499), no voltear las placas. Evitar que las placas toquen el metal (suelo, paredes, techo) de la estufa. Poner dentro un vaso con agua.

INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS RECUENTOS

Contar que haya menos de 100 puntos rojizos (colonias, procedentes cada una de una bacteria o ufc) en la primera placa y menos de 20 en la segunda. Según la reglamentación actual (R.D.140 de 2003, UE Directive 1998/83/CE) un agua sólo es apta para consumo humano o para uso en elaboración de alimentos, si:

-no contiene patógenos o sus indicadores (Coliformes-E.coli, Enterococos fecales, Clostridium perfringens y sus esporas) en 100 ml y

-si el recuento total de aerobios asociados al hombre a 35ºC es inferior a 20 ufc/1 mililitro y a 100 ufc/ml si se incuba a 22°C).

 

CÓMO DESTRUIR LO QUE HAYA CRECIDO:

Mientras realiza cada análisis, guarde todos los desechos de los reactivos empleados en la bolsa autosellable de la placa de aerobios. El usuario es el único responsable de la destrucción de los microorganismos generados en el interior del kit durante su uso, de acuerdo con la legislación medioambiental vigente: Añadir lejía o hervir una vez finalizado el análisis. No devolver a la naturaleza. Mantener fuera del alcance y de la vista de los niños. No ingerir. Evitar el contacto con la piel y las mucosas. No utilizar si tiene dudas sobre su modo de empleo o destrucción. No tocar el interior de los componentes.

Tambien puede pedir kits P/A adicionales de MICROKIT

https://www.microkit.es/pdf/KITS-PA-AGUAS-EN-FRASCOS-TOMAMUESTRAS.pdf para Vibrio cholerae, Pseudomonas aeruginosa, Salmonella-Shigella, Burkholderia cepacia, Aeromonas/Plesiomonas, Staphylococcus aureus, Vibrio parahaemolyticus, Hongos, Microalgas, Cianobacterias… https://www.microkit.es/pdf/kits-pa-polvos.pdf

Y tambien NMP-Racks para convertir los kits P/A en recuentos (para Clostridium perfringens, el kit Quanti-P/A Clostricult) https://www.medioscultivo.com/wp-admin/post.php?post=2917&action=edit

mini-drinking-water kit

DryPlates® SAL (Detección de Salmonella spp.)

Cromosalm ABC formato placa deshidratada: Las DryPlates-SAL junto a las DryPlates-XLD permiten sembrar enriquecimientos en estría

DryPlates-SAL y DryPlates-XLD

Placas preparadas de medio deshidratado en disco nutriente, estériles y listas para su uso inmediato, que se hidratan precisamente mediante la muestra en el momento de inocularla en frío, lo que ahorra el hervido-fusión-enfriado-a-45ºC y las 2 horas de todo este trabajo propio del medio clásico para siembra por inclusión en masa. Extraordinaria caducidad (1 año desde fabricación).


El Agar DCA (Pharmacopea medio J) es un medio excelente (selectivo y diferencial) para detección selectiva de Salmonella spp. en muestras farmacéuticas, cosméticas, alimentarias, acuáticas y clínicas. La adición de dos sustratos cromogénicos muy específicos (X-alfa-Gal y CHE-Gal) lo convierten en el ya clásico Agar CromoSalm de MICROKIT (en la ultima versión de la ISO 6579 lo han llamado medio ABC), que supera en sensibilidad y especificidad incluso a los más modernos medios cromogénicos diseñados para Salmonella spp. en las últimas décadas.

En formato DryPlate®, este medio permite la rápida detección de Salmonella spp. en sólo 16h tras el enriquecimiento. Uniendo este avance a un enriquecimiento mixto acelerado (mezclando los medios del preenriquecimiento revitalizador y neutralizante: 225 ml Buffered Peptone Neutralizing Water de MICROKIT DMT011+ enriquecimiento selectivo 18 ml SS Broth concentrado [x5] de MICROKIT DMT067) e incubándolos juntos en las 18 h previas; permite la detección fiable de Salmonella en sólo 34 h desde la muestra inicial.

Las colonias crecen verde-azuladas, y al proceder necesariamente de enriquecimiento, suelen ser tantas que sólo se suelen apreciar mediante el viraje del medio a color verde-azulado. De modo que es mejor prehidratar la DryPlates con 1 ml de agua estéril y sembrar acto seguido el enriquecimiento en estría.

Por todo ello, DryPlates® SAL es la herramienta que estaban esperando todas las fábricas de productos alimenticios para poder liberar lotes gracias a la detección precoz de este patógeno, que les retrasaba hasta ahora el resultado global del laboratorio microbiológico de 3 a 5 días.

Para abarcar todas las cepas de Salmonella, duplicar la estría en DryPlates® SAL, con estría en DryPlates® XLD.

¡Enhorabuena por utilizar el sustituto del Siglo XXI de los medios deshidratados y de los medios preparados hidratados!

MODO DE EMPLEO para detección de patógenos tras enriquecimiento y para ambientes interiores (superficies y aires)

  1. Puede estriar con un asa con caldo enriquecido (ideal SS Broth Microkit, ya que es un caldo que funciona mucho mejor que Rappaport o MKT, sea cual sea el medio posterior de aislamiento), sobre cualquier DryPlates®, previamente hidratada con 1 ml de agua estéril (recuerde, el disco sobre el ml de agua centrado y no al revés). O también un escobillón con el que haya barrido una muestra de superficies.
  2. El viraje de la estría y las colonias aisladas al final de la misma contrastarán mejor con el color de base del medio. Ver modo de empleo completo en el siguiente apartado (muestras de 1 ml)
  3. Las DryPlates son las únicas placas deshidratadas que permiten la siembra en ESTRÍA y por tanto, detectar patógenos de la forma más fiable: tras el enriquecimiento de la muestra.
  4. En cambio sembrar 1 ml de caldo enriquecido, como indican los otros fabricantes, casi siempre da falsos negativos (millones de ufcs generadas tras el
    enriquecimiento, compiten por el sustrato en placa y crean millones de microcolonias diminutas, invisibles, con un cambio de color de todo el medio, que a menudo resulta demasiado tenue, indetectable).
  5. También puede dejar la DryPlates® de cualquier medio, previamente hidratada con 1 ml de agua estéril (recuerde, el disco sobre el ml de agua y nunca el agua sobre el disco nutritivo), abierta durante 10-15 minutos en los puntos críticos de la sala, para realizar una estimación “de campo” de la flora ambiental (aunque es mejor usar un muestreador tipo Microflow o MBS para obtener recuentos por m3 de aire). Ver modo de empleo completo en el siguiente apartado (muestras de 1 ml).

CÓMO USARLAS para muestras de 1 ml

  1. Con unas pinzas, sacar un disco nutriente de su bolsa y colocar en la tapa de una placa DryPlates® recién abierta.
  2. Colocar la placa en una superficie horizontal, sin inclinaciones. Añadir al centro de la base de la placa 1 ml de la muestra líquida (si es espesa, realice diluciones decimales hasta que sea acuosa), bien centrada (mejor que la muestra no toque las paredes internas de la placa, para que la autodifusión sea mucho más rápida y homogénea)
  3. Voltear la tapa con disco nutriente para volver a cerrar la placa, con cuidado para que el disco nutriente caiga centrado sobre la muestra; de este modo se repartirá homogéneamente en un instante. Con un poco de práctica le saldrá perfecto.
    Si lo prefiere, puede tomar el disco nutriente con unas pinzas y colocarlo directamente sobre el ml de muestra, previamente dispensado en el centro de la placa). No añada la muestra sobre el disco nutriente, ya que no difundirá homogéneamente y tardará mucho en hacerlo. La formación de “islas secas” sin muestra, sólo debe preocupar si éstas son muy grandes, ya que al incubar desaparecerán y además el número de colonias por placa en 1 ml de muestra será el mismo con o sin ellas (aunque haya calvas sin colonias y el reparto sea heterogéneo).
  4. Incubar en estufa,

  5. IMPORTANTE: en atmósfera húmeda (dejar un vaso de agua siempre lleno en cada esquina de la estufa, total 4 vasos), sin voltear las placas (el disco abajo) para que no se fugue parte de muestra durante la incubación. Nunca incube las DryPlates® directamente sobre la bandeja de la estufa, intercale dos placas vacías (como“base porta-placas” para poner entre la torre de placas y la base metálica de la estufa) para que la DryPlate® no se seque durante la incubación por el exceso de calor del metal; igualmente no deje que la torre de placas toque la paredes de la estufa.
  6. Las condiciones de incubación (tiempo y temperatura) son las estándar: 35-37ºC durante 16-24 (48)h. Antes de leer, es muy importante verificar que la superficie de la placa sigue húmeda.
  7. Las cepas de Salmonella spp. que no estén en estado subletal o estresado, crecerán desde las primeras 16h como colonias, virajes o estrías verde-azulados (detección precoz). Si no aparecieran estos cambios en 16h, siga incubando para revitalizar las células dañadas sub-letalmente durante la fabricación del producto, hasta las 48 h.
  8. Los resultados de las DryPlates®-SAL son mucho más rápidos (16h respecto a 24-48h) que los de los medios agarizados clásicos.
  9. Leer los resultados buscando sólo el color diana: Salmonella spp. crece de color verde-azulado (sean colonias aisladas, sean estrías, sean zonas del medio o sea el medio completo), mientras otras enterobacterias pueden crecer, pero con colores negros (ej: Citrobacter spp.) o crema (ej: Proteus spp.).

MODO DE EMPLEO para muestras líquidas filtradas (100, 250… ml)

  1. Siga los mismos pasos que en el caso anterior pero con las siguientes salvedades:
  2. Prehidrate el disco nutriente incluido en la placa con 1 ml de agua estéril (o solución salina, Ringer, Buffered Peptone Water, Buffered Peptone Neutralizing, LPT Broth…). Recuerde, añada el disco sobre el ml de agua y no al revés.
  3. Filtrar la muestra líquida (100, 250… ml) por una membrana estéril de 0,45 ó de 0,22 μm y depositar la membrana sobre el disco prehidratado de la DryPlates® SAL , evitando la formación de burbujas entre ambos. Evite estresar las posibles células de Salmonella spp. retenidas en la membrana: es conveniente enjuagar/revitalizar la membrana una vez recién filtrada la muestra, filtrando acto seguido por ella 100 ml de, por ejemplo, Buff.Peptone ClNa Solution pH 7,0 Pharmacopea (MICROKIT RPL115, DMT301); apague la bomba en cuanto se haya terminado el líquido del embudo de filtración y deposite la membrana sin demora sobre la DryPlates® SAL prehidratada.

CONSERVACIÓN Y PRECAUCIONES DE USO

Almacenar a temperatura ambiente (ideal 15-25ºC) ¡no en nevera!, ya que en ésta la humedad es más fácil que prehidrate y estropee los discos nutrientes. Es imprescindible almacenar en lugar muy seco y oscuro, ya que la humedad y la luz dañan irreversiblemente los medios de cultivo deshidratados. Si trabaja en zonas de alta humedad atmosférica, almacene las DryPlates®, bien cerradas en su bolsa, dentro de una caja hermética “tupper” con sacos antihumedad (ej: VRB747).

ATENCIÓN

¿Cual es la diferencia entre DryPlates-SAL y las demás placas deshidratadas del mercado? Con DryPlates puede estriar el caldo enriquecido, tal y como dictan los más lógicos protocolos de buenas prácticas de laboratorio en microbiología. Así, al no inocular masivamente 1 mL de muestra enriquecida, como le sugieren otras placas deshidratadas del mercado, distinguirá la estría y las colonias verdes de Salmonella, del medio blanco, y no le pasarán desapercibidas como microcolonias imperceptibles al ojo humano.

https://www.microkit.es/fichas/Dry-Plates-SAL-Prospecto.pdf

GAMA COMPLETA

Otros muchos medios en DryPlates®:

Aerobios totales (medios diferentes en alimentos, en cosméticos, en aguas, en aguas oligotróficas, en medicamentos, en bebidas alcohólicas),

Levaduras y Mohos (en alimentos, en cosméticos, en aguas, en medicamentos),

Enterobacterias (VRBG o cromogénico),

Coliformes y E.coli,

E.coli,

Staphylococcus aureus,

Bacillus cereus,

Pseudomonas aeruginosa,

Burkholderia cepacia,

Candida albicans,

Enterococos fecales (SB ó KAA a elegir),

Salmonella spp. (Cromosalm y XLD),

Vibrio parahaemolyticus-Vibrio cholerae,

Antiobiograma cromogénico,

UTIs…

Si necesita otros medios en formato DryPlates® podemos diseñarlos especialmente para Ud.

El usuario final es el único responsable de la eliminación de los microorganismos según la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.

Diseño y fabricación 100% españoles. Derechos de explotación de la PATENTE concedidos en exclusiva a Laboratorios MICROKIT, S.L. tras más de 23 años de ensayos y mejoras para poder ofrecerle el mejor y más versátil producto de estas características.

https://www.microkit.es/monograficos/5-Salmonella-y-Shigella-monograf–a.pdf

https://www.microkit.es/monograficos/19-Monograf–a-Recuento-en-masa-sin-tener-que-perder-el-tiempo-fundiendo-agares.pdf

Haga sus consultas de este medio en: microkit@microkit.es

Haga sus pedidos de este medio en: pedidos@microkit.es

En este vídeo puedes entender mejor la hazaña de las DryPlates® y cómo usarlas:

https://www.youtube.com/watch?v=vkdRD5ulpSY&t=29s

DryPlates X-Staph

DryPlates para la detección de Staphylococcus aureus tras enriquecimiento en aguas, alimentos y cosméticos.

DryPlates X-Staph

Placas preparadas de medio deshidratado en disco nutriente, estériles y listas para su uso inmediato, que se hidratan precisamente mediante la muestra en el momento de inocularla en frío, lo que ahorra el hervido-fusión-enfriado-a-45ºC y las 2 horas de todo este trabajo propio del medio clásico para siembra por inclusión en masa. Extraordinariamente alta caducidad: 1 año desde fabricación.

CROMOKIT® X-STAPH Agar

es el medio cromogénico diseñado por MICROKIT®, donde Staphylococcus aureus crece con colonias violetas o azul oscuro, índigo, mientras otros Gram positivos (S.epidermidis, Bacillus spp.) lo hacen con colonias azul claro, turquesa. Medio válido para muestras de aguas, alimentos, cosméticos…
¡Enhorabuena por utilizar el sustituto del Siglo XXI de los medios deshidratados y de los medios preparados hidratados!

MODO DE EMPLEO para detección de patógenos tras enriquecimiento y para ambientes interiores (superficies y aires)

  1. Puede estriar con un asa con caldo enriquecido (o bien un escobillón con el que haya barrido una muestra de superficies), sobre cualquier DryPlates®, previamente hidratada con 1 ml de agua estéril (recuerde, el disco sobre el ml de agua centrado y no al revés). El viraje de la estría y las colonias aisladas al final de la misma contrastarán mejor con el color de base del medio.
    Las DryPlates son las únicas placas deshidratadas que permiten la siembra en ESTRÍA y por tanto, detectar patógenos de la forma más fiable: tras el enriquecimiento de la muestra. En cambio sembrar 1 ml de caldo enriquecido, como indican los otros fabricantes, casi siempre da falsos negativos (millones de ufcs generadas tras el enriquecimiento, compiten por el sustrato en placa y crean millones de microcolonias diminutas, invisibles, con un cambio de color de todo el medio, que a menudo resulta demasiado tenue, indetectable).
  2. También puede dejar la DryPlates® de cualquier medio, previamente hidratada con 1 ml de agua estéril (recuerde, el disco sobre el agua centrada y no al revés), abierta durante 10-15 minutos en los puntos críticos de la sala, para realizar una estimación “de campo” de la flora ambiental (aunque es mejor usar un muestreador tipo Microflow o MBS para obtener recuentos por m3 de aire)

NOTA DESDE 11-2017:

No resulta recomendable este medio en DryPlates para recuentos, dado que la molécula cromogénica es enorme y un alto porcentaje de la misma escapa de la red textil, pudiendo dar lugar a resultados falsamente negativos por empobrecimiento del color de los microorganismos allí crecidos. En cambio la DryPlates-XStaph es muy útil para detección tras enriquecimiento, porque tras enriquecer, los microorganismos están muy concentrados y las colonias originadas se evidencian muy bien en la estría, que queda muy nítida con su color azul sobre el disco blanco. Para recuentos es mejor utilizar este medio cromogénico, pero en cualquiera de sus demás versiones: polvo deshidratado para autoclavar, placas preparadas, plaquitas herméticas, tubos o frascos, ya que en ellos al hidratarse el cromógeno, se reparte homogéneamente en el 100% de la superficie del medio.

CONSERVACIÓN Y PRECAUCIONES DE USO

Almacenar a temperatura ambiente (ideal 15-25ºC) ¡no en nevera!, ya que en ésta la humedad es más fácil que prehidrate y estropee los discos nutrientes. Eso sí, es imprescindible almacenar en lugar muy seco y oscuro, ya que la humedad y la luz dañan irreversiblemente los medios de cultivo deshidratados. Si trabaja en zonas de alta humedad atmosférica, almacene las DryPlates®, bien cerradas en su bolsa, dentro de una caja hermética “tupper” con sacos antihumedad (ej: MICROKIT VRB747).

DryPlates para la detección de Staphylococcus aureus tras enriquecimiento en aguas, alimentos y cosméticos. Mantenga un stock de medios de cultivo de larguísima caducidad, para emergencias, o para uso rutinario.

https://www.microkit.es/fichas/Dry-Plates-X-STAPH-Prospecto.pdf

GAMA COMPLETA

Otros muchos medios en DryPlates®:

Aerobios totales (en alimentos y cosméticos, en aguas y en aguas oligotróficas),

Hongos (levaduras y mohos),

E.coli y demás coliformes,

Enterobacterias,

Bacillus cereus,

Pseudomonas aeruginosa,

Burkholderia cepacia,

Candida albicans,

Enterococos fecales,

Salmonella spp.,

Vibrio parahaemolyticus-Vibrio cholerae,

Otros medios en formato DryPlates®: consúltenos.

El usuario final es el único responsable de la eliminación de los microorganismos según la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.

Diseño y fabricación 100% españoles. Derechos de explotación de la PATENTE concedidos en exclusiva a Laboratorios MICROKIT, S.L. tras más de 23 años de ensayos y mejoras para poder ofrecerle el mejor y más versátil producto de estas características.
Medio validado en base a la Norma UNE-EN-ISO 16140, con recuperaciones muy superiores (hasta el 280%) a la de Baird Parker, rpf y Mannitol Salt Agar, evitando los falsos positivos y falsos negativos de los dos primeros, y los falsos positivos del tercero.
DryPlates® es marca registrada por Laboratorios MICROKIT, S.L.

https://www.microkit.es/monograficos/1-Estafilococo-dorado-monograf–a.pdf

https://www.microkit.es/monograficos/19-Monograf–a-Recuento-en-masa-sin-tener-que-perder-el-tiempo-fundiendo-agares.pdf

Haga sus consultas de este medio en: microkit@microkit.es

Haga sus pedidos de este medio en: pedidos@microkit.es

En este vídeo puedes entender mejor la hazaña de las DryPlates® y cómo usarlas:

https://www.youtube.com/watch?v=vkdRD5ulpSY&t=29s

BUFFERED PEPTONE NEUTRALIZING WATER

Agua peptonada efecto matriz: Buffered Peptone Water Neutralizing para evitar el «efecto matriz» provocado por los conservantes alimentarios, que provocan falsos negativos y recuentos muy por debajo de la realidad. Sustituto del Agua Peptonada Tamponada Buffered Peptone Water clásica en alimentos que contienen conservantes, sean declarados, sean especias saborizantes (ajo, pimentón, pimienta, mostaza, aromáticas…), grasas u otros conservantes/inhibidores naturales o artificiales, que pueden enmascarar la presencia de patógenos. Es decir, en casi todos los alimentos. Incluso inactiva los metabolitos de la flora acompañante que podrían enmascarar el crecimiento del microorganismo diana en el Agua Peptonada Tamponada clásica. Primer caldo, patentado, que neutraliza estos aspectos tan olvidados por la Normativa, acerca del efecto matriz. Diseñado por MICROKIT a raíz de los resultados tan mediocres que obtenían muchos laboratorios usuarios de Agua de Peptona Tamponada, fuese cual fuese el parámetro microbiológico comparado, en muchos alimentos, en los servicios intercomparativos Seilalimentos.

COMPOSICIÓNbuffered neutalizing

  • Polipeptona bacteriológica     15,0 g
  • Extracto de Levadura                 5,0 g
  • Cloruro sódico                             7,5 g
  • Fosfato disódico                          4,5 g
  • Fosfato monopotásico              0,75 g
  • Polisorbato Tween 80                 5,0 g
  • Mix de inactivadores                  6,3 g

(Fórmula en g/l)   Ajustar a pH: 7,3 ± 0,2

 Este medio, según sea el agua destilada empleada, puede requerir hasta 7 ml de NaOH 1 N por  cada litro de medio final (* Mezcla sinérgica de Lecitina, Tioglicolato sódico,Tiosulfato sódico, Bi‑sulfito sódico, Histidina…) PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO. AGITE EL BOTE ANTES DE USAR. MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO, EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO.

COD: DMT011

Agua peptonada efecto matriz: Buffered Peptone Water Neutralizing para evitar el «efecto matriz» provocado por los conservantes alimentarios

https://www.microkit.es/fichas/BUFFERED-PEPTONE-NEUTRALIZING-WATER.pdf

 PREPARACIÓN

Disolver 44 g de medio en 1 l de agua bidestilada. Dispensar en tubos o en frascos. Autoclavar a 121 ºC durante 15 minutos. El color final del medio es paja-ámbar. El polvo es untuoso porque incluye 5 ml/l de polisorbato Tween 80, que permite obtener mejores efectos inactivadores de los inhibidores incluso en productos grasos. Imprescindible ajustar el pH para conseguir la efectividad necesaria.

Agua peptonada efecto matriz: Buffered Peptone Water Neutralizing para evitar el «efecto matriz» provocado por los conservantes alimentarios

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

DESHIDRATADO: Polvo fino, crema   PREPARADO: Estéril, paja-ámbar

EVALUACIÓN DEL RENDIMIENTO ISO/TS 11133-2  (Aplicando el método ISO 6579:2003, o el del Manual MICROKIT actualizado), 18 h a 37 ºC: Salmonella abony MKTN 6017, Excelente, Tras 45 minutos a 25°C, resiembra en TSA estandarizado* y obtención de >50-150% de colonias respecto al número de ufc inoculadas. Tras 18 h a 37°C, turbidez de ligera a elevada

  • E.coli MKTA 25922, Excelente, Tras 18 h a 37°C, turbidez de ligera a elevada.
  • Staphylococcus aureus MKTA 6538P, Excelente, Tras 18 h a 37°C, turbidez de ligera a elevada.
  • Pseudomonas aeruginosa MKTA 9027, Excelente. Bacillus subtilis MKTA 6633, Excelente. Candida albicans MKTA 10231, Excelente.

*El que cumple con recuperación superior al 70 % (92-125 %) con respecto a cepas cuantitativas trazables a la cepa tipo. Incertidumbres debidas a las cepas y a las diferentes proporciones de flora acompañante.

Las colecciones TIPO prohiben el uso de su referencia por lo que indicamos la nuestra, directamente trazable a la colección TIPO.

PRESENTACIÓN: MEDIO DESHIDRATADO (DMT011), frascos preparados 50 ml (RPL112), frascos preparados 50 ml con perlas de vidrio para dispersar productos grasos o grumosos (RPL114), frascotes preparados 225 ml con perlas de vidrio para dispersar productos grasos o grumosos (RPL235).

SIEMBRA E INTERPRETACIÓN

Añadir 1-25 gramos de muestra en 10-225 ml de medio (5 g en los frascos con 50 ml). Agitar (las perlas de vidrio de los frascos ahorran el uso de un homogeneizador en muestras blandas, salsas…) y dejar reposar para que actúe la inactivación de agentes inhibidores presentes en la muestra, durante 20-30 minutos a temperatura ambiente. Si es necesario, realizar las ulteriores diluciones decimales en este mismo medio.

PRECAUCIÓN: En matrices cuyo agente conservante sea la salazón, salmuera o almíbar, o en aquellas con alta proporción de sales o de azúcares, puede requerirse que la solución madre sea 1:100 en lugar del clásico 1:10 empleado en los demás alimentos. Otro aspecto muy interesante del «efecto matriz».

Para realizar recuentos, sembrar 1 ml de cada dilución en masa en los agares adecuados, sin previo enriquecimiento. Recomendamos el PCA cromogénico de MICROKIT (BCD510) ya que por el mismo precio que e PCA clásico, se distinguen las colonias (rojas) de las partículas de muestra.

Para enriquecimiento revitalizador, incubar 18 h a 35-37°C antes de pasar a enriquecimientos selectivos secundarios o antes de estriar en placas selectivas.

Para control de esterilidad comercial, incubar 18-72 h a 35-37°C y sembrar en estría en la superficie de una placa de un agar de recuento general, por ejemplo, PCA-cromogénico (BCD510), aunque la turbidez del caldo es una alerta rápida de la contaminación microbiana.

NOTA: Dados los resultados de los intercomparativos Seilalimentos de microbiología alimentaria de la ultima década, diseñamos este caldo peptonado neutralizante, que tan inmejorables resultados proporciona, como el sustituto habitual de la clásica agua peptonada tamponada, para inactivar los conservantes que la mayoría de alimentos resultan incluir. Además ha sido validado internamente por el método de pares y con cepas cuantitativas de referencia en los 5 parámetros microbiológicos de máxima importancia en microbiología alimentaria: Salmonella enteritidis, Staphylococcus aureus, E.coli, Clostridium perfringens y Listeria monocytogenes.

Agua peptonada efecto matriz: Buffered Peptone Water Neutralizing para evitar el «efecto matriz» provocado por los conservantes alimentarios

 https://www.microkit.es/monograficos/22-Monograf–a-Neutralizaci–n-de-conservantes-y-aditivos-en-producto-final–para-minimizar-falsos-negativos-en-alimentos.-Otras-soluciones.pdf 

ANAEROTECA (Conservación de anaerobios)

ANAEROTECA (KPX004)

Algunas cepas de microorganismos se resisten a mantenerse en los sistemas de congelación clásicos y comerciales de las tres marcas mundiales (En España, CRIOTECA® de MICROKIT); no es un problema del producto sino de la cepa. MICROKIT diseñó hace ya tiempo una CRIOTECA® especial para hongos como las levaduras (CRIOTECA®-YM), otra para halófilos como Vibrio (CRIOTECA®-MAR) y otra para microorganismos de crecimiento difícil como las micobacterias (CRIOTECA®-SKIM MILK). Sin embargo, seguía existiendo un grupo problemático: Los anaerobios.
Tras un año de intensos estudios presentamos la solución: ANAEROTECA, basada en el mantenimiento durante meses SIN CONGELACION, que era precisamente la que impedía su viabilidad en los sistemas criogénicos.
Los anaerobios se mantienen muy mal en medios normales refrigerados o congelados. Presentamos los tubos de ANAEROTECA, rellenos con 18 ml (máxima profundidad) de un medio especialmente diseñado por MICROKIT para la conservación de la mayoría de anaerobios (sobre todo Clostridios) y que ha resultado el mejor en un estudio interno entre 8 variantes.
El medio contiene agentes reductores para que la penetración del oxígeno del aire sea mínima.
Además, la resazurina avisa de cuándo la oxidación del medio alcanza niveles peligrosos para la viabilidad de los microorganismos almacenados: Si más de la tercera parte del tubo está de color rosa, se debe regenerar hirviéndolo 10 minutos. En el caso de que la cepa esté ya inoculada, hervir otro tubo vacío e inocularlo con una gota del fondo del tubo inoculado que se ha oxidado, no agitado.

Las partículas sólidas de Cooked Meat Granules resultan un hábitat ideal para el mantenimiento de la mayor parte de los anaerobios más usuales en microbiología de alimentos y de aguas.
La infusión de cerebro y corazón permite el mantenimiento de la mayor parte de anaerobios patógenos humanos.

 

MODO DE EMPLEO

  1. Inocular la cepa pura (colonia, suspensión espesa o liófilo frescos) en el fondo. Si se trata de esporulados (Clostridium) realizar un duplicado sometido a un shock térmico adecuado (10 minutos a 75 ºC…) para permitir la germinación.
  2. Cerrar y no agitar ni voltear, para mezclar, evitando la agitación brusca que oxigenaría el medio. Registrar los datos.
  3. Mantener a temperatura ambiente (ideal 21-25 ºC).¡NO CONGELAR! ¡Ni siquiera refrigerar! El frío permitiría la rápida oxigenación del medio, comprometiendo la viabilidad de los anaerobios.¡NO AGITAR!.

Cuando necesite cepa pura, tome con una pipeta Pasteur una gota del fondo (mejor si lleva trozos particulados) e inocúlela en el medio adecuado. Incube de la forma más adecuada para la cepa en cuestión.
Algunas cepas pueden mantenerse en ANAEROTECA durante años, otras sólo algunos meses: Resiembre duplicados en ANAEROTECA hasta conocer el tiempo límite normal de viabilidad de sus cepas.
CRIOTECA®-MIX-ENANA-50 es una referencia que incluye 10 Crioviales clásicos (para todo), 10 Skim Milk (para todo y micobacterias), 10 YM (para hongos y levaduras), 10 Aquática (mejor para Legionella, Pseudomonas, Staphylococcus, E.coli…), 5 Halófilos (Vibrio parahaemolyticus…) y 5 Campy, Ref.: KPX200. Palillos estériles para tomar mejor las bolitas: VDP099.
CAJA VACIA CRIOBOX PARA 100 CRIOVIALES, y para poder tener una parte de la CRIOTECA® congelada y los viales no inoculados, sin congelar. Ref.: VPX453. Idem porexpán , Ref.VPX500.

El usuario es el único responsable de la eliminación de los microorganismos según la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.
Diseñado y fabricado por MICROKIT desde1995. CRIOTECA® es marca registrada de MICROKIT.
Revisado en Diciembre de 2019.

CRIOTECA®

 

VIALES CRIOTECA® – CONSERVACIÓN AVANZADA DE CEPAS MICROBIANAS

PRESENTACIÓN

Los viales CRIOTECA® están diseñados para una conservación eficaz, segura y prolongada de cepas microbianas. Estos viales, pioneros en su fabricación en España desde 1991, incorporan criobolas de porcelana porosa especialmente tratadas y un líquido criogénico optimizado, lo que permite:

  • Minimizar resiembras, contaminaciones y mutaciones.

  • Garantizar la preservación de la primera generación inoculada.

  • Mantener las cepas vivas durante años.

Gracias a la colaboración con uno de los centros oficiales que gestiona las cepas causantes de brotes alimentarios, hospitalarios e hídricos, hemos conseguido optimizar nuestros caldos criogénicos, marcando una clara diferencia frente a otras marcas del mercado.


Ventajas destacadas

  • Mayor seguridad: tapón alto que evita el contacto directo con la muestra.

  • Alta eficiencia: mayor cantidad de criobolas (25 por vial) para asegurar la recuperación de la cepa.

  • Máxima optimización: menor volumen por vial y cajas CRIOBOX ultracompactas, ahorrando espacio en almacenamiento.

  • Fórmula mejorada: líquido criogénico especialmente desarrollado para una mayor viabilidad y recuperación de las cepas.

  • Precio más competitivo frente a kits importados similares.

  • Cierre totalmente hermético y caducidad de 5 años desde la fabricación. Si se conservan en nitrógeno líquido, este periodo puede extenderse incluso más allá.


Resultados validados con numerosos microorganismos:

  • Gram positivos: Bacillus cereus, Staphylococcus aureus, Listeria monocytogenes, Lactobacillus plantarum, etc.

  • Gram negativos: Escherichia coli, Pseudomonas aeruginosa, Salmonella abony, Campylobacter jejuni, Legionella pneumophila, entre otros.

  • Levaduras: Saccharomyces cerevisiae, Candida albicans, Rhodotorula glutinis

  • Mohos: Aspergillus niger, Penicillium digitatum, Mucor racemosus, entre otros.


TIPOS DE CRIOTECA® DISPONIBLES

  • CRIOTECA® CLÁSICA (KPX006)
    Para bacterias en general, levaduras y mohos. Bolitas amarillas.

  • CRIOTECA® YM (KPX007)
    Formulada específicamente para hongos (levaduras y mohos). Bolitas blancas.

  • CRIOTECA® MARINA (KPX008)
    Especial para microorganismos halófilos como Vibrio. Bolitas marrones.

  • CRIOTECA® SKIM MILK (KPX003)
    Ideal para microorganismos exigentes, como micobacterias. También es excelente para bacterias comunes. Líquido blanco y bolitas verdes. (Es nuestra referencia más vendida, con 50 veces más demanda que la clásica).

  • CRIOTECA® CAMPY (KPX009)
    Óptima para Campylobacter y Helicobacter. Bolitas azules.

  • CRIOTECA® ACUÁTICA (KPX010)
    Especializada para bacterias presentes en el agua, incluyendo Legionella, Pseudomonas, Aeromonas, E. coli, Acinetobacter, Plesiomonas, entre otras. Bolitas rojas.


MODO DE EMPLEO – Conservación de cepas en criobolas

  1. Introduzca una suspensión espesa del cultivo (idealmente fresco, 18-24h) o una colonia directamente en el vial.

    • Para bacterias: Agar Sangre, TSA, BHI o TSB.

    • Para hongos: SDA, SDB o YMB.

  2. Si usa caldo en lugar de colonias, centrifugue y utilice el sedimento.

  3. Cierre el vial y agítelo suavemente (invertir 10 veces) para impregnar bien las bolitas.

  4. Espere un minuto, luego retire el exceso de líquido con una jeringa estéril.

  5. Etiquete el vial con rotulador indeleble.

  6. Golpee suavemente el vial contra la mesa para distribuir las bolitas a lo largo del tubo.

  7. Congele entre –20 °C y –60 °C. Se recomienda duplicar las muestras como medida preventiva.

  8. Para recuperar la cepa:

    • Extraiga una bolita con un palillo estéril (ref. VDP099).

    • Si la cepa es exigente: introducir en caldo tipo BHI antes de sembrar.

    • Si es fácil: sembrar directamente en medio sólido o líquido.

    • No espere a que la bolita se atempere.

    • No reutilice ni reintroduzca el palillo ni la bolita.


PRECAUCIONES

  • Evite cambios de temperatura: devuelva el vial al congelador inmediatamente tras su uso.

  • Uso exclusivo en laboratorio.

  • Trabaje siempre con técnicas asépticas.

  • Confirme previamente la compatibilidad de su cepa con este sistema, antes de abandonar métodos tradicionales de resiembra.

  • Deseche el material contaminado siguiendo los protocolos de bioseguridad habituales.


¿NECESITA MÁS INFORMACIÓN?

MICROKIT® MUG PLUS CCA CROMOGENIC AGAR AGAR CROMOGÉNICO COLIFORMES Y E.COLI

MICROKIT® MUG PLUS CCA CROMOGENIC AGAR (CROMOGÉNICO COLIFORMES Y E.COLI)  S/BOE 31-MARZO-2009

MICROKIT® MUG PLUS CCA cromogénico E.coli-coliformes. Agar selectivo para la detección simultánea confirmativa de coliformes totales/fecales y E.coli en aguas y alimentos (cromógenos según ISO 16649-1:2001, AFNOR V08053-4)

INTRODUCCION

Inventado por MICROKIT en 1995, es el primer medio cromogénico que ha entrado en una Norma ISO (la ISO 9308-1) de aguas de consumo humano y envasadas. Los substratos cromógenicos  Salmon-Gal y X-Glucurónido, permiten la detección simultánea de coliformes

MICROKIT® MUGPLUS: Agar cromogénico para E. coli (colonias azules -olas-) y demás coliformes (colonias rosas -surf-). Campylobacter y Shigella crecen con colonias verdes (hierba) y otros Gram negativos con colonias crema (Pseudomonas -montañas-).

E.coli (colonias azules -olas-) y demás coliformes (colonias rosas -surf-). Campylobacter y Shigella (colonias verdes-hierba) y otros Gram negativos con colonias crema (Pseudomonas -montañas-).

(colonias rojas) y E.coli (colonias azules) en el mismo medio de cultivo.
La acción simultánea de las peptonas seleccionadas en el medio, del piruvato y de los tampones fosfato, garantiza un rápido crecimiento colonial, incluso para los coliformes en estado subletal. El crecimiento de la flora acompañante Gram positiva, queda inhibido gracias al lauryl sulfato y a la mezcla de antibióticos Cefsulodina + Vancomicina.
El enzima Beta-D-galactosidasa, característica de los coliformes, actúa sobre el Salmon-GAL provocando la pigmentación roja o rosada en las colonias de coliformes.
E.coli, coliforme Beta-D-glucuronidasa positivo, actúa sobre el Salmon-GAL y sobre el X-Glucurónido (5-bromo-4-chloro-3-indoxyl Beta-D-glucurónido) de modo que sus colonias crecen de azul oscuro al añil.

COMPOSICION (g/l)

Inconfundibles colonias añil (no violetas ni esmeralda) de E.coli

Inconfundibles colonias añil (no violetas ni esmeralda) de E.coli

  • Peptonas 3´0
  • Cloruro Sódico 5´0
  • Dihidrógeno Fosfato Sódico 2´2
  • Hidrógeno Fosfato Disódico 2´7
  • Piruvato Sódico 1´0
  • Triptófano 1´0
  • Tergitol 7 0´15
  • Sorbitol 1´0
  • Mezcla cromogénica
  • (Salmon Gal 0,2 y X-Glu 0,2) 0´4
  • Agar-Agar 10´0
  • pH Final: 6´8 ± 0´2

MODO DE EMPLEO CCA cromogénico E.coli coliformes

Agitar el bote. Disolver 26,5 g en 1 litro de agua destilada, calentando hasta ebullición. Mantener durante 1 minuto. Agitar hasta su completa disolución. Añadir asépticamente, cuando el medio se haya enfriado a 55 ºC, 5 mg de Cefsulodina + 5 mg de Vancomicina (total 5 ml de solución estéril MICROKIT SMS400) para aumentar la selectividad del medio y eliminar la flora acompañante Gram positiva. No autoclavar. El medio final es blanquecino. No refundir más de una vez.
En alimentos, la siembra en profundidad elimina los Gram negativos no fermentadores, que en la técnica de Filtración de Membrana para análisis de aguas pueden dar lugar a falsos positivos y además reducir en un 50% la recuperación de los microorganismos diana; para evitarlo, añadir sobre la membrana una segunda capa de medio agarizado, previamente enfriado a 50 ºC. Esto no es tan necesario en aguas potables o poco contaminadas por flora acompañante.

LECTURA DE RESULTADOS

Nueva imagen (5)Tras 18-24 horas de incubación a 35-37 ºC aproximadamente (ó 44,5 ºC aproximadamente para C. fecales), los resultados son: E.coli: Colonias de azul oscuro a añil (Salmon GAL y X-Glucurónido positivo) que resultan indol positivas (puede comprobarse directo en la colonia). Coliformes: Colonias rosas- rojas (Salmon GAL positivo) + las azules (E.coli). Otras enterobacterias: Colonias incoloras, excepto cepas como las Salmonella o Shigella Beta-D glucuronidasa positivas, que aparecen de color azul claro a turquesa. Muchas cepas de Shigella y de Campylobacter crecen con colonias verdes, pero también es del máximo interés que sean detectados, al ser microorganismos patógenos.

Unas pocas cepas de Enterococcus durans crecen con colonias rojas, pero también indican contaminación fecal del agua. Ciertas cepas de Staphylococcus aureus y de Bacillus crecen con colonias naranjas, pero nunca rosas-rojas. Otras cepas crecen con colonias crema que no se han de tener en cuenta. Las colonias con colores intermedios (violáceo-lila) proceden de ufc mixtas: diluir y repetir el análisis, o mirar una placa sembrada con una dilución mayor.
Confirme E.coli pinchando ó cubriendo sus colonias con reactivo de Kovacs. Si éste
vira a rojo-cereza antes de 1 minuto, la reacción es, definitivamente, confirmativa.

Color de la colonia Salmon-GAL X-Glucurónido Indol Rto. PCA estandarizado*

CRECIMIENTOS TÍPICOS

  • E.coli Azul oscuro-añil o turquesa + + + 58-125% **
  • Citrobacter freundii Rojo-rosa + – – 98-106%
  • Klebsiella oxytoca Lila-Granate + – – >99%
  • Enterobacter cloacae Rojo-rosa + – – 58-104%
  • Salmonella enteritidis Incoloro – – – 29-202%
  • Shigella flexneri Incoloro (azul en superficie) – – –
  • Salmonella MUG+ Azul claro – + –
  • E. coli O157 : H7 Rojo-rosa + – + 230%
    * El que cumple con recuperación superior al 92-125% con respecto a cepas cuantitativas trazables a cepa tipo.
    Incertidumbres detectadas entre todos los lotes a lo largo de un año (la mayoría de la incertidumbre se debe a la cepa y a la proporción de cepas acompañantes inoculadas, no al medio).
    ** En superficie, ya que en masa recupera el 200% más que en superficie
    Un estudio comparativo independiente (*) de validación cuantitativa entre este medio, otros cromogénicos, Endo y MFC demuestra que MUG PLUS® es el mejor medio de recuento de E. coli en aguas. La validación interna realizada por MICROKIT con centenares de muestras y la revalidación trimestral en Seilagua ®, Seilalimentos y Seilaparfum, lo confirman para agua y para todo tipo de matrices alimentarias y cosméticas.

CCA cromogénico E.coli coliformes

VENTAJAS SOBRE OTRAS MARCAS

Ser los pioneros en el diseño de este medio nos da dos ventajas claras:

1-Gracias a ciertos secretos de fabricación, las colonias azules de presuntos E.coli se pueden confirmar directamente añadiendo reactivo de indol sobre la colonia, ya que en caso positivo, habrá un claro viraje del reactivo amarillo a rosa alrededor de las colonias del microorganismo diana.

2-Las colonias rosas de presuntos coliformes se pueden confirmar directamente añadiendo reactivo de la citocromo-oxidasa en goteros monodosis sobre las colonias, incluso bañando toda la placa, ya que en caso positivo (oxidasa positivo, no coliforme), habrá un claro viraje del reactivo incoloro a azul oscuro alrededor de las colonias del microorganismo diana.

PRESENTACIÓN

* Botes de 100 g de medio de cultivo deshidratado en polvo agarizado. Referencia DMT400-
* Suplemento en frasco de 100 ml, con 100 mg de solución estéril de Cefsulodina + Vancomicina, para 20 litros de medio (5 ml/l). Ref. SMS400.
* Frascos de 100 ml de agar MUG PLUS® preparado con Cefsulodina+Vancomicina. Referencia RPL444.
* Frascos de 200 ml de agar MUG PLUS® preparado con Cefsulodina+Vancomicina. Ref. RPL244.
* Tubos de 20 ml de agar MUG PLUS® preparado con Cefsulodina+Vancomicina. Referencia TPL400.
* Viales 2 ml de caldo MUG PLUS® de MF con Cefsulodina+Vancomicina. Ref. FPL400.
* Viales pinchables de 100 ml de caldo MUG PLUS® de MF con Cefsulodina+Vancomicina. Ref. RPL400.
* Plaquitas herméticas de Agar MUGLUS® preparado con Cefsulodina+Vancomicina . Referencia PPL902

El usuario es el único responsable de la eliminación de los microorganismos según la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.

https://www.microkit.es/pdf/mugplus-agar.pdf

https://www.microkit.es/monograficos/11-E.coli-y-dem–s-coliformes-monograf–a.pdf

Prepárese para más de una sorpresa informativa cuando vea nuestro video sobre los medios Cromogénicos: https://www.youtube.com/watch?v=-JVPVWxY8ZE&t=271s

RINGER SOLUCIÓN ISOTÓNICA 1/4 (TABLETAS)

RINGER SOLUCIÓN ISOTÓNICA 1/4 (TABLETAS)

Ringer, Solución isotónica 1/4 en tabletas para diluir en 500 mL de agua destilada

Diluyente isotónico [1/4] s/Normas UNE 34-818:1985, UNE 34 810:1984, UNE 34 814:1985, UNE 34 805-1983, UNE 34 821-1986, UNE 34 812:1985, UNE 34 815:1985

COMPOSICIÓNnueva-imagen-20

  • Cloruro sódico                   2,250 g
  • Cloruro potásico               0,105 g
  • Cloruro cálcico 6- H2O     0,120 g
  • Bicarbonato sódico          0,050 g

(Fórmula por litro)

pH final: 7,0 ± 0.2

 

PREPARACIÓN

  1. Disolver una tableta en 500 ml de agua bidestilada para obtener una solución isotónica según Ringer 1/4.
  2. Autoclavar a 121 ºC, 15 minutos.

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO

MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO, EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO.

Referencia:  DMT300

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

DESHIDRATADO: Tabletas, Blanco.

PREPARADO: Estéril, Incoloro.

CONTROL DE CRECIMIENTO tras sembrarlo en PCA 72 h a 37°C aproximadamente (o bien 5 días a temperatura ambiente 21-28°C aproximadamente):

  • Pseudomonas aeruginosa MKTA 9027, Correcto
  • Bacillus subtillis MKTA 6633, Correcto
  • Staphylococcus aureus MKTA 6538P, Correcto
  • Micrococcus luteus MKTA 10240, Correcto
  • E.coli MKTA 25922, Correcto

MODO DE EMPLEO E INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS

Añadir 1 ml de muestra a un tubo con 9ml de solución Ringer 1/4. Así se obtiene la primera dilución decimal. Agitar y añadir 1 ml de esta solución madre a otro tubo con 9 ml de Ringer. Así se obtiene la segunda dilución decimal. Repetir el proceso cuantas veces sea necesario.

El usuario final es el único responsable de la eliminación de los microorganismos según la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.

Rapidtest

Rapidtest detección rápida microbios: Tubos de caldo cromogénico para la detección rápida de contaminación bacteriana

El primer medio cromogénico del mundo fué inventado por MICROKIT en 1995, antes incluso que el famoso MugPlus Agar que ahora todo el mundo llama CCA por su aceptación en la ISO 9308-1 de E.coli-coliformes  en aguas. Y ese primer medio cromogénico es precisamente Rapidtest.

A mayor concentración bacteriana del producto analizado, más rápido vira el tubo de Rapidtest. Por ejemplo, una materia prima, agua, alimento, orina… con una carga microbiana de 10.000.000 ufc/g ó mL, virará a rojo en aproximadamente 2-3 horas, una con 100.000 ufc/g ó mL, virará a rojo en aproximadamente 7 horas, y una con 1.000 ufc/g ó mL, virará aproximadamente en 13 horas.

Si por ejemplo, nuestro producto no debe tener más de 1.000 ufc/g ó mL, con mirar la estufa a las 13 horas y ver si ha virado a rojo, tendremos una estimación de que el producto anda mal, mucho antes de esperar el recuento de colonias en placa.

El kit funciona mejor y más rápido cuanto más carga microbiana es aceptable en el producto (ej: aguas residuales, petróleo, taladrinas…)

Rapidtest detección rápida microbios

Vídeo sobre el Modo de empleo de Rapidtest:

https://www.youtube.com/watch?v=ri7B9aauoPc

Si desea más información sobre nuestros rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto. O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

LISTERIA CHROMOCYTOGENES AGAR

LISTERIA CHROMOCYTOGENES (Ottaviani and Agosti) MICROKIT AGAR

LISTERIA CHROMOCYTOGENES MICROKIT AGAR es el medio diseñado por Ottaviani and Agosti que especifica la Norma ISO 11290

https://www.microkit.es/fichas/LISTERIA-CROMOCYTOGENES-OTTAVIANI-AGOSTI-AGAR.pdf

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Cuando se hizo necesario el control de Listeria monocytogenes en alimentos, allá por los años 80 el siglo pasado, el medio de cultivo para detectarla se llamaba McBride Agar.

Este medio enseguida fué sustituido por los agares Oxford y Palcam.

Pero ninguno de los tres medios funcionaba lo suficientemente bien para buscar el microorganismo que años después se convirtió en el más buscado junto a E.coli y Salmonella.

En Microkit desarrollamos el Agar Microblue que era mucho más específico y tuvo un gran éxito en España, hasta el punto de que tuvimos que implantar turnos de producción para poder abastecer las necesidades de tantos usuarios.

Pero en 2004 dos italianos nos sorprendieron con un nuevo medio de cultivo que arrasó, al salir en una addenda de la Norma ISO 11290, y desde entonces sería el medio empleado por excelencia para detectar y enumerar este microorganismo.

Aunque actualmente todas las casas comerciales lo tienen (agar cromogénico para Listeria), con muy diferentes nombres según la casa comercial (el nuestro se llama Cromocytogenes), Microkit fué el primero en desarrollarlo en medio deshidratado + suplementos, para que los laboratorios dejaran de verse obligados a emplearlo en placas preparadas.

Si desea más información sobre nuestros productos, rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

https://www.microkit.es/monograficos/3-Listeria-monocytogenes-monograf–a.pdf