Archivo de la categoría: microbiologia de aguas

Optimización en los análisis microbiológicos de
AGUAS Y BEBIDAS.
Nuevos métodos de análisis microbiológicos utilizados exitosamente en los laboratorios líderes

LAURYL SULFATE TRYPTOSE BROTH

Caldo Lauril Sulfato Triptosa (LST Broth): El Estándar para Coliformes y E. coli

El Caldo Lauril Sulfato Triptosa (LST Broth) es el medio clásico de Caldo NMP (Número Más Probable) utilizado para la detección y enumeración de bacterias coliformes en muestras de agua, lácteos y alimentos. Este medio es un estándar reconocido y se aplica en metodologías oficiales como ISO 4831:1991 e ISO 7251:1993.

  • Innovación en el Recuento: Es importante destacar que el método LST tradicional, que utiliza campanas Durham, puede ser sustituido por medios más modernos como Colicult o Lauryl Broth MUG, que simplifican el proceso al eliminar la necesidad de las campanas Durham.
Izda: Sin crecimiento. Dcha: Coliformes (turbidez y gas en la campana Durham).

Izda: Sin crecimiento.
Dcha: Coliformes (turbidez y gas en la campana Durham).

 

1. Composición y Principio de Acción

El LST Broth proporciona un entorno nutricional rico que estimula el crecimiento de los coliformes, al mismo tiempo que inhibe la flora bacteriana acompañante.

Componente Cantidad por Litro (g) Función Principal
Triptosa 20.00 g Fuente primaria de Nitrógeno de alto valor biológico.
Lactosa 5.00 g Carbohidrato fermentable, indicador de coliformes.
Cloruro Sódico 5.00 g Mantiene el equilibrio osmótico.
Fosfato Di/Monopotásico 5.50 g Sistema tampón para mantener el pH.
Lauril Sulfato Sódico 0.10 g Agente selectivo que inhibe el crecimiento de la mayoría de las bacterias Gram positivas.

Fórmula por Litro

pH final: 6.8 +/- 0.2

2. Preparación y Control de Calidad

Preparación del Medio Deshidratado

  1. Disolución: Disuelva 35.7 g del medio deshidratado en 1 litro de agua destilada.
  2. Esterilización: Autoclave a 121 °C durante 15  minutos.
  • Código Deshidratado: DMT064.

Control de Calidad y Rendimiento

Nuestra fórmula deshidratada es un Polvo grueso, Tostado, que resulta en un medio Estéril, color Paja una vez preparado.

Cepa de Referencia Resultado de Crecimiento Detección de Gas (en Campana Durham)
Escherichia coli 25922 Turbidez en los 9 tubos 9 tubos con gas en1/3 de la campana)
Citrobacter freundii 43864 Turbidez en los 9 tubos 9 tubos con gas en 1/3 de la campana)
Salmonella abony 6017 Turbidez en los 9 tubos Sin producción de gas (Falso negativo de Coliforme)
Enterococcus faecalis 29212 Inhibido Sin turbidez ni gas

3. Protocolo de Siembra e Interpretación

Siembra

Utilice el método del Número Más Probable (NMP) para la enumeración.

  1. Inoculación Estándar: Inocule 1 mL de la muestra (y su serie de diluciones decimales) en los tubos.
  2. Inoculación de Alto Volumen: Para volúmenes de muestra grandes 10 mL, utilice tubos con el medio preparado a doble concentración.
  3. Incubación General (Coliformes): Incubar a 32 -35 °C aproximadamente, durante 24-48 horas.
  4. Incubación para E. coli (Coliformes Fecales): Incubar a 44  °C aproximadamente.

Interpretación de Resultados

La reacción positiva en el LST Broth se basa en la fermentación de la lactosa:

  • Resultado Positivo (Presencia de Coliformes): Se confirma por la turbidez del medio (crecimiento) acompañada de la aparición de gas retenido en la campana Durham en un periodo de 48 horas.
  • Resultado Negativo (Ausencia de Coliformes): Ausencia de turbidez o presencia de turbidez sin gas.

Recomendación de Confirmación:

Se recomienda la confirmación posterior de los tubos positivos en Caldo Bilis Verde Brillante (BGBL). Una alternativa más eficiente es sustituir directamente el LST Broth por el Lauryl Broth MUG o sembrar en un un medio Cromofluorogénico (Colicult) o agar cromogénico (MugPlus), que permiten la confirmación y enumeración simultánea de E. coli y demás coliformes

Presentación y Uso

  • Presentación: Tubos preparados con campana Durham 9 mL y Medio Deshidratado.
  • Uso: Medio ideal para la detección y enumeración de coliformes en el control de calidad de aguas, lácteos y otros productos alimentarios.

Almacenamiento: Para mantener la integridad del producto, agite el bote antes de usar y manténgalo bien cerrado en un lugar seco, fresco y oscuro.

El usuario es el único responsable de la eliminación de los microorganismos según la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.

Si desea más información y precios actualizados sobre nuestros MEDIO LAURYL SULFATE TRYPTOSE BROTH,  póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

https://www.microkit.es/fichas/LAURYL-SULFATE-TRYPTOSE-BROTH.pdf

LAURYL PRESENCE/ABSENCE E.COLI BROTH MUG

LAURYL E.COLI BROTH MUG es un caldo fluorogénico para recuento NMP o detección P/A de E.coli/Coliformes, precursor del Colicult MCC

Detección y enumeración de coliformes y E.coli en 24 horas (ISO 11866-1:2005)

COMPOSICIÓN

Triptosa 20,00 g
Hidrogenofosfato di-K 2,75 g

1: E.coli (gas y fluorescencia), 2: Coliformes incluido E.coli O157 (gas sin fluorescencia), 3: Sin inocular, 4: E.coli (gas y fluorescencia), 5: E.coli Cepa Lactosa negativo (sin gas pero con fluorescencia).

1: E.coli (gas y fluorescencia), 2: Coliformes incluido E.coli O157 (gas sin fluorescencia), 3: Sin inocular, 4: E.coli (gas y fluorescencia), 5: E.coli Cepa Lactosa negativo (sin gas pero con fluorescencia).

K dihidrogenofosfato 2,75 g
Cloruro sódico 5,00 g
Lactosa 5,00 g
Laurilsulfato sódico 0,10 g
Triptófano 1,00 g
MUG 0,10 g
(Fórmula por litro)
pH final: 6,8 ± 0,1

PREPARACIÓN

Disolver 36,5 g de medio en 1 litro de agua destilada. Autoclavar a 121 ºC durante 15 minutos.

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO.
MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO.

DESHIDRATADO CODIGO: DMT161

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

DESHIDRATADO: Polvo grueso, Beige                                                                                                          PREPARADO: Estéril, Beige

EVALUACIÓN DEL RENDIMIENTO ISO/TS 11133-2 24-48 h a 30-37 ºC, aplicando el método ISO 4831, o el indicado en el Manual MICROKIT actualizado:

  • Escherichia coli MKTA 25922, 9 tubos turbios forman gas en 1/3 de la campana Durham y son fluorescentes bajo luz de 366 nm, a 37 ºC y a 44 ºC..
  • Citrobacter freundii MKTA 43864, 9 tubos turbios forman gas en 1/3 de la campana Durham, no fluorescentes.
  • Salmonella abony MKTN 6017, 9 tubos turbios pero sin gas ni fluorescencia.
  • Enterococcus faecalis MKTA 29212, Inhibido, no hay turbidez ni gas.

Las colecciones TIPO prohiben el uso de su referencia por lo que indicamos la nuestra, directamente trazable a la colección TIPO.

PRESENTACIÓN: MEDIO DESHIDRATADO.
NOTA: El MUG añadido al caldo lauryl-sulfato permite la detección y recuento (NMP) rápidos de E.coli de forma confirmativa.

SIEMBRA

Inocular 9 tubos por el método del Número Más Probable (MPN) si se desea recuento. O bien 1 ml de muestra si se desea la detección cualitativa. También puede usarse una membrana de filtración enrollada si la muestra es líquida. O bien colocar la membrana sobre un cartón absorbente embebido en medio dentro de una placa Petri. Incubar a 30 37 ºC aproximadamente, durante 18 48 horas (desde 4 h. si se parte de muestra muy contaminada por E.coli). Incubar a 44°C aproximadamente para coliformes fecales.

INTERPRETACIÓN

La fermentación de lactosa (turbidez) con producción de gas (campana Durham) son indicadores de coliformes. Además, la fluorescencia con luz de 366 nm (linterna MICROKIT) es indicadora presuntiva de E.coli. Confirmar instantáneamente con la prueba del indol, añadiendo unas gotas de reactivo de Kovacs y esperando un viraje a rojo en superficie, confirmativo de E.coli. El 5% de las cepas de E .coli son anaerogénicas, por lo que si confirmamos también los tubos sin gas, pero fluorescentes, con la prueba del indol, este medio es más efectivo que otros más clásicos.

El usuario es el único responsable de la eliminación de los microorganismos según la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.

Si desea más información sobre nuestros MEDIO LAURYL PRESENCE/ABSENCE E.COLI BROTH MUG  , rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

https://www.microkit.es/fichas/LAURYL-BROTH-MUG.pdf

https://www.microkit.es/monograficos/11-E.coli-y-dem–s-coliformes-monograf–a.pdf

 

CIANAGAR (BASE)

cianobacterias, detección y recuento con Cianagar para detectar qué aguas no se pueden usar para consumo humano a causa de sus cianotoxinas

Aislamiento y recuento de cianobacterias potencialmente toxigénicas.

COMPOSICIÓN
Nueva imagen (14)  Nueva imagen (16) Nueva imagen (17)

Fosfato dipotásico 0,2500
Sulfato magnésico 0,5130
Cloruro amónico 0,0500
Cloruro cálcico 0,0580
Cloruro férrico 0,0030
Sales de boro 0,0018
Sales de cobalto 0,0001
Sales de manganeso 0,0730
Sales de molibdeno 0,0490
Sales de zinc 0,0003
Sales de cobre c.s.
Agar agar 12,000
(Fórmula en gr/l)
pH final: 7,0 ± 0,2

PREPARACIÓN

Disolver 13 gramos del polvo en 1litro de agua bidestilada.

Calentar agitando hasta ebullición hasta su completa homogeneización.

Autoclavar durante 121 ºC, 15 minutos.

Dejar enfriar a 50 ºC para añadir asépticamente, de forma imprescindible, 0,5 ml/litro del suplemento SCL001 esterilizado por filtración (usar jeringas con agujas y filtros luer de carcasa VPL089 y VHU237) y, de forma opcional, con 0,05-0,5 g/l de suplemento Cicloheximida (SKM200), para evitar el crecimiento de hongos y de microalgas eucariotas.

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO. MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO. AGITE EL BOTE ANTES DE USAR. DESHIDRATADO CODIGO: DMT224

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)
DESHIDRATADO: Polvo grueso, Marfil.
PREPARADO: Estéril, Incoloro, con precipitados.
CONTROL DE CRECIMIENTO Tª ambiente  (21-28°C aproximadamente), 1-3 semanas con fotoperiodo de aproximadamente 16 h luz/8 h  oscuridad, tras añadir suplemento SCN002:

  • Microcystis aeruginosa MKTCian-3, Bueno,  Pigmenta a los 7 21 días.
  • Anabaena flos-aquae MKTCian-4, Bueno, Pigmenta a los 7 21 días.

PRESENTACION: MEDIO DESHIDRATADO Y SUPLEMENTO CIANOFICEAS, PLAQUIS® HERMÉTICAS.

MODO DE EMPLEO E INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS

Para aguas de baño y aguas brutas, sembrar en superficie y repartir con asa de Digralsky (VCL155 estéril, VRR154 flameable) 0,1 ml de muestra recién agitada en una placa con 20 ml de medio; 0,1 ml de dilución 10-1 de la muestra recién agitada en otra placa; y 0,1 ml de dilución 10-2 de la muestra recién agitada en otra placa.

O bien una membrana filtrada si se trata de aguas de red o de bebida envasadas.

Incubar durante 3-21 días a temperatura primaveral (aproximadamente 21-28°C) a la luz indirecta del sol, con fotoperiodo de aproximadamente 16 horas de luz, 8 horas de oscuridad (si no es primavera o el laboratorio está en zona poco clara, ayudar con fluorescentes para acercarse lo más posible al fotoperiodo mencionado, clave de unos rápidos resultados).

Leer cada día, porque con el tiempo las colonias, sobre todo de especies filamentosas, se solaparán en forma de un fieltro en el que será imposible contar.

Que aparezcan 200 colonias en la placa con 0,1 ml del agua bruta es lo normal en los embalses españoles (2000 cel/ml).

Si aparecen más de 200 colonias en la siembra de la dilución 10-1, hay más de 20.000 células/ml, valor de alerta I a partir del cual la OMS recomienda precaución y seguimiento diario.

Si aparecen más de 100 colonias en la siembra de la dilución 10-2, hay más de 100.000 células/ml, valor de alerta II a partir del cual la OMS recomienda el NO uso del agua para baño, deportes acuáticos, ni tratamiento para depuración, por moderado riesgo de efectos adversos para la salud a causa de las terribles cianotoxinas hepatotóxicas, neuritóxicas e incluso letales que, en el mejor de los casos, provocan:

dermatitis, conjuntivitis, otitis, faringitis, dificultad para respirar, pneumonía, dolores de cabeza y musculares, fiebre y trastornos gastrointestinales, por su simple inhalación por vía aérea.

España es uno de los 9 primeros países del mundo en controlar legislativamente el tema.

El usuario es el único responsable de la eliminación de los microorganismos según la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.

NOTA:

Laboratorios MICROKIT dispone de unas claves para la identificación de las cianobacterias de las aguas, que ofrece gratuitamente a los clientes de este medio.

Si desea más información sobre nuestros MEDIO CIANAGAR (BASE) rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

https://www.microkit.es/monograficos/12-Cianobacterias-y-Microalgas-monograf–a.pdf

 

MICROKIT® ABC CHROMOSALM AGAR

AGAR CROMOGENICO SALMONELLA CHROMOSALM, APROBADO EN ISO 6579 COMO ABC AGAR. A DIFERENCIA DE LOS MAGENTA-GAL, ES MÁS SENSIBLE Y ESPECÍFICO

MICROKIT® ABC CHROMOSALM AGAR

Medio cromogénico para Salmonella (Investigación de la Beta-Galactosidasa )
(UNE 34-554:1983, UNE 34-818:1985, EN-12824:1997, UNE-EN ISO 6579:2003)

INTRODUCCIÓN

Presentamos el esperado medio cromogénico de MICROKIT para aislar colonias del género Salmonella de forma diferencial y específica. Totalmente diferente a los medios cromogénicos de Salmonella de otras marcas, que tienen cromógenos color rojizo mucho menos específicos.

Colonias verdes: Salmonella. Colonias negras: otras Enterobacterias, incluida Citrobacter. Colonias incoloras: Proteus

Colonias verdes: Salmonella. Colonias negras: otras Enterobacterias, incluida Citrobacter. Colonias incoloras: Proteus

Salmonella puede diferenciarse de otras Enterobacterias gracias a su mecanismo para producir alfa-galactosidasa en ausencia de beta-galactosidasa. MICROKIT® CHROMOSALM incorpora dos sustratos cromogénicos, CHE-Gal y X-alfa-gal, que permiten visualizar esta actividad en la misma placa.

Efectivamente, CHE-Gal es metabolizado por la beta-galactosidasa, produciendo colonias negras en presencia de hierro, como ocurre en la mayoría de Enterobacterias.

X-alfa-gal es hidrolizado por Salmonella produciendo colonias verde-azuladas, claramente distinguibles de las de otras Enterobacterias, negras y de las de otros microorganismos, incoloras. Las reacciones cromogénicas están muy concentradas en las colonias, dejando al medio de su color natural, crema.

El resto del medio está basado en la fórmula DCA de Hynes, utilizando desoxicolato sódico y citrato sódico como inhibidores de la flora acompañante.

TODO TIPO DE SALMONELLAS

Gracias a todo ello, MICROKIT® CHROMOSALM detecta las cepas enterotoxigénicas de Salmonella (S.enteritidis, S.typhimurium, S.paratyphi…) y también detecta S.typhi, en todo tipo de muestras alimentarias, clínicas, agua…

Muchos medios para aislamiento de Salmonella (incluidos muchos otros modernos medios cromogénicos con Magenta-Gal) son poco selectivos y/o diferenciales, provocando un inmenso gasto en confirmaciones de colonias sospechosas que resultan ser negativas (Proteus, Citrobacter…).

Con una asombrosa especificidad (99,7%), MICROKIT® CHROMOSALM reduce drásticamente la necesidad de confirmar falsos positivos, ahorrando trabajo y grandes costes en medios adicionales, galerías bioquímicas y pruebas inmunológicas:

¡Requiere un 95% menos confirmaciones de colonias que los medios tradicionales!. De este modo, su aparente elevado coste de “medio cromogénico” es sólo un espejismo.

Pero además, con frecuencia, en los medios habituales para Salmonella, los crecimientos abundantes de flora acompañante enmascaran a Salmonella cuando está presente en bajas proporciones.

La incidencia de falsos negativos en MICROKIT® CHROMOSALM es también ínfima, ya que la sensibilidad es del 90,5%, obteniéndose un 14% más positivos reales que en los demás medios.

En Enero de 2003, publicación en XIX Congreso SEM Santiago, hemos validado este medio en un estudio intercolaborativo para 250 muestras naturales de todo tipo de alimentos, aguas y manipuladores, con 6 laboratorios participantes…

…resultando la mayor sensibilidad (del 89,47%), especificidad (del 98,45 %) y eficiencia (del 96,40 %) de todos los medios de aislamiento selectivo de Salmonella, con gran diferencia respecto a todos ellos.

COMPOSICIÓN (BASE Desoxicolato Citrato Agar)

Salmonella abony

Salmonella abony

Extracto de buey 5,00 g/l
Peptonas 5,00 g/l
Citrato Sódico 8,50 g/l
Desoxicolato Sódico 5,00 g/l
Citrato Férrico Amónico 0,50 g/l
IPTG 0,03 g/l
Mezcla Cromogénica 0,38 g/l
Agar-agar 12,00 g/l
pH final 7’2 ± 0’2

.
MODO DE EMPLEO

Disolver 36’5 gramos de medio MICROKIT® CHROMOSALM en 1 litro de agua bidestilada a temperatura ambiente (ideal 21-25 ºC). Dejar embeber 10 minutos, calentar hasta ebullición, agitando hasta la total homogeneización.

Esterilizar manteniendo la ebullición durante 1 minuto. No autoclavar. No sobrecalentar. Los frascos sólo se pueden refundir una vez.

Enfriar rápidamente a 47 ºC y dispensar en placas Petri.

Una vez preparadas, las placas pueden mantenerse una semana a 2-8 ºC, en la oscuridad, precintadas para evitar su desecación.

Sembrar en estría las muestras clínicas procedentes de caldo Selenito, y las muestras alimentarias procedentes de los medios de pre-enriquecimiento más enriquecimiento habituales (ver ISO 6579 de Salmonella).

Incubar 18-24 horas a 37 ºC aproximadamente.

LECTURA DE RESULTADOS 24–48 h a aprox. 37°C

  • S. typhimurium MKTN 12190 Colonias verde-azuladas. Recuperación 96,3-200% con respecto a TSA estandarizado (El que cumple con recuperación superior al 92-125% con respecto a cepas cuantitativas internacionales, trazables a la cepa tipo).
  • Salmonella abony MKTN 6016 Colonias verde-azuladas (alguna cepa, si es beta-galactosidasa positiva, puede crecer con colonias negras o incoloras *). Tamaño 1-2 mm.
  • E.coli MKTA 25922: Colonias negras (o no crece)
  • Shigella flexneri MKTA 12022: Colonias incoloras (alguna cepa, si es beta-galactosidasa positiva, puede crecer con colonias negras). Tamaño 1-2 mm.
  • Citrobacter freundii MKTA 8090: Colonias negras.
  • Proteus mirabilis MKTA 14153: Colonias incoloras o verde claro con olor a pescado. Tamaño 0,5-2 mm.
  • Klebsiella oxytoca MKTA 13182: Colonias negras, mucosas. Tamaño 1-2,5 mm.
  • Pseudomonas aeruginosa MKTA 9027: Colonias incoloras o verdes fosforescentes. Tamaño 0,5-1 mm.

BIBLIOGRAFÍA

  1. Perry, J.D., Ford, M., Taylor, J., Jones, A., Freeman, R., Gould F.K. 1999. A New Chromogenic Agar for selective Isolation of Salmonella spp. J.Clin.Micro. 37: 766-768.
    *Salmonella are normally alpha-galactosidase positive (green colonies) but beta-galactosidase negative (not black colonies). In the original publication they tested 556 strains of S.enteriditis and all growth green, that is alpha gal positive. Out of the 1022 Salmonella tested after, only 2 were reported colourless: a Braenderup and a Saintpaul. So, it is possible to get an exception but they are very rare.
  2. Sanchis, J. y otros 11 autores, 1/2003, XIX Congreso SEM Santiago.: Validación del medio CHROMOSALM mediante un estudio intercolaborativo en los más diversos tipos de matrices.
  3. Sanchis, J. 09-2014: XIX Congreso Nacional de Microbiología de los Alimentos. Doble enriquecimiento simultáneo para detección de Salmonella. J. Sanchís. MICROKIT.

https://www.microkit.es/fichas/CROMOSALM-MICROKIT-AGAR.pdf

PRESENTACIÓN

MICROKIT® CHROMOSALM se comercializa en:
* Envases 100 g ( para unos 3 litros de medio final), ref: DMT500-. 500 g ref: DMT500
* Frascos hidratados y estériles, para fundir, de 100 ml, ref: RPL012.
* Tubos preparados 15 ml para elaborar una placa, ref: TPL402.
* Placas preparadas 25 ml (3 meses de caducidad), ref: PPLM55

AGAR CROMOGENICO SALMONELLA CHROMOSALM, APROBADO EN ISO 6579 COMO ABC AGAR. A DIFERENCIA DE LOS MAGENTA-GAL, ES MÁS SENSIBLE Y ESPECÍFICO

ATENCIÓN, MÉTODO RÁPIDO PARA SALMONELLA (SALMOQUICK):

Uniendo este avance a un enriquecimiento mixto acelerado (mezclando los medios del preenriquecimiento revitalizador y neutralizante:

225 ml Buffered Peptone Neutralizing Water de MICROKIT DMT011+

enriquecimiento selectivo 18 ml SS Broth concentrado [x5] de MICROKIT DMT067)

e incubándolos juntos en las 18 h previas;

permite la detección fiable de Salmonella en sólo 36 h desde la muestra inicial.

Por todo ello, este método acortado es la herramienta que estaban esperando todas las fábricas de productos alimenticios para poder liberar lotes gracias a la detección precoz de este patógeno, que les retrasaba hasta ahora el resultado global del laboratorio microbiológico a 3-5 días.

Sin necesidad de técnicas alternativas indirectas y costosas, que además requieren aparatos lectores especiales

https://www.microkit.es/pdf/Salmoquick-2016.pdf

El usuario es el único responsable de la eliminación de los microorganismos según la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.

Si desea más información sobre nuestros MEDIO MICROKIT® CHROMOSALM AGAR rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

https://www.microkit.es/monograficos/5-Salmonella-y-Shigella-monograf–a.pdf

 

AZIDE DEXTROSE BROTH

AZIDE DEXTROSE BROTH, CALDO GLUCOSADO CON AZIDA DE ROTHE. Presunción de Estreptococos-D fecales por NMP (APHA, OMS, UNE 77-076:1991)

AzideDextBroth COMPOSICIÓN

PolPeligroXipeptona 20,0 g
Glucosa 5,0 g
Cloruro sódico 5,0 g
Tampón fosfatos 5,4 g
Azida sódica 0,2 g
(Fórmula por litro)
pH final: 7,2 ± 0,2.

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO. AGITE EL BOTE ANTES DE USAR.

PREPARACIÓN

Disolver 35,6 gramos de medio en 1 litro de agua bidestilada. Si se desea, añadir 1 ml de solución de púrpura de bromocresol (1g en 67 ml de etanol). Repartir en tubos. Autoclavar a 121 ºC, durante 15 minutos. Dejar enfriar suavemente.
PRECAUCIÓN: La Azida Sódica es tóxica (y explosiva en contacto con plomo). Evitar el contacto con la piel y las mucosas (y no desechar por las cañerías).
DESHIDRATADO CODIGO: DMT014

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)
DESHIDRATADO: Polvo grueso, Beige
PREPARADO: Estéril, Ambar
CONTROL DE CRECIMIENTO 24-48 h a 37°C aproximadamente:
Escherichia coli MKTA 25922, Inhibido
Staphylococcus aureus MKTA 6538P, Inhibido
Enterococcus faecalis MKTA 29212, Correcto, turbidez (amarillo si se añadió púrpura de bromocresol)

PRESENTACIÓN:

MEDIO DESHIDRATADO
NOTA: Medio para la determinación presuntiva de los estreptococos fecales en aguas y alimentos (OMS, APHA)

SIEMBRA

Inocular 9 tubos (triplicado de tres concentraciones), según la técnica NMP. Incubar a 35-37 ºC aproximadamente, durante 24-48 horas.

INTERPRETACIÓN DEL AZIDE DEXTROSE BROTH

La turbidez (o viraje a amarillo si se añadió púrpura de Bromocresol) son presuntivos de estreptococos fecales. Confirmar con EVA Litsky Broth (DMT053). Ver también KAA Broth (DMT061).

El usuario es el único responsable de la eliminación de los microorganismos según la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.

Si desea más información sobre nuestro AZIDE DEXTROSE BROTH o cualquier otro producto no dude en contactar con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es, o en nuestro teléfono 91-897 46 16.

https://www.microkit.es/fichas/AZIDE-DEXTROSE-BROTH.pdf

 

ASPARAGINE PSEUDOMONAS BROTH

ASPARAGINE BROTH

Caldo APHA / CENAN para detección y enumeración presuntiva (NMP) de Pseudomonas aeruginosa en aguas embotelladas, refrescos y otras bebidas

DESCRIPCIÓN GENERAL

El ASPARAGINE BROTH es un medio de enriquecimiento selectivo y mineral utilizado para la detección y enumeración presuntiva (NMP) de Pseudomonas aeruginosa en aguas envasadas, bebidas no alcohólicas y otras matrices líquidas, conforme a los métodos recomendados por la APHA y el CENAN.

Su formulación está basada en la asparagina como única fuente de nitrógeno y glicerol como única fuente de carbono, lo que permite el desarrollo selectivo de bacterias no fermentadoras Gram negativas, siendo Pseudomonas aeruginosa la más característica.


COMPOSICIÓN (por litro)

Componente Cantidad
Fosfato monopotásico 10,0 g
Fosfato dipotásico 1,0 g
Asparagina 2,0 g
Sulfato magnésico 0,5 g

pH final: 7,0 ± 0,2


PREPARACIÓN DEL MEDIO

  1. Disolver 13,5 g de medio en 1 litro de agua bidestilada que contenga 8 ml de glicerol.

  2. Agitar hasta su completa disolución.

  3. Autoclavar a 121 ºC durante 15 minutos.

  4. El medio presenta un color paja-verdoso tras la esterilización.

Para preparar el caldo a doble concentración, disolver 27 g en 1 litro de agua bidestilada con 16 ml de glicerol.


CONDICIONES DE ALMACENAMIENTO

  • Mantener el bote bien cerrado, en lugar seco, fresco y oscuro.

  • Agitar antes de usar, para homogeneizar posibles gradientes de densidad.

  • Uso exclusivo en laboratorio.

Código: DMT346

Aspecto del producto:

  • Deshidratado: Polvo grueso, color crema.

  • Preparado: Medio estéril, color paja-verdoso.


CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

El control de calidad se realiza en nuestro laboratorio. Se recomienda repetirlo en el laboratorio del usuario siempre que cambien las condiciones (p. ej. más de 3 meses sin uso, tras desinfección del laboratorio o exposición a altas temperaturas).

Evaluación del rendimiento (24–48 h a 35–37 ºC):

Microorganismo Resultado esperado Observaciones
Pseudomonas aeruginosa MKTA 27853 Correcto Turbidez evidente
Pseudomonas aeruginosa MKTA 10145 Correcto Turbidez evidente
Staphylococcus aureus MKTA 6538P Inhibido No crecimiento

PRESENTACIÓN DISPONIBLE

  • Medio deshidratado (para preparación estándar o doble concentración).


PRINCIPIO Y APLICACIÓN

El ASPARAGINE BROTH permite el enriquecimiento selectivo de Pseudomonas aeruginosa al ser un medio estrictamente mineral.

  • La asparagina actúa como única fuente de nitrógeno.

  • La glicerina provee la única fuente de carbono disponible.

  • Los fosfatos estabilizan el pH y aportan la capacidad tampón.

  • El sulfato magnésico provee iones esenciales para el metabolismo bacteriano.

Solo las bacterias Gram negativas no fermentadoras son capaces de crecer en estas condiciones, lo que permite una detección presuntiva altamente específica.


MODO DE EMPLEO

  1. Preparar tubos o frascos con el medio estéril.

  2. Inocular series de 5 tubos por dilución (Método NMP):

    • 10 ml, 1 ml y 0,1 ml de muestra.

  3. Incubar a 35 ºC durante 24–48 horas.

  4. Interpretación presuntiva:

    • La aparición de turbidez (con o sin pigmentación fluorescente) indica posible presencia de Pseudomonas aeruginosa o de otros Gram negativos no fermentadores.


CONFIRMACIÓN DE RESULTADOS

  • Transferir una alícuota de cada tubo turbio a Caldo Acetamida (DMT003).

  • Incubar y añadir Reactivo Nessler (SDA002):

    • Viraje a color amarillo-pardo → Confirmación positiva de Pseudomonas aeruginosa.

Este procedimiento corresponde al protocolo APHA/CENAN para confirmación bioquímica de Pseudomonas aeruginosa mediante hidrólisis de asparagina.


INTERPRETACIÓN

Resultado en caldo Asparagina Confirmación en Acetamida Interpretación final
Turbidez + Amarillo-pardo Pseudomonas aeruginosa confirmada
Turbidez – Sin viraje Negativo o no Pseudomonas
Sin crecimiento — Negativo

APLICACIONES PRINCIPALES

  • Detección y enumeración NMP de Pseudomonas aeruginosa en:

    • Aguas embotelladas.

    • Refrescos y bebidas no alcohólicas.

    • Aguas de procesos industriales y farmacéuticos.


INFORMACIÓN ADICIONAL

Monográfico de Pseudomonas aeruginosa
Ficha técnica relacionada: Cetrimide CN Agar

Correo: microkit@microkit.es
Teléfono: 91 897 46 16

ALGAE AGAR (BASE)

AGAR ALGAS ALGAE AGAR

(BASE) es un medio de cultivo para aislamiento y recuento de microalgas (verdes, rojas, diatomeas…), aislamiento y recuento de algas microscópicas.

Gracias a este medio se pueden aislar colonias de microalgas de la misma forma que se consigue con las bacterias y los hongos, aunque el modo de incubar es completamente diferente

PREPARACIÓN

Disolver 14 gramos del polvo en 1litro de agua bidestilada. Calentar agitando hasta ebullición hasta su completa homogeneización. Autoclavar durante 121 ºC, 15 minutos. Dejar enfriar a 50 ºC para añadir asépticamente, de forma imprescindible, 5ml/litro del suplemento SCN002 y, si se desea la detección específica de cianofíceas-cianobacterias, además, 0,5 ml de suplemento SCL001. PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO. MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO AGITE EL BOTE ANTES DE USAR. DESHIDRATADO

Algae AgarCODIGO: DMT005

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…) DESHIDRATADO: Polvo grueso, Crema PREPARADO: Estéril, Blanco, con precipitados. CONTROL DE CRECIMIENTO Tª ambiente (21-28°C aproximadamente), 1-3 semanas con fotoperiodo de aproximadamente 16 h luz/8 h oscuridad, tras añadir suplemento SCN002: Chlorella vulgaris MKTClor-1, Bueno, Pigmenta verde-amarillento a los 7-21 días. Spirulina subsalsa MKTCian-2, Bueno, Pigmenta verde-azulado a los 7-21 días. PRESENTACION: MEDIO DESHIDRATADO Y SUPLEMENTOS (CLOROFICEAS Y CIANOFICEAS)

MODO DE EMPLEO E INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS

Algae Agar2Sembrar en superficie 0,1 ml de muestra o una membrana filtrada. Incubar durante 3-21 días a temperatura primaveral (aproximadamente 21-28°C) a la luz indirecta del sol, con fotoperiodo de aproximadamente 16 horas de luz, 8 horas de oscuridad (si no es primavera o el laboratorio está en zona poco clara, ayudar con fluorescentes para acercarse lo más posible al fotoperiodo mencionado, clave de más rápidos resultados). El usuario es el único responsable de la eliminación de los microorganismos según la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.
NOTA: Laboratorios MICROKIT dispone de unas claves para la identificación de las algas y cianobacterias de aguas continentales, que ofrece gratuitamente a sus clientes.

Algae Agar3Si desea más información sobre nuestro ALGAE AGAR (BASE) o cualquier otro producto, no dude en contactar con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es, o en nuestro teléfono 91-897 46 16.

https://www.microkit.es/fichas/ALGAE-AGAR.pdf

https://www.microkit.es/monograficos/12-Cianobacterias-y-Microalgas-monograf–a.pdf

 

 

 

AEROMONAS AGAR (BILE SALT IRGASAN BRILLIANT GREEN AGAR)

AEROMONAS BSI-BGA AGAR

(BILE SALT IRGASAN BRILLIANT GREEN AGAR) es un Agar selectivo para el aislamiento y la enumeración de Aeromonas spp. en alimentos, aguas,  ambiente y muestras clínicas.

PREPARACIÓN

Disolver 45,5 gramos en 1 litro de agua bidestilada. Agitar calentando hasta ebullición. No  autoclavar! No sobrecalentar! El color final del medio es púrpura. No refundir!

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO. AGITE EL BOTE ANTES DE USAR, PARA ASEGURAR LA HOMOGENEIZACIÓN DE LOS EVENTUALES GRADIENTES DE DENSIDAD DE LOS  OMPONENTES. MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO.

DESHIDRATADO CODIGO: DMT316

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª,  cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…).

DESHIDRATADO: Polvo grueso, púrpura PREPARADO: Estéril, púrpura
CONTROL DE CRECIMIENTO 18-24 horas a 37°C aproximadamente: Aeromonas hydrophila MKTA 49140, Excelente, colonias rosas traslúcidas de 0,5-3 mm. Pseudomonas aeruginosa MKTA 10662, Excelente, colonias rosas traslúcidas de 0,5-1 mm. Staphylococcus aureus MKT 6571, Inhibido. E.coli MKT 9001, Inhibido.

PRESENTACIÓN: MEDIO DESHIDRATADO.

NOTA:

Basando su selectividad en el verde brillante e irgasan, no inhibe las cepas de Aeromonas sensibles a la ampicilina que es empleada en otros medios.

SIEMBRA E INTERPRETACIÓN:

En muestras clínicas, sembrar en superficie, en estría para aislar colonias. En muestras ambientales de agua, sembrar la membrana filtrada evitando la aparición de burbujas o de pliegues.

Para muestras de alimentos incubar previamente 18-24 horas a 37°C en agua de peptona alcalina (DMT151) y sembrar después un inóculo enriquecido en estría. El uso de este enriquecimiento en la investigación de Aeromonas spp. aumenta su frecuencia de detección hasta en un 40% de los casos.

Incubar 18-24 horas a 37°C.

Examinar las colonias típicas de Aeromonas: rosas y transparentes de 0,5-3 mm de diámetro. Identificarlas mediante la oxidasa (KOT050) y el medio O/F (DMT095):

Aeromonas es oxidasa  positiva y muestra ambos metabolismos (oxidativo y fermentativo), mientras Pseudomonas, que también es oxidasa positivo, no tiene metabolismo fermentativo.

También pueden diferenciarse mediante TSI Agar (DMT127) porque Aeromonas crece con fondo ácido (amarillo) y pico alcalino (rojo) o inalterado (naranja), mientras Pseudomonas crece con fondo y pico inalterados (naranja).
Identificar la especie con galerías adecuadas.

NOTA:

Por lo general, las Aeromonas pueden crecer bien sobre los medios de cultivo convencionales en el laboratorio, tales como agar MacConkey, agar Hektoen, agar xilosa-lisina-desoxicolato (XLD), agar Salmonella-Shigella (SS) y agar nutriente sin adición de sales.

Sin embargo estos medios no son selectivos para ellas y los coliformes acompañantes enmascaran y dificultan su detección.

Diferentes medios de cultivo y métodos para el aislamiento de Aeromonas sp. de aguas se han propuesto: (APHA, 1989; Havelaar et al., 1987; Nishikawa y Kishi, 1987; Kersters et al., 1996), Agar Ampicilina Dextrina (ADA), Agar Sangre con Ampicilina (ASA), Agar CIN (Cefsulodina-Irgasan- Novobiocina, originalmenter creado para Yersinia enterocolitica).

Este ultimo permite el crecimiento de la mayoría de las especies y, en algunos estudios, consigue un incremento del 35% en las tasas de aislamiento.

OPTIMIZACIÓN

Sin embargo lo ideal para el estudio de las bacterias pertenecientes a la familia Aeromonadaceae es seguir los esquemas de Janda y col. y Satcher:

se inocula un tubo con agua peptonada alcalina a pH 8,4 (Ref: DMT151), con el fin de incrementar el desarrollo de especies de los géneros Aeromonas y Plesiomonas,

este caldo se incuba a 37°C durante 4 a 6 horas en condiciones de aerobiosis,

al cabo de ese tiempo se siembra en Agar Nutritivo, Agar Ampicilina-Almidón,

Agar Almidón-Sales Biliares-Verde Brillante (BBGS) según Nishikawa y Kishi

o mejor el presente agar Aeromonas Irgasan-Sales Biliares-Verde Brillante (Ref: DMT316), incubando a 37°C, en condiciones de aerobiosis durante 24 a 48 horas.

Se valoran las colonias obtenidas y se purifican las colonias de interés para su identificación bioquímica o molecular (Ref: SFI004+).

El usuario es el único responsable de la eliminación de los microorganismos según la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.

Si desea más información sobre nuestro AEROMONAS AGAR (BILE SALT IRGASAN BRILLIANT GREEN AGAR) no dude en contactar con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es, o en nuestro teléfono 91-897 46 16.

https://www.microkit.es/fichas/AEROMONAS-AGAR.pdf

CEPAS CUANTITATIVAS

CEPAS EN LENTÍCULAS CUANTITATIVAS Y ESTABLES, para sus controles de calidad de medios, sus validaciones, sus Challenge Test, etc.

Con las cepas cuantitativas en lentículas estabilizadas de MICROKIT, obtiene grandes ventajas:

1-Nomenclatura de la colección universal WDCM (ISO 11133-2)

2-Caducidad de 2 años desde fabricación en el 98% de cepas

3-Gama completa excepto las que se resisten a este formato (Legionella, Campylobacter y Vibrio)

4-Son tan estables, que viajan a temperatura ambiente y al exportarlas resisten retenciones aduaneras de hasta una semana a temperatura ambiente en países tropicales, sin afectar a su viabilidad ni a sus recuentos

5-La incertidumbre se dispara mucho mas en cepas fabricadas a concentración baja, que en las diluciones que pueda Ud. hacer de cepas a concentraciones más altas

6-Las concentraciones medias y altas permiten darle a una sola lentícula muchos más usos  (en el mismo día) que las concentraciones bajas. Y son las únicas válidas en ciertas validaciones y en el Challenge Test

7-Por cada tubo que nos compra con 10 lentículas de una cepa, le regalamos 2 adicionales para sus controles de recepción (ofrecemos docenas a precio de decenas)

8-El sobre Faraday de aluminio protege a las cepas de radiaciones durante el transporte y durante su almacenamiento

9-Hemos minimizado el tamaño de su presentación (la mitad que otras marcas) para que ahorre en el espacio más costoso del laboratorio: el congelador

10-Únicas lentículas de cepas cuantitativas fabricadas en España, con inmenso stock para entrega inmediata

Solicite el listado actualizado en microkit@microkit,es, ya que se cambia cada mes

Diapositiva1Diapositiva2Diapositiva3Diapositiva4Diapositiva5Si desea más información sobre nuestro LISTADO DE CEPAS no dude en contactar con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es, o por teléfono en nuestro telefono 91-897 46 16.

Consulte el folleto:

https://www.microkit.es/pdf/CEPAS-CUANTITATIVAS.pdf

Y el video:

https://youtu.be/4WJ8FQl6GIE

 

MICROKIT® P/A-LEGIONELLA

KIT P/A LEGIONELLA

LEGIONELLA revitalización P/A (Caldo GVPC ó BCYE Modif) para detección o revitalización en 1L de agua cuando Legionella está estresada.

GVPC Broth para aguas de refrigeración (con alta carga acompañante)

BCYE Broth para aguas de consumo humano (con baja carga acompañante)

Legionella pneumophila

causa la legionelosis o enfermedad del legionario y la fiebre de Pontiac, males tristemente extendidos POR TODO nuestro país a causa de torres de refrigeración y sistemas de acondicionamiento mal mantenidos.

Afectan a personas inmunodeprimidas y al turismo, sobre todo, llegando a producir varios muertos cada año.

Un país donde la principal riqueza es el turismo no puede permitirse esta fama por causa de la Legionella.

El método Presencia/Ausencia (P/A)

ha demostrado ser más fiable que el de Filtración de Membrana (MF) a causa del exceso de falsos negativos de este último método (Jacobs & Co, 1986, App.Env.Microbiol.Vol.51, 5).

Además es mucho más cómodo cuando no se requiere recuento, sino absoluta ausencia, como es el caso de Legionella pneumophila.

MICROKIT diseñó desde Noviembre de 1997 un kit P/A para enriquecimiento selectivo de Legionella en 500 ml de agua.

El medio era una modificación en caldo del BCYE+GVPC ISO 11731, lo que justificó su elevado coste.

La ausencia de Agar permite su utilización como Caldo de Enriquecimiento Selectivo Directo sin necesidad de filtración, ahorrando la manipulación y el riesgo de generación de aerosoles propios de la filtración de membrana.

Desde Noviembre/2001,  la adición de otro componente, diseñado por MICROKIT,  mejora el carácter diferencial del kit…

…que ya  no sólo es  un excelente screening en aguas de red sino también para aguas sucias, como son las aguas de las torres de refrigeración.

Y el rediseño de su concentración,  permite su uso en 1000 ml de agua.

Tras el imperativo legal R.D. 865/2003, que exige efectuar recuentos de Legionella pneumophila, el kit se readaptó para ser usado como caldo revitalizante;

para evitar multiplicación celular, se comprobó que aplicándolo durante 24 horas a 25°C y siguiendo después el método ISO  11731…

…no había multiplicación celular pero sí detección incluso para recuentos con lentículas de 40 ± 10 ufc/l.

Incubaciones a temperaturas mayores o menos prolongadas no dan buenos resultados.

Referencia: RPL330 Caja 20 test  (tubos + swabs) o bien TPL016 (sólo tubos) TPL017 (tubos de sólo BCYE broth para aguas con poca flora acompañante)

MODO DE EMPLEO:

Atemperar a 37°C y agitar vigorosamente el tubo para homogeneizar (puede estar sólido o cristalizado por su elevada concentración, y con el carbón granulado precipitado).

Añadir todo su contenido a un recipiente estéril con Tiosulfato (DCPJC1N) donde se hayan recolectado 1000 ml del agua de muestra.

Raspar fuertemente con una de las torundas estériles incluidas en el kit (se pueden pedir aparte como VSN251), el biofilm y las costras calcificadas u oxidadas…

…de las paredes del depósito, la alcachofa de la ducha o de los conductos donde el agua se estanca.

Se debe agitar la torunda con limos dentro del agua de muestra, de modo que parte de dichos limos pase de la torunda al líquido,

ya que L.pneumophila es bentónica y su presencia en el plancton es sólo su forma de dispersión.

Este paso es fundamental para evitar un gran número de resultados falsamente negativos.

Guardar la torunda en su  tubo, transportarla a temperatura ambiente, y guardarla a 4-8°C para posteriores envíos que eventualmente puedan realizarse

a laboratorios de referencia y/o para siembra directa de los limos diluidos en placa, según Norma ISO 11731.

Si se desea analizar una muestra mayor de agua, pueden filtrarse los litros deseados por  membranas estériles de 0,2µm (VAC022)

y añadir éstas a los 1000ml del agua en los que se realizará el test, o enrollarlas en el tubo del kit.

Agitar el conjunto, aplicarle un shock térmico de 30 minutos a 60 ºC (y/o bien acidificar la muestra 5 minutos a pH 2,2,

aunque no recomendamos esta ultima práctica por ser el mayor punto crítico de eliminación de Legionella pneumophila además de la flora acompañante) a fin eliminar la flora competitiva (falsos positivos,

demostrados sobre todo si la turbidez se da antes de 72 h), e incubar a (>25)-36-(<45) ºC, 1-5-(14) días.

El carbón granulado se depositará después de la inoculación, en el fondo del frasco, absorbiendo metabolitos, residuos de biocidas y otros inhibidores de Legionella pneumophila.

No volver a agitar.

preenriquecimiento revitalizador

Este Kit resulta incluso aún más útil que como P/A, como preenriquecimiento revitalizador y selectivo de muestras de agua:

Incubar en 1 litro de agua de muestra a 25°C durante 24 horas y seguir la técnica ISO 11731 (o bien, si no se desea recuento, sino enriquecimiento selectivo,

incubar 5 días a 37°C

y luego sembrar en estría una gota del fondo con carbón, en GVPC Agar, por agotamiento, a fin de evitar el solapamiento de colonias).

Los servicios intercompartivos SEILAGUA están demostrando que este método,

seguido de siembra en BCYE +GVPC Agar

recupera contundentemente más Legionella que el método ISO 11731 por filtración de membrana:

SENSIBILIDAD (escasez falsos-) por métodos según Servicio Intercomparativo de Aguas (SEILAGUA) AÑO 2002 (el P/A MICROKIT Legionella se usaba como enriquecimiento selectivo 5-14 días)

pa legionella2

El uso del Caldo Legionella GVPC de Laboratorios MICROKIT, antes usado como kit Presencia/Ausencia o como enriquecimiento selectivo,

está obteniendo unos resultados impresionantes como paso revitalizador, para seguir la ultima Normativa, Y PODER REALIZAR RECUENTOS.

Nadie puede reprobar el uso de este  kit como pre-enriquecimiento revitalizador 24 h a 25°C,  previo a la decantación y posterior filtración de membrana del litro,

ya que Legionella pneumophilla en 24 h se revitaliza contundentemente, máxime con el bombardeo de biocidas que se utiliza últimamente.

Los resultados comparativos cualitativos (cuantitativos no existen porque los participantes no los han dado) con y sin este nuevo protocolo de preenriquecimiento previo a la técnica ISO 11731,

en los informes del servicio intercomparativo SEILAGUA 2003-2004 (para los servicios en los que se inoculó Legionella pneumophila),

han sido aún más contundentes que en 2002 (en que se obtuvo una Sensibilidad 41,61% con MF y 77,50% con este kit usado como P/A o como enriquecimiento 5-14 días),

con estos resultados de revitalización de 24 horas:

palegionella 1

* Destacamos que el inóculo en ese servicio era de sólo 30-50 ufc/litro, cuando en los otros servicios siempre era de 103 –106 ufc/litro.

A pesar de estos resultados tan impresionantes…

…el número de usuarios del caldo GVPC de MICROKIT ha ido disminuyendo contundentemente incluso dentro de los participantes de SEILAGUA,

lo que demuestra el daño que la aplicación estricta de la legislación puede hacer en la calidad de los resultados de un análisis.

La posibilidad purista de que las células se repliquen en un preenriquecimiento de 24h a temperatura ambiente,

es mucho menos alarmante que el hecho de que el método MF esté dando tantos falsos negativos a nivel global por no aplicar revitalización previa.

El límite de detección en los laboratorios acreditados con el método ISO 11731, de cerca de hasta incluso 800 ufc/l, mejora contundentemente a, al menos, 40 ±10 ufc/l si intercalamos el caldo Legionella GVPC RPL330 durante 24 horas a 25°C.

 INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS:

      En el método P/A, toda muestra turbia se considera presuntamente positiva.

Las muestras sin turbidez se consideran negativas, por lo que este kit actúa como screening negativo, ahorrando la metódica clásica en todas las muestras sin Legionella.

En el nuevo diseño 11/2001, Legionella crece sin flóculos en el fondo y los falsos positivos, con el fondo floculado.

Así, el kit pasa a ser más sensible en aguas con alta carga de flora acompañante.

En caso de presunto positivo, lleve la muestra incubada a un laboratorio especializado, o bien:

Si incubó 5-14 días, sembrar 0,1 ml de la zona profunda con carbón, donde se concentra la Legionella,

tambien por ser microaerófila (ahorrando así falsos positivos de las Pseudomonas, Micrococos y Bacillus acompañantes capaces de crecer en GVPC),

sobre sendas placas de Legionella GVPC Selective Agar

(MICROKIT placas PPL030, plaquitas PPL908, frascos preparados RPL018 o deshidratado DMT007 + suplemento SBL604),

por extensión con asa de Digralsky (VRR154) o agotamiento.

Incubar en las mismas condiciones que el  kit, en atmósfera húmeda (un vaso de agua dentro de la estufa, al menos).

Las colonias de Legionella son, tras 2-15 días de incubación, pequeñas (1-2 mm), de color blanco-gris-azulado, brillantes, cristalinas, circulares, lisas, suavemente elevadas y con los bordes enteros.

Como control positivo puede utilizarse una cepa Legionella pneumophila.

Confirmar las colonias Oxidasa + (lento) (MICROKIT KOT050), Catalasa + (MICROKIT KMT299) (y, si se puede esperar, sin crecimiento enAgar Sangre u otro medio general: TSA, PCA, YEA, Nutrient Agar…),

con látex M-Legionella (KMB301) serogr.1-15 o más actualizado, con el stick (inmunocromatograma) M-Ident Virapid Legionella

Si incubó 24 horas a 25°C aprox., pase el litro de agua revitalizada, decantando el carbón, y calentando justo antes de filtrar, al método ISO 11731.

PRECAUCIONES:

Legionella no es patógeno de alto riesgo (=clase III), pero evite la inhalación de aerosoles durante su incubación, sobre todo por parte de personas inmunodeprimidas.

Esterilice el material y los kits utilizados, añadiéndoles abundantes carbón activo (MICROKIT SMT975) y lejía.

El usuario es el único responsable de la eliminación de los microorganismos según la legislación medioambiental vigente.

Autoclavar antes de desechar a la basura.

Material necesario no incluído:

Frascos 1000 ml estériles para la incubación. Pueden utilizarse frascos tomamuestras de 1 litro con Tiosulfato (DCPJC1N).

Cepas de control de Legionella pneumophila. Participación en servicios intercomparativos.

Para más información sobre nuestro KIT P/A LEGIONELLA, no dude en ponerse en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

Estos tubos preparados  suponen el mayor éxito de ventas de MICROKIT en países donde aun no se ha establecido un recuento máximo y sólo se busca su Presencia o Ausencia, como sucedía en España hace 20 años, donde ahora se emplea sólo como revitalizante de las Legionellas estresadas

https://www.microkit.es/fichas/LEGIONELLA-PA-KIT-CALDO.pdf

https://www.microkit.es/monograficos/9-Legionella-monograf–a.pdf

https://www.microkit.es/monograficos/21-Monograf–a-M–todos-alternativos-en-Control-microbiol–gico-de-aguas.pdf

No se pierda nuestro vídeo de los viales P/A:

https://youtu.be/6OfsD7zU_8U