Archivo de la categoría: microbiologia de aguas

Optimización en los análisis microbiológicos de
AGUAS Y BEBIDAS.
Nuevos métodos de análisis microbiológicos utilizados exitosamente en los laboratorios líderes

SPS (SULFITE POLIMIXIN SULFADIACIN) AGAR POLVO FÓRMULA MEJORADA

SPS AGAR (Sulfite Polimixin Sulfadiacin Agar)

Medio selectivo para la detección y recuento de Clostridium sulfito-reductores en alimentos y aguas
Métodos AOAC – ICMSF – UNE 13401 – UNE-EN 26461

 

Clostridios sulfito-reductores en SPS Agar

DESCRIPCIÓN GENERAL

El SPS Agar (Sulfite Polimixin Sulfadiacin Agar) es un medio selectivo diferencial utilizado para la detección, aislamiento y recuento de Clostridium sulfito-reductores, incluyendo Clostridium perfringens y Clostridium sporogenes, en alimentos, aguas y muestras ambientales.

Basado en las recomendaciones de la AOAC y del ICMSF, este medio permite la identificación visual de los clostridios por la reducción de sulfito a sulfuro, que reacciona con el citrato férrico produciendo colonias gris-negras características.

Es un medio de alta selectividad y sensibilidad, gracias a la acción combinada de Polimixina B y Sulfadiacina, que inhiben flora acompañante no clostridial.


COMPOSICIÓN (por litro)

Componente Cantidad
Peptona de caseína 15,00 g
Extracto de levadura 10,00 g
Citrato de hierro 0,80 g
Sulfito sódico 0,50 g
Polimixina B (sulfato) 0,01 g
Sulfadiacina sódica 0,12 g
Agar-agar 13,90 g

pH final: 7,0 ± 0,1


PREPARACIÓN DEL MEDIO

  1. Disolver 40 g de medio en 1 litro de agua destilada.

  2. Calentar agitando hasta ebullición para su completa disolución.

  3. Repartir en tubos o frascos.

  4. Autoclavar a 121 ºC durante 15 minutos, o preferiblemente a 116 ºC durante 15–30 minutos.

  5. Enfriar rápidamente en baño de agua fría.

Recomendación: El autoclavado a 116 ºC es preferible, ya que preserva la sensibilidad del medio.
Utilizar inmediatamente tras la preparación para evitar su oxigenación, que resulta letal para los clostridios.

Suplemento opcional: Para potenciar la formación de colonias negras, añadir 1 vial del suplemento estéril VMT136 por cada 100–1000 ml de medio estéril, hervido y enfriado a 45–50 ºC.

Nota: Las partículas negras que pueden aparecer al enfriar son normales y aumentan la sensibilidad del medio, conforme a las normas UNE 13401 y UNE-EN 26461.


CONDICIONES DE ALMACENAMIENTO

  • Uso exclusivo en laboratorio.

  • Mantener el bote bien cerrado, en lugar seco, fresco y oscuro.

Código: BCD901
Aspecto del producto:

  • Deshidratado: Polvo beige.

  • Preparado: Medio estéril, color crema-blanquecino.


CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

El control de calidad se realiza en nuestro laboratorio. Se recomienda repetirlo en el suyo si han cambiado las condiciones ambientales (tiempo prolongado sin uso, altas temperaturas, desinfección reciente, etc.).

Ensayo de rendimiento (24 h a 37 ºC en anaerobiosis)

Microorganismo Resultado esperado Recuento relativo (PCA estándar*) Observaciones
Clostridium sporogenes MKTA 11437 Colonias gris-negras 240–347 % Selectivo y diferencial.
Clostridium perfringens MKTA 13124 Colonias gris-negras 110–420 % Selectivo y diferencial.
Staphylococcus aureus MKTA 6538P Inhibido — Sin crecimiento.
Escherichia coli MKTA 25922 Inhibido — Sin crecimiento.

* PCA estandarizado con recuperación ≥92–125 % respecto a cepas trazables a la colección tipo.
Las variaciones detectadas entre lotes se deben principalmente a las cepas inoculadas, no al medio.


PRESENTACIÓN DISPONIBLE

  • Tubos preparados (parafinados de 9 ml o sin parafina de 18 ml)

  • Frascos parafinados de 50 ml (doble concentración)

  • Frascos de 100 ml y 250 ml

  • Medio deshidratado

  • Tubo y frasco de SPS Agar parafinado

SIEMBRA Y CONDICIONES DE INCUBACIÓN

Método recomendado: Siembra en profundidad (placas, tubos o frascos).

  1. Para detectar esporas, calentar la muestra a 98 ºC, enfriar a 75 ºC y añadir 1 ml al tubo o frasco con el medio fundido.

  2. Mezclar suavemente (sin agitar) para evitar oxigenación.

  3. Enfriar en posición vertical (en tubos parafinados, la parafina solidifica en la superficie, creando anaerobiosis).

  4. Para detección en aguas, usar frascos parafinados a doble concentración e inocular 20–50 ml de muestra.

  5. Incubar a 35–37 ºC durante 24 horas en anaerobiosis.

Alternativa práctica: Inocular 1 ml sobre un tubo hervido y enfriado a:

  • 75 ºC → detección de esporas

  • 45 ºC → detección de formas vegetativas

Cerrar, voltear sin agitar, incubar en vertical y contar directamente las colonias negras que crecen en anaerobiosis (excepto los 3–5 mm superiores, oxigenados).


INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS

  • Colonias negras: Clostridium sulfito-reductores confirmados.

  • Colonias blancas: Presuntivas (anaerobiosis insuficiente).

El ennegrecimiento del medio se debe a la reducción del sulfito sódico a sulfuro, que precipita con el citrato férrico, generando un color gris o negro característico.


GESTIÓN DE RESIDUOS

El usuario final es responsable de eliminar los microorganismos conforme a la legislación medioambiental vigente.
Autoclavar los materiales antes de su eliminación.


INFORMACIÓN ADICIONAL

Monográfico sobre Clostridium perfringens y clostridios sulfito-reductores (PDF)
Correo: microkit@microkit.es
Teléfono: 91 897 46 16

Esquema sobre el uso de los tubos de SPS Agar parafinados, realizado en 1989

SPS (SULFITE POLIMIXIN SULFADIACIN) AGAR GRANULADO

SPS (SULFITE POLIMIXIN SULFADIACIN) AGAR GRANULADO es el medio más empleado para recuento de clostridios sulfito-reductores en alimentos

Detección de clostridios sulfito‑reductores (AOAC,ICMSF)

SPS Agar granulado

COMPOSICIÓN

  • Peptona de caseina    15,00 g
  • Extracto de levadura 10,00 g
  • Citrato de Hierro       0,50 g
  • Sulfito sódico            0,50 g
  • Polimixina‑B sulfato 0,01 g
  • Sulfadiacina sódica    0,12 g
  • Agar‑agar                  13,90 g

(Fórmula por litro)

pH final: 7,0 ± 0,1

Clostridium perfringens

PREPARACIÓN

Disolver 40 g de medio en 1 litro de agua destilada. Calentar agitando hasta ebullición para su completa disolución.

Repartir en tubos o frascos. Autoclavar a 121 ºC durante 15 minutos, o mejor a 116 ºC durante 15-30 minutos. Enfriar rápidamente el medio en un baño de agua fría. El uso a [2] es más recomendable. Utilizar de inmediato a su preparación para evitar su oxigenación letal.

NOTA: Para mejorar el desarrollo de colonias negras de Clostridios, añada 1 vial del suplemento estéril VMT136 a cada 100-1000 ml de medio estéril,  hervido para eliminar la oxigenación y una vez enfriado a unos 45-50 ºC.

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO

MANTENER EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO.

DESHIDRATADO CODIGO: DMT116

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

DESHIDRATADO: Granulado, Beige

PREPARADO: Estéril, Crema-blanquecino

CONTROL DE CRECIMIENTO CUANTITATIVO 24 h a 37°C aproximadamente, en anaerobiosis:

  • Clostridium sporogenes MKTA 11437,  colonias gris-negras. Con respecto a PCA estandarizado*, recuento 240-347%, pero de forma más selectiva y diferencial.
  • Clostridium perfringens MKTA 13124,  colonias gris-negras. Con respecto a PCA estandarizado*, recuento 110-420%, pero de forma más selectiva y diferencial.
  • Staphylococcus aureus MKTA 6538P, Inhibido.
  • Escherichia coli MKTA 25922, Inhibido

* El que cumple con recuperación superior al 92-125% con respecto a cepas cuantitativas trazables a la cepa tipo. Incertidumbres detectadas entre todos los lotes a lo largo de un año (la mayoría de la incertidumbre se debe a la cepa y a la proporción de cepas acompañantes inoculadas, no al medio).

PRESENTACIÓN: TUBOS PREPARADOS (PARAFINADOS-9 ml O NO-18 ml), FRASCOS 50 ml A DOBLE CONCENTRACION PARAFINADOS, FRASCOS 100 y 250 ml, MEDIO DESHIDRATADO.

Selectivo para aislamiento/recuento de clostridios sulfito reductores. La reducción del sulfito ennegrece las colonias

SIEMBRA

En profundidad en placa con tubos y frascos fundidos, o en el propio tubo/frasco; incluso las membranas de MF, que se depositan entre 2 capas. Para esporas inocular tubos parafinados, calentando a unos 98 ºC, dejando enfriar a unos 75 ºC y añadiendo entonces 1 ml de muestra. Voltear sin agitar para mezclar con el medio y enfriar en posición vertical (para que la parafina solidifique en superficie en los tubos parafinados). Para buscar esporas en aguas, actuar igual pero con frascos parafinados a doble concentración y añadiendo 20‑50 ml de muestra. Incubar en anaerobiosis (los tubos, tubos parafinados y frascos parafinados no lo necesitan) a 35‑37 ºC aproximadamente, durante 24 horas.

INTERPRETACIÓN

Contar los puntos negros que aparezcan como clostridios sulfito‑reductores. Las colonias blancas son presuntivas si la anaerobiosis no es correcta.

El usuario final es el único responsable de la eliminación de los microorganismos según la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.        

Si desea más información sobre nuestros SPS (SULFITE POLIMIXIN SULFADIACIN) AGAR GRANULADO rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

https://www.microkit.es/monograficos/7-Clostridium-perfringens-y-Clostridios-sulfito-reductores-monograf–a.pdf

 

SLANETZ-BARTLEY TTC M-ENTEROCOCCUS AGAR

SLANETZ-BARTLEY TTC M-ENTEROCOCCUS AGAR es el medio de cultivo ISO 7899 para recuento de enterococos fecales en aguas

Selección de enterococos por filtración de membrana (ISO 7899-2:2001, UNE 77-076:1991, BOE 45 de 21/2/2003 de aguas de consumo humano, BOE 259 de 29/X/2003 de aguas de bebida envasadas)

Enterococcus faecalis, rosa-púrpura según la cepa

COMPOSICIÓN

  •  Triptona                        20,00 g
  • Extracto de levadura              5,00 g
  • Glucosa                         2,00 g
  • Fosfato dipotásico        4,00 g
  • Azida sódica                 0,40 g
  • TTC                              0,10 g
  • Agar-agar                      12,00 g

(Fórmula por litro)

pH final: 7,2 ± 0,2

 PREPARACIÓN

Disolver 43.5 g de medio en 1 litro de agua bidestilada. Calentar, agitando, hasta ebullición para su total homogeneización. Evitar el excesivo calentamiento y enfriar rápidamente. No autoclavar. El color final del medio es incoloro-paja. El medio rojo indica que ha sufrido exceso de calor..

 PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO

AGITE EL BOTE ANTES DE USAR

MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN

LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO

DESHIDRATADO CODIGO: DMT115

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

 Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

DESHIDRATADO: Polvo fino, Amarillo      PREPARADO: Estéril, Rosado

CONTROL DE CRECIMIENTO CUANTITATIVO 48 h a 37°C aprox.:

  • E.coli MKTA 25922, Inhibido.
  • Bacillus subtilis MKTA 6633, Inhibido.
  • Enterococcus durans MKTA 10541, Bueno, Colonias rosas-granates, pequeñas. Con respecto a PCA estandarizado*, recuento 133%, pero de forma selectiva.
  • Enterococcus faecalis MKTA 29212, Bueno, Colonias rosas-granates, pequeñas. Con respecto a PCA estandarizado*, recuento 107-270%, pero de forma selectiva.

* El que cumple con recuperación superior al 92-125% con respecto a cepas cuantitativas trazables a la cepa tipo. Incertidumbres detectadas entre todos los lotes a lo largo de un año (la mayoría de la incertidumbre se debe a la cepa y a la proporción de cepas acompañantes inoculadas, no al medio).

 PRESENTACIÓN: MEDIO DESHIDRATADO. NUEVO: PLAQUIS ® PREPARADAS HERMÉTICAS PARA M.F.: Ref. PPL909

En caldo preparado: Viales 2 ml, Viales Pinchables 100 ml.

Medio selectivo indicado para aislamiento y recuento de estreptococos fecales en agua y en alimentos, con la técnica de filtración de membrana o con el método de siembra en superficie.

 SIEMBRA

Sembrar en superficie 0.1 ml de muestra y extender con asa de Digralsky,  o bien la membrana filtrada. Incubar a 36 ºC aproximadamente, 44  horas (para mejor  selectividad, a 44-45 ºC aproximadamente,  preferiblemente tras 4h a 36°C aproximadamente).

 INTERPRETACIÓN

 Las colonias rojas, rosas o castañas, elevadas y diminutas se consideran presuntivas de estreptococos fecales del subgrupo de los Enterococos. El color rojizo es menos intenso cuanto más viejo es el medio. Deben confirmarse resembrándolas en Agar Bilis Esculina Azida (MICROKIT DMT160), donde crecen con halo tostado-negro. Resembrando la membrana, se confirma el 100% de las colonias. Tambien es diferencial la prueba rápida del PYR (KWD103).

El usuario final es el único responsable de la eliminación de los microorganismos según la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.

Si desea más información sobre nuestros SLANETZ-BARTLEY TTC M-ENTEROCOCCUS AGAR rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

https://www.microkit.es/monograficos/16-Enterococos-fecales-monograf–a.pdf

 

M-ENTEROCOCCUS SLANETZ-BARTLEY TTC BROTH

SB Enterococos SLANETZ-BARTLEY TTC BROTH es la versión líquida del SB Agar para emplear en placas con cartón absorbente

Medio preparado para recuento de Enterococos en aguas, por la técnica de Filtración de Membrana (MF)

Referencia: RPL046 (Vial pinchable 100 ml) , FPL501 (Vial 2 ml). Proteger de la luz! No existe medio deshidratado en versión caldo. Tambien disponible Slanetz-Bartley M-Enterococcus Agar en polvo, DMT115.

INTRODUCCIÓN

La nueva Directiva de las Comunidades Europeas para control de las aguas de consumo humano (3/XI/1998), establece que debe controlarse sistemáticamente la ausencia de Enterococos en todo tipo de agua de consumo humano (muestras de 100 ml en aguas de red y en aguas que intervienen en la fabricación de alimentos, y de 250 ml en aguas envasadas).

Este parámetro es indicador de contaminación fecal más lejana en el tiempo (o en la distancia desde el foco emisor) que el parámetro E.coli, incapaz éste de sobrevivir en el agua mucho más de 24 horas. Por ello resulta de gran importancia la adición de este parámetro en el análisis rutinario de todo tipo de aguas de consumo humano.

El medio KAA,

que MICROKIT siempre ha promocionado por dar resultados en sólo 24 horas, es excelente para detectar toda clase de Estreptococos fecales-grupo D de Lancefield (los Enterococos, de origen humano, y los estreptococos fecales strictu sensu, de origen bovino y equino) por lo que resulta más rigurosa la comprobación de su ausencia que la de Enterococos y, por tanto, a nadie debe extrañar que muchos laboratorios continúen utilizándolo.

Sin embargo, los laboratorios oficiales y otros muchos vendrán obligados a utilizar medios específicos de Enterococos. Por ello, Laboratorios MICROKIT ha diseñado el medio de Slanetz-Bartley, sumamente selectivo, en caldo preparado con TTC incluido, para Filtración de Membrana con cartón absorbente (o, quien lo prefiera, para añadirle 15 g/l de agar-agar DMT001, fundido y enfriado a 50°C en el momento de dispensación en placas), a fin de que todo laboratorio pueda utilizar este medio, ya preparado, sin necesidad de preparar y fundir a 98°C el clásico Slanetz-Bartley Agar. Se ha elegido este medio, también llamado M-Enterococcus, en vez del KF por haber demostrado en numerosas publicaciones que da lugar a muchos menos falsos positivos, incluso en agua de mar.

MODO DE EMPLEO E INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS

1-Por cada muestra que vaya a analizar, tome con una jeringa estéril 2 ml de M-Enterococcus Slanetz-Bartley TTC Broth del vial pinchable RPL046 o del vial 2 ml FPL501.

2-Añada 2 ml a cada placa estéril con cartón absorbente VDA001.

3-Deposite encima la membrana filtrante VAC073 de 47 mm de diámetro y 0,45 µm de poro por la que habrá filtrado 100 (ó 250) ml de muestra de agua (aparato de filtración VFR012).

4- Preincubar 4 horas a 37°C aproximadamente y, acto seguido, incubar 44 horas a 44-45°C aproximadamente.

5- Si aparece alguna colonia diminuta, de color rojo, rosa o pardo-rojizo, se diagnostica como procedente de Enterococos, por lo que el agua es susceptible de contener patógenos de procedencia fecal. El color rojizo de las colonias es menos intenso cuanto más viejo es el medio.

6- Para una confirmación específica más precisa utilice las galerías enzimáticas (4 h) para estreptococos KBH254, y/o bien el kit PYR (KWD103), que diferencia Enterococos del resto de Estreptococos Fecales.

Control de calidad positivo: CRIOSTRAIN Enterococcus faecalis MKTA 29212

VER TAMBIEN MUG PLUS E.COLI CHROMOGENIC MEDIUM Y M-CP CLOSTRIDIUM PERFRINGENS MEDIUM.

El usuario final es el único responsable de la eliminación de los microorganismos según la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.

Si desea más información sobre nuestros M-ENTEROCOCCUS SLANETZ-BARTLEY TTC BROTH rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

https://www.microkit.es/monograficos/16-Enterococos-fecales-monograf–a.pdf

 

SLANETZ-BARTLEY AGAR BASE (SIN TTC)

SB Agar SLANETZ-BARTLEY AGAR (BASE SIN TTC) para detección y recuento de enterococos fecales en aguas según ISO 7899

Selección de enterococos por filtración de membrana (ISO 7899-2:2001, UNE 77-076:1991, BOE 45 de 21/2/2003 de aguas de consumo humano, BOE 259 de 29/X/2003 de aguas de bebida envasadas)

 

Enterococcus faecalis, rosa-púrpura según la cepa, tras añadir TTC

COMPOSICIÓN

  •  Triptosa                        20,00 g
  • Extracto de levadura              5,00 g
  • Glucosa                         2,00 g
  • Hidrog.Fosfato di-K               4,00 g
  • Azida sódica (Na N3)              0,40 g
  • Agar-agar                      12,00 g

(Fórmula por litro)

pH final: 7,2 ± 0,2

 PREPARACIÓN

Disolver 43.5 g de medio en 1 litro de agua bidestilada. Calentar, agitando, hasta ebullición para su total homogeneización y dejar 5 minutos más en agua hirviendo. Evitar el excesivo calentamiento y enfriar rápidamente. No autoclavar. Una vez enfriado a 50-60°C, añadir 10 ml de una solución de TTC al 1% (MICROKIT SDA018). El color final del medio es incoloro-paja. Este medio sustituye al Slanetz-Bartley completo, sin tener que preocuparse de los eventuales sobrecalentamientos que vuelven de color rosa a éste.

 PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO

AGITE EL BOTE ANTES DE USAR

MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO

DESHIDRATADO CODIGO: DMT117

 CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

DESHIDRATADO: Polvo fino, Amarillo      PREPARADO: Estéril, Crema

CONTROL DE CRECIMIENTO CUANTITATIVO 48 h a 37°C aprox.:

  • E.coli MKTA 25922, Inhibido.
  • Bacillus subtilis MKTA 6633, Inhibido.
  • Enterococcus durans MKTA 10541, Bueno, Colonias rosas-granates, pequeñas. Con respecto a TSA estandarizado*, recuento 120-133%, pero de forma selectiva.
  • Enterococcus faecalis MKTA 29212, Bueno, Colonias rosas-granates, pequeñas. Con respecto a PCA estandarizado*, recuento 111-270%, pero de forma selectiva.

* El que cumple con recuperación superior al 92-125% con respecto a cepas cuantitativas trazables a la cepa tipo. Incertidumbres detectadas entre todos los lotes a lo largo de un año (la mayoría de la incertidumbre se debe a la cepa y a la proporción de cepas acompañantes inoculadas, no al medio).

 PRESENTACIÓN: MEDIO DESHIDRATADO. NUEVO: PLAQUIS ® PREPARADAS HERMÉTICAS PARA M.F. con TTC: Ref. PPL909

En caldo preparado con TTC: Viales 2 ml, Viales Pinchables 100 ml.

Medio selectivo indicado para aislamiento y recuento de estreptococos fecales en agua y en alimentos, con la técnica de filtración de membrana o con el método de siembra en superficie.

 SIEMBRA

Sembrar en superficie 0.1 ml de muestra y extender con asa de Digralsky,  o bien la membrana filtrada. Incubar a 36 ºC aproximadamente, 44  horas (para mejor  selectividad, a 44-45 ºC aproximadamente,  preferiblemente tras 4h a 36°C aproximadamente).

 INTERPRETACIÓN

 Las colonias rojas, rosas o castañas, elevadas y diminutas se consideran presuntivas de estreptococos fecales del subgrupo de los Enterococos. El color rojizo es menos intenso cuanto más viejo es el medio. Deben confirmarse resembrándolas en Agar Bilis Esculina Azida (MICROKIT DMT160), donde crecen con halo tostado-negro en sólo 2 horas adicionales. Resembrando la membrana, se confirma el 100% de las colonias. Tambien es diferencial la prueba rápida del PYR (KWD103).

El usuario final es el único responsable de la eliminación de los microorganismos según la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.

Si desea más información sobre nuestros SLANETZ-BARTLEY AGAR BASE (SIN TTC) rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

https://www.microkit.es/monograficos/16-Enterococos-fecales-monograf–a.pdf

 

SHIGELLA BROTH

detección Shigella alimentos aguas según Norma ISO 21567, caldo de enriquecimiento previo al aislamiento en placa

Caldo para enriquecimiento selectivo de Shigella spp. según ISO 21567:2004

 COMPOSICIÓN

  • Digerido enzimático de caseína                 20,00 g
  • Potasio hidrógeno fosfato (anhidro)          2,00 g
  • Potasio dihidrógeno fosfato (anhidro        2,00 g
  • Cloruro Sódico                                5,00 g
  • Dextrosa                                          1,00 g
  • Suplemento: Tween 80                     1,5 ml

(Fórmula por litro)

pH final: 7,0 ± 0,2

PREPARACIÓN

Disolver 30 g en 1 l de agua bidestilada, agitando hasta su disolución completa. Se añade el Tween 80, atemperado para evitar la formación de grumos precipitados. Ajustar el pH. Autoclavar 15 minutos  a 121°C. Una vez enfriado, se añaden asépticamente  0,5 ml de solución de Novobiocina estéril BCX150 (100 mg de novobiocina en 100 ml de agua) a cada litro de caldo Shigella.

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO.

MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO. AGITE EL BOTE ANTES DE USAR.

DESHIDRATADO CODIGO: DMT173

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

DESHIDRATADO: Polvo grueso, rosado.   PREPARADO: Estéril, rojo intenso con precipitado filamentoso que NO ES contaminación.

CONTROL DE CRECIMIENTO 16-20 h a 41,5 °C aproximadamente:

  • Shigella flexneri MKTA 12022, Correcto.
  • Salmonella abony MKTN 6017: Correcto.
  • Escherichia coli MKTA 25922: Correcto.
  • Pseudomonas aeruginosa MKTA 9027, Inhibido.
  • Enterococcus faecalis MKTA 29212, Inhibido.

PRESENTACIÓN: MEDIO DESHIDRATADO.

NOTA: Medio para el enriquecimiento selectivo de Shigella según Norma ISO 21567:2004; presenta la ventaja, sobre el Caldo Selenito-Cystina, de no ser tóxico; y sobre el Caldo Rappaport Vassiliadis, de permitir el crecimiento de las Shigella. Casi toda la flora Gram positiva queda inhibida y gran parte de la flora Gram negativa también es inhibida (excepto Salmonella, algunas cepas de E. coli, y algunas del grupo KES -Klebsiella, Enterobacter y Serratia-). Estas cepas quedarán luego descartadas en los agares selectivos XLD, SS, Hektoen y Mac Conkey y con las pruebas inmunológicas (KWD000) y bioquímicas. En los servicios intercompartivos SEILALIMENTOS de los ultimos 7 años, otro medio demuestra ser el que mejor recupera las diferentes cepas de Salmonella y de Shigella en todo tipo de matrices (lácteos, cárnicos, pescados, vegetales…), el Salmonella-Shigella MICROKIT Broth.

 SIEMBRA

Inocular x gramos o ml de medio en 9x ml de caldo Shigella con Novobiocina.  Homogeneizar en digestor. Ajustar asépticamente el pH a 7,0 ±0,2 si es necesario. Incubar 16-20 horas a 41,5 ºC aproximadamente, en ANAEROBIOSIS, con los tapones sin apretar para que entre la atmósfera anaeróbica.

 INTERPRETACIÓN

Llevar a los medios sólidos selectivos XLD Agar y Hektoen (tambien son válidos SS-Agar y Mac Conkey), sembrando en superficie por agotamiento.  Identificar las colonias sospechosas mediante pruebas bioquímicas (KBH260) e inmunológicas (KWD000).

https://www.microkit.es/fichas/SHIGELLA-BROTH.pdf

detección Shigella alimentos aguas

Si prefiere enriquecer el tandem Salmonella-Shigella, su medio de elección es el Salmonella-Shigella Broth https://www.microkit.es/fichas/SALMONELLA-SHIGELLA-MICROKIT-BROTH.pdf, diseñado por MICROKIT para evitar los falsos negativos propios del Rappaport, del Selenito Cystina o del Tetrationato

El usuario final es el único responsable de la destrucción de los organismos que se hayan desarrollado, según la legislación medioambiental vigente.

Si desea más información sobre nuestros SHIGELLA BROTH rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

https://www.microkit.es/monograficos/5-Salmonella-y-Shigella-monograf–a.pdf

 

SELENITE CYSTINE BROTH

SELENITO CISTINA CALDO (SELENITE CYSTINE BROTH ) es un caldo clásico para el enriquecimiento selectivo de Salmonella

 Enriquecimiento selectivo de Salmonella‑Shigella (USP,FIL,FDA, AOAC,APHA, UNE-EN 12824, UNE 34-818:1985, UNE-EN ISO 6579: 1997, ISO 6340:1995, ISO 6785:2001)

Selenite Cystine Broth, granulado para evitar ser respirado por el analista.

COMPOSICIÓN

  • Peptona pancreática caseina 5,00 g
  • Lactosa                                 4,00 g
  • Fosfato disódico                   10,00 g
  • Selenito sódico                      4,00 g
  • Cistina                                  0,01 g

(Fórmula por litro)

pH final: 7,0 ± 0,2

PRECAUCIÓN: TÓXICOALMACENAR A TEMPERATURA INFERIOR A 15 ºC

 

PREPARACIÓN

Disolver 23 g de medio en 1 litro de agua bidestilada. Esterilizar hirviendo, o mejor por filtración. El color final del medio es paja claro. No sobrecalentar.  Mantener a menos de 15 ºC en oscuridad. En caso contrario aparecerá una coloración  rosada en el medio que no afecta de forma  importante a su calidad. Lo que no es aceptable es un precipitado rojo, debido a un eventual sobrecalentamiento del medio.

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO.

MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO.

DESHIDRATADO CODIGO: DMT111

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

DESHIDRATADO: Granulado, Blanco,

PREPARADO: Estéril, Ambar precipitado

EVALUACIÓN DEL RENDIMIENTO ISO/TS 11133-2, 24-48 h a 37-41,5 ºC (Aplicando el método UNE EN ISO 6579: 2003 mejorada, o el indicado en el Manual MICROKIT actualizado):

  • Salmonella abony MKTN 6017 con acompañantes (E.coli MKTA 25922 y Ps.aeruginosa MKTA 9027), Crece bien, a las 24 h el medio se vuelve lechoso. Tras estriar una alícuota en XLD e incubar, aparecen más de 10 colonias típicas.
  • Escherichia coli MKTA 25922, parcialmente inhibido: tras estriar en TSA e incubar, aparecen menos de 100 colonías.
  • Enterococcus faecalis MKTA 29212, Parcialmente inhibido: tras estriar en TSA e incubar, aparecen menos de 100 colonías..
  • Bacillus subtilis MKTA 6633, Parcialmente inhibido.
  • Pseudomonas aeruginosa MKTA 9027, Escaso.
  • Shigella flexnery MKTA 12022, Escaso.

Las colecciones TIPO prohiben el uso de su referencia por lo que indicamos la nuestra, directamente trazable a la colección TIPO.

PRECAUCIÓN: Producto muy tóxico.

PRESENTACIÓN: MEDIO DESHIDRATADO GRANULADO (minimiza respirar el polvo tóxico).

Medio de enriquecimiento para la detección de Salmonella. El selenito inhibe el desarrollo de los microorganismos que no son Salmonella, en especial los coliformes y enterococos (U.S.P.).

NOTA: Utilizar en paralelo al caldo Rappaport para obtener resultados selectivos óptimos, sin falsos positivos (típicos del Selenito)  ni falsos negativos (posibles en el Rappaport). La nueva versión 2000 de la Norma ISO 6579 descarta el uso de Selenito y lo sustituye por Tetrationato Mueller Kauffman (DMT086).

SIEMBRA

Añadir 1‑10 ml de pre‑enriquecimiento ó de muestra a 9‑90 ml de medio. Incubar a 35 ºC ó 37 ºC aproximadamente, durante 24 h y 24 h suplementarias. Sembrar en agares selectivos (SS Agar DMT107, XLD Agar DMT142). Muchos autores consideran que añadiendo sólo 1 ml se obtienen mejores resultados (menos falsos positivos).

El usuario final es el único responsable de la destrucción de los organismos que se hayan desarrollado, según la legislación medioambiental vigente.

Si desea más información sobre nuestros SELENITE CYSTINE BROTH rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

SALMONELLA-SHIGELLA BROTH (SS BROTH)

 

SS Broth (Salmonella-Shigella Broth): enriquecimiento eficiente para la detección de Salmonella y Shigella

El SS Broth (Salmonella-Shigella Broth) es la versión líquida del clásico SS Agar recogido en la norma UNE-EN ISO 6579:2003, utilizada para la detección de Salmonella y Shigella en alimentos, aguas y otras matrices biológicas.

Este medio de enriquecimiento selectivo permite recuperar de forma óptima ambas bacterias, incluso cuando se encuentran en bajo número o compiten con flora acompañante abundante.

Ficha técnica oficial del SS Broth (MICROKIT)

De izquierda a derecha: SS Broth sin inocular, E. coli, Shigella (turbio), y Salmonella (negro).

 

Ventajas principales del SS Broth MICROKIT

  • Enriquece eficazmente tanto Salmonella como Shigella.
  • Compatible con todo tipo de muestras: lácteos, carnes, pescados, vegetales, aguas, etc.
  • No tóxico, a diferencia del Caldo Selenito-Cistina.
  • Permite crecimiento de Shigella, a diferencia del Caldo Rappaport-Vassiliadis.
  • Inhibe la mayoría de bacterias Gram positivas y Gram negativas competidoras, mejorando la selectividad.
  • Medio confiable, reproducible y rápido, validado en los servicios intercomparativos SEILALIMENTOS de los últimos 7 años.

En dichas evaluaciones, el SS Broth MICROKIT se ha mostrado como el medio más eficaz para la recuperación de cepas de Salmonella y Shigella en todo tipo de matrices alimentarias.


Composición y características

  • Polvo deshidratado de color rosado
  • pH final: equilibrado para máxima selectividad
  • Contiene sales biliares (manejar con precaución)

El medio preparado presenta un color rojo intenso, con posible precipitado filamentoso o grumoso, que no indica contaminación: es una característica normal del producto.


Preparación del medio

  1. Disolver 48 g de SS Broth en 1 litro de agua bidestilada.
  2. Calentar hasta ebullición (1 minuto a 100 °C).
  3. No autoclavar. Se recomienda esterilizar por filtración para preservar la selectividad.
  4. El aspecto filamentoso o grumoso del medio preparado es normal.

⚠️ Uso exclusivo en laboratorio.
Mantener el bote bien cerrado, en lugar seco, fresco y oscuro.
Agitar antes de usar para homogeneizar los componentes.
Precaución: contiene sales biliares.


Control de calidad

El control se realiza en los laboratorios de MICROKIT.
Se recomienda repetirlo en su propio laboratorio cuando:

  • Haya pasado más de 3 meses sin usar el medio.
  • Se haya desinfectado o reacondicionado el laboratorio.
  • El producto se haya almacenado a altas temperaturas.
  • Se observen cambios de aspecto, incluso antes de la fecha de caducidad.

Código del producto: DMT067
Presentaciones: medio deshidratado, tubos preparados, frascos preparados y kits P/A.


Ensayo de crecimiento (24–48 h a 42 °C aprox.)

Microorganismo Resultado Observación
Salmonella abony MKTN 6017 Correcto Amarillento, ennegrece el medio
Escherichia coli MKTA 25922 Inhibido Puede crecer débilmente en 48 h
Pseudomonas aeruginosa MKTA 9027 Inhibido —
Proteus mirabilis MKTA 14153 Bueno —
Shigella flexneri MKTA 12022 Bueno —
Enterococcus faecalis MKTA 29212 Escaso —

Procedimiento de siembra

  1. Agitar el tubo o frasco para resuspender los precipitados y flóculos.
  2. Inocular:
    • 0,1 ml de caldo de preenriquecimiento (Buffered Peptone Water) en 9 ml de SS Broth, o
    • 1 ml en un frasco de 100 ml.
  3. Incubar 48 horas a 42 °C aproximadamente.

Los medios con flóculos o precipitado cristalino son normales y no indican crecimiento bacteriano.


Interpretación y pasos siguientes

Tras la incubación, transferir una porción de los caldos turbios o con viraje de color a medios sólidos selectivos como:

  • XLD Agar
  • SS Agar (o Chromosalm, si solo se busca Salmonella)

Sembrar en superficie por agotamiento y continuar con las pruebas inmunológicas y bioquímicas correspondientes:
Detección inmunológica de Salmonella (MICROKIT)


Método rápido SALMOQUICK: detección de Salmonella en 36 horas

El SS Broth forma parte del innovador método SALMOQUICK, desarrollado por MICROKIT para acelerar la detección de Salmonella en productos alimentarios.

Cómo funciona:

  • Combina el preenriquecimiento revitalizador y neutralizante (Buffered Peptone Neutralizing Water, ref. DMT011)
    con el enriquecimiento selectivo concentrado SS Broth [x5] (ref. DMT067).
  • Incubando ambos medios de forma conjunta durante 18 horas, se logra una detección fiable de Salmonella en tan solo 36 horas desde la muestra inicial.

Este método acortado es ideal para industrias alimentarias que necesitan liberar lotes rápidamente, reduciendo los tiempos analíticos habituales de 3 a 5 días.

Referencia:
Sanchís, J. (2014). XIX Congreso Nacional de Microbiología de los Alimentos.
“Doble enriquecimiento simultáneo para detección de Salmonella”. MICROKIT.


Responsabilidad y gestión de residuos

El usuario final es responsable de la eliminación segura de los microorganismos cultivados, conforme a la legislación medioambiental vigente.
Se recomienda autoclavar los materiales contaminados antes de su eliminación.


Información y contacto

¿Desea más información y precios actualizados sobre el SS Broth (Salmonella-Shigella Broth) o sobre el método SALMOQUICK?

microkit@microkit.es
91 897 46 16

 

DryPlates® WL

DryPlates® WL para detección y recuento de levaduras salvajes y bacterias alterativas en vinos y cervezas según Wallenstein, en placas deshidratadas de larga caducidad

DryPlates® WL: DPP032- (caja 60 u) y DPP032+ (caja 1200 u)

Placas preparadas de medio deshidratado en disco nutriente, estériles y listas para su uso inmediato, que se hidratan precisamente mediante la muestra en el momento de inocularla en frío, lo que ahorra el hervido-fusión-enfriado-a-45ºC y las 2 horas de todo este trabajo propio del medio clásico para siembra por inclusión en masa. Extraordinariamente alta caducidad: 1 año desde fabricación en este medio concreto.

WL Nutrient Agar está recomendado para el control del proceso de fabricación de la cerveza y vino, y en general de los productos fermentados. El medio permite un óptimo crecimiento de las levaduras, mohos y bacterias presentes en estas bebidas.

¡Enhorabuena por utilizar el sustituto del Siglo XXI de los medios deshidratados y de los medios preparados hidratados!

DPP-WL: 1 colonia de moho y 3 de levaduras (Saccharomyces cerevisiae) en 1 ml de muestra sembrada en masa

MODO DE EMPLEO para muestras de 1 ml

  1. Con unas pinzas, sacar un disco nutriente de su bolsa y colocar en la tapa de una placa DryPlates® recién abierta.
  2. Colocar la placa en una superficie horizontal, sin inclinaciones. Añadir al centro de la base de la placa 1 ml de la muestra líquida (si es espesa, realice diluciones decimales hasta que sea acuosa), bien centrada (mejor que la muestra no toque las paredes internas de la placa, para que la autodifusión sea mucho más rápida y homogénea)
  3. Voltear la tapa con disco nutriente para volver a cerrar la placa, con cuidado para que el disco nutriente caiga centrado sobre la muestra; de este modo se repartirá homogéneamente en un instante. Con un poco de práctica le saldrá perfecto.

Si lo prefiere, puede tomar el disco nutriente con unas pinzas y colocarlo directamente sobre el ml de muestra, previamente dispensado en el centro de la placa). No añada la muestra sobre el disco nutriente, ya que no difundirá homogéneamente y tardará mucho en hacerlo. La formación de “islas secas” sin muestra, sólo debe preocupar si éstas son muy grandes, ya que al incubar desaparecerán y además el número de colonias por placa en 1 ml de muestra será el mismo con o sin ellas (aunque haya calvas sin colonias y el reparto sea heterogéneo).

INCUBACIÓN

  1. Incubar en estufa, IMPORTANTE: en atmósfera húmeda (dejar un vaso de agua siempre lleno en cada esquina de la estufa, total 4 vasos), sin voltear las placas (el disco abajo) para que no se fugue parte de muestra durante la incubación. Nunca incube las DryPlates® directamente sobre la bandeja de la estufa, intercale dos placas vacías (como“base porta-placas” para poner entre la torre de placas y la base metálica de la estufa) para que la DryPlate® no se seque durante la incubación por el exceso de calor del metal; igualmente no deje que la torre de placas toque la paredes de la estufa. Antes de leer, es muy importante verificar que la superficie de la placa sigue húmeda. Las condiciones de incubación (tiempo y temperatura) son las estándar de este medio clásico: 20-25ºC durante 2-5 días para levaduras, 30-35ºC durante 48-72 h para bacterias. En aerobiosis crecen las levaduras, bacterias aceto‑acéticas y las termobacterias. Puede realizar un duplicado, incubado en anaerobiosis, si busca cocos y lactobacilos.
  2. Leer los resultados buscando todas las colonias: filamentosas (mohos); no filamentosas, pequeñas, a menudo verdes (bacterias), no filamentosas, a menudo grandes, blancas, crema o de otros colores (levaduras).
  3. NOTA: puede alcalinizarse la muestra a pH 6,5 para favorecer el crecimiento de levaduras de fermentación diversa.

CÓMO USAR en muestras líquidas filtradas (100, 250… ml) o aguas de enjuague

  1. Siga los mismos pasos que en el caso anterior pero con las siguientes salvedades:
  2. Prehidrate el disco nutriente en la placa con 1 ml de agua estéril (o bien con 1 ml de la misma muestra de cerveza o vino). Recuerde, siempre el disco sobre el agua/vino/cerveza centrada y nunca el agua/vino/cerveza sobre el disco nutritivo.
  3. Filtrar la muestra líquida (100, 250… ml) por una membrana estéril de 0,45 µm (de 0,8 µm si no busca bacterias, sino sólo levaduras y mohos) y depositar la membrana sobre el disco prehidratado de la DryPlates® WL.

MODO DE EMPLEO para ambientes interiores (superficies y aires) y para detección tras enriquecimiento

  1. Puede estriar un escobillón con el que haya barrido una muestra de superficies, o con un asa con caldo enriquecido (o embebido en aguas de enjuague), sobre la DryPlates-WL, previamente hidratada con 1 ml de agua/vino/cerveza (recuerde, el disco sobre el ml de agua/vino/cerveza centrado y no al revés). El viraje de la estría y las colonias aisladas al final de la misma contrastarán mejor con el color de base del medio.
  2. También puede dejar la DryPlates-WL, previamente hidratada con 1 ml de agua/vino/cerveza (recuerde, el disco sobre el agua/vino/cerveza y nunca éstos sobre el disco nutritivo), abierta durante 10-15 minutos en los puntos críticos de la sala, para realizar una estimación “de campo” de la flora ambiental (aunque es mejor usar un muestreador tipo Microflow o MBS para obtener recuentos por m3 de aire)

CONSERVACIÓN Y PRECAUCIONES DE USO

Almacenar a temperatura ambiente (ideal 15-25ºC) ¡no en nevera!, ya que en ésta la humedad es más fácil que prehidrate y estropee los discos nutrientes. Eso sí, es imprescindible almacenar en lugar muy seco y oscuro, ya que la humedad y la luz dañan irreversiblemente los medios de cultivo deshidratados. Si trabaja en zonas de alta humedad atmosférica, almacene las DryPlates®, bien cerradas en su bolsa, dentro de una caja hermética “tupper” con sacos antihumedad (ej: MICROKIT VRB747).

Levaduras salvajes en muestras de 1 ml sembradas en masa en DPP-WL: Izda: Pichia fermentans. Dcha: Rhodotorula mucilaginosa

 

 

 

 

 

 

 

 

NOTAS 

Otros muchos medios en DryPlates®: Aerobios totales (medios diferentes en alimentos, en cosméticos, en aguas, en aguas oligotróficas, en medicamentos, en bebidas alcohólicas), Levaduras y Mohos (en alimentos, en cosméticos, en aguas, en medicamentos), Enterobacterias (VRBG o cromogénico), Coliformes, Coliformes y E.coli, E.coli, Staphylococcus aureus, Bacillus cereus, Pseudomonas aeruginosa, Burkholderia cepacia, Candida albicans, Enterococos fecales (SB ó KAA a elegir), Salmonella spp. (Cromosalm y XLD), Listeria monocytogenes, Vibrio parahaemolyticus-Vibrio cholerae, Flora acidoláctica, Antiobiograma cromogénico, UTIs… Si necesita otros medios en formato DryPlates® podemos diseñarlos especialmente para Ud.

El usuario final es el único responsable de la eliminación de los microorganismos según la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.

Diseño y fabricación 100% españoles. Derechos de explotación de la PATENTE concedidos en exclusiva a Laboratorios MICROKIT, S.L.  tras más de 23 años de ensayos y mejoras  para poder ofrecerle el mejor y más versátil producto de estas características.

Validado en base a la Norma UNE-EN-ISO 16140, con recuperaciones similares o superiores a las de los medios clásicos agarizados.

Si desea más información sobre nuestros DryPlates® WL rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

https://www.microkit.es/fichas/Dry-Plates-WL-Prospecto.pdf

https://www.microkit.es/monograficos/19-Monograf–a-Recuento-en-masa-sin-tener-que-perder-el-tiempo-fundiendo-agares.pdf

Haga sus consultas de este medio en: microkit@microkit.es

Haga sus pedidos de este medio en: pedidos@microkit.es

En este vídeo puedes entender mejor la hazaña de las DryPlates® y cómo usarlas:

https://www.youtube.com/watch?v=vkdRD5ulpSY&t=29s

Uso de kits P/A para NMP

microbiologia aguas recuento NMP: gracias a las cubetas NMP-Racks, convierta los kits P/A de MICROKIT en kits de recuento NMP

microbiologia aguas recuento NMP

Todos los kits P/A de MICROKIT se pueden emplear también con la técnica miniaturizada NMP. Hay ciertas gradillas MPN donde los medios para fermentadores (Coliformes, Clostridium) no se pueden emplear porque el gas generado las hace explotar. Los ejemplos más típicos de uso son:

ENTEROCULT

(viales polvo 1g FPA901, frascos tomamuestras RPL301, botes 100 g con cucharilla dosificadora DMTI901-). Emplear como en el método P/A (tratar antes con Tiosulfato Na el agua clorada; en RPL301 no es necesario porque ya va incluido en el medio líquido): Mezclar los 100 mL de agua de muestra con el medio. Agitar para homogeneizar. El agua quedará traslúcida, ambarina, transparente, con menisco iridiscente y fluorescencia azul bajo luz UVA de 366 nm (Ej: linterna MICROKIT VMT050). Añadir el conjunto a la cubeta. Incubar a 35-37°C (41°C) durante 16-24 horas. El ennegrecimiento y opacidad del agua es prueba presuntiva de presencia de estreptococos fecales, mientras que la falta de ennegrecimiento y opacidad en 24 horas demuestra su ausencia. Además los pocillos positivos pierden su iridiscencia y florescencia naturales.

 

PSEUDOCULT

(viales polvo 2g FPA908, frascos tomamuestras RPL302, botes 100 g con cucharilla dosificadora DMTI908-):

Emplear como en el método P/A (tratar antes con Tiosulfato Na el agua clorada; en RPL302 no es necesario porque ya va incluido en el medio líquido): Mezclar los 100 mL de agua de muestra con el medio. Agitar para homogeneizar. El agua quedará traslúcida, pajiza y, en los FPA908 y DMTI908-, con un gran precipitado que no es necesario que caiga a la cubeta. Añadir el conjunto recién agitado a la cubeta. Incubar a 30-37°C durante (24)-48-72-(120) horas. El viraje a rosa demuestra nítidamente la presencia presuntiva de Pseudomonas aeruginosa. Sin viraje se descarta su presencia. Confirmar observando en la oscuridad bajo luz UVA de 366 nm (Ej: Linterna MICROKIT VMT050). Los pocillos rosas con fluorescencia azul son confirmativos. Puede confirmar a nivel ISO 12780 o ISO 16266 con kit KMT014 (Oxidasa, Acetamida-Nessler, King B).

Izqda: Fluorescente
Dcha: No fluorescente

 

 

 

 

 

 

 

Para cuantificar Clostridium perfringens y/o sus esporas

sin necesidad de filtración, NMP ni atmósfera anaerobiosis, véase Quanti-P/A Clostricult:  https://www.microkit.es/pdf/Quanti-PA-Clostricult.pdf

microbiologia aguas recuento NMP

El usuario final es el único responsable de la destrucción de los organismos que se hayan desarrollado, según la legislación medioambiental vigente.

Si desea más información sobre nuestros kits P/A para NMP rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

https://www.microkit.es/monograficos/21-Monograf–a-M–todos-alternativos-en-Control-microbiol–gico-de-aguas.pdf

No se pierda nuestro vídeo de los viales P/A:

https://youtu.be/6OfsD7zU_8U