LPT NEUTRALIZING BROTH INCOLORO

LPT Neutralizing Broth: La Solución Definitiva para la Neutralización de Conservantes

LPT Neutralizing Broth (incoloro) es una modificación avanzada del medio Letheen/Eugon ISO. Está diseñado para ofrecer la máxima recuperación de microorganismos en muestras que contienen componentes que interfieren con la flora, superando las limitaciones de los medios tradicionales.

Propósito Clave: Neutralización y Dispersión

LPT Broth es el medio de elección para la solución madre, diluciones y pre-enriquecimiento en matrices problemáticas.

Funcionalidad Beneficio Específico
Neutralización Universal Inactiva TODO TIPO de conservantes modernos y residuos desinfectantes (incluidos los que inactivan los medios clásicos con Lecitina/Tween) y metabolitos microbianos.
Emulsión de Grasas Emulsiona eficientemente los productos grasos, asegurando una buena dispersión del inóculo.
Aplicación Ideal Cosméticos, desinfectantes, y alimentos grasos y/o con conservantes (naturales o añadidos).

El Poder de la Neutralización Total

LPT Neutralizing Broth garantiza que la viabilidad del microorganismo no se vea comprometida por los compuestos presentes en la muestra. Neutraliza una amplia gama de agentes, incluyendo:

  • Derivados de Amonio Cuaternario
  • Conservantes Modernos: Parabenos e Isotiazolinona
  • Compuestos Fenólicos: Fenoxietanol, Feniletanol, Anilidos, etc.
  • Agentes Oxidantes: Peróxidos, Halógenos (Cloro, Iodo, etc.) y Lejía.
  • Aldehídos: Formaldehído, Glutaraldehído y compuestos liberadores de formol.
  • Otros: Imidazoles, Clohexidina, Biguanida, y Sales Metálicas (Cu, Zn, Hg).

Además, inactiva los metabolitos generados por la flora acompañante, que en otros caldos pueden enmascarar o impedir el crecimiento del organismo diana.

Rendimiento Comprobado y Validado

La eficacia de LPT Broth no es solo teórica; está respaldada por estudios y comparaciones interlaboratoriales:

  • Recuperación General: En un estudio intercolaborativo (SANCHIS, 1998), LPT Broth fue el medio que más flora total recuperó entre todos los caldos generales evaluados.
  • Recuperación de Patógenos: Fue el segundo medio que más patógenos recuperó (solo por detrás de BHI Broth).
  • Validación Externa: Demuestra ser el mejor medio inicial para recuentos (diluciones) y para la búsqueda de patógenos (revitalización/pre-enriquecimiento) en los servicios intercomparativos SEILAPARFUM y SEILALIMENTOS.

Documentación:

Puede descargar la validación actualizada para microbiología cosmética en la web de www.microkit.es (pestaña publicaciones y validaciones

En este link tiene el folleto actualizado, incluida su validación y un estudio de máximo interés sobre los tiempos ideales de incubación de los enriquecimientos para aislamiento de patógenos:

https://www.microkit.es/fichas/LPT-NEUTRALIZINGBROTH-INCOLORO.pdf

ValidadoLPT Neutralizing

Izda: Sin inocular.

Dcha: Tubo turbio, con crecimiento a pesar de los conservantes

 Para más información sobre nuestros medios de cultivo y kits,  no dude en ponerse en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16.

Ver tambien el LPT Neutralizing Broth Purple, basado en D/E Neutralizing Broth ISO pero tambien actualizado para neutralizar todos los conservantes que se usan en la actualidad en cosmética:

https://www.microkit.es/fichas/LPT-NEUTRALIZING-BROTH-PURPLE.pdf

Olvide los caldos obsoletos ISO (Eugon, Letheen, D/E…) y use los caldos neutralizantes validados del Siglo XXI

M-IDENT®-Bacillus cereus

KIT DE CONFIRMACIÓN DE COLONIAS DE PRESUNTOS BACILLUS CEREUS

Confirmación Bacillus cereus en KIT, para alimentos, según ISO 7932. Incluye todo lo necesario para la confirmación de colonias sospechosas: M-IDENT®-Bacillus cereus

m.ident bacillus

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO MANTENGA LA CAJA CERRADA, EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO.

CODIGO: KMT009

VENTAJA: Su extremadamente larga caducidad, de 1 año asegurado.

PRESENTACION

KIT DE 6 TEST para la confirmación de colonias sospechosas de Bacillus cereus:

– 6 tubos sólidos de color violeta de Agar DTA-Polimixina (TPL092)

– 6 tubos líquidos incoloros de MRVP (TPL025).

– 1 kit de reactivos de Voges Proskauer 1 + 2 de 5 ml cada uno, suficiente para las 6 pruebas (SRH083).

– 6 tubos semisólidos e incoloros de Medio Nitratos-Movilidad (TPL079).

– 1 kit de Reactivos de Nitratos A + B de 5 ml cada uno, suficiente para las 6 pruebas (SMN001).

EL KIT NO INCLUYE:

  • Cepas de reserva, de trabajo o cuantitativas para validar los reactivos una vez llegados a fábrica o tras almacenamientos prolongados o inadecuados.
  • Participación en servicios intercomparativos como SEILALIMENTOS para validar los procedimientos y los operarios

CONTROL DE CALIDAD DEL KIT

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

TUBOS PREPARADOS DTA-polimixin Agar: Estéril, violeta-púrpura, sólido, inclinado.

Y TUBOS PREPARADOS MRVP Broth: Estéril, líquido, incoloro-paja.

TUBOS PREPARADOS Nitratos-Movilidad: Estéril, incoloro, semisólido.

KIT VP: NO estéril, goteros 1 + 2 con 5 ml cada uno. IRRITANTE.

KIT Nitratos: NO estéril, goteros 1 + 2 con 5 ml cada uno. IRRITANTE.

CONTROL DE CRECIMIENTO a 30°C durante 24 horas, en aerobiosis:

En el tubo violeta de DTA-polimixina, Bacillus cereus MKTA10876 crece con viraje del medio a amarillo-crema.

Y en el tubo líquido incoloro de MRVP Broth, Bacillus cereus MKTA10876 crece y tras añadir los reactivos VP vira a rosa.

En el tubo crema de Buffered Nitrate-Motility Medium, Bacillus cereus MKTA10876 crece con difusión/movilidad y reduce el nitrato a nitrito con viraje a rojo tras añadir los reactivos de Nitratos.

MODO DE EMPLEO E INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS

Inocular una porción de colonia sospechosa pura, procedente, de B.cereus Agar Mossel, en estría en el tubo violeta de DTA-Polimixina; por dilución en el tubo de caldo MRVP y por picadura en el tubo semisólido crema de Buffered Nitrate-Motility Medium. Incubar los tres tubos a 30+2º C durante 21+3 horas, en condiciones aerobias. Observar el viraje a amarillo del DTA, el viraje a rosa de MRVP 1 hora después de añadir 0,5 ml de los reactivos VP, el viraje a rojo de los Nitratos 15 minutos después de añadir 0,5 ml de los reactivos de Nitratos, y la movilidad, positiva si hay crecimiento difuso desde la línea de picadura.

Bacillus cereus, según Norma ISO 7932:1998 adaptada, es toda colonia sospechosa procedente de Agar Mossel, que crece en DTA-polimixina con viraje del medio violeta a amarillo, que provoca test positivo de VP en MRVP (viraje a rosa),  que provoca test positivo de Nitratos en el medio de Nitratos-Movilidad  (viraje a rojo) y que crece difuso, por movilidad, a partir de la picadura en el medio de Nitratos-Movilidad.

NOTA:

La versión más moderna de esta Norma no habla de Bacillus cereus, sino de presuntos B.cereus, por lo que no la aplicamos.

 

Si desea más información sobre nuestros M-IDENT®-Bacillus cereus, rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

https://www.microkit.es/fichas/Bacillus-cereus-M-IDENT-KIT-UE-2-2019-alimentos.pdf

https://www.microkit.es/monograficos/10-Bacillus-monograf–a.pdf

 

AGAR SANGRE DE CORDERO

 

Agar Sangre de Cordero (Base Columbia)

agar sangre de cordero

Descripción General y Aplicaciones Críticas

El Agar Sangre de Cordero con base Columbia es un medio de cultivo altamente nutritivo, diseñado para la detección de la actividad hemolítica en una amplia variedad de microorganismos patógenos.

Su fórmula enriquecida permite el crecimiento de especies tanto exigentes como no exigentes, superando la capacidad del agar sangre con base clásica. Esto lo convierte en el medio de elección en entornos donde se requiere el aislamiento de microorganismos con requerimientos nutricionales complejos.

Aplicaciones Fundamentales:

  • Detección de Hemólisis: Visualización precisa de los halos de hemólisis $(\alpha, \beta, \gamma)$ para la identificación de especies bacterianas.
  • Aislamiento y Confirmación: Ideal para patógenos clave como Listeria monocytogenes, Clostridium perfringens, Bacillus cereus, y Legionella pneumophila.
  • Entornos Clínicos: Su riqueza nutritiva lo hace indispensable para el aislamiento de microorganismos en ambientes frecuentados por personas enfermas o inmunodeprimidas (hospitales, quirófanos, UVIs).

 

Composición de Calidad Superior al Agar Sangre típico

La formulación Columbia se caracteriza por la variedad de peptonas que ofrecen un suministro óptimo de nitrógeno, aminoácidos y péptidos de cadena larga, garantizando un crecimiento robusto.

El medio una vez preparado incluye 5 mL de sangre desfibrinada de cordero por cada 100 mL, para observar claramente las reacciones de hemólisis.

Componente Cantidad por Litro (g)
Peptona de Caseína 10 g
Peptona de Carne 5 g
Extracto de Levadura 3 g
Extracto de Corazón 3 g
Cloruro Sódico 5 g
Almidón de Maíz 1 g
Agar Bacteriológico 15 g
Sangre de Cordero 50 mL

Fórmula por Litro: pH 7.2 +/- 0.2


 

Control de Calidad y Crecimiento

Garantizamos un estricto control de calidad en nuestras instalaciones. Le recomendamos encarecidamente repetir estas pruebas si observa cambios en las condiciones de almacenamiento (ej. más de 3 meses sin usar, fluctuaciones de temperatura).

  • Estado Deshidratado: Polvo, color Beige.
  • Estado Preparado (Placa): Estéril, color Rojo Cereza por la sangre.

Control de Crecimiento Cuantitativo (48 horas a $\mathbf{37 °C}$):

Cepa de Referencia (MKTA) Resultado de Crecimiento Actividad Hemolítica
Clostridium sporogenes 11437 Crecimiento Correcto (crecimiento > 50% con inoculación < 100 ufc)
Streptococcus viridans Crecimiento Excelente alpha-Hemolítico
Listeria monocytogenes 7644 Buen Crecimiento beta-Hemolítico
Enterococcus faecalis 29212 Buen Crecimiento gamma-Hemolítico (No hemolítico)

 

Siembra e Interpretación de Resultados

Para obtener resultados óptimos, asegúrese de que las placas hayan alcanzado la temperatura ambiente y presenten una superficie húmeda, pero sin condensación excesiva.

 

1. Métodos de Siembra

  • Análisis de Muestras: ESTRÍE la muestra diluida o enriquecida en la superficie de la placa hasta obtener colonias aisladas por agotamiento.
  • Análisis Cualitativos de Aire: Deje las placas abiertas en los puntos de muestreo críticos durante 10 a 30 minutos.
  • Análisis Cuantitativos de Aire (Recomendación profesional): Utilice un muestreador tipo Microflow con cabezal para placas Petri de $\text{90 mm}$.
    • Mantenga el flujo de aire perpendicular a la superficie del medio.
    • Se recomienda analizar $\text{200 L}$ de aire a un caudal de $\text{0.5 L/seg}$ para máxima recuperación.
    • Cálculo: Multiplique el recuento de colonias en la placa por 5 para obtener el recuento total por metro cúbico. Para ambientes limpios, sume los resultados de 5 muestras de $\text{200 L}$ para obtener el recuento por metro cúbico.

 

2. Incubación y Lectura

  • Condiciones: La incubación estándar es en atmósfera aerobia a la temperatura óptima de crecimiento del microorganismo buscado o, por defecto, a $\text{37 °C}$ (aprox.).
    • Nota: Ciertas especies, como Campylobacter spp., requieren una atmósfera enriquecida con 5-10% de $\text{CO}_2$.
  • Tiempos: La lectura debe realizarse entre las $\mathbf{18}$ y $\mathbf{48}$ horas. Las reacciones de hemólisis se aprecian mejor entre las $\mathbf{18}$ y $\mathbf{24}$ horas.

Es fundamental que las reacciones hemolíticas y el aspecto de las colonias (ej. umbilicación en neumococo) se ajusten a las descripciones típicas para una identificación certera.


 

Información de Producto

  • Presentación: Dada la inestabilidad de la sangre, este medio completo solo está disponible en placa preparada.
  • Para Uso Exclusivo en Laboratorio.
  • Conservación: Las placas preparadas deben conservarse en refrigeración (entre 4 y 15 °C y manipularse con cuidado para evitar choques térmicos. Respete rigurosamente la fecha de caducidad.
  • Código de Producto: PPLS01
  • Medio Deshidratado (Base Columbia): Consulte la referencia DMT308.

 

CONSULTAS

Para consultas y precios actualizados sobre AGAR SANGRE DE CORDERO o cualquiera de nuestros productos no dude en ponerse en contacto con nosotros a través del teléfono 91-897 46 16 o el correo electrónico microkit@microkit.es.

https://www.microkit.es/fichas/BLOOD-AGAR-BASE.pd

Tambien en placas preparadas con la sangre ya añadida:

https://www.microkit.es/fichas/BLOOD-AGAR-SHEEP-PREPARADO.pdf

MICROKIT® P/A-LEGIONELLA

KIT P/A LEGIONELLA

LEGIONELLA revitalización P/A (Caldo GVPC ó BCYE Modif) para detección o revitalización en 1L de agua cuando Legionella está estresada.

GVPC Broth para aguas de refrigeración (con alta carga acompañante)

BCYE Broth para aguas de consumo humano (con baja carga acompañante)

Legionella pneumophila

causa la legionelosis o enfermedad del legionario y la fiebre de Pontiac, males tristemente extendidos POR TODO nuestro país a causa de torres de refrigeración y sistemas de acondicionamiento mal mantenidos.

Afectan a personas inmunodeprimidas y al turismo, sobre todo, llegando a producir varios muertos cada año.

Un país donde la principal riqueza es el turismo no puede permitirse esta fama por causa de la Legionella.

El método Presencia/Ausencia (P/A)

ha demostrado ser más fiable que el de Filtración de Membrana (MF) a causa del exceso de falsos negativos de este último método (Jacobs & Co, 1986, App.Env.Microbiol.Vol.51, 5).

Además es mucho más cómodo cuando no se requiere recuento, sino absoluta ausencia, como es el caso de Legionella pneumophila.

MICROKIT diseñó desde Noviembre de 1997 un kit P/A para enriquecimiento selectivo de Legionella en 500 ml de agua.

El medio era una modificación en caldo del BCYE+GVPC ISO 11731, lo que justificó su elevado coste.

La ausencia de Agar permite su utilización como Caldo de Enriquecimiento Selectivo Directo sin necesidad de filtración, ahorrando la manipulación y el riesgo de generación de aerosoles propios de la filtración de membrana.

Desde Noviembre/2001,  la adición de otro componente, diseñado por MICROKIT,  mejora el carácter diferencial del kit…

…que ya  no sólo es  un excelente screening en aguas de red sino también para aguas sucias, como son las aguas de las torres de refrigeración.

Y el rediseño de su concentración,  permite su uso en 1000 ml de agua.

Tras el imperativo legal R.D. 865/2003, que exige efectuar recuentos de Legionella pneumophila, el kit se readaptó para ser usado como caldo revitalizante;

para evitar multiplicación celular, se comprobó que aplicándolo durante 24 horas a 25°C y siguiendo después el método ISO  11731…

…no había multiplicación celular pero sí detección incluso para recuentos con lentículas de 40 ± 10 ufc/l.

Incubaciones a temperaturas mayores o menos prolongadas no dan buenos resultados.

Referencia: RPL330 Caja 20 test  (tubos + swabs) o bien TPL016 (sólo tubos) TPL017 (tubos de sólo BCYE broth para aguas con poca flora acompañante)

MODO DE EMPLEO:

Atemperar a 37°C y agitar vigorosamente el tubo para homogeneizar (puede estar sólido o cristalizado por su elevada concentración, y con el carbón granulado precipitado).

Añadir todo su contenido a un recipiente estéril con Tiosulfato (DCPJC1N) donde se hayan recolectado 1000 ml del agua de muestra.

Raspar fuertemente con una de las torundas estériles incluidas en el kit (se pueden pedir aparte como VSN251), el biofilm y las costras calcificadas u oxidadas…

…de las paredes del depósito, la alcachofa de la ducha o de los conductos donde el agua se estanca.

Se debe agitar la torunda con limos dentro del agua de muestra, de modo que parte de dichos limos pase de la torunda al líquido,

ya que L.pneumophila es bentónica y su presencia en el plancton es sólo su forma de dispersión.

Este paso es fundamental para evitar un gran número de resultados falsamente negativos.

Guardar la torunda en su  tubo, transportarla a temperatura ambiente, y guardarla a 4-8°C para posteriores envíos que eventualmente puedan realizarse

a laboratorios de referencia y/o para siembra directa de los limos diluidos en placa, según Norma ISO 11731.

Si se desea analizar una muestra mayor de agua, pueden filtrarse los litros deseados por  membranas estériles de 0,2µm (VAC022)

y añadir éstas a los 1000ml del agua en los que se realizará el test, o enrollarlas en el tubo del kit.

Agitar el conjunto, aplicarle un shock térmico de 30 minutos a 60 ºC (y/o bien acidificar la muestra 5 minutos a pH 2,2,

aunque no recomendamos esta ultima práctica por ser el mayor punto crítico de eliminación de Legionella pneumophila además de la flora acompañante) a fin eliminar la flora competitiva (falsos positivos,

demostrados sobre todo si la turbidez se da antes de 72 h), e incubar a (>25)-36-(<45) ºC, 1-5-(14) días.

El carbón granulado se depositará después de la inoculación, en el fondo del frasco, absorbiendo metabolitos, residuos de biocidas y otros inhibidores de Legionella pneumophila.

No volver a agitar.

preenriquecimiento revitalizador

Este Kit resulta incluso aún más útil que como P/A, como preenriquecimiento revitalizador y selectivo de muestras de agua:

Incubar en 1 litro de agua de muestra a 25°C durante 24 horas y seguir la técnica ISO 11731 (o bien, si no se desea recuento, sino enriquecimiento selectivo,

incubar 5 días a 37°C

y luego sembrar en estría una gota del fondo con carbón, en GVPC Agar, por agotamiento, a fin de evitar el solapamiento de colonias).

Los servicios intercompartivos SEILAGUA están demostrando que este método,

seguido de siembra en BCYE +GVPC Agar

recupera contundentemente más Legionella que el método ISO 11731 por filtración de membrana:

SENSIBILIDAD (escasez falsos-) por métodos según Servicio Intercomparativo de Aguas (SEILAGUA) AÑO 2002 (el P/A MICROKIT Legionella se usaba como enriquecimiento selectivo 5-14 días)

pa legionella2

El uso del Caldo Legionella GVPC de Laboratorios MICROKIT, antes usado como kit Presencia/Ausencia o como enriquecimiento selectivo,

está obteniendo unos resultados impresionantes como paso revitalizador, para seguir la ultima Normativa, Y PODER REALIZAR RECUENTOS.

Nadie puede reprobar el uso de este  kit como pre-enriquecimiento revitalizador 24 h a 25°C,  previo a la decantación y posterior filtración de membrana del litro,

ya que Legionella pneumophilla en 24 h se revitaliza contundentemente, máxime con el bombardeo de biocidas que se utiliza últimamente.

Los resultados comparativos cualitativos (cuantitativos no existen porque los participantes no los han dado) con y sin este nuevo protocolo de preenriquecimiento previo a la técnica ISO 11731,

en los informes del servicio intercomparativo SEILAGUA 2003-2004 (para los servicios en los que se inoculó Legionella pneumophila),

han sido aún más contundentes que en 2002 (en que se obtuvo una Sensibilidad 41,61% con MF y 77,50% con este kit usado como P/A o como enriquecimiento 5-14 días),

con estos resultados de revitalización de 24 horas:

palegionella 1

* Destacamos que el inóculo en ese servicio era de sólo 30-50 ufc/litro, cuando en los otros servicios siempre era de 103 –106 ufc/litro.

A pesar de estos resultados tan impresionantes…

…el número de usuarios del caldo GVPC de MICROKIT ha ido disminuyendo contundentemente incluso dentro de los participantes de SEILAGUA,

lo que demuestra el daño que la aplicación estricta de la legislación puede hacer en la calidad de los resultados de un análisis.

La posibilidad purista de que las células se repliquen en un preenriquecimiento de 24h a temperatura ambiente,

es mucho menos alarmante que el hecho de que el método MF esté dando tantos falsos negativos a nivel global por no aplicar revitalización previa.

El límite de detección en los laboratorios acreditados con el método ISO 11731, de cerca de hasta incluso 800 ufc/l, mejora contundentemente a, al menos, 40 ±10 ufc/l si intercalamos el caldo Legionella GVPC RPL330 durante 24 horas a 25°C.

 INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS:

      En el método P/A, toda muestra turbia se considera presuntamente positiva.

Las muestras sin turbidez se consideran negativas, por lo que este kit actúa como screening negativo, ahorrando la metódica clásica en todas las muestras sin Legionella.

En el nuevo diseño 11/2001, Legionella crece sin flóculos en el fondo y los falsos positivos, con el fondo floculado.

Así, el kit pasa a ser más sensible en aguas con alta carga de flora acompañante.

En caso de presunto positivo, lleve la muestra incubada a un laboratorio especializado, o bien:

Si incubó 5-14 días, sembrar 0,1 ml de la zona profunda con carbón, donde se concentra la Legionella,

tambien por ser microaerófila (ahorrando así falsos positivos de las Pseudomonas, Micrococos y Bacillus acompañantes capaces de crecer en GVPC),

sobre sendas placas de Legionella GVPC Selective Agar

(MICROKIT placas PPL030, plaquitas PPL908, frascos preparados RPL018 o deshidratado DMT007 + suplemento SBL604),

por extensión con asa de Digralsky (VRR154) o agotamiento.

Incubar en las mismas condiciones que el  kit, en atmósfera húmeda (un vaso de agua dentro de la estufa, al menos).

Las colonias de Legionella son, tras 2-15 días de incubación, pequeñas (1-2 mm), de color blanco-gris-azulado, brillantes, cristalinas, circulares, lisas, suavemente elevadas y con los bordes enteros.

Como control positivo puede utilizarse una cepa Legionella pneumophila.

Confirmar las colonias Oxidasa + (lento) (MICROKIT KOT050), Catalasa + (MICROKIT KMT299) (y, si se puede esperar, sin crecimiento enAgar Sangre u otro medio general: TSA, PCA, YEA, Nutrient Agar…),

con látex M-Legionella (KMB301) serogr.1-15 o más actualizado, con el stick (inmunocromatograma) M-Ident Virapid Legionella

Si incubó 24 horas a 25°C aprox., pase el litro de agua revitalizada, decantando el carbón, y calentando justo antes de filtrar, al método ISO 11731.

PRECAUCIONES:

Legionella no es patógeno de alto riesgo (=clase III), pero evite la inhalación de aerosoles durante su incubación, sobre todo por parte de personas inmunodeprimidas.

Esterilice el material y los kits utilizados, añadiéndoles abundantes carbón activo (MICROKIT SMT975) y lejía.

El usuario es el único responsable de la eliminación de los microorganismos según la legislación medioambiental vigente.

Autoclavar antes de desechar a la basura.

Material necesario no incluído:

Frascos 1000 ml estériles para la incubación. Pueden utilizarse frascos tomamuestras de 1 litro con Tiosulfato (DCPJC1N).

Cepas de control de Legionella pneumophila. Participación en servicios intercomparativos.

Para más información sobre nuestro KIT P/A LEGIONELLA, no dude en ponerse en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

Estos tubos preparados  suponen el mayor éxito de ventas de MICROKIT en países donde aun no se ha establecido un recuento máximo y sólo se busca su Presencia o Ausencia, como sucedía en España hace 20 años, donde ahora se emplea sólo como revitalizante de las Legionellas estresadas

https://www.microkit.es/fichas/LEGIONELLA-PA-KIT-CALDO.pdf

https://www.microkit.es/monograficos/9-Legionella-monograf–a.pdf

https://www.microkit.es/monograficos/21-Monograf–a-M–todos-alternativos-en-Control-microbiol–gico-de-aguas.pdf

No se pierda nuestro vídeo de los viales P/A:

https://youtu.be/6OfsD7zU_8U

 

MICROKIT® MANIPULADORES-KIT

KITS MANIPULADORES MICROKIT: Control Microbiológico de la Higiene

El control periódico de la higiene del personal es una exigencia legal y normativa () crucial. La falta de higiene de un manipulador es la principal fuente de intoxicaciones alimentarias.

Nuestros KITS MANIPULADORES están diseñados para garantizar que el personal no sea portador de microorganismos indeseables, enfocándose en áreas de riesgo clave: manos, fosas nasales y ropa de trabajo.

Importancia del Control Periódico

  • Mitigación de Riesgos: La higiene responsable no elimina el riesgo cuando el manipulador está enfermo o convaleciente. El re-control periódico es imprescindible.
  • Cumplimiento Normativo: El responsable de calidad debe registrar los resultados para inspecciones sanitarias, auditorías de clientes y gestión de problemas de salud.
  • Puntos de Enfoque: El control debe priorizar las manos (principal fuente de contaminación), sin descuidar la ropa de trabajo y las fosas nasales/garganta (principal reservorio de Staphylococcus).

Presentación de los Kits de Control

MICROKIT ha diseñado dos kits específicos para el control de la higiene del personal, ambos para 8 análisis completos.

Kit Parámetros de Riesgo Incluidos Uso Principal Referencia
KIT MANIPULADORES COMPLETO Detección y recuento de: Aerobios, Estafilococos, Coliformes-E. coli y Salmonella. Control exhaustivo y completo. Ref. KMT020
KIT MANIPULADORES BÁSICO Detección y recuento de: Estafilococos y Coliformes-E. coli. Control indicador de parámetros esenciales. Ref. KMT033

Ventajas Exclusivas de los Kits

  1. Larga Caducidad: Ofrecen una extraordinaria caducidad para una mejor gestión de inventario.
  2. Neutralización y Precisión: Emplean torundas con caldo inactivador que:
    • Elimina los bacteriostáticos (residuos de desinfectantes).
    • Permite recuentos más precisos (no multiplica las bacterias presentes).
  3. Tecnología Compact Dry Plates®: Utilizan placas deshidratadas que simplifican el proceso:
    • Permite la siembra en masa por inclusión sin necesidad de fundir agares.
    • Ofrece una sensibilidad 10 veces superior a la de las placas de escasa caducidad que no permiten la siembra en masa.

Criterios de Higiene Adecuada (Recomendaciones)

Un manipulador mantiene una higiene adecuada si sus controles cumplen los siguientes requisitos en las zonas de muestreo habituales:

Microorganismo Criterio de Aceptación/Riesgo Zona de Muestreo Prioritaria
Staphylococcus aureus (Estafilococo Dorado) No ser portador. En caso de serlo, se requieren medidas rigurosas (guantes, máscara, gorro) para evitar la contaminación. Fosas Nasales y Garganta.
Coliformes y E. coli Ausencia en manos. La presencia indica una higiene defecutosa y potencial contaminación fecal. Manos y Ropa.
Salmonella Ausencia. Es un microorganismo de máximo riesgo. Hay portadores asintomáticos peligrosos. Manos y Ropa.
Recuento de Aerobios Totales Mantenerse por debajo de los límites. Se recomienda: en industrias de alto riesgo, o en las demás. Manos y Ropa.

Nota: Se debe realizar un registro de tendencias del recuento total de bacterias de cada manipulador para identificar desviaciones y realizar acciones preventivas.

 Para más información sobre nuestros KITS MANIPULADORES,  no dude en ponerse en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16.

https://www.microkit.es/fichas/MANIPULADORES-KIT-UE-2-2019.pdf

https://www.microkit.es/monograficos/20-Monograf–a-Control-microbiol–gico-de-analistas-y-operarios.pdf

 

LINTERNA ULTRAVIOLETA

ULTRAVIOLETA LUZ UVA LINTERNA 366 nm

(luz negra de Wood) PARA USO EN MICROBIOLOGÍA: E.coli, Clostridium, Legionella, Dermatofitos…

Linterna

Ref. VMT050.

 

Linterna UV: Su Herramienta Microbiológica Esencial

Esta linterna UV (ultravioleta) es el instrumento más cómodo y económico para una gran variedad de aplicaciones en su laboratorio. Su versatilidad la convierte en una herramienta indispensable para la detección, identificación y control de calidad.

Aplicaciones Clave en el Laboratorio Microbiológico

La linterna permite la detección rápida de microorganismos por la fluorescencia emitida en presencia de reactivos específicos o de forma natural:

Microorganismo / Aplicación Fluorescencia (Color) Contexto y Reactivo Clave
Clostridium perfringens Azul Detección de colonias en medios con MUP (Ref: SMT009, PPL929).
Legionella spp. Verdosa (L. pneumophila) o Azul-Blanquecina (L. bosemanii). Detección de colonias en medio GVPC (Ref: DMT007 + SBL604, PPLS30).
Pseudomonas spp. Amarillo-Verdosa (marcada) Detección de Ps. aeruginosa, Ps. putida y Ps. fluorescens, incluso cepas acromogénicas.
Escherichia coli Azul Celeste Detección de colonias o cultivos en caldo en presencia de MUG (Ref: SKL061).
Salmonella Azul Detección de colonias con reactivo MUCAP.
Desulfovibrio Roja Producción en medio Sulfate API Agar (Ref: TPL048, DMT118) al añadir .
Bacteroides melaninogenicus Anaranjada Detección de su fluorescencia natural.
Dermatofitos (Tiñas) Verde-Amarillenta Detección de micelios de especies como Microsporum canis y Trichophyton schoenleinii en pelos y heridas.
Aflatoxinas Fluorescencia Detección cualitativa en piensos, cereales y frutos secos, provocada por los productores (Aspergillus flavus y A. parasiticus).

Otras Aplicaciones Científicas y Técnicas

La luz UV también ofrece beneficios en investigación y control de calidad:

  • Micología y Entomología de Campo: Para identificaciones (e.g., seta de olivo, Omphalotus olearius).
  • Cultivo de Hongos: Activa sus métodos reproductores.
  • Análisis Avanzado: Útil en Cromatografía, Fluoroquímica, Detección de Pesticidas y Análisis de Lípidos.
  • Control de Calidad Industrial: Detección de soldaduras imperfectas en Aeronáutica, control de dispositivos electrónicos, Mineralogía, Arqueología y detección de billetes falsos.

Instrucción de Uso Crítica

¡Recuerde! La tenue fluorescencia emitida por los microorganismos se enmascara fácilmente. La linterna debe usarse siempre en la oscuridad total.

  • Comprobación Rápida: Para verificar el correcto funcionamiento, observe la luz azul que emite la bebida tónica al ser iluminada.

Si desea más información sobre nuestros LINTERNA ULTRAVIOLETA,  póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

https://www.microkit.es/fichas/LINTERNA-ULTRAVIOLETA-DE-366%20nm.pdf

 

ENVIROSWABBS ISO 18593

ENVIROSWABBS

torundas con medio especiales ISO 18593 para la toma de muestras de superficies en la industria (rascado mejor que barrido)

ENVIROSWABBS para muestreo de superficies

con 1 ml de caldo, para la posterior adición del ml a placa o a Compact Dry Plates®, para recuento total de los tipos de microorganismos buscados.

La técnica de control microbiológico de superficies que ha demostrado bibliográficamente ser la más efectiva en lugares de difícil acceso,

es la de los escobillones o torundas.

Otras técnicas (Placas de contacto ENVIROCOUNT, kits en laminocultivo o dipslide DESINFECTEST) son más cómodas de utilizar, e incluso más sensibles,

pero sólo en superficies lisas.

Además, la torunda permite acceder a lugares escondidos: interiores de tuberías, esquinas, superficies muy rugosas, interiores convexos de recipientes…

Por fin, permite la búsqueda directa de patógenos lábiles que no serían capaces de crecer por contacto directo con el medio selectivo.

Los escobillones únicos ENVIROSWABBS

han sido diseñados y perfeccionados para todo tipo de usos: para control de higiene-ARICPC, como medio de transporte, para usos clínicos…,

en respuesta a la creciente demanda de métodos más efectivos para el control microbiológico de superficies.

A diferencia de las otras torundas, basan su método en la posterior inoculación del líquido, no del barrido de la torunda sobre un medio sólido,

por lo cual son las únicas que permiten realizar recuentos fiables.

Cada torunda va empaquetada, de forma unitaria y estéril, junto con un tubo que contiene 9 ml de solución humectante y conservante.

La torunda es de algodón, con varilla de plástico y tapón. La solución es  LPT Neutralizing Broth, el mejor medio para revitalización de microorganismos totales en superficies (UNE100012).

 Al contener una solución tamponada, inactivadora de todo tipo de desinfectantes, detergentes, conservantes e inhibidores antimicrobianos,

se evitan los graves falsos negativos, tan frecuentes en los recuentos mediante otros kits o torundas clásicas de microbiología clínica, y debidos a las células dañadas subletalmente, que no sobreviven en medios convencionales,

porque en ellos nada impide que continúe la acción letal del microbicida.

Inactiva derivados de amonio cuaternario, cloro, lejía, cetrimida, clorhexidina, compuestos fenólicos, polimixina B, ácido benzoico, compuestos fosforados…

 Por estar todo preparado y estéril, se evita, con un coste muy económico, el trabajo rutinario de preparar medios, añadir numerosos inactivadores, comprar tubos y torundas secas, esterilizar el conjunto…

El protocolo ideal para control cuantitativo de superficies

consiste en abrir un ENVIROSWABB y barrer, con la torunda húmeda, 10 x 10 (=100) cm2 de superficie.

Esta labor se facilita con los marcos flexibles de 10 x 10 cm que MICROKIT regala con cada pedido en el que se le solicite.

Sumergir la torunda en el tubo con caldo, agitar contundentemente para que los microorganismos se desprendan del algodón y pasen al líquido;

devolverla a su tubo plástico.

Los microorganismos se mantendrán en el caldo perfectamente durante varias horas, la mayoría de cepas durante muchos días, y en frío se multiplicarán menos, por lo que ENVIROSWABBS puede considerarse también un medio de transporte en frío.

Sin embargo para recuentos no es aconsejable mantener más de 24 h en frío sin procesar, porque se multiplicarían los resultados.

Una vez en el laboratorio, se inoculan los 9 ml en las placas (1ml/placa) sobre las que se añadirán 20 ml de medio fundido y atemperado para recuento del microorganismo buscado:

bacterias totales PCA,

hongos Rosa de Bengala CAF Agar,

Listeria Palcam Agar,

Enterobacterias VRBG,

Coliformes y E.coli MUGPLUS,

Pseudomonas Cetrimida Agar,

Staphylococcus Mannitol Salt Agar,

Bacillus cereus Mossel Agar,

Lactobacillus TJA,

Dermatofitos DTM…

O mejor aún, 1 ml a cada DryPlate®.

Para mayor comodidad también existe otra versión más cómoda: Enviroswabs-1ml (BSL375).

Tras incubar en las condiciones standard para cada tipo de microorganismo, se obtiene el resultado en ufc/11 cm2, ya que se inocula en cada placa 1 de los 9 ml/100 cm2.

Para obtener las ufc/100 cmde cada microorganismo, sólo hay que multiplicar por 9 el número de colonias obtenidas en el medio para el microorganismo en cuestión.

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Para más información sobre nuestros ENVIROSWABBS,  no dude en ponerse en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16.

https://www.microkit.es/fichas/ENVIROSWABBS-UE-2-2019.pdf

Tambien ofrecemos sprays pulverizadores de Ringer (ver imagen destacada) para humectar la superficie, previo a su rascado, sin contaminarla de nutrientes, tal y como indica la ISO 18593

https://www.microkit.es/monograficos/6-Control-de-superficies-monograf–a.pdf

¿Ya ha visto el video sobre el empleo de nuestros swabbs?

https://youtu.be/gfGHksTSXCs?si=JwaTbw534Xz-cwJp

 

M-IDENT®- Pseudomonas aeruginosa

Kit de confirmación de Pseudomonas aeruginosa en aguas por Filtración de Membrana s/Norma UNE 12780:2002 y en cosméticos, a partir de colonias sospechosas

 

MIDENT PSEUDO.

PRESENTACION:

KIT DE 9 TEST para la confirmación de colonias sospechosas de Pseudomonas aeruginosa:

  • 9 tiras estables para el test de la Citocromo-oxidasa (KOT051-)
  • 9 tubos  líquidos de Caldo Acetamida, incoloro (TPL113).
  • 1 gotero de 5 ml de Reactivo  Nessler, suficiente para las 9 pruebas (SMT007).
  • 9 tubos sólidos de Agar King B inclinado,  de color crema (TPL012)

 EL KIT NO INCLUYE:

  • Cepas de reserva (CRIOSTRAINS o SALVAJES), de trabajo o cuantitativas para validar los reactivos una vez llegados a fábrica o tras almacenamientos prolongados o inadecuados.
  • Participación en servicios intercomparativos como SEILALIMENTOS, SEILAGUA® y SEILAPARFUM para validar los procedimientos y los operarios
  • Lámpara de luz ultravioleta de 366 nm (ver Linterna MICROKIT VMT050)

CODIGO: KMT014

 

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO. MANTENGA LA CAJA

CERRADA, EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO

 

VENTAJA:

Su extremadamente larga caducidad, de 1 año asegurado.

CONTROL DE CALIDAD DEL KIT

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

TIRAS Citocromo-oxidasa: NO estéril, color rosa pálido

TUBOS PREPARADOS de Caldo Acetamida: Estéril, líquido, incoloro.

REACTIVO NESSLER: No estéril, gotero 5 ml. IRRITANTE.

TUBOS PREPARADOS de Agar King B: Estéril, sólido inclinado, crema.

CONTROL DE CRECIMIENTO a 37°C durante 24 horas (el King B hasta 20 días), en aerobiosis:

  • Tiras oxidasa: Pseudomonas aeruginosa MKTA 9027 vira a azul de inmediato.
  • Caldo Acetamida: Pseudomonas aeruginosa MKTA 9027, crece con turbidez y vira a amarillo-rojo tras añadir reactivo Nessler.
  • Agar King B: Pseudomonas aeruginosa MKTA 9027, crece con fluorescencia bajo luz U.V.A. de 366 nm.

 

MODO DE EMPLEO E INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS.

Inocular una porción de la colonia sospechosa, procedente de Agar Cetrimida o CN, en la zona reactiva de la tira de oxidasa.

Sembrar por dilución otra porción de colonia en un tubo de caldo Acetamida y en estría en un tubo de King B Agar.

Incubar a 36+2º C durante 20 ± 4 horas (el King B durante 2-20 días), en aerobiosis.

Añadir al caldo Acetamida 0,5 ml de Reactivo Nessler y observar el viraje a amarillo-rojo.

En el King B, ir observando cada día si aparace fluorescencia bajo luz ultravioleta de 366 nm.

Pseudomonas aeruginosa, según Norma UNE 12780:2002, es toda colonia verde, azul, amarilla, fluorescente o roja-marrón procedente de Cetrimida CN Agar, que resulta oxidasa positiva (viraje a azul oscuro), Acetamida positiva (viraje a amarillo rojo tras añadir reactivo Nessler) y King B positivo (fluorescente) en menos de 20 días.

https://www.microkit.es/fichas/Ps-aeruginosa-M-IDENTKIT.pdf

https://www.microkit.es/monograficos/13-Pseudomonas-aeruginosa-monograf–a.pdf

 

CROMOKIT VIBRIO AGAR

AGAR CROMOGÉNICO PARA VIBRIO es un medio sólido para aislamiento y diferenciación  de las especies de Vibrio en alimentos marinos y en aguas

MICROKIT dispone de la más amplica gama de medios deshidratados, formulados según normas ISO/UNE. La caducidad de los medios deshidratados es de 1 a 5 años. Dentro de esta gama tenemos los medios cromogénicos que son mucho más específicos y diferenciales que los medios clásicos, ya que sólo la colonia (y no el medio) se colorea del cromógeno, de modo que distintas colonias solapadas de diferentes microorganismos se distinguen perfectamente. Los cromógenos son mucho más específicos que los colorantes clásicos.

En el CROMOKIT VIBRIO V.parahaemolyticus crece con colonias verde-azuladas, mientras V.cholerae lo hace con colonias púrpura. La flora acompañante crece con colonias de otros colores.

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Izquierda: V.cholerae, púrpura                                              Derecha: V.parahaemolyticus, azul-verdos

La concentración de sal es la adecuada para que puedan crecer ambas especies de Vibrio, que quedan perfectamente diferenciadas por el color que desarrolla enzimáticamente la mezcla cromogénica en las mismas. De este modo queda eliminado el problema de falsos positivos del clásico TCBS Agar (causado por la flora acompañante que fermenta la sacarosa).

Si desea más información sobre nuestro CROMOKIT VIBRIO no dude en contactar con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es, o por teléfono en nuestro telefono 91-897 46 16.

https://www.microkit.es/fichas/CROMOKIT-VIBRIO-AGAR.pdf

https://www.microkit.es/monograficos/14-Vibrio-monograf–a.pdf

Prepárese para más de una sorpresa informativa cuando vea nuestro video sobre los medios Cromogénicos: https://www.youtube.com/watch?v=-JVPVWxY8ZE&t=271s

KITS PREPARADOS MICROKIT® P/A

EL MÉTODO  MICROKIT P/A (PRESENCIA/AUSENCIA) PARA ANALISIS DE AGUAS: KITS PREPARADOS MICROKIT® P/A EN FRASCOS TOMAMUESTRAS

P-A 1

KITS PREPARADOS MICROKIT® P/A

Métodos clásicos

Tradicionalmente el análisis microbiológico de aguas y otros productos que requieren una muestra mínima de 100 ml, se ha realizado por el método de los tubos múltiples por Número Más Probable (MPN) o por Filtración de Membrana (MF).

Ambos métodos suponen importantes manipulaciones, tiempo y un alto coste relativo; además, el segundo requiere aparataje de filtración.

Un tercer método,

el de Presencia/Ausencia (P/A), hace ya casi 3 décadas que fue introducido por MICROKIT en nuestro país y ha demostrado no sólo ser el más cómodo de inocular y el más simple de interpretar…

…sino además el más fiable,  por su mayor sensibilidad;

en efecto, publicaciones americanas anteriores (JACOBS & Co., Mayo/1986, App.Env.Microbiol., Vol. 51, nº 5, pp.1007-1012) ya demostraban una importante ventaja:

nada menos que el 36% de detecciones por P/A, eran falsos negativos con MF y un 18% de detecciones por P/A, eran falsos negativos con MPN.

Kits P/A para aguas de consumo y para las aguas de la industria alimentaria

La nueva Directiva Europea de aguas de consumo humano (3/XI/1998) y el BOE 21/02/2003 obligan a la ausencia de E.coli, Enterococos y Clostridium perfringens y sus esporas en 100 ml de toda agua de consumo, incluidas las que intervienen en fabricación de alimentos. Ello permite aplicar el método más sencillo y sensible (P/A) a partir de ahora.

Validación

Un estudio intercolaborativo realizado en España entre Enero de 1998 y Mayo del 2000, coordinado por esta empresa, con 10 Laboratorios participantes, y 500 muestras comparativas (XII Congreso Nacional de Microbiología de los alimentos, Oviedo, 9/2000), valida las grandes ventajas del método:

No necesita manipulaciones ni aparataje, es más sensible, los microorganismos no se estresan a causa de una filtración o de un cambio de hábitat (aguas salobres o marinas que en filtración dejan de rodear al microorganismo…).

El servicio intercomparativo SEILAGUA 2002-2003 demuestra que el método P/A, con los kits de MICROKIT es, en conjunto, y a la vista de su extraordinaria sensibilidad…

…hasta 5 veces más fiable que el método de Filtración de Membrana, en conjunto  entre los 11 parámetros microbiológicos comparados.

Todos los kits preparados por MICROKIT para P/A, incluyen inactivadores del cloro que pueda contener el agua de muestra.

Se incuban, en general 24 horas a 37 ºC y se leen por virajes de color o turbidez.

Son altamente selectivos pero, como todos los medios de cultivo, y como los otros métodos, no son específicos, por lo que los positivos son presuntos:  requieren posteriores confirmaciones bioquímicas y/o inmunológicas.

Su única limitación es que no permiten recuento sino, como su nombre indica, si es positivo o no el parámetro buscado.

Presentación de los kits P/A MICROKIT.

La presentación de los kits P/A MICROKIT, la gama más completa a nivel internacional, varía en tres formatos (en la imagen, frascos y tubos preparados y estériles, y kits en polvo irradiado prepesado, para economizar costes):

1. Frascos preparados estériles (líquidos).P-A2

 

 

 

 

 

2. Viales o tubos de polvos prepesados irradiados.P-A3

 

 

 

 

 

3. Tubos preparados estériles (líquidos).

4. Botes de 100 g de polvo estéril con cucharilla dosificadora

Para los mayores usuarios de los kits P/A, creamos esta versión muy económica

 

P/A (PRESENCIA/AUSENCIA) COMO MÉTODO DE ANÁLISIS DE AGUAS

Tradicionalmente, las muestras, en la mayoría de productos alimentarios, químicos y cosméticos se consideran suficientes si son de 1 ml (ó 1 g) porque la contaminación microbiana es relativamente elevada.

Cuando hablamos de productos limpios, como los farmacéuticos, las aguas potables y los refrescos, la muestra mínima representativa pasa a ser de 100 ml ó más, dada la baja concentración microbiana esperable, y los métodos tradicionales no sirven.

NMP

De ahí surgió hace muchas décadas el método del Número Más Probable (MPN), para realizar recuentos en líquidos presuntamente poco contaminados con métodos estadísticos.

MF

Posteriormente, la técnica de Filtración de Membrana (MF), desarrollada ya durante la Segunda Guerra Mundial, substituyó a la antedicha…

…por ser más representativa la muestra realmente analizada (100 ml frente a 33 ml, en general), entre otras importantes razones (ver kits UFM de MICROKIT).

Pero cuando en el producto no debe de haber ni un solo microorganismo, como es el caso, por ejemplo, de los coliformes totales, de los coliformes fecales y de los estreptococos fecales en aguas potables…

…entonces el método MPN es inadecuado  y el de MF tambien lo es: dan un exceso de información innecesaria.

P/A

Surge así el método de Presencia/Ausencia (P/A), ideal para detectar la presencia (1 ó más células) o ausencia (ninguna célula) en muestras de hasta 100 ml.

El método P/A es mucho más sensible (tienen muchos menos falsos negativos) que el método MF, pero es menos específico (tienen más falsos positivos).

Por ello es tan útil como screening negativo, para poder procesar un gran número de muestras.

Si el kit da negativo, el resultado es definitivamente negativo.

Pero si el kit sale positivo, hay que confirmar esa muestra aislando en placa e identificando colonias aisladas. 

Todos nuestros kits P/A permiten ahorrar 4-8 horas de incubación si, antes de inocularlos, se precalienta a 37°C la muestra de agua en un baño María.

Nuestros kits están validados para uso en aguas continentales, no marinas ni salinas.

Diseñado y fabricado por LABORATORIOS  MICROKIT, S.L. desde 1.994.

Vídeo sobre los kits P/A:

https://www.youtube.com/watch?v=RTXggKQzPt0

Más actual:

https://youtu.be/6OfsD7zU_8U

Para más información sobre nuestras KITS PREPARADOS MICROKIT® P/A no dude en ponerse en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

https://www.microkit.es/pdf/KITS-PA-AGUAS-EN-FRASCOS-TOMAMUESTRAS.pdf

https://www.microkit.es/monograficos/21-Monograf–a-M–todos-alternativos-en-Control-microbiol–gico-de-aguas.pdf