BRILLIANT GREEN BILE BROTH 2% LACTOSE MUG

BGBL 2% MUG BRILLIANT GREEN BILE LACTOSE BROTH MUG Detección y enumeración de E.coli y resto de coliformes por la técnica NMP.

 COMPOSICIÓN

  • Peptona                                  10,00 g
  • Sales biliares                          20,00 g
  • Lactosa                                   10,00 g
  • Triptófano                                1,00 g
  • MUG                                          0,10 g
  • Verde brillante                         0,01 g

(Fórmula por litro)       pH final: 7,2 ± 0,1 irritante

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO. MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO. AGITE EL BOTE ANTES DE USAR.

PREPARACIÓN

Disolver 41 gramos de medio en 1 litro de agua bidestilada. Dispensar en tubos con campana Durham. Autoclavar a 121 ºC durante 15 minutos. No sobrecalentar ni recalentar.

NOTA: No debe sobrepasarse el tiempo de autoclave ni volver a recalentar el medio.

PRECAUCIÓN: CONTIENE SALES BILIARES.

DESHIDRATADO CODIGO: DMT026

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

DESHIDRATADO: Polvo fino, verdoso

PREPARADO: Estéril, Verde esmeralda

CONTROL DE CRECIMIENTO CUANTITATIVO 24-48 h a 37°C aprox:

  • Escherichia coli MKTA 25922, 9 tubos forman gas y son fluorescentes bajo 366 nm, a 37° y a 44°C.
  • Salmonella abony MKTN 6017, 9 tubos sin gas ni fluorescencia.
  • Enterococcus faecalis MKTA 29212, Inhibido.
  • Klebsiella oxytoca MKTA 13182, 9 tubos con gas, no fluorescentes, sólo a 37°C.

PRESENTACIÓN: MEDIO DESHIDRATADO

NOTA: El compuesto fluorogénico MUG añadido al medio BGBL 2% permite la detección y recuento (NMP) de E. coli de forma rápida y sin necesidad de incubación a 44,5 ºC.

SIEMBRA

Inocular cada tubo con 1 ml de muestra y su serie de diluciones decimales (en NMP, 15 tubos por muestra). Incubar 24-48 horas a 35 ºC aproximadamente.

INTERPRETACIÓN 

La acidificación (viraje a amarillo en los casos más extremos) con producción de gas (retenido en la campana Durham) es prueba positiva para coliformes. Además, la emisión de luz azul bajo 366 nm (linterna MICROKIT) indica presuntos E.coli, confirmables con indol Kovacs (SBH056): anillo rojo, positivo.

 

Si desea más información sobre nuestros MEDIO BRILLIANT GREEN BILE BROTH 2% LACTOSE MUG rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

https://www.microkit.es/fichas/BRILLIANT-GREEN-BILE-BROTH-MUG.pdf

 

CETRIMIDE AGAR (BASE)

 

Cetrimide Agar (Base) – Medio Selectivo para Pseudomonas aeruginosa (Farmacopea USP / ISO 22717)

El Cetrimide Agar (Base) es un medio sólido selectivo diseñado para el aislamiento y diferenciación de Pseudomonas aeruginosa en medicamentos, cosméticos y otros productos según las normas de la Farmacopea USP y la ISO 22717.

Desarrollado conforme a los más altos estándares de calidad microbiológica, este medio favorece la producción de fluoresceína y piocianina, pigmentos característicos que facilitan una identificación rápida y fiable de la especie.

C

⚗️ Composición (por litro)

  • Peptona pancreática de gelatina: 20,0 g
  • Cetrimida: 0,3 g
  • Cloruro magnésico: 1,4 g
  • Sulfato dipotásico: 10,0 g
  • Agar-agar: 13,6 g
  • pH final: 7,2 ± 0,2

Preparación del Medio

  1. Disolver 44,5 g de medio en 1 litro de agua destilada.
  2. Añadir 10 ml de glicerol.
  3. Calentar hasta ebullición, agitando suavemente para su completa disolución.
  4. Autoclavar a 121 ºC durante 15 minutos.
  5. Conservar el bote bien cerrado, en un lugar fresco, seco y protegido de la luz.
  6. Agitar antes de usar.

Uso exclusivo en laboratorio.
Código de producto: DMT034
Presentación: Medio deshidratado (base + suplemento de glicerol)


Control de Calidad

El control de calidad se realiza en nuestro laboratorio, siguiendo la ISO/TS 11133.
Se recomienda repetirlo en el laboratorio del usuario si han transcurrido más de 3 meses sin uso, tras una desinfección general, exposición a altas temperaturas o si el medio presenta alteraciones visuales.

Aspecto del producto:

  • Deshidratado: Polvo grueso, blanco.
  • Preparado: Estéril, color blanco.

Control de crecimiento (48 h a 37 °C o 21–28 °C):

Microorganismo Resultado Observaciones
Pseudomonas aeruginosa MKTA 27853 Bueno, pigmenta Colonias verde-amarillentas fluorescentes; recuento 92–99% respecto a TSA
Burkholderia cepacia MKTA 25416 Correcto Colonias blancas-crema; recuento 72% respecto a TSA
Staphylococcus aureus MKTA 6538P Inhibido
Escherichia coli MKTA 25922 Inhibido

Cumple con una recuperación superior al 92–125% respecto a cepas cuantitativas trazables a la cepa tipo.


Presentación Disponible

  • Tubos: 20 ml
  • Frascos: 100 ml
  • Placas 90 mm y plaquis® 55 mm
  • Medio deshidratado base + suplemento (glicerol)

Características y Aplicaciones

  • Medio selectivo para Pseudomonas aeruginosa según USP XXI.
  • El cetil trimetil amonio bromuro (cetrimida), base de amonio cuaternario, inhibe la flora acompañante.
  • Estimula la producción de pigmentos fluorescentes (fluoresceína y piocianina), indicadores diferenciales de P. aeruginosa.
  • Recomendado para control microbiológico de calidad en medicamentos y cosméticos, de acuerdo con ISO 22717.

Procedimiento de Siembra

  1. Fundir el contenido del tubo o frasco y verter 20 ml en una placa de Petri estéril.
  2. Dejar enfriar hasta solidificar.
  3. Sembrar en estría, en superficie, una muestra del cultivo.
  4. En el caso de placas de contacto, aplicar sobre la superficie unos segundos sin mover.
  5. Incubar a 37 ºC durante 18–42 horas.

Interpretación de Resultados

  • Pseudomonas aeruginosa: Colonias verde-amarillentas fluorescentes (más visibles bajo luz UV de 366 nm, linterna MICROKIT). También pueden observarse tonos marrones.
  • Confirmar la identidad mediante:
    • Tira de citocromo oxidasa (Ref. KOT050).
    • Galerías de identificación MICROKIT® (Ref. 245000).
    • Tubos de caldo Acetamida (Ref.TPL113) con reactivo Nessler (Ref.SDA002)

⚠️ Precauciones de Uso

  • Producto para uso exclusivo en laboratorio.
  • No ingerir ni inhalar.
  • Evitar exposición prolongada a la luz o la humedad.
  • Contiene compuestos de amonio cuaternario (cetrimida), potencialmente irritantes.
  • Usar exclusivamente asas de platino (Ref. VCS147), o desechables de plástico (Ref.302750D), nunca de nicrom.
  • Desechar el material biológico conforme a la legislación medioambiental vigente.

Si desea más información y precios actualizados sobre nuestros MEDIO CETRIMIDE AGAR (BASE) póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16.

https://www.microkit.es/fichas/CETRIMIDE-AGAR.pdf

https://www.microkit.es/monograficos/13-Pseudomonas-aeruginosa-monograf–a.pdf

 

BRILLIANT GREEN LACTOSE BILE 2% BROTH

BGBL BRILLIANT GREEN LACTOSE BILE 2% BROTH (BGBB) Detección y recuento de E.coli y demás coliformes (FIL, IDF, APHA) por NMP

COMPOSICIÓN

  •  Triptona              10,0 gBGBL1
  • Sales Biliares       20,0 g
  • Lactosa                10,0 g
  • V. brillante        13,3 mg

(Fórmula por litro)               pH final: 7,2 ± 0,1

irritante

PREPARACIÓN

Disolver 40 gramos de medio en 1 litro de agua bidestilada. Agitar lentamente para su completa disolución. Repartir en tubos con campana Durham. Autoclavar a 121 ºC durante 15 minutos. El color final del medio es verde esmeralda.

PRECAUCIÓN: CONTIENE SALES BILIARES.

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO. MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO. AGITE EL BOTE ANTES DE USAR. BOTE 500

DESHIDRATADO CODIGO: DMT025

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

DESHIDRATADO: Granulado o polvo, Verdoso

PREPARADO: Estéril, Verde esmeralda

EVALUACIÓN DEL RENDIMIENTO ISO/TS 11133-2  24-48 h a 30 ºC, aplicando el método ISO 4831, o el indicado en el Manual MICROKIT actualizado:

  • Escherichia coli MKTA 25922, 9 tubos turbios forman gas en 1/3 de la campana Durham.
  • Citrobacter freundii MKTA 43864, 9 tubos turbios forman gas en 1/3 de la campana Durham.
  • Salmonella abony MKTN 6017, 9 tubos turbios pero sin gas.
  • Enterococcus faecalis MKTA 29212, Inhibido, no hay turbidez ni gas. Las colecciones TIPO prohiben el uso de su referencia por lo que indicamos la nuestra, directamente trazable a la colección TIPO.

 

PRESENTACIÓN: TUBOS 9 ml CON CAMPANA, MEDIO DESHIDRATADO

NOTA: El caldo lactosado biliado al verde brillante se usa para la detección y enumeración de coliformes totales y fecales. (No confundir con el Agar Verde Brillante, medio para aislamiento de Salmonella). Y de E. coli (test de Mackenzie) en leche, otros alimentos y agua por el método del Número Más Probable. La lactosa permite diferenciar los coliformes, que la fermentan produciendo gas (que queda retenido en la campana Durham). La bilis y el verde brillante inhiben el crecimiento de bacterias Gram positivas. 

SIEMBRA

Inocular cada tubo con 1 ml de muestra y su serie de diluciones decimales (en NMP, 15 tubos por muestra). Incubar 24-48 horas a 35 ºC aproximadamente (coliformes totales) o 44 ºC aproximadamente (coliformes fecales-E.coli). 

INTERPRETACIÓN

La fermentación de lactosa con producción de ácido y gas en 48 horas, indica la presencia de coliformes. Verificar aislando en VRBA. Confirmar E. coli con el test de Mackenzie: Inocular 1 ml del medio con gas en un tubo BGBL y otro en un tubo de Tryptone Water (TW). Incubar a 44 ,5 ºC. E.coli crecerá con gas (BGBL) e indol positivo (TW). Ver también este medio con Mug para una más rápida confirmación de E. coli.

 

Si desea más información sobre nuestros MEDIO BRILLIANT GREEN LACTOSE BILE 2%  BROTH, rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

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BRILLIANT GREEN AGAR (BPLS Edel y Kampelmacher)

BRILLIANT GREEN AGAR (BPLS) Aislamiento selectivo e identificación de Salmonella (USP, ISO 6579, ISO 6785)

COMPOSICIÓN

  •  Extracto de levadura                3,00 g
  • Peptona de carne-caseína     10,00 g
  • Cloruro sódico                           5,00 g
  • Lactosa                                      10,00 gbrillant green
  • Sacarosa                                   10,00 g
  • Hidrógenofosfato disódico      1,00 g
  • Dihidrógenofosfato de sodio  0,60 g
  • Verde brillante                        5,00 mg
  • Rojo de fenol                              0,08 g
  • Agar-agar                                  12,00 g

(Fórmula por litro)                               pH final: 7,0 ± 0,2

 PREPARACIÓN

Disolver 53’6 gramos de medio en 1 litro de agua bidestilada. Calentar, agitando, hasta ebullición, para su completa homogeneización. Repartir en tubos o frascos. Autoclavar a 121 ºC durante 15 minutos, o mejor a 116 ºC durante 5 minutos. El color final del medio es rojizo o verdoso, nunca pardo. No sobrecalentar, ni refundir más de una vez.

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO. MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO. AGITE EL BOTE ANTES DE USAR.

DESHIDRATADO CODIGO: DMT023

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

DESHIDRATADO: Polvo grueso, Rosado PREPARADO: Estéril, Verde-rojizo. El color del medio final depende de las condiciones de almacenamiento y de esterilización.

CONTROL DE CRECIMIENTO 24-48 h a 37°C aproximadamente:

EVALUACIÓN DEL RENDIMIENTO ISO/TS 11133-2  (Aplicando el método ISO 6579, ISO 12824, o el indicado en el Manual MICROKIT actualizado), 24-48 h a 37 ºC:

  • Salmonella abony MKTN 6017, Colonias rosas o blancas. PR > 0,5, en concreto >50-96% de colonias respecto al número de ufc certificadas e inoculadas en TSA; esta variabilidad de la productividad depende de la composición y carga de la flora acompañante inoculada. Si procede de enriquecimiento, buen crecimiento en estría.Salmonella choleraesuis serov. typhimurium MKTA 14028, Bueno, Colonia rosa‑blanca.
  • E. coli MKTA 25922, Inhibición parcial o total, colonias verde-amarillentas.
  • Enterococcus faecalis MKTN 775, Inhibición completa: Ni una sola colonia.
  • Staphylococcus aureus MKTA 6538P, Inhibición completa: Ni una sola colonia.

Las colecciones TIPO prohiben el uso de su referencia por lo que indicamos la nuestra, directamente trazable a la colección TIPO.

PRESENTACIÓN: FRASCOS 100 ml, MEDIO DESHIDRATADO

NOTA: Medio selectivo para Salmonella (excepto S. typhi) en muestras fecales, productos lácteos y otros alimentos (USP XXI), con mejores resultados en cepas procedentes de matrices de origen animal y piensos. El verde brillante inhibe otras enterobacterias y S. typhi, favoreciendo selectivamente al resto de las Salmonella enterotoxigénicas. No confundir con el caldo verde brillante, medio para enumeración NMP de coliformes.

 SIEMBRA

Fundir un frasco a 98 ºC para preparar 5 placas, sin sobrecalentar. Sembrar en superficie o en masa. Incubar a 35-37 ºC aproximadamente, durante 24-48 horas.

INTERPRETACIÓN

Salmonella crece con colonias rosadas con halo rojo. Shigella suele quedar completamente inhibida. Efectuar siembras paralelas en los Agares SS y XLD o bien, Bismuth Sulfite, Hektoen Enteric o Mac Conkey. Escherichia coli puede crecer con colonias poco exhuberantes, verde‑amarillentas y rodeadas por un halo del mismo color. Proteus crece con colonias rojas.

Si desea más información sobre nuestros MEDIO BRILLIANT GREEN AGAR rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

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https://www.microkit.es/monograficos/5-Salmonella-y-Shigella-monograf–a.pdf

 

 

BRILLIANT GREEN AGAR

 

BRILLIANT GREEN AGAR FARMACOPEA (PHENOL RED LACTOSE SUCROSE PRLS AGAR) MEDIO L. Aislamiento selectivo e identificación de Salmonella (USP)
brillant green

COMPOSICIÓN

  • Extracto de levadura                   3,00 g
  • Peptona de carne-caseína       10,00 g
  • Cloruro sódico                             5,00 g
  • Lactosa                                        10,00 g
  • Sacarosa                                      10,00 g
  • Verde brillante                           12,5 mg
  • Rojo de fenol                                 80 mg
  • Agar-agar                                      20,00 g

(Fórmula por litro)               pH final: 6,9 ± 0,2 

PREPARACIÓN

Disolver 58 gramos de medio en 1 litro de agua bidestilada. Calentar, agitando, hasta ebullición, para su completa homogeneización. Repartir en tubos o frascos. Autoclavar a 121 ºC durante 15 minutos, o mejor a 116 ºC durante 5 minutos. El color final del medio es rojizo o verdoso, según el pH, pero nunca debe mantenerse pardo, señal de sobrecalentamiento. No sobrecalentar, ni refundir más de una vez.

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO. AGITE EL BOTE ANTES DE USAR, PARA ASEGURAR  LA  HOMOGENEIZACIÓN DE LOS EVENTUALES GRADIENTES DE DENSIDAD DE LOS COMPONENTES. MUY HIGROSCÓPICO: MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO.

DESHIDRATADO CODIGO: DMT305

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

DESHIDRATADO: Polvo grueso, Rosado

PREPARADO: Estéril, Verde o rojizo.

El color del medio final depende de las condiciones de almacenamiento y de esterilización.

CONTROL DE CRECIMIENTO 24-48 h a 37°C aproximadamente:

  • Escherichia coli MKTA 25922, Pobre, Colonia amarilla‑verde.
  • Salmonella abony MKTN 6017, Bueno.
  • Salmonella choleraesuis serov. typhimurium MKTA 14028*, Bueno, Colonia rosa‑blanca.
  • Staphylococcus aureus MKTA 6538P, Inhibido.

 

PRESENTACIÓN: MEDIO DESHIDRATADO

 

NOTA: Medio selectivo para Salmonella (excepto S. typhi) en medicamentos, muestras fecales, productos lácteos y otros alimentos. El verde brillante inhibe otras enterobacterias y S. typhi, favoreciendo selectivamente al resto de las Salmonella enterotoxigénicas. No confundir con el caldo verde brillante, medio para enumeración NMP de coliformes. 

SIEMBRA 

Sembrar en superficie o en masa. Incubar a 35-37 ºC aproximadamente, durante 24-48 horas.

 

 

INTERPRETACIÓN

Salmonella crece con colonias rosadas con halo rojo. Shigella suele quedar completamente inhibida. Efectuar siembras paralelas en los Agares SS y XLD o bien, Bismuth Sulfite, Hektoen Enteric o Mac Conkey. Escherichia coli puede crecer con colonias poco exhuberantes, verde‑amarillentas y rodeadas por un halo del mismo color. Proteus crece con colonias rojas.

Si desea más información sobre nuestros MEDIO  BRILLIANT GREEN AGAR rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

https://www.microkit.es/fichas/BRILLIANT-GREEN-AGAR-PHARMACOPEA.pdf

https://www.microkit.es/monograficos/5-Salmonella-y-Shigella-monograf–a.pdf

 

 

BRETANOMYCES SELECTIVE MICROKIT AGAR

bretaBRETTANOMYCES SELECTIVE MICROKIT AGAR. Detección y recuento de B.intermedius (=Dekkera bruxellensis) en vinos, barricas y otras fuentes

INTRODUCCIÓN

Brettanomyces intermedius (=Dekkera bruxellensis) es una levadura que en los ultimos tiempos se ha hecho tristemente famosa por el insoportable olor a ratón (o a establo) que produce en los vinos que tienen la mala fortuna de ser infectados por ella, hasta el punto de haberse tenido que quemar ya cientos de barricas para evitar la propagación de este grave deterioro de la calidad del buen vino. Actualmente es el agente de deterioro más temido en las bodegas, deterioro debido a los fenoles volátiles que produce, sobre todo al final de la fermentación alcohólica, justo cuando la bodega ha invertido tantos esfuerzos en sus vinos de crianza.

 COMPOSICIÓN y PRESENTACIÓN

Este medio SELECTIVO y diferencial, fabricado por MICROKIT, contiene agentes nutritivos, selectivos y diferenciales y ha sido diseñado mediante una tesis doctoral por la Universidad de Salamanca y optimizado en colaboración de Laboratorios MICROKIT, S.L, a fin de mejorar los medios y kits que ya existían en el mercado y eran poco selectivos o complejos de manejar. La dificultad de su preparación hace inviable su comercialización en medio deshidratado. La volatilidad de algunos de sus componentes hacen totalmente inútil su intento de preparación en vial líquido para añadir a cartones absorbentes. Por eso la única opción es ofrecerlo en TUBOS PREPARADOS para refundir y elaborar placas en el momento. Y en PLAQUIS® herméticas. La extraordinariamente larga caducidad que conseguimos en los mismos, así como el carácter selectivo y diferencial de nuestra fórmula, hacen de ese producto el más útil y cómodo de emplear del mercado internacional.

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO

MANTENGA LOS TUBOS Y PLAQUIS ® herméticas BIEN CERRADOS EN SU CAJA, EN LUGAR SECO, OSCURO Y FRESCO (entre 4-25°C pero sin oscilaciones de temperatura, que deshidratarían el medio).

CODIGO TUBOS: TPL937. CODIGO PLAQUIS ® herméticas PPL9BT.

 

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 1 mes sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

DESHIDRATADO: No existe. PREPARADO: Estéril, Opaco, con un tono rojo-rosado muy característico de este medio (“colorete cosmético”), con partículas/precipitados blanquecinos.   pH final: 7,0 ± 0,2

CONTROL DE CRECIMIENTO 10-15 días a 28°C aproximadamente:

  • Dekkera bruxellensis desde CBS 74T, Excelente, colonias de color rosado con halos casi transparentes alrededor y olor a vinagre o a ratón característico.
  • Hanseniaspora uvarum desde CBS 314T, Buen crecimiento, pero sin halo ni olor característicos.
  • Hanseniaspora vineae desde CBS 2171T, Buen crecimiento, pero sin halo ni olor característicos.
  • Saccharomyces cerevisiae desde CBS 1171NT, No crece
  • Saccharomyces bayanus desde CBS 380T, No crece.

MODO DE EMPLEO E INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS

Fundir el tubo en agua hirviendo y cuando esté líquido, agitar, enfriando en agua fría. Cuando esté a 50°C, a punto de solidificar, y no antes, voltear suavemente hasta homogeneizar, abrir el tapón y verter en una placa Petri estéril. Dejar solidificar. También si usa PLAQUIS® herméticas preparadas: Inocular en la superficie de la placa preparada 0,5 ml de vino, borras…, extender con asa de Digralsky. Si el vino ya está a final de su crianza o embotellado, depositar sobre el medio la membrana de filtración de 0,45 µm por la que hayamos filtrado 10-100 ml.

Incubar 5-15 días en AErobiosis a (22)-28-30 ºC aprox., en atmósfera húmeda, o bien sellando la placa (si no utiliza PLAQUIS® herméticas de MICROKIT).

Dado el gran acierto de sus componentes, la recuperación es muy superior y mucho más selectiva a la de los otros medios comerciales.

Dar como confirmativas las colonias rosas, rodeadas de un halo transparente y rojo (por redisolución del carbonato) que se ve mejor sin membrana y con olor a vinagre, ratón, establo o cuero.

Si desea más información sobre nuestros MEDIO BRETTANOMYCES SELECTIVE MICROKIT AGAR, rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

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BRAIN HEART INFUSION BROTH

BRAIN HEART INFUSION BROTH BHI Detección de microorganismos de crecimiento difícil, revitalización, coagulasa (ISO 6888 e ISO 5944)

 COMPOSICIÓN

  • Extracto cerebro-corazón                   17,5 g
  • Peptona pancreática de gelatina       10,0 g
  • Cloruro sódico                                         5,0 g
  • Fosfato disódico                                      2,5 g
  • Glucosa                                                     2,0 g

(Fórmula por litro)               pH final: 7,4 ± 0,2

 MATERIAL PROCEDENTE EXCLUSIVAMENTE DE CERDO.

 PREPARACIÓN.

Disolver 37 gramos de medio en 1 litro de agua bidestilada. Repartir en tubos o frascos y esterilizar en autoclave a 121 ºC durante 15 minutos. El color final del medio es ámbar. No sobrecalentar, para evitar el oscurecimiento por caramelización del medio.

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO MANTENGA EL BOTE BIEN BHI BROTHCERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO. AGITE EL BOTE ANTES DE USAR.

DESHIDRATADO CODIGO: DMT022

 CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

DESHIDRATADO: Polvo fino, Tostado

PREPARADO: Estéril, Ambar precipitado

EVALUACIÓN DEL RENDIMIENTO s/ISO/TS 11133-2,  24-48 h a 37 ºC, aplicando el método indicado en el Manual MICROKIT actualizado:

  • Staphylococcus aureus MKTA 6538P, Excelente: Tras 24 h a 37°C, turbidez de ligera a elevada.
  • Escherichia coli MKTA 25922, Excelente.
  • Pseudomonas aeruginosa MKTA 9027, Excelente.
  • Candida albicans MKTA 10231, Excelente.
  • Aspergillus niger MKTA 16404, excelente.
  • Bacillus subtilis MKTA 6633, Excelente.

Las colecciones TIPO prohiben el uso de su referencia, por lo que indicamos la nuestra, directamente trazable a la colección TIPO.

PRESENTACIÓN: TUBOS PREPARADOS, FRASCOS PREPARADOS, MEDIO DESHIDRATADO.

NOTA: Caldo común para el crecimiento de patógenos que habitualmente no crecen en otros caldos generales. En un estudio intercolaborativo entre todos los caldos generales, el BHI Broth ha resultado el de máxima recuperación de patógenos y el segundo, tras LPT Broth, para recuperación de flora total incluso en productos con conservantes (cosméticos), demostrando así contener inactivadores naturales. (Estudio comparativo entre los distintos caldos de cultivo generales, SANCHIS, J., XI Congreso Nacional de Microbiología de los Alimentos, Pamplona, 9/1998)

MODO DE EMPLEO E INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS

Inocular 1 gramo de muestra en un tubo de 9 ml (o bien 10 gramos en 100 ml ó 25 g en 225 ml). Incubar a las condiciones óptimas del microorganismo que se busca (a falta de otro criterio, 24-72 horas a 35-37 ºC aproximadamente). La recuperación es mucho mejor a la de otros medios generales, incluso en productos con conservantes, no sólo para los microorganismos de crecimiento difícil, sino también para recuentos totales posteriores a las diluciones (pero, precaución, la rápida formación de metabolitos podría inhibir la flora tras 48 h de incubación). Para la detección de coagulasa, incubar 22-26 h a 35-37 °C y, tras 4-6 h de añadir 0,3 ml de plasma de conejo, a 35-37°C, el coágulo supera la mitad del volumen original.

Si desea más información sobre nuestros MEDIO BRAIN HEART INFUSION BROTH,  rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

https://www.microkit.es/fichas/BRAIN-HEART-INFUSION-BROTH.pdf

 

BRAIN HEART INFUSION AGAR

CEREBRO CORAZÓN BRAIN HEART INFUSION AGAR. Detección de microorganismos difíciles y de la estafilocoagulasa.

BHI AGAR1

COMPOSICIÓN

  • Extracto corazón‑cerebro       17,5 g
  • Peptona pancreát.gelatina      10,0 g
  • Cloruro sódico                       5,0 g
  • Fosfato disódico                    2,5 g
  • Glucosa                                  2,0 g
  • Agar-Agar                              10,0 g

(Fórmula por litro)

pH final : 7,1 ± 0,2

 MATERIAL PROCEDENTE EXCLUSIVAMENTE DE CERDO

PREPARACIÓN

 

Disolver 47 gramos de medio en 1 litro de agua bidestilada. Calentar hasta ebullición, agitando, para su total homogeneización. Repartir en tubos o frascos y esterilizar en autoclave a 121 ºC durante 15 minutos. No sobrecalentar, para evitar el oscurecimiento y caramelización del medio.

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO. AGITE EL BOTE ANTES DE USAR.

DESHIDRATADO CODIGO: DMT021

BHI AGAR2

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

 

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

 

DESHIDRATADO: Polvo fino, Tostado

PREPARADO: Estéril, Ambar precipitado

 

CONTROL DE CRECIMIENTO 24-48 h a 37°C aproximadamente:

  • Aspergillus niger MKTA 16404, Excelente, colonias algodonosas, amarillas, discretas. Con respecto a PCA estandarizado*, recuento medio 81 %.
  • Candida albicans MKTA 10231, Excelente, redondas, bien desarrolladas. Con respecto a PCA estandarizado*, recuento medio 99 %.
  • Bacillus subtilis MKTA 6633, Excelente, colonias expandidas, discretas. Con respecto a PCA estandarizado*, recuento medio 118 %.
  • Staphylococcus aureus MKTA 6538P, Excelente, colonias redondas, discretas. Con respecto a PCA estandarizado*, recuento medio 102 %.
  • Pseudomonas aeruginosa MKTA 9027, Excelente, colonias grandes, lenticulares, pigmentadas. Con respecto a PCA estandarizado*, recuento medio 177 %.
  • Escherichia coli MKTA 25922, Excelente, colonias grandes, lenticulares. Con respecto a PCA estandarizado*, recuento medio 90 %.

 

* El que cumple con recuperación superior al 92-125% con respecto a cepas cuantitativas trazables a cepa tipo.

 

PRESENTACIÓN: FRASCOS PREPARADOS, MEDIO DESHIDRATADO

 

 

MODO DE EMPLEO E INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS

 

Inocular en superficie 0,1 ml de muestra o de caldo BHI. Incubar el tiempo y a la temperatura óptimos para el microorganismo que se desea aislar (a falta de otro criterio, 24-72 horas a 35-37 ºC aproximadamente). Dada la riqueza de sus componentes, la recuperación (tanto de recuento total como de patógenos) es superior a la de otros medios generales

 

Si desea más información sobre nuestros MEDIO BRAIN HEART INFUSION AGAR, rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

https://www.microkit.es/fichas/BRAIN-HEART-INFUSION-AGAR.pdf

 

BLOOD AGAR (BASE)

 

Agar Sangre (Blood Agar Base sin Sangre) optimizado para Laboratorio

 

1. Descripción General y Aplicaciones Clave

El Agar Sangre (Base sin Sangre) es un medio de cultivo fundamental e indispensable en microbiología, diseñado para la detección precisa y el aislamiento de una amplia gama de patógenos hemolíticos y microorganismos con requerimientos nutricionales complejos.

¿Por qué elegir nuestro Agar Sangre? Ofrece una base rica en nutrientes que, tras la adición de sangre, se convierte en el medio ideal para el recuento total de microorganismos y la confirmación de patógenos críticos.

Aplicaciones y Detecciones Cruciales:

  • Detección de Patógenos Hemolíticos: Aislamiento y caracterización de microorganismos que exhiben actividad hemolítica (lisis de glóbulos rojos).
  • Confirmación y Aislamiento de Referencia:
    • Listeria monocytogenes (Según normas ISO 11290-1 y 11290-2).
    • Legionella pneumophila (Según norma ISO 11731), aunque puede sustituir a otros medios sin Cisteína (Nutrient Agar, TSA, YEA) en casos específicos.
    • Clostridium perfringens, estreptococos, estafilococos y otros microorganismos de crecimiento difícil.
  • Controles de Calidad Ambiental: Ideal para muestreos y controles de contaminación en laboratorios farmacéuticos y entornos estériles.

 

2. Composición Nutricional Detallada 

Nuestra fórmula estandarizada garantiza un crecimiento microbiano robusto y reproducible. Los componentes clave incluyen una combinación óptima de péptidos y nutrientes.

Componente Cantidad por Litro (g) Función Principal
Peptona de carne 15,0 g Fuente primaria de Nitrógeno de alta calidad y aminoácidos.
Extracto de Levadura 5,0 g Aporta Vitaminas del grupo B y oligoelementos esenciales.
Cloruro Sódico 5,0 g Mantiene el equilibrio osmótico del medio.
Agar-Agar 15,0 g Agente solidificante.
Digestato enzimático de hígado 2,5 g Nutriente secundario que mejora la riqueza del medio.

pH Final de la Base (preparada): $7.2 \pm 0.2$


 

3. Procedimiento Profesional de Preparación

Para garantizar los mejores resultados en su laboratorio, siga rigurosamente los siguientes pasos de preparación de la base deshidratada:

  1. Disolución: Disuelva cuidadosamente 42.5 gramos del medio deshidratado en 1.0 litro de agua bidestilada.
  2. Homogeneización: Caliente la mezcla hasta alcanzar la ebullición mientras agita constantemente para asegurar la completa disolución de los componentes.
  3. Esterilización: Reparta el medio en frascos o tubos y autoclave a 121 °C durante 15 minutos.
  4. Adición de Sangre: Deje enfriar la base esterilizada. Luego, incorpore asépticamente 5-7 mL de sangre estéril desfibrinada de cordero o caballo por cada 100 mL de medio.
    • Nota importante: Evite cualquier recalentamiento tras añadir la sangre para preservar sus propiedades.

 

4. Directrices de Siembra e Interpretación

Siembra

  • Método: Siembre la muestra por estría o extensión en la superficie del agar.
  • Incubación: Incube las placas a una temperatura de 35 °C ó 37 °C (aproximadamente) durante 24 horas.

 

Interpretación de Resultados (Actividad Hemolítica)

La actividad hemolítica es la clave para la identificación preliminar en este medio:

Tipo de Hemólisis Apariencia en la Placa Significado
alpha-Hemólisis Colonias rodeadas de un pequeño halo de lisis, a menudo verdoso. Lisis parcial de los glóbulos rojos.
Beta-Hemólisis Colonias rodeadas de un halo grande, claro y transparente. Lisis completa de los glóbulos rojos (ej. S. pyogenes). Máxima capacidad patogénica
Gamma-Hemólisis Crecimiento sin halo alrededor de la colonia. Ausencia de actividad hemolítica (No hemolítico).

 

5. Control de Calidad y Almacenamiento

Garantía de Calidad:

Nuestra fórmula deshidratada es de Polvo Beige (deshidratado) y adquiere un color Rojo Cereza Estéril (preparado con sangre) o Ámbar (base sin sangre).

Se realizan rigurosos controles de crecimiento en nuestro laboratorio (24-48 h a $\text{37 °C}$). Es una buena práctica profesional que usted repita el control de calidad si cambian las condiciones de almacenamiento (más de 3 meses sin usar, cambios de temperatura, desinfección reciente del laboratorio, o apariencia extraña).

Cepa de Referencia Resultado Típico Actividad Hemolítica
Escherichia coli MKTA 25922 Excelente Crecimiento $\beta \text{-Hemolítico}$
Enterococcus faecalis MKTA 29212 Excelente Crecimiento No Hemolítico ($\gamma$)
Streptococcus pyogenes MKTA 19615 Excelente Crecimiento $\beta \text{-Hemolítico}$
Listeria monocytogenes MKTA 7644 Excelente Crecimiento $\beta \text{-Hemolítico}$

Almacenamiento y Uso Responsable:

  • Uso Exclusivo en Laboratorio.
  • Almacenamiento: Mantenga el bote bien cerrado en un lugar seco, fresco y oscuro para preservar su integridad.
  • Recomendación: Agite el bote antes de cada uso.

Código del Producto Deshidratado: DMT020

BOOD AGAR 1

Arriba: alfa, Beta y Gamma hemólisis en agar sangre

bood agar 2

 

Si desea más información y precios actualizados sobre nuestro MEDIO BLOOD AGAR (BASE) póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

https://www.microkit.es/fichas/BLOOD-AGAR-BASE.pdf

 

BISMUTH SULFITE WILSON-BLAIR SALMONELLA AGAR

BISMUTH SULFITE WILSON-BLAIR SALMONELLA AGAR. Aislamiento selectivo e identificación de Salmonella (USP, FIL, FDA, APHA, UNE 34-818, ISO 6579)

WILSON BLAIR 1

COMPOSICIÓN

  • Polipeptona                           10,00 g
  • Verde brillante                       25,00 mg
  • Dextrosa                                5,00 g
  • HidrogenoFosfato Disódico   4,00 g
  • Sulfato ferroso                       0,30 g
  • Citrato de amonio y bismuto 1,85 g
  • BiSulfito sódico                     6,15 g
  • Agar-agar                               20,00 g

(Fórmula por litro)       pH final: 7,7 ± 0,2

 PREPARACIÓN

Disolver 47’3 gramos de medio en 1 litro de agua bidestilada. Para seguir la norma UNE 34-818-85, se deben añadir 5 g/l de bilis de buey (DMT120). Calentar hasta ebullición, agitando, para su total homogeneización. Mantener la ebullición durante 2 minutos. No autoclavar. El medio aumenta su caracter inhibitorio y paralelamente, su color verdoso, con el tiempo, por lo que se recomienda usar en la misma semana de su preparación, cuando su selectividad es óptima.

WILSON BLAIR 2

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO. MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO.  AGITE EL BOTE ANTES DE USAR.

DESHIDRATADO CODIGO: DMT019

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

WILSON BLAIR 3

DESHIDRATADO: Polvo fino, Verde

PREPARADO: Estéril, Verde, precipitado, más verde cuanto más viejo e inhibitorio se va haciendo el medio.

CONTROL DE CRECIMIENTO 48 h a 37°C aproximadamente:

  • Enterobacter aerogenes MKTA 9489, Escaso.
  • Escherichia coli MKTA 25922, Escaso, Colonia marrón‑verde.
  • Salmonella abony MKTN 6017, Excelente, colonia negra.
  • Shigella flexneri MKTA 12022, Escaso, Colonia marrón.
  • Enterococcus faecalis MKTA 29212, Inhibido.

PRESENTACION: MEDIO DESHIDRATADO

NOTA: Medio selectivo para el aislamiento de Salmonella, recomendable sobre todo para Salmonella typhi (APHA, USP), asi como para S.september en productos de la pesca. Las Salmonella reducen el sulfito sódico en presencia de glucosa, por lo que sus colonias son negras, rodeadas por una zona de brillo metálico. E.coli, Proteus y la flora secundaria Gram negativa quedan inhibidos por la presencia del verde brillante con citrato amónico, bismuto y sodio.

No confundir con Sulfite Iron Wilson Blair Agar para Clostridium.

 SIEMBRA 

Sembrar las placas recientes (las placas pierden su selectividad en 72 h) en superficie, por agotamiento. Incubar 24-48 horas a 37 ºC aproximadamente. Se recomienda sembrar en paralelo en otros medios selectivos (Brilliant Green Agar, SS Agar, XLD Agar, Hektoen Enteric Agar, MacConkey Agar…).

 INTERPRETACIÓN

 Salmonella typhi crece con colonias negras con brillo metálico, otras Salmonella son negras o verdes.

Si desea más información sobre nuestros MEDIO BISMUTH SULFITE WILSON-BLAIR SALMONELLA AGAR rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

https://www.microkit.es/fichas/BISMUTH-SULFITE-WILSON-BLAIR-SALMONELLA-AGAR.pdf

https://www.microkit.es/monograficos/5-Salmonella-y-Shigella-monograf–a.pdf