Archivo de la categoría: Microbiología de Alimentos

Optimización en los análisis microbiológicos de ALIMENTOS.
Nuevos métodos de análisis microbiológicos utilizados exitosamente en los laboratorios líderes

ANAEROBIOSIS: KITS GENERADORES

11 respuestas

 

Kits Generadores y Controladores de Atmósfera de Anaerobiosis

ANAEROKIT y ANAEROTEST: Soluciones para la Anaerobiosis y el Control

Estos kits son esenciales para el cultivo de microorganismos que requieren ambientes con bajo o nulo contenido de oxígeno (anaerobios estrictos, facultativos o microaerófilos).

Principio de Funcionamiento de los Generadores (Anaerocult, AnaeroKIT)

Los generadores contienen componentes químicos (Tierra de diatomeas, Hierro, Ácido Cítrico y Carbonato Sódico) que:

  1. Fijan químicamente el oxígeno del aire dentro del recipiente o bolsa.
  2. Generan anhídrido carbónico ().
  3. Velocidad: El nivel máximo de atmósfera deseada se alcanza en aproximadamente 30 minutos y se mantiene durante varias horas.

A. Kits Generadores de Anaerobiosis Completa

Estos productos generan un ambiente totalmente anaerobio para el cultivo de anaerobios estrictos y facultativos.

1. ANAEROCULT A (Para Jarras)

Referencia Formato Uso Capacidad de la Jarra
KKM036 Caja de 10 unidades Generador de atmósfera en un recipiente de . Hasta 25 Plaquis, 20 Ecoplaquis o 7 placas de .

Modo de Empleo:

  1. Preparar Control: Humedezca una tira de Anaerotest (KKM039) con una gota de agua y fíjela en la gradilla de las placas.
  2. Cargar la Jarra: Introduzca las placas con el Anaerotest en la jarra de anaerobiosis.
  3. Activar el Generador: Añada de agua al papel de una bandeja de Anaerocult A, distribuyéndolos homogéneamente.
  4. Sellar: Antes de 20 segundos, coloque la bandeja verticalmente en la jarra (con la cara mojada mirando hacia las placas) y cierre la jarra inmediatamente.
  5. Incubar y Controlar:
    • Introduzca la jarra en la estufa.
    • Después de , compruebe que el Anaerotest haya virado de azul a blanco (indicando anaerobiosis correcta), sin abrir la jarra.
    • Conservación: Bien cerrado y al abrigo de la humedad, entre y .

2. ANAEROKIT (Para Bolsas Individuales)

Referencia Formato Uso
KKT001 Caja de 25 unidades Generador de atmósfera para bolsas individuales (placas de Petri).

Modo de Empleo:

  1. Preparar Control: Humedezca una tira de Anaerotest (KKM039) con una gota de agua y fíjela en el exterior de la placa, sobresaliendo la zona reactiva.
  2. Activar el Generador: Introduzca un bote de Anaerokit en una bolsa de incubación y humedézcalo con de agua.
  3. Sellar: Introduzca inmediatamente las placas con el Anaerotest y cierre la bolsa herméticamente con un Anaeroclip (KKM100).
  4. Incubar y Controlar:
    • Incube en la estufa.
    • Después de , controle que el Anaerotest haya virado de azul a blanco (anaerobiosis correcta).
    • Conservación: Al abrigo de la humedad, entre y .
    • Nota: Solicite un Anaeroclip sin cargo con su primer pedido de Anaerokit.

B. Kits Generadores de Microaerofilia

Estos productos crean una atmósfera pobre en oxígeno, ideal para microorganismos microaerófilos como Campylobacter.

Producto Referencia Modo de Empleo
ANAEROCULT C KKM101 (Caja 10 u) Usar siguiendo las instrucciones del Anaerocult A (Para Jarra).
ANAEROCULT C-MINI KKM037 (Caja 25 u) Usar siguiendo las instrucciones del Anaerokit (Para Bolsa).

C. Control de Anaerobiosis

ANAEROTEST (Indicador Químico)

Referencia Formato Uso
KKM039 Caja de 50 tiras Indicador de Azul de Metileno para verificar la correcta anaerobiosis.

Modo de Empleo:

  1. Humedezca la zona reactiva con $\mathbf{1\,\text{gota de agua destilada}$.
  2. Introduzca la tira en la jarra o bolsa junto al generador (, , etc.).
  3. Cierre e incube.
  4. Verificación: Confirme a las $\mathbf{4-6\,\text{horas}$ que el indicador ha virado de azul a blanco, señalando que se ha alcanzado la anaerobiosis.
  5. Conservación: Bien cerrado en su tubo, en zona seca.

Recordatorio Importante

Si utiliza el TSC o el SPS Agar en formato kit Quanti P/A-Clostricult, no necesita incubar en atmósfera de anaerobiosis, ya que el medio en polvo ya incluye esta característica.

Contacto: Para consultas y conocer los precios actualizados, llame al 91-897 46 16 o escriba a microkit@microkit.es

https://www.microkit.es/fic

 

E COLI-COLIFORMES MCC® +/- EN TUBO:

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E COLI-COLIFORMES MCC® +/- EN TUBO: NUEVO KIT DE DETECCIÓN Kit para la detección positiva o negativa

tubos MCC

Detección rápida E.coli: tubos MCC P/A para control de su presencia o ausencia en 1 gramo ó mililitro de muestra

La detección de E.coli en microbiología alimentaria e industrial es un proceso

necesario y, a menudo, poco sencillo. El Mercado Internacional es rico en kits que identifican E.coli, pero a partir de colonias que han tardado 1 ó 2 días en crecer previamente en medios de cultivo sólidos. Con ello, la confirmación de la presencia/ausencia de E.coli necesita de varias manipulaciones y, además viene a tardar 48-72 horas, tiempo que, a menudo, resulta excesivo en productos perecederos y que obliga a la industria a una fuerte inversión en stock de producto acabado (lotes de 2-3 días esperando el visto bueno microbiológico).

Presentamos el KIT DE DETECCION POSITIVOS/NEGATIVOS elaborado en España por MICROKIT que permite la confirmación de E.coli en las primeras 4‑24 horas a partir de la muestra inicial. Además, permite la detección de coliformes en el mismo tiempo, dato que, a menudo, también exige la legislación de nuestro país. Si necesita hacer recuento de E.coli, nos remitimos a nuestro Kit de Recuento E coli – MUG PLUS (Ver más adelante). También disponemos de viales de 2 ml con caldo MUG PLUS, para la técnica de Filtración de Membrana (FPL400), así como de los medios deshidratados con MUG en caldo y en agar: MICROKIT COLICULT MCC (DMT900-) ( con el que se elabora el Kit E coli MCC +/- en tubo) y MUG PLUS AGAR (DMT400-) (con el que se elabora el KIT de recuento E. coli-MUG-PLUS).

PRINCIPIO, EFECTIVIDAD Y LIMITACIONES

Adicionado a los medios de cultivo selectivos para coliformes, el compuesto fluorogénico 4‑metil‑umbeliferil‑beta‑D‑glucurónido (MUG) posibilita la detección directa de E.coli. El MUG, hidrolizado por el enzima beta‑glucuronidasa, presente en la mayor parte de las cepas de E.coli (97%), libera el compuesto 4‑metil‑umbeliferona, fuertemente fluorescente cuando se observa bajo luz ultravioleta de 366 nm (suministrada en cómoda y económica linterna por MICROKIT).

Todas las cepas analizadas por FENG & HARTMAN (1982, Fluorogenic Assay For Inmediate Confirmation of E.coli, App.Env.Microbiol., 43, 1320) de E.coli enteropatógenos han sido beta-glucuronidasa positivas, incluido el patógeno E.coli O124 que con el método clásico no se detecta, al ser anaerogénico.

Se ha definido a los coliformes como las enterobacterias capaces de fermentar la lactosa produciendo gas. Un método más moderno es el sustrato cromogénico X-Gal, que vira el medio a azul turquesa en presencia de coliformes.

Con el primer componente del kit, los tubos de E.coli MCC +/- Broth MUG, se analiza la fluorescencia (excelente dada la falta de color del medio), y la reacción de coliformes por viraje a azul tras la incubación. El medio no necesita temperatura selectiva de 44,5º durante 24‑48 horas, aunque puede usarse si se desea. Una sóla célula de E.coli queda detectada en menos de 24 horas. Además, se pueden obtener resultados positivos desde las 4 horas de incubación, dependiendo de la concentración inicial de E.coli.

No hay falsos negativos: Se detectan el 100% de las cepas de E.coli enterotoxigénicas, aunque no produzcan gas ni fermenten la lactosa y aunque sean sensibles a altas temperaturas de incubación y a medios selectivos. Se detectan las cepas anaerógenas, que representan el 5% de las cepas de E.coli aislado en alimentos. No interfiere la presencia de Proteus vulgaris, que en las técnicas conveccionales puede suprimir la producción de gas por E.coli. Tampoco interfiere la presencia de otras enterobacterias. Por tanto, NO HAY falsos negativos. El 3% de E.coli es beta-glucuronidasa negativo, por lo que no da fluorescencia, pero virará el medio a azul por ser coliformes.

La debilidad de algunas cepas de E.coli en la emisión de fluorescencia con MUG hace recomendable la utilización del MUG REVELATION REAGENT, que se incorpora en el kit como segundo componente.

Añadiendo una gota a los tubos de E.coli MCC +/- Broth, se realza la fluorescencia de los tubos positivos de forma sorprendente e inmediata.

Según VAIANI et.col. (1985, Identificazione di E.coli su terreni contenenti MUG, Comunicazione Convegno AMCLI Lombarda, Varenna, 21/6/1985), existen cepas de Citrobacter, Klebsiella, Enterobacter, Serratia, Salmonella y Shigella, capaces de dar falsos positivos con MUG, es decir, fluorescencia. Por ello deben confirmarse los caldos fluorescentes con la prueba del indol, incorporada en el kit como tercer componente. Sólo E.coli es indol positivo.

MODO DE EMPLEO

  1. Sembrar en un tubo de E.coli MCC +/- Broth:
  • 1 ml de la muestra líquida.
  • 1 gramo desmenuzado de la muestra sólida.
  • 1 membrana de filtración enrollada por la que se hayan filtrado 100‑250 ml de muestra de agua (VAC073)
  • 1 escobillón (MICROKIT VSN251) humedecido con agua destilada estéril (MICROKIT TPL001) con el que se haya barrido una superficie de trabajo de 25 cm cuadrados.
  • 1 colonia que deseemos identificar.

2. Incubar a 37 ºC durante 18-24 horas (sólo 4-24 h. si partimos de colonia).La turbidez y el viraje a azul son indicadoras de presencia de coliformes.

3. Leer en completa oscuridad con la luz de 366 nm, preferiblemente añadiendo al tubo una gota de MUG REVELATION REAGENT. Este reactivo debe añadirse SIEMPRE que no haya fluorescencia, y cuando la fluorescencia es dudosa.

La presencia de fluorescencia azulada demuestra la presencia de E.coli de forma presuntiva. Un tubo no inoculado sirve como control negativo de fluorescencia. Se adjunta un tubo control positivo de fluorescencia que, aunque no tiene E.coli, sino productos químicos fluorogénicos, no debe abrirse para evitar su contaminación.

La ausencia de fluorescencia tras 24 horas de incubación descarta la presencia de E.coli.

4. Confirmar añadiendo 0,5 ml del reactivo INDOL Kovacs.

La aparición de un anillo rojo cereza en superficie en unos segundos es prueba confirmativa de presencia de E.coli. Es el conjunto de los tres test (viraje de X-Gal a azul, MUG e INDOL) y no cada uno por separado, lo que hace de este kit el método más cómodo, rápido y fiable del mercado para la detección de E.coli.

linterna

PRESENTACION

Kit completo de detección +/- de E.coli (KMT099+):

  1. 20 tubos de E. coliMCC+/-Broth (TPL637).
  2. 1 frasco de 5 ml de MUG REVELATION REAGENT (KBH064).
  3. 1 frasco de 5 ml de reactivo INDOL (SDA056).
  4. 1 tubo de control positivo de fluorescencia (VMT056).
  5. 1 linterna ultravioleta de 366 nm (VMT050).

MATERIAL NECESARIO NO INCLUÍDO:

  • Ø Estufa a 35-37 ºC (VRP001), Linterna UVA para E.coli (VMT050).
  • ØZona aséptica: Lámpara de alcohol (VLM068) y Envirostéril (VJM002) si no se dispone de cabina de flujo laminar.
  • ØCepas de referencia, de trabajo o cuantitativas para validar los reactivos una vez llegados a fábrica o tras almacenamientos prolongados o inadecuados. Como control positivo puede usar una cepa de E.coli (CRIOSTRAIN MKTA 25922).
  • ØParticipación en servicios intercomparativos como SEILA para validar los procedimientos y los operarios.

Si se desea, los componentes se proporcionan por separado. Los tubos MCC +/- Broth en pedidos de 200 unidades ó más, resultan mucho más económicos. La caducidad es de un año. La duración del fluorescente de luz ultravioleta de 366 nm es de 100 horas; en la práctica, y por cuestión de ahorro de pilas, de varios años.

Para más información no dude en ponerse en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

https://www.microkit.es/fichas/MCC-COLICULT-CHROMOFLUOROGENIC-BROTH.pdf?v=2023

 

AUTOCLAVE: PRODUCTOS AUXILIARES IV: VIALES DE ESPORAS PARA CONTROL BIOLÓGICO Y VALIDACIÓN DEL CICLO DEL AUTOCLAVE:

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Control Biológico de Ciclo de Autoclave: Viales EZ Test

Los Viales EZ Test son indicadores biológicos diseñados para garantizar el correcto funcionamiento del ciclo de autoclavado en la esterilización de medios de cultivo, material de laboratorio y conservas. Son especialmente útiles para comprobar que los autoclaves operan sin oscilaciones de temperatura peligrosas, según las normativas USP. A diferencia de otras marcas, permiten validar el ciclo del autoclave  específico de los medios  de  cultivo (y no sólo el del material fungible)viales control autoclave

Características Clave

Componente Especificación
Microorganismo Indicador Bacillus stearothermophilus ( esporas/ml), el más resistente al calor húmedo.
Medio Caldo de cultivo con indicador de de color lila (original).
Resistencia Mínima Las esporas resisten durante $\mathbf{5\,\text{minutos}$.
Esterilización Objetivo La población de esporas es destruida tras a .
Ventajas sobre otros Indicadores

 

  • Seguridad y Riesgo Cero: A diferencia de las ampollas, no contienen vidrio frágil que pueda romperse al caer, eliminando el riesgo de contaminación por esporas. El filtro del tapón también impide cualquier fuga.
  • Viraje Biológico: A diferencia de las tiras indicadoras químicas, el resultado se basa en la viabilidad del microorganismo (crecimiento vs. muerte), lo que ofrece una prueba más robusta de esterilización.
  • Fácil Manejo: Solo se recomienda para ciclos estándar de a .

MODO DE EMPLEO

1. Preparación y Autoclavado

  1. Colocación: Coloque dos viales (se recomienda duplicado) en la zona menos caliente del autoclave. Si el autoclave es grande (), use varios viales espaciados.
  2. Procesar: Proceda con el ciclo de autoclavado deseado.
  3. Control Negativo: Prepare un vial de control no autoclavado pero sí activado.

2. Activación e Incubación

  1. Activación: Tras el ciclo de autoclavado, apriete cada vial (incluido el control) hasta que el vidrio interno se rompa, liberando el medio de cultivo.
  2. Incubación:
    • Incube todos los viales en posición vertical a .
    • Tiempo: $\mathbf{4-48\,\text{horas}$.

3. Interpretación de Resultados

Vial Resultado Correcto (Esterilización ) Resultado Incorrecto (Fallo ✖)
Vial Autoclavado Permanece lila (color original). Gira a amarillo y se enturbia (crecimiento de esporas supervivientes).
Vial Control Debe virar a amarillo (confirma la viabilidad inicial de las esporas). Permanece lila (Test no válido; esporas caducadas o muertas prematuramente).

Precauciones y Almacenamiento

  • Temperatura de Incubación: No incubar a , ya que el Bacillus stearothermophilus no crece a esa temperatura.
  • Posición de Incubación: No incubar más de 48 horas ni en posición horizontal para evitar la evaporación del caldo a través del filtro del tapón.
  • Almacenamiento: Mantener a . Desechar cualquier vial que esté amarillo o turbio de origen.
  • Desecho: Elimine los viales usados mediante un autoclavado final de, al menos, $\mathbf{15\,\text{minutos}$ a $\mathbf{121\,^\circ\text{C}$.
  • Control Físico: Se recomienda controlar en paralelo con un termómetro de máxima, ya que muchos fallos del autoclave se deben a no alcanzar los .

Opciones Adicionales

  • Viales para Ciclos Suaves: También están disponibles viales con esporas de Bacillus subtilis (caldo color naranja) para validar ciclos de autoclave menos agresivos (ej. durante ), ideales para proteger azúcares y vitaminas en medios de cultivo.
  • Otros Usos: Existen viales equivalentes para control de esterilización por óxido de etileno (Ref. VG24802).

Formatos: Cajas de 20 unidades (Ref. VMT292-). Incubador disponible (Ref. 573714).

https://www.microkit.es/fichas/AUTOCLAVE-PRODUCTOS-AUXILIARES.pdf

Para más información y precios actualizados no dude en ponerse en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

M-IDENT®-Bacillus cereus

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Kit de Confirmación de Bacillus cereus en Alimentos

Referencia: Kit de 6 Test.

Este kit está diseñado para la confirmación de colonias sospechosas de Bacillus cereus aisladas en Agar Mossel, siguiendo los criterios de la Norma ISO 7932:1998.BACILUS CEREUS

Ventaja Principal: Extremadamente larga caducidad, de 1 año asegurado.

Contenido del Kit (Para 6 Pruebas)

El kit proporciona todos los medios y reactivos necesarios para realizar 6 pruebas completas de confirmación:

Componente Tipo de Medio Formato Cantidad Observaciones
1. Agar DTA-Polimixina Sólido inclinado Tubo violeta 6 Para la prueba de /crecimiento.
2. Caldo MRVP Líquido Tubo incoloro-paja 6 Para la prueba Voges-Proskauer ().
3. Medio Nitratos-Movilidad Semisólido Tubo incoloro 6 Para las pruebas de Nitratos y Movilidad.
4. Reactivos Voges-Proskauer () Reactivos 1 + 2 Goteros ($\mathbf{5\,\text{ml}$ c/u) 1 kit Irritante.
5. Reactivos de Nitratos Reactivos Nitratos + Goteros ($\mathbf{5\,\text{ml}$ c/u) 1 kit Irritante.
Componentes NO Incluidos

El kit no incluye cepas de control ( o ) ni la participación en servicios intercomparativos () para la validación de procedimientos y operarios.

MODO DE EMPLEO e Interpretación

1. Inoculación e Incubación

  1. Muestra: Utilice una porción de una colonia pura y sospechosa de B. cereus procedente de Agar Mossel.
  2. Inoculación:
    • DTA-Polimixina: Inocular en estría.
    • MRVP: Inocular por dilución.
    • Nitratos-Movilidad: Inocular por picadura (punción central).
  3. Incubación: Incubar los tres tubos a durante en condiciones aerobias.

2. Lectura e Interpretación

Después de la incubación, se añaden los reactivos para obtener los resultados:

Prueba Medios / Reactivos Adición de Reactivo Resultado Positivo (B. cereus) Observación
Glucosa (DTA) DTA-Polimixina N/A Viraje de violeta a amarillo Crecimiento y acidificación del medio.
Voges-Proskauer () Caldo MRVP $\mathbf{0.5\,\text{ml}$ de VP 1 + 2 Viraje a rosa Observar $\mathbf{1\,\text{hora}$ después de la adición.
Nitratos Nitratos-Movilidad $\mathbf{0.5\,\text{ml}$ de Nitratos + Viraje a rojo Observar $\mathbf{15\,\text{minutos}$ después de la adición.
Movilidad Nitratos-Movilidad N/A Crecimiento difuso desde la línea de picadura. Observación visual directa.

Criterios de Confirmación (ISO 7932:1998 Adaptada)

Bacillus cereus se confirma si la colonia sospechosa cumple simultáneamente los siguientes cuatro criterios:

  1. Crecimiento en DTA-Polimixina con viraje del medio de violeta a amarillo.
  2. Test VP positivo (viraje a rosa).
  3. Test de Nitratos positivo (viraje a rojo).
  4. Movilidad positiva (crecimiento difuso a partir de la picadura).

Nota: Se utiliza la versión adaptada, ya que la versión más moderna clasifica los resultados como «presuntos B. cereus».

Control de Calidad del Kit

Es prudente repetir el Control de Calidad en su laboratorio, especialmente después de períodos sin uso (más de 3 meses), desinfección del laboratorio, almacenamiento a altas temperaturas o si el aspecto de los tubos cambia antes de la caducidad teórica.

Control de Crecimiento (24 h a en aerobiosis) con Bacillus cereus (MKTA 10876):

Medio / Prueba Resultado Esperado
DTA-Polimixina Viraje a amarillo-crema.
MRVP Broth () Crecimiento, y viraje a rosa tras añadir los reactivos .
Nitratos-Movilidad Crecimiento con movilidad/difusión y reducción del nitrato (viraje a rojo tras añadir reactivos de Nitratos).

Control de Calidad visual de los Componentes 

  • Tubos Preparados: Estériles, listos para su uso.
  • Kits de Reactivos ( y Nitratos): No estériles, IRRITANTES.
  • Conservación: Seguir las condiciones de almacenamiento para cada componente.
  • Movilidad/Nitratos: Semisólido, incoloro.
  • MRVP: Líquido, incoloro-paja.
  • DTA-Polimixina: Sólido inclinado, violeta-púrpura.

Para más información y precios actualizados no dude en ponerse en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

https://www.microkit.es/fichas/BACILLUS-CEREUS-M-IDENT-KIT-ISO-7932-UE-2-2019-ALIMENTOS.pdf

https://www.microkit.es/monograficos/10-Bacillus-monograf–a.pdf

M-IDENT®-Clostridium perfringens

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Kit de confirmación de Clostridium perfringens en aguas por  Filtración de Membrana s/Norma ISO/CD 6461-2:2002 y en alimentos según FDA.

Confirmación C.perfringens mediante M-Ident ISO de MICROKIT: Lactosa-Gelatina- Nitratos-Movilidad, sin reactivos cancerígenos, Caducidad 1 año

 CONTROL DE CALIDAD DEL KIT

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

  • TUBOS PREPARADOS BUFFERED NITRATE-MOTILITY MEDIUM: m-ident clostridiumEstéril, crema, semisólido
  • TUBOS PREPARADOS LACTOSE-GELATIN MEDIUM: Estéril,  rojo, gelatinoso

 

 

 

 

 

CONTROL DE CRECIMIENTO a 37°C durante 24 horas, en anaerobiosis:

En el tubo crema de Buffered Nitrate-Motility Medium, Clostridium perfringens MKTA 13124 (=MKTN 8237), crece sin difusión/movilidad y reduce el nitrato a nitrito.

En el tubo rojo de Lactose-Gelatin Medium, Clostridium perfringens MKTA 13124 (=MKTN 8237),  crece con viraje del medio a amarillo y licúa la gelatina.

PRESENTACION:

KIT DE 9 TEST  para la confirmación de colonias sospechosas de Cl.perfringens:

  • 9 tubos 10 ml color crema de Buffered Nitrate-Motility Medium
  • 9 tubos 10 ml color rojo de Lactose-Gelatin Medium
  • 1 kit de Reactivos de Nitratos A + B de 5 ml cada uno, suficiente para las 9 pruebas

EL KIT NO INCLUYE:

  • Ø Zinc en polvo (solicítenos SRO001)
  • Ø Cepas de reserva (CRIOSTRAINS), de trabajo o cuantitativas para validar los reactivos una vez llegados a fábrica o tras almacenamientos prolongados  inadecuados. 
  • Ø Participación en servicios intercomparativos como SEILAGUA, SEILALIMENTOS o SEILAPARFUM para validar los procedimientos y los operarios

MODO DE EMPLEO E INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS

Inmediatamente antes de su uso, regenerar un tubo preparado de cada uno de los dos medios, hirviéndolos 15 minutos para eliminar su oxigenación. Enfriar rápidamente a 70-80°C o mejor hasta su solidificación.

  1. Inocular la colonia sospechosa, procedente de TSC o del medio elegido, en picadura, en el tubo crema de Buffered Nitrate-Motility Medium. Incubar a 36 ± 2 °C durante 21 ± 3 horas, en anaerobiosis. Observar la movilidad, positiva si hay crecimiento difuso desde la línea de picadura. Añadir 0,5 ml de Reactivo de Nitratos A y otro tanto de Reactivo de Nitratos B. Observar la reducción de Nitrato a Nitrito, que se considera positiva cuando hay viraje a rosa-rojo antes de 15 minutos tras añadir los reactivos de Nitratos A y B. Si no hay viraje, añadir un poco de Zinc en polvo (SRO001), esperar 10 minutos y considerar tambien positiva la prueba si TAMPOCO hay viraje a rosa-rojo.
  2. Al mismo tiempo que se inocula el tubo crema de Buffered Nitrate-Motility Medium, inocular otra colonia sospechosa,  procedente de TSC o del medio elegido, en picadura, en el tubo rojo de Lactose-Gelatin Medium.

Incubar a 36 ± 2 °C durante 21 ± 3 horas, en anaerobiosis. Observar la producción de ácido por viraje a amarillo. Enfriar los tubos en una nevera a 5 ± 3°C durante 1-2 horas y comprobar si hay liquefacción de la gelatina. Si han solidificado,  reincubar a 36 ± 2°C durante 21 ± 3 horas y volver a comprobar si hay liquefacción de la gelatina.

Se considera Clostridium perfringens, según Norma ISO/CD 6461-2:2002,  toda colonia negra, marrón o gris procedente de TSC Agar, no móvil en el medio crema Buffered Nitrate-Motility Medium, que reduce el nitrato a nitrito en el medio Buffered Nitrate-Motility Medium, que produce ácido a partir de la lactosa en el medio rojo Lactose-Gelatin Medium y que licúa la gelatina en el medio rojo Lactose-Gelatin Medium en menos de 44 ± 4 horas.

Para más información no dude en ponerse en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

https://www.microkit.es/fichas/CL-PERFRINGENS-M-IDENT-ISO-6461-UE-2-2019.pdf

 

ANTISUEROS PARA ANTÍGENOS COLONIALES

4 respuestas

ANTISUEROS CONFIRMACIÓN COLONIAS : IDENTIFIQUE Y SEROGRUPE/SEROTIPE LAS COLONIAS DE SALMONELLA, SHIGELLA, VIBRIO, E.COLI…

ANTISUEROS PARA ANTÍGENOS COLONIALES: Salmonella, E.Coli, Vibrio, Shigella.

INTRODUCCION

Para uso en identificaciones inmunológicas de los miembros del género Salmonella (o Escherichia coli, Vibrio cholerae, Shigella, para los que también sirve lo dicho a partir de aquí). Basados en el test de aglutinación bacteriana.

El género Salmonella contiene una amplia variedad de especies patógenas que afectan al hombre yantisuero a los animales en todo el mundo. Sin embargo, la identificación completa de Salmonella requiere aislamiento en cultivos, caracterización bioquímica y serotipado.

Los antisueros PROLAB y MUREX polivalentes se preparan mezclando el antisuero no absorbido de modo que den fuertes reacciones de aglutinación con las cepas correspondientes. Estos antisueros polivalentes sirven para guiar el diagnóstico, pero la identificación del grupo sólo puede realizarse con los antisueros monovalentes somáticos (O ó Vi) adicionales.

El serotipo de las Salmonella tambien se determina con el uso de antisueros polivalentes flagelares (H) en test de aglutinación, al contener éstos los anticuerpos contra antígenos flagelares asociados con el grupo somático del aislamiento. Los antisueros monovalentes flagelares (H) se utilizan para establecer la fórmula antigénica del aislamiento.

OTROS DATOS

Todos estos antisueros se fabrican en conejos, de acuerdo con la WHO (World Health Organization) utilizando cultivos específicos de referencia y absorbidos por otros cultivos heteroespecíficos, para eliminar anticuerpos que reaccionan con antígenos homólogos.

El principio utilizado es la mezcla del microorganismo sospechoso con el antisuero que contiene aglutininas específicas de Salmonella. Las bacterias aglutinarán («CLUMPING») en presencia del antisuero homólogo y no aglutinarán en presencia de otros antisueros heterólogos.

Los antisueros contienen 0,01% de thiomerosal como conservante y se comercializan en goteros de 2 ó 3 ml listos para su empleo.

La estabilidad es de hasta cerca de dos años desde fabricación, y viene marcada en cada gotero. Éste debe mantenerse bien cerrado, al abrigo de la luz y a 2-5°C. Si se enturbia es porque algunos microorganismos han sido capaces de crecer con los antígenos como fuente de alimentación y en presencia del conservante. En tal inusual caso, filtrar de forma aséptica por 0,2 µm para recuperar la esterilidad y controlar la eficacia con cepas de referencia.

Más de 100 referencias disponibles (ver catálogo actualizado de precios MICROKIT)

MATERIAL NECESARIO NO SUMINISTRADO

  • Portaobjetos de vidrio desengrasados
  • Pipetas
  • Solución Salina (0,85% ClNa en agua) (FPL112)
  • Tubos
  • Asas de siembra de plástico o palillos de madera
  • Cepas de referencia CRIOSTRAINS, de trabajo o cuantitativas para validar los reactivos una vez llegados a fábrica o tras almacenamientos prolongados o inadecuados.
  • Participación en servicios intercomparativos como SEILA para validar los procedimientos y los operarios.

PREPARACION DE LAS MUESTRAS

Las colonias aisladas en medios selectivos o diferenciales para Enterobacterias, que tengan las antisuero2características típicas de Salmonella se clasifican clásicamente con screening de pruebas bioquímicas. Si los antisueros que se van a usar son flagelares (H) es mejor partir de medios no agarizados, donde las bacterias hayan desarrollado mejor sus flagelos.

MODO DE EMPLEO Y LECTURA DE RESULTADOS

 A-Identificación de antígenos somáticos O y Vi en porta

1- Añada dos gotas separadas de solución salina en un portaobjetos de vidrio bien limpio.

2- Mezcle con un palillo o asa, sendas colonias de no más de 24 horas, para obtener una suspensión homogénea en cada gota.

3- Añada una gota de antisuero cerca de una de las suspensiones, sin tocarla para no contaminar el gotero. En la otra suspensión añada una gota de solución salina, que servirá como control negativo.

4- Mezcle la primera suspensión con la gota de antisuero, mediante un palillo.

5- Agite en forma de vaivén el porta durante 1 minuto. Se consideran positivos los resultados cuando se forman, bajo condiciones normales de buena luz, gránulos en la gota con antisuero y no se forman en la gota control.

 B-Identificación de antígenos flagelares H en porta

El procedimiento es el mismo que en el caso anterior, con la única salvedad de que se utilizará como muestra la fase líquida de un medio semisólido o de un agar inclinado. Si se usa a partir de un medio líquido, no hay necesidad de utilizar solución salina.

 C-Identificación de antígenos somáticos (O), Vi y flagelares (H) en tubo

1- Prepare una suspensión densa de la bacteria en solución salina. Hervir 10 minutos para la identificación con antisueros O o Vi. Prepare caldos de cultivo para la identificación de antígenos H añadiendo 0,5% de formol en solución salina, y diluya hasta alcanzar una concentración ligera, alrededor de 10 E9 bacterias/ml.

2- Antes de usar, diluya los antisueros en solución salina a razón 1:5.

3- Añada una o dos gotas de solución salina en un tubo de vidrio y otro tanto del suero diluido en otro tubo. Los tubos serán de fondo redondo, de 9 x 85 mm aproximadamente.

4- Añada el mismo volumen de la suspensión bacteriana a cada uno de los dos tubos.

5- Incubar en  un baño de agua a 51°C durante 2 horas, en el caso de identificación flagelar, y durante 5-8 horas en el caso de identificación somática o del antígeno Vi.

6- Observar la aglutinación en los tubos, contra un fondo negro y bajo luz intensa. Los precipitados o aclaramientos del líquido no son positivos. Considerar positiva sólo la aparición de gránulos

7- Remitirse al esquema de Kauffman-White (1.966, The bacetriology of Enterobacteriaceae. The Williams & Wilkins Co., Baltimore) para identificar el serotipo.

LIMITACIONES Y PRECAUCIONES

1- La muestra puede contener microorganismos patógenos y debe manejarse como material potencialmente infeccioso.

2- Un control salino debe ser incluido en cada prueba para asegurar la especificidad de la reacción.

3- Ciertas cepas sufren autoaglutinación en el test de porta. Estos falsos positivos suelen aglutinar en el control de solución salina.

4- Se recomienda chequear la correcta actividad del antisuero con cepas control de referencia, de estructura antigénica conocida.

NOTAS SOBRE LOS ANTISUEROS DE VIBRIO

El antisuero polivalente se usará en test en porta, los monovalentes se pueden usar, además, en test en tubo, aunque en porta dan menos reacciones cruzadas entre ambos. No se pueden distinguir las variedades El Tor de otros Vibrio cholerae. El conservante utilizado es 0,5% de fenol.

https://www.microkit.es/fichas/ANTISUEROS-para-ANTIGENOS-COLONIALES.pdf

https://www.microkit.es/fichas/Antisueros-Salmonella-tablas.pdf

Para consultas o aclaraciones sobre éste o cualquiera de nuestros productos no dude en ponerse en contacto con nosotros en el número de teléfono 91- 897 46 16 o a través del correo electrónico microkit@microkit.es.

TOALLITAS ANTISEPTICAS HIPOALERGENICAS MICROKIT®

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TOALLITAS DESINFECTANTES MICROKIT: LAS DE SIEMPRE EN BOTE Y SUAVE OLOR MENTOLADO, Y AHORA TAMBIEN EN BOLSAS UNITARIAS

TOALLITAS DESINFECTANTES MICROKIT: LAS DE SIEMPRE EN BOTE Y SUAVE OLOR MENTOLADO, Y AHORA TAMBIEN EN BOLSAS UNITARIAS

TANTO EN EL LABORATORIO COMO EN CASA, CAJEROS AUTOMÁTICOS, SUPERMERCADOS, GIMNASIOS, OFICINAS, TELÉFONOS, TRANSPORTES PÚBLICOS,…LLÉVELAS SIEMPRE ENCIMA

La mano es el responsable principal de las contaminaciones en el laboratorio, seguida de los utensilios de trabajo mal desinfectados.

Con las toallitas antisépticas de MICROKIT, fáciles de usar y siempre disponibles, se resuelven los dos problemas, pues su utilidad es doble:

1-  Desodorizan y desinfectan la piel (manos, axilas, pies…), garantizando la asepsia y proporciona un placer refrescante de larga duración. Sin dificultar la transpiración, no enmascaran el olor; lo destruyen, dejando un suave aroma mentolado. Para uso exclusivamente externo, no aplicar en las mucosas, oído, ojos, punciones lumbares, ni en la piel del bebé. Para lavar las manos a fondo, restregar bien entre los dedos, las uñas, las palmas y los antebrazos. Dejar secar al aire (secan en menos de un minuto). Su uso repetido conduce a un efecto remanente en la piel. Su fórmula minimiza los riesgos alérgicos, y contiene un emoliente para la protección de la piel.

2-  Desinfectan toda clase de superficies y objetos: Superficies de trabajo en el laboratorio de control microbiólogico, estufas de cultivo, cabinas de flujo laminar, utensilios de catering, laboratorio o quirófano, teléfonos, sanitarios, duchas, térmometros, etc. Eliminan toda clase de microorganismos.

COMPONENTES:

Incluso diluyendo el líquido de impregnación al 5% de agua, la sinergia de sus componentes proporciona una acción antiséptica de amplio espectro, eliminando en 5 minutos toda clase de bacterias (Bacilos Gram – como Pseudomonas aeruginosa y Escherichia coli, Cocos Gram + como Staphylococcus aureus y Enterococcus faecium, etc.), en 15 minutos los hongos (levaduras y mohos) y en menos de 5 minutos los virus (HIV en 30 segundos, in vitro). Ello se debe a la óptima actividad conjunta de sus tres principios activos desinfectantes:

 Digluconato de Clorhexidina

 Cloruro de Benzalconio

 Etanol de 90°

La solución es incoloro-amarillenta, con olor a alcohol mentolado, miscible en agua y tamponada a pH 5,5. El tejido, «thermobonded» de prolipopileno, es fuerte y garantiza una perfecta neutralidad del soporte. Conjunto BACTERICIDA, FUNGICIDA Y VIRUCIDA, conforme a las normas AFNOR 72150, 72151, 72200 y 72181. Los agentes antisépticos no son esterilizantes, pero reducen de forma temporal el número de microorganismos.

PRECAUCIONES:

Ligeramente irritante para el ojo, la clorhexidina no debe entrar en contacto con el cerebro, meringes y oído. La tolerancia del conjunto es excelente: Cutáneamente no irritante, ni por aplicaciones reiteradas durante meses. HIPOALERGENICO.

Debe cuidarse que las manos estén bien secas antes de usar aparatos eléctricos.

La imcompatibilidad con detergentes y desinfectantes aniónicos, como los laurylsulfatos, debe tenerse en cuenta para evitar antagonismos e inactivaciones.

Conservar sin quitar la protección de plástico, lejos de la luz, y entre 0 y 30°C. En tales condiciones, la caducidad es de dos años desde fabricación. Tras su apertura, utilizar en menos de un mes, ya que, por evaporación, pierde sus propiedades.

PRESENTACION:

* 3 botes con 100 toallitas autodispensables (ya insertadas) cada uno, Referencia VMT094

*1 CAJA DE 100 toallitas en sobre unitario Ref: VMT094+

TOALLITAS DESINFECTANTES MICROKIT: LAS DE SIEMPRE EN BOTE Y SUAVE OLOR MENTOLADO, Y AHORA TAMBIEN EN BOLSAS UNITARIAS

https://www.microkit.es/fichas/DESINFECCION-TOALLITAS-MICROKIT-PASTILLAS-CLORO-SOLIDO.pdf

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TETRATHIONATE TBG BROTH MUELLER KAUFFMAN VERDE BRILLANTE (BASE)

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TETRATIONATO TBG BROTH MUELLER KAUFFMAN VERDE BRILLANTE (BASE): Enriquecimiento de Salmonella (ISO 6579)

TETRATIONATO TBG es caldo tetrationafo de Mueller-Kauffman con el verde brillante de una marca validada ya incorporado en el polvo

mueller

De izquierda a derecha: Tetrationate Broth MK con Verde Brillante, y con Salmonella.

 COMPOSICIÓN

Extracto de carne (4,3 g); Dig.enzimático caseína (8,6 g); Cloruro sódico (2,6 g); Carbonato cálcico (38,7 g); Tiosulfato sódico-5-h (47,8 g); Bilis de buey (4,78 g); Verde Brillante (0,0096 g). (Fórmula en gramos por litro) pH final: 8.0 ± 0,2.

PREPARACIÓN

Disolver 106,8 g de medio en 1 litro de agua destilada. Calentar hasta ebullición. Esterilizar a 121 ºC, 20 minutos o mejor mantener a 100 ºC durante 2 minutos y no autoclavar. El precipitado o enturbiamento de Carbonato Cálcico es normal. Distribuir en tubos estériles. No volver a calentar. Instantes antes de usar, se puede añadir 19 ml de solución yodo-yodurada (VCC4023).

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO. PRECAUCIÓN: CONTIENE SALES BILIARES.MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGARSECO, FRESCO Y OSCURO. AGITE EL BOTE ANTES DE USAR.DESHIDRATADO CODIGO: DMT177

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

DESHIDRATADO: Polvo fino, Crema

PREPARADO: Estéril, Precipitado, blanco.

EVALUACIÓN DEL RENDIMIENTO ISO/TS 11133-2, 24-48 h a 37-41,5 ºC:

(Aplicando el método UNE EN ISO 6579: 2003 mejorada, o el indicado en el Manual MICROKIT actualizado)

Salmonella abony MKTN 6017 con acompañantes (E.coli MKTA 25922 y Ps.aeruginosa MKTA 9027). Tras estriar una alícuota en XLD e incubar, aparecen más de 10 colonias típicas.

Escherichia coli MKTA 25922, totalmente inhibido: tras incubar, estriar en TSA e incubar, no aparecen colonías

Enterococcus faecalis MKTA 29212, parcialmente inhibido: tras incubar, estriar en TSA e incubar, aparecen menos de 10 colonías.

Bacillus subtilis MKTA 6633, Parcialmente inhibido.

Pseudomonas aeruginosa MKTA 9027, Parcialmente inhibido.

Staphylococcus aureus MKTA 6538P, Inhibido.

Las colecciones TIPO prohiben el uso de su referencia por lo que indicamos la nuestra, directamente trazable a la colección TIPO.

PRESENTACIÓN: MEDIO DESHIDRATADO.

NOTA: Medio para enriquecimiento de Salmonella en alimentos y aguas. Se utiliza en paralelo al Caldo Rappaport Vassiliadis (mejor con SS Broth) y, en  la Norma ISO 6579 (en versiones antiguas junto al Selenito Cistina Broth).

mueller2

Izda: Salmonella (turbidez y pérdida de color), Centro: Shigella (turbidez y turquesa), Dcha: otras Enterobacterias. (sin turbidez)

PRECAUCIÓN

Este medio no es válido para Salmonella typhi. Resulta más selectivo que los otros caldos Tetratrionato (DMT086 y DMT304) para las demás Salmonella. Medio alternativo recomendado por MICROKIT por sus mayores sensuibilidad y especificidad: SS Broth.

 MODO DE EMPLEO E INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS

Inocular 1/10 ml del caldo de pre-enriquecimiento en 10/100 ml de este medio. Incubar a 36-38 (42) ºC durante 21-27 horas. Tras agitar, sembrar en placas de medios selectivos.

Para consultas o aclaraciones sobre este o cualquier otro producto MICROKIT no dude en ponerse en contacto con nosotros en el teléfono 91-897 46 16 o en el correo electrónico microkit@microkit.

https://www.microkit.es/fichas/TETRATHIONATE-BROTH-M-KAUFFMAN-VERDE-BRILLANTE.pdf

BUTYRIKIT

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Prevención de la Hinchazón Tardía del Queso: Presentamos BUTYRIKIT

La hinchazón tardía es una preocupación que afecta, en algún momento, a casi toda la industria quesera, especialmente en épocas de sequía. BUTYRIKIT ofrece tubos listos para usar con el medio Bryant-Burkey, la herramienta esencial para detectar a tiempo el microorganismo causante de este problema y proteger su producción.

El Problema: Clostridium tyrobutyricum

Este microorganismo es un huésped común en el suelo seco y los ensilados. Las vacas, cabras u ovejas pueden ingerirlo al pastar, y de ahí pasa directamente a la leche. Una vez en el queso, se multiplica de manera lenta pero implacable.

  • El Riesgo: La bacteria genera gases durante su metabolismo, produciendo grietas y estropeando la textura del queso. Lo más preocupante es que basta con una sola célula de este microorganismo en 10 ml de leche para que, a largo plazo, toda la pieza se arruine.
  • La Consecuencia: Si la hinchazón tardía no se previene, cuando se detecta, suele ser demasiado tarde. La partida completa de queso curado ya se habrá resquebrajado, resultando en pérdidas significativas.

Solución Rápida y Fiable con BUTYRIKIT

Para la industria quesera, es de vital importancia preventiva analizar la ausencia de este patógeno en una muestra de 10 ml de leche. Si el análisis resulta positivo, se está a tiempo de actuar añadiendo clorhidrato de lisozima u otros aditivos autorizados antes de que sea demasiado tarde.

Nuestros Tubos Preparados (Ref: TPL006) están diseñados para una máxima eficacia:

  1. Selectividad Avanzada: El medio Bryant-Burkey, junto con lactato de sodio, acetato de sodio y clorhidrato de cisteína, inhibe el crecimiento de otras bacterias, potenciando exclusivamente el crecimiento de Clostridium tyrobutyricum.
  2. Detección de Oxígeno (Resazurina): La resazurina incorporada actúa como un indicador de seguridad. Si el medio se torna rosado, detecta un aumento del oxígeno, que sería letal para el Clostridium. Esto asegura que las condiciones de prueba sean óptimas.
  3. Facilidad de Uso: La parafina ya está incorporada en el tubo, simplificando enormemente el proceso para el analista. También ofrecemos tubos sin parafina si prefiere añadirla Ud. tras añadir la muestra

Cómo Interpretar el Resultado (Criterio de Positivo):

  • Un resultado es positivo si observa un desarrollo gaseoso en el tubo que levante el tapón de parafina.

Garantía de Negativo:

  • Dado que una sola célula en 10 ml de leche puede causar la enfermedad, si su cultivo resulta negativo, usted tendrá la tranquilidad de que su queso no sufrirá la temida hinchazón tardía.

Butyrikit

Mención Adicional: Hinchazón Maloliente

También existe un problema similar, aunque más raro, la hinchazón maloliente del queso, causada por Clostridium sporogenes. Este microorganismo es proteolítico y produce el desagradable sulfuro de hidrógeno. Para la detección de Cl. sporogenes, recomendamos los tubos preparados de Agar parafinado SPS TPL049 de LABORATORIOS MICROKIT.

 

Para obtener más información sobre nuestros medios de cultivo y kits,  así como precios actualizados, no dude en ponerse en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16.

https://www.microkit.es/fichas/BRYANT-BURKEY-TYROBUTYRICUM-BROTH.pdf

M-IDENT®-SALMONELLA WELLCOLEX LÁTEX

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Existen en MICROKIT dos látex Salmonella:  M-Ident, para confirmar colonias y latex policromado WELLCOLEX para, además, serogrupar por colores las colonias de Salmonella

Látex para detección y confirmación de Salmonella desde colonias e incluso desde el caldo de enriquecimiento.

El género Salmonella contiene cerca de 2.400 serotipos, que causan gastroenteritis agudas frecuentemente asociadas a intoxicaciones alimentarias.

Gracias a su elevado valor predictivo de resultados negativos, M-IDENT SALMONELLA LÁTEX es ideal para screening de muestras en la industria alimentaria.

El kit detecta la mayoría de los más comunes serotipos de Salmonella, incluidas S. enteritidis y S. typhimurium.

Aunque reacciona con los antígenos flagelares, también detecta la mayoría de cepas inmóviles de Salmonella S. pullorum y S. gallinarum, al reaccionar también contra los antígenos somáticos.

No  precisa aparataje alguno, y el procedimiento es muy simple, sin manipulaciones complicadas.

La sensibilidad detectada es del 100%; es decir, no hay falsos negativos!; por tanto, el valor predictivo negativo del kit en caldos de enriquecimiento es del 100%.

En algunos casos, se detectan falsos positivos dado que no hay Salmonella pero el kit señala que sí la hay.

La especificidad es del 97,2%, con un valor predictivo positivo en caldos de enriquecimiento del 98,2%.

Ver Estudios sobre la capacidad confirmativa de MICROKIT-SALMONELLA en medios selectivos, SANCHIS, J. XI Congreso Nacional de Microbiología de los Alimentos, Pamplona, 9/98, basada en un estudio intercolaborativo realizado ese mismo año en España.

Toda aglutinación observada dentro de los dos primeros minutos se considera resultado positivo, y demuestra la presencia de Salmonella en la muestra.

No debe interpretarse como aglutinación la adherencia del látex a fibras o partículas.

Toda ausencia de aglutinación indica la ausencia de Salmonella en el caldo de enriquecimiento, siempre que el control positivo haya aglutinado al  mezclarlo con una gota del látex.

Realice un control positivo al recibir el kit y siempre que lo considere oportuno.

¡NOTA: toda aglutinación con fondo lechoso debe interpretarse como negativa (las colonias/productos mucosos o cartilaginosos forman grumos pero no aglutinan)!

Algunos microorganismos oxidasa positivos pueden dar resultados falsamente positivos, por lo que un paso previo con tiras de citocromo-oxidasa (MICROKIT KOT050) eliminará este problema, al ser Salmonella oxidasa negativa.

Cultivos viejos de ciertas enterobacterias diferentes a la Salmonella pueden dar lugar a falsos positivos, por lo que utilizando cultivos frescos se eliminará este problema.

La identificación positiva se considera presuntiva, por lo que todo resultado positivo se confirmará con subcultivos e identificación bioquímica de colonias.

Sin embargo todo resultado negativo es confirmativo, pues no se ha encontrado un solo caso de Salmonella presente, que se detecte como negativa con M-IDENT SALMONELLA (No se han encontrado falsos negativos).

M-Ident Salmonella

Para más información sobre nuestros medios de cultivo y kits,  no dude en ponerse en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16.

https://www.microkit.es/fichas/SALMONELLA-M-IDENT-RAPID-SCREENING-LATEX-UE-2-2019-alimentos.pdf

Para serogrupar colonias por aglutinación en 3 colores (rojo, azul y verde), solicítenos el folleto del clásico Salmonella Wellcolex Colour