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Optimización en los análisis microbiológicos de
AGUAS Y BEBIDAS.
Nuevos métodos de análisis microbiológicos utilizados exitosamente en los laboratorios líderes

Legionella pneumophila

Legionella y Legionella pneumophila, medios de cultivo y kits para su detección y confirmación según Norma ISO 11731

Legionella pneumophila LAS MONOGRAFÍAS DE MICROKIT. Tema 9

MONOGRAFÍA    Legionella y Legionella pneumophila

 

1-El microorganismo y su interrelación con el ser humano

El género Legionella comprende diversas especies de bacilos Gram negativos, oxidasa positivos, de vida acuática, entre otras:

Legionella pneumophila, L.micdadei, L.bozemanii, L.dumoffi, L.longbeachae, L.jordanis, L.gormanii, L.anisa, L.feelei, L.sainthelensi, L.erythra, L.hacklaie, L.tucsonensis

Las especies de Legionella sólo crecen en presencia de  cisteína y hierro (medios de cultivo con L‑cisteína hidrocloruro y pirofosfato férrico).

El Agar extracto de levadura con carbón vegetal suele usarse como medio básico, al que se le añaden varios suplementos según el uso sea para muestras clínicas o ambientales.

Aún en medios suplementados, la Legionella crece despacio (hasta 14 días), por lo que suele ser sobrepasada en el cultivo mixto por otras bacterias de crecimiento más rápido.

La especie Legionella pneumophila

es el agente causal tanto de la pneumonía (Enfermedad del legionario, así llamadas tanto la enfermedad como el género, porque se descubrió en una convención de legionarios en Canadá)…

…como de la fiebre de Pontiac, males tristemente extendidos por todos los países de clima templado a causa de torres de refrigeración y sistemas de acondicionamiento mal mantenidos.

Afecta a personas inmunodeprimidas sobre todo, en general a personas mayores de 50 años.

Desde los picos de finales del siglo pasado, con continuos brotes que acababan con varios muertos por cada brote y nos tenían aterrorizados a todos como nos ha tenido recientemente el COVID-19…

…ya que se contagia por el aire, en las microgotas de agua de duchas, fuentes, invernaderos y aires acondicionados,

la incidencia ha descendido considerablemente gracias a las medidas específicas tomadas por la legislación y su continuo control de torres de refrigeración, fuentes ornamentales y hasta aguas de consumo (en incluso piscinas en CCAA como la de Madrid).

L.pneumophila crece con colonias típicas (gris azuladas) en el medio más habitual para ella (GVPC) y emite fluorescencia verdosa bajo luz UVA de 366 nm.

Pero dado que su bacdive es muy variable en casi todas las pruebas bioquímicas y enzimáticas (de ahí que no haya medios cromogénicos para ella), debe confirmarse inmunológicamente (mal llamado “serológicamente” en las Normas ISO).

 

 2-Los tipos de productos donde la legislación exige su búsqueda o recuento, así como otros tipos de productos donde a nuestro criterio, sería recomendable analizarlos

-Aguas de torres de refrigeración (edificios públicos y privados, hospitales, empresas…), fuentes públicas, aguas de consumo, piscinas…

-No se busca activamente en el aire (su via de contagio), aunque se puede encontrar perfectamente con un muestreador de aire y medio GVPC si se activa, por ejemplo, junto a una ducha abierta que la contenga.

Somos testigos y protagonistas de ello en aquellos tiempos en los que la Legionella campaba por tantísimos hoteles estacionales.

-Es preocupante la proliferación cada vez mayor de sistemas de refresco ambiental por agua pulverizada en parques temáticos, invernaderos y restaurantes al aire libre.

 

3-Los métodos oficiales para su detección/recuento

La implantación oficial en países desarrollados de la Norma ISO 11731 (desde 1998, versión actual de 2017), y en España desde el R.D. 865/2003, acabó con el caos

por ejemplo, las decenas de brotes en España que se sucedían antes año tras año en numerosas ciudades.

La ultima versión de la ISO 11731 exige el uso del agar selectivo GVPC (o bien MWY) tras filtración de 1 L de agua, BCYE (con y sin antibióticos) para confirmación…

…y el uso de kits inmunológicos «serológicos» de confirmación definitiva (que pueden ser indistintamente látex, antisueros para inmunofluorescencia, inmunocromatogramas…)

 

 

4-Los métodos alternativos que mejoran la rapidez de los resultados y la robustez del análisis

MICROKIT diseñó desde Noviembre de 1997 un kit Presencia/Ausencia para enriquecimiento selectivo de Legionella en 500 ml de agua.

El medio era una modificación en caldo del BCYE+GVPC ISO 11731 con carbón activo granulado, lo que le confería la transparencia necesaria.

La ausencia de Agar permitía también su utilización como Caldo de Enriquecimiento Selectivo Directo sin necesidad de filtración, ahorrando la manipulación y el riesgo de generación de aerosoles propios de la filtración de membrana.

Su concentración,  permitía su uso en 1000 ml de agua.

Se leía por el cambio en la turbidez en las muestras positivas.

Probablemente fue el kit más vendido de MICROKIT de todos los tiempos y tuvimos que implantar dos turnos de producción para satisfacer todas las demandas de los clientes.

Tras el imperativo legal R.D. 865/2003, que cambió la búsqueda de su presencia y exigió efectuar recuentos de Legionella pneumophila, (aunque completamente diferentes respecto a otros países como USA, NZ o UE), el kit dejó de tener sentido…

Cambio de paradigma

…pero se readaptó para ser usado sólo como caldo revitalizante; para evitar multiplicación celular, se comprobó que aplicándolo al agua de muestra durante su transporte al laboratorio (hasta 24 horas a 25°C aprox)…

…y siguiendo después el método ISO  11731 por filtración, no había multiplicación celular pero sí detección incluso para recuentos con sólo 40 ± 10 ufc/l.

Incubaciones a temperaturas mayores o menos prolongadas no dan buenos resultados.

Este método, seguido de siembra en BCYE +GVPC Agar, recupera contundentemente más Legionella que el método ISO 11731 por filtración de membrana sin previa revitalización de las células subletales (no vivificables):

77,50% de sensibilidad frente al 41,61% del método ISO estricto (sin este paso previo de revitalización).

El límite de detección en los laboratorios acreditados con el método ISO 11731, de cerca de hasta 200-800 ufc/l, mejora a, incluso, 40 ± 10 ufc/l si intercalamos el caldo Legionella MICROKIT durante 12-24 horas a 25°C.

 

Confirmación de colonias sospechosas.

Aunque no es un método alternativo y está dentro de la Norma ISO 11731, queremos destacar aquí  la gran aportación actual de MICROKIT en Legionella.

Fue la puesta en escena para el mercado medioambiental, desde 2009, de un kit que solo se conocía en hospitales para confirmar las colonias, gracias a un acuerdo de distribución exclusiva con el fabricante en este mercado medioambiental,

acuerdo que no todos los distribuidores de clínica respetan, colándose en nuestro mercado, saltándose a la torera los acuerdos y tirando así a la basura nuestro gran esfuerzo por darlo a conocer y sobre todo:

conseguir que fuese aceptado por las entidades acreditadoras, desde hace 11 años, en el mercado medioambiental.

Rogamos a los clientes que lean esto y  lo compran, pero no a nosotros, que lo hagan: es de Ley, además de ser lo moralmente correcto.

Se trata del M-Ident Virapid-Legionella,

un inmunocromatograma que presenta grandes ventajas sobre los látex:

robustez, independencia de la época del año para dar resultados objetivos (los látex en verano suelen deteriorarse en su transporte, dando resultados falsamente negativos o confusos), fiabilidad avalada por una validación mediante tesis doctoral, posibilidad de guardar muestroteca de los kits, ya que sus resultados permanecen durante décadas…

y lo más importante: lo mismo que los látex se tuvieron que adaptar a los nuevos hallazgos de cepas patógenas del serogrupo 16 cambiando su fabricación para añadir éste, ahora deberían adaptarse de nuevo ante cualquier otro nuevo serogrupo que se detectase,

mientras M-Ident Virapid-Legionella no lo necesitó, ni lo necesitará, porque su mecanismo de detección en la colonia es diferente, mediante anticuerpos monoclonales de género, de especie y de serogrupo:

Todas las Legionella spp, (cualquier especie)

todas las Legionella pneumophila (cualquier  serogrupo conocido o desconocido)

y las Legionella pneumophila del serogrupo 1;

de modo que si aparece la banda 1, hay Legionella spp;

si además aparece la banda 2, hay L.pneumophila;

y si además aparece la banda 3  hay Legionella pneumophila serogrupo 1,

mientras si no aparece la banda 3 pero sí la 2, es Legionella pneumophila serogrupos 1-16 (o 17, 18… conforme vayan apareciendo los nuevos).

 

13 goteros de látex

Otra de nuestras aportaciones (tampoco es un método alternativo y sigue la Norma ISO 11731)  es la importación de Canadá desde 1997 de los 13 látex policlonales de los serogrupos 2 al 14 para los laboratorios de referencia…

…que deben serogrupar perfectamente todas las cepas detectadas aunque no sean del serogrupo 1.

 

5-Cómo vemos el futuro en la detección de este grupo

Algún día, todos los laboratorios habrán cambiado de los látex de confirmación de colonias, al M-Ident Virapid Legionella.

 

Si desea esta monografía  completa en pdf, con las fotos que aqui no aparecen, solicítela en consultastecnicas@microkit.es

 

https://www.microkit.es/fichas/LEGIONELLA-GVPC-y-BCYE-AGAR-BASE.pdf

https://www.microkit.es/pdf/legionella-virapid.pdf

https://www.microkit.es/fichas/LEGIONELLA-VIRAPID-5-2014.pdf

 

Burkholderia cepacia complex

Burkholderia cepacia complex: Métodos de detección y recuento en aguas y en productos cosméticos, por ser patógeno emergente en ellos

Burkholderia cepacia complex MONOGRAFÍA    

LAS MONOGRAFÍAS DE MICROKIT. Tema 8

 

1-El microorganismo y su interrelación con el ser humano

El complejo Burkholderia cepacia es un grupo que incluye 22 especies (entre ellas B.cepacia, B.cenocepacia y B.multivorans).

Son bacilos Gram negativos, Oxidasa positivos (a menudo oxidasa-lentos), No Fermentadores de Glucosa, Móviles, antes pertenecientes al género Pseudomonas.

Muchas de ellas son patógenos oportunistas en personas inmunodeprimidas, como lactantes y ancianos, especialmente en aquellas que sufren de fibrosis quística, con elevada proporción de mortalidad.

También es frecuente en infecciones nosocomiales y es difícil de erradicar debido a su gran resistencia a varios antibióticos (de hecho los antibióticos más efectivos sólo actúan en la mitad de estos enfermos).

En esto tiene mucho que ver su inmenso genoma: son algunas de las especies más versátiles que existen.

Son capaces de usar más de 200 compuestos como nutrientes, entre los cuales se encuentran antibióticos, desinfectantes, pesticidas, hidrocarburos aromáticos policíclicos (HPA), tricloroetileno, policlorobifenilos, ftalatos…

De hecho lo mismo se aislan en suelos (jardines, céspedes, campos de golf…), aguas… tanto como simbiontes en vegetales (cepacia viene de cebolla), como patógenas de plantas y de animales.

Aunque algunas serían útiles en bioremediación, su patogenicidad en humanos hace que su uso en agricultura esté restringido.

Numerosas retiradas de mercado de cosméticos con estos microorganismos demuestran la necesidad de exigir su búsqueda por parte de los laboratorios de este tipo de industrias farmacosméticas, ya que resisten la acción de numerosos conservantes empleados en ellas.

Este grupo es muy frecuente en cosméticos y sus aguas, probablemente los aislados más frecuentes que encontramos en nuestro laboratorio de análisis a terceros.

Es mas, el 72% de casos de enfermedades infecciosas causadas por medicamentos, cosméticos, productos sanitarios y suplementos dietéticos, se debe a patógenos oportunistas no buscados por los fabricantes, y de ellos, el 34% de las veces resultan ser del grupo Burkholderia cepacia 

(entre los demás destacan Aspergillus spp. patógenos, Pluralibacter gergoviae, Serratia marcescens, Klebsiella pneumoniae, Salmonella spp, Pseudomonas putida, Enterococcus hirae…).

La FDA recomienda el control de Burkholderia cepacia  complex desde 2017 en aguas. Farmacopea USP desde 2019 exige su ausencia en medicamentos no estériles para uso nasal, oral o cutáneo.

 

 2-Los tipos de productos donde la legislación exige su búsqueda o recuento, así como otros tipos de productos donde a nuestro criterio, sería recomendable analizarlos

-Medicamentos: La Pharmacopea USP desde 2019 exige su ausencia en medicamentos no estériles para uso nasal, oral o cutáneo.

-Cosméticos: no hay mención específica, pero la inocuidad del cosmético derivada del Reglamento UE 1223:2009 implica la ausencia de cualquier tipo de patógeno.

Y de la Ley General de Sanidad 14/1986, de 25 de abril, estableció la obligación de las Administraciones públicas sanitarias de orientar sus actuaciones prioritariamente a la promoción de la salud y la prevención de las enfermedades.

Por tanto queda obligada la búsqueda activa de microorganismos patógenos frecuentes  en cosméticos, como es el complejo B.cepacia.

-Aguas de uso farmacosmético, ya que las GMPs (ISO 15378 en medicamentos e ISO 22716 en cosméticos) exigen el control de la inocuidad en las materias primas (y el agua es la materia prima más crítica en cosméticos).

 

3-Los métodos oficiales para su detección/recuento

En medicamentos,  se sigue la  USP-2019 empleando el Agar BCSA, más selectivo que el BCPT Agar (basado en el piruvato) y mucho más selectivo que el OFPBL Agar (basado en la fermentación de la lactosa).

 En cosméticos no hay método oficial obligado, pero los laboratorios que buscan B.cepacia, usan casi todos ellos BCPT Agar

y unos pocos OFPBL Agar (en MICROKIT no lo fabricamos, dado su escaso valor añadido).

No se ha puesto de moda el BCSA en este sector, sólo en aguas farmacéuticas.

En aguas cosméticas se emplea sobre todo BCPT Agar. Todavía no se ha puesto de moda el BCSA.

 

4-Los métodos alternativos que mejoran la rapidez de los resultados y la robustez del análisis

No hay muchos métodos alternativos, salvo el medio cromogénico basado en BCPT Agar, en el que las colonias son rojo-púrpura, creen o no el halo fucsia en el medio naranja.

Y para aguas, los Burkhokit P/A kits, distintas presentaciones del caldo BCPT cromogénico, con la misma composición pero sin agar-agar, que ahorra la destrucción de células que siempre provoca la filtración de membrana.

Confirmación de colonias sospechosas.

Los métodos más usados son diferentes galerías de identificación, cuya base de datos, meramente clínica, provoca numerosos errores, máxime cuando en realidad debemos ir en busca de una especie concreta, y no de ponerle nombre y apellidos a todas las cepas que encontremos (esa es precisamente la diferencia entre confirmación e identificación).

La base de datos bioquímica BacDive de las tres Burkholderias más típicas del complejo indica:

 

CEPA  /  TEST OX ADH MNE PAC
B.cepacia (Gr.2) + azul – amarillo + amarillo + amarillo
B.cenocepacia + azul – naranja + 48h amarillo – verde
B.multivorans + azul + rojo + amarillo – verde

MICROKIT ofrece el kit de confirmación M-Ident-B.cepacia que incluye estas 4 pruebas (ref: KMT006).

Las Burkholderia cepacia complex se distinguen de Pseudomonas aeruginosa (frecuente falso positivo en sus medios) al no ser fluorescentes las primeras bajo luz UVA de 366 nm (Ref: VMT050).

De todas formas, lo ideal en un grupo tan complejo es enviarnos las colonias sospechosas a nuestro servicio de Identificación molecular (SFI004), que no le dejará dudas sobre la cepa y su patogenicidad oficial.

  

5-Cómo vemos el futuro en la detección de este grupo

Lo mismo que Pseudomonas aeruginosa ya se busca activamente en aguas envasadas y se menciona en la ultima legislación de aguas de consumo humano (sobre todo para los grifos de las UCIs de hospitales), B.cepacia complex acabará también siendo buscada activamente en estos dos tipos de agua, a causa de su ubicuidad y de su inmenso potencial patógeno.

 

Si desea esta monografía  completa en pdf, con las fotos que aqui no aparecen, solicítela en consultastecnicas@microkit.es

https://www.microkit.es/fichas/BURKHOLDERIA-CEPACIA-BCPT-AgarBase.pdf

https://www.microkit.es/fichas/CROMOKIT-BURKHOLDERIA-Agar.pdf

https://www.microkit.es/fichas/bcsa-burkholderia-complex-selective-agar-base-usp-2019-.pdf

https://www.microkit.es/fichas/Burkholderia-cepacia-M-IDENT-KIT.pdf

https://www.microkit.es/fichas/P-A-BURKHOLDERIA-CEPACIA-UE-2-2019.PDF?v=2023

 

 

Clostridium perfringens

Clostridium perfringens y Clostridios sulfito reductores: Métodos de detección y recuento e idiosincrasia de los anaerobios estrictos

Clostridium perfringens detección y Clostridios Sulfito-Reductores detección

LAS MONOGRAFÍAS DE MICROKIT. Tema 7

 

 

1-El microorganismo y su interrelación con el ser humano

Clostridium perfringens

es un anaerobio estricto, bacilo Gram positivo, inmóvil, que forma esporas.

Al no tolerar el oxígeno, desde la primera gran extinción masiva en la Tierra, provocada por las cianobacterias al convertir la atmósfera reductora, roja, en oxidante, azul, (hasta el actual 21% de oxígeno);

todos los anaerobios estrictos se restringieron a vivir en zonas anóxicas, como los fondos de los lagos o el intestino de los animales.

Sin embargo, al formar esporas resistentes al oxígeno, a C.perfringens se le encuentra también en el suelo, en el agua, en los alimentos (sobre todo en carnes rojas y aves)… incluso en las manos del ser humano, a la espera de poder germinar en cuanto estén en zona anóxica.

Por eso se considera un microorganismo de hábitat ubicuo.

Es un patógeno capaz de provocar la gangrena gaseosa, así como toxiinfecciones alimentarias en seres humanos y en el ganado, en el que provoca devastaciones.

Es muy frecuente en el intestino de los perros, pero también puede comportarse como saprófito en el intestino humano

(como siempre, cuando migra a otros tejidos que no son su hábitat natural, por ejemplo mediante heridas, o cuando migra del alimento al intestino, es cuando se suele comportar como patógeno).

También es bien conocido como indicador, en las aguas de consumo, de infiltración de aguas naturales (y  por tanto de posible presencia de Enterovirus, ej: bacteriófagos; y protozoos, ej: Crysptosporidium, Giardia, Entamoeba…)

o residuales (y por tanto de posible presencia de otras bacterias patógenas como Salmonella, Vibrio…), más que por su mero valor como patógeno.

 

Clostridios sulfito-reductores

son un grupo de especies del género Clostridium que tienen en común la capacidad de reducir el sulfito a los malolientes sulfuros cuando está presente el Citrato de Hierro.

Salvo C.perfringens, que también es sulfito-reductor, suelen ser móviles.

Junto con otros anaerobios sulfato-reductores (como ejemplo tipo, Desulfovibrio), forman el amplio grupo de los sulforeductores.

Provocan ennegrecimiento de los productos y de los medios de cultivo que contienen hierro (ej. Citrato de Fe), formando un precipitado oscuro de sulfuro de hierro.

Sirven para ellos las mismas consideraciones indicadas para C.perfringens, aunque con menores dificultados en su detección/recuento.

C.perfringens es el clostridio sulfito-reductor más común, pero no el único.

Clostridios sulfito-reductores es un parámetro más buscado en alimentos y cosméticos que el parámetro C.perfringens, y hasta 2004 era el buscado en aguas envasadas;

desde entonces lo es C.perfringens, quedando así abierta la controversia de por qué gastar tanto tiempo y dinero en identificar según métodos ISO cancerígenos, exactamente la especie C.perfringens (fosfatasa ácida, lactosa, gelatina, nitratos, movilidad, doble halo de hemólisis…)…

…cuando las esporas de todos los clostridios sulfito-reductores tienen el mismo valor como indicadores de infiltración de aguas no potables en la red de aguas potables y envasadas.

Anaerobios sulfito-reductores

son los anaerobios (sean o no del género Clostridium) capaces de reducir el sulfito a los malolientes sulfuros cuando están en presencia de Citrato Férrico.

Es un parámetro casi sinónimo de Clostridios sulfito-reductores, ya que casi todos pertenecen al género Clostridium. Sin embargo, se mantienen con este nombre en algunas legislaciones.

 

2-Los tipos de productos donde la legislación exige su búsqueda o recuento, así como otros tipos de productos donde a nuestro criterio, sería recomendable analizarlos

Alimentos,

la legislación habla de buscar Clostridium perfringens en carnes (máximo 10-100 ufc/g según el tipo de carne), especias (máximo 1000 ufc/g) y gelatinas (ausencia/g).

De buscar Clostridios sulfito-reductores en conservas de pH > 4,6, máximo 100 ufc/g en jamón cocido y similares, su ausencia/g en semiconservas, máximo 1 ufc/g en cuajo, máximo 100 ufc/h en horchata, máximo 1000 ufc/g en pastelería-bollería-confitería y repostería (sobre todo si tiene ingredientes cárnicos).

Y búsqueda de anaerobios sulfito-reductores en frutas-verduras-hortalizas congeladas (máximo 10 ufc/g) y en gelatinas (mismo límite).

Medicamentos

estériles, en el test de idoneidad del método de esterilidad, pharmacopea exige la correcta detección de C.sporogenes.

Cosméticos

no hay mención específica a Clostridium perfringens, pero la inocuidad del cosmético derivada del Reglamento UE 1223:2009 implica la ausencia de patógenos.

Y de la Ley General de Sanidad 14/1986, de 25 de abril, estableció la obligación de las Administraciones públicas sanitarias de orientar sus actuaciones prioritariamente a la promoción de la salud y la prevención de las enfermedades.

En la monografía del Ministerio de Sanidad sobre microbiología cosmética (el famoso librito verde) se habla de buscar recuentos de Clostridios sulfito-reductores en 1 g de muestra.

Lógicamente las materias primas derivadas del suelo (arcillas, barros, caolín…) y de plantas serán más susceptibles de contener este parámetro indicador.

Aguas de consumo,

la UE exige la ausencia (0 ufc/100 mL) de Clostridium perfringens incluidas sus esporas en 100 mL de agua de red y en 50 ml de agua envasada,

desde la Directiva 98/83/CE, de 3 de noviembre de 1998, transcrita en España a Real Decreto 140/2003, de 7 de febrero (actualizado en la Directiva 2015/1787 de la Comisión, de 6 de octubre de 2015 y transcrito en España al Real Decreto  902/2018, de 20 de julio).

El método descrito ha cambiado entre estas dos leyes, de la filtración de membrana (MF) con Agar m-CP hasta 2015, a la MF con Agar TSC (según ISO 14189) desde 2018.

-En aguas envasadas

se distingue si son aguas minerales (se debe demostrar ausencia de Anaerobios “Clostridios” Sulfito-Reductores esporulados en 50 mL)

o preparadas para consumo humano procedentes de superficies (ausencia de Clostridium perfringens en 100 mL).

 

3-Los métodos oficiales para su detección/recuento

En alimentos,  se sigue la  ISO 13401 para Clostridium perfringens (TSC Agar y confirmación por Lactosa, Gelatina, Nitratos y Movilidad), y la AOAC para Clostridios sulfito-reductores (SPS Agar).

Para los cosméticos no hay método oficial obligado, pero los laboratorios que buscan Clostridios sulfito-reductores, usan SPS Agar.

En aguas para Clostridium perfringens se seguía la Directiva 98/83/C y consecuente RD 140/2003 con m-CP agar y la ISO 6461,

y ahora la ISO 14189 con TSC Agar y confirmación por fosfatasa ácida. Y para Sulfito-Reductores el SPS Agar.

 

4-Los métodos alternativos que mejoran la rapidez de los resultados y la robustez del análisis

Las principales complicaciones de buscar estos microorganismos anaerobios estrictos, es que lo hacemos en la atmósfera actual de la Tierra, con un 21% de oxígeno, que para ellos es letal, y parece que las legislaciones y normativas no hayan tenido en cuenta la magnitud de esta afirmación.

Como intento de solventarlo, exigen el empleo de atmósferas generadoras de anaerobiosis durante la incubación…

…pero hemos podido constatar que muchísimas veces estas atmósferas, conforme se generan, se fugan a través de las juntas de la jarra o de la bolsa;

y todas las veces tardan algunas horas en generarse, con lo cual gran parte de las células vegetativas no resisten tanto tiempo de oxígeno y no se detectan porque colapsan.

Si añadimos, en aguas, el uso del método destructivo (oxigenante) de la Filtración de Membrana, no son de extrañar los espeluznantes resultados obtenidos…

…con más del 50% de muestras falsamente negativas.

Y, en las que sí se encuentran como positivas, una reducción de más del 50% de ufcs respecto al valor inóculo.

Existen 3 métodos que han demostrado en intercomparación, obtener resultados mucho más fiables, por los motivos expuestos:

4-a) Para muestras de 1 g (alimentos y cosméticos),

el tubo preparado de 20 ml con 18 ml de medio TSC Agar (para C.perfringens) o de SPS Agar (para clostridios sulfito-reductores) obtiene mucho mejores resultados que la placa preparada y ahorra la atmósfera de anaerobiosis,

ya que por debajo del primer centímetro de agar bajo el tapón, el oxígeno no penetra (sobre todo si el fabricante, como hace Microkit, tiene la precaución de usar el agar en proporción más elevada de la habitual típica de los medios para aerobios).

Hay que dejar una cámara de aire de aprox 1 ml para que los gases generados por el metabolismo de los clostridios durante su incubación (que debe ser con el tubo vertical y el tapón arriba) no exploten el tubo, si es de vidrio fino, o no rezumen medio si se cerró mal el tapón.

Los ortodoxos de las Normas ISO dicen que así se imposibilita confirmar colonias, pero son dos medios de cultivo cuya proporción de falsos positivos es ridícula, totalmente despreciable, por lo que su argumento nos parece inaceptable,

cuando el método, al alcance de todo el mundo y más económico que la placa + la atmósfera, está ahorrando un 50% de falsos negativos y obteniendo recuentos hasta un 50% superiores a los de la placa de TSC o de SPS.

El tubo preparado lleno de TSC o de SPS no es idea exclusiva de Microkit, como puede leerse en bibliografía sobre el convergente “tubo de Fung”.

4-b) Para muestras de 50/100ml de agua.

Dado que en microbiología 0 ufc/100 mL es exactamente lo mismo que ausencia en 100 mL, o la locución cada vez más habitual “no detectado” en 100 mL (¡¡¡aunque los ortodoxos de las Normas ISO no dejarán nunca de sorprendernos, pidiéndonos que lo demostremos!!!),

el método Presencia /Ausencia cobra aquí su más importante fuerza con respecto al método de Filtración de Membrana MF.

Con Clostricult P/A (añadiendo 3 g del polvo estéril a 100 mL de la muestra de agua) en un bote cerrado durante la incubación…

…nos ahorramos tanto la filtración de membrana y su paupérrimo nivel de detección en estos parámetros anaeróbicos, como la atmósfera de anaerobiosis.

Si el agua venía muy agitada-oxigenada, el ennegrecimiento de la muestra no es completo y se reduce al fondo del frasco, ya que el oxígeno impide su desarrollo en el resto del volumen de agua, de la misma manera que en la naturaleza las formas vegetativas están sólo en el fondo de los lagos;

eso nos demuestra lo dependiente que es el método oficial con placa, de una atmósfera de anaerobiosis artificial que no se fugue y se demuestre que no se ha fugado.

Para colmo, la reacción de ennegrecimiento de las colonias del TSC y del SPS es reversible y en cuando se vuelven a oxigenar las placas al sacarlas de la jarra/bolsas de anaerobiosis para contar:

muchas colonias se vuelven grises e incluso blancas, dando lugar a más falsos negativos.

La validación externa de este método Microkit con respecto a la MF con placa de mCP, de TSC y de TSC+MUP y los devastadores resultados a favor del método P/A Clostricult, están disponibles para quienes nos lo soliciten.

4-c) Para muestras de 50/100ml de agua

y seguirles la corriente a los poderosos ortodoxos que legislan y siguen diciendo que 0 ufc/100 mL no equivale a ausencia en 100 mL,

Microkit, siguiendo la filosofía DryPlates con Hidragar pero para 100 ml de muestra en vez de 1 ml, ha diseñado el método “Quanti-P/A” en bolsa hermética para recuento de colonias de clostridios

(un kit para C.perfringens y otro para Clostridios sulfito-reductores) en 50/100 mL de agua, también útil para 1 g de muestra (previamente disuelta en 100 mL de FTM o incluso de otro caldo diluyente).

Los resultados son espectaculares con respecto a la MF con placa de TSC, incluso mejores que para P/A Clostricult y, cómo no…

…los ortodoxos dicen que el método no permite identificar las colonias con la fosfatasa ácida cancerígena (lo cual es tan falso como innecesario

y hasta insultante en RRLL para el analista, como ya vimos en el apartado 4-a de los tubos).

 

Confirmación de colonias sospechosas.

Los métodos más usados son diferentes galerías de identificación, cuya base de datos, meramente clínica, provoca numerosos errores, máxime cuando en realidad debemos ir en busca de una cepa concreta, y no de ponerle nombre y apellidos a todas las cepas que encontremos (esa es precisamente la diferencia entre confirmación e identificación).

Los seguidores a rajatabla de la ISO de aguas usan los reactivos cancerígenos de la fosfatasa ácida, otros se acogen a la anterior prueba desde m-CP y otros intentan validar el MUP (colonias fluorescentes), cuyo principal inconveniente es su inestabilidad una vez añadido a la placa de TSC.

Los pioneros que prefieren seguir su propio criterio, emplean las pruebas que dice la ISO de alimentos: incluso muchos laboratorios de aguas vuelven de la patética fosfatasa ácida, a la prueba Lactosa-Gelatina-Nitratos-Movilidad que sigue confirmando categóricamente a C.perfringens.

 

5-Cómo vemos el futuro en la detección de este grupo

Si empresas como Microkit no fuesen PIMEs y los métodos alternativos (que hemos descrito en el capítulo 4, como nuestra aportación en diseño en los ultimos 30 años a este capítulo de los anaerobios);

no requiriesen de cientos de miles de € para ser “aprobados oficialmente”,

ya habría una Norma ISO que exigiría el uso de “Quanti-P/A-TSC” para recuento de Clostridium perfringens en 100 mL de agua y mencionaría la patente de Microkit y nuestra dirección, para que ningún competidor intentase copiarnos el método, como ha sucedido ya en otros parámetros.

Nadie apoya el I+D de las Pymes españolas, por lo que seguirá habiendo un gravísimo problema de detección en un parámetro tan importante como indicador para el que ningún otro parámetro sirve, y para el que ya existen estas alternativas de resultados magníficos.

Si desea esta monografía  completa en pdf, con las fotos que aqui no aparecen, solicítela en consultastecnicas@microkit.es

https://www.microkit.es/fichas/TSC-AGAR-MUP.pdf?v=2023

https://www.microkit.es/fichas/CROMOKIT-C-perfringens-Agar.pdf?v=2023

https://www.microkit.es/fichas/SPS-AGAR-polvo.pdf?v=2023

https://www.microkit.es/fichas/SULFATE-API-AGAR.pdf?v=2023

https://www.microkit.es/fichas/P-A-CLOSTRICULT-UE2-2019.PDF?v=2023

https://www.microkit.es/pdf/Quanti-PA-Clostricult-2022.pdf

https://www.microkit.es/pdf/crioteca-y-anaeroteca.pdf

https://www.microkit.es/pdf/CEPAS-CUANTITATIVAS-2022.pdf

 

Salmonella y Shigella

Salmonella y Shigella,  dos grandes responsables de toxiinfecciones alimentarias y de disentería de transmisión hídrica

Salmonella y Shigella MONOGRAFÍA

LAS MONOGRAFÍAS DE MICROKIT. Tema 5

 

1-El microorganismo y su interrelación con el ser humano

Salmonella spp.

es un género de Enterobacterias que incluye 50 cepas según su serogrupo O, somático, y miles de cepas diferentes según sea su serotipo H, flagelar.

La especie principal en animales de sangre caliente es S.enterica (antes S.cholearesuis), con 6 subespecies, que incluyen la S.enterica ssp.enterica con serotipos tifoideos como S.typhi y no tifoideos como S.enteritidis, S.abony, S.typhimurium… 

Se trata de bacilos Gram negativos, anaerobios facultativos, con múltiples flagelos peritricos, sin esporas.

Producen SH2 y son Urea -.

Habitan en el intestino de los animales de sangre caliente (y otras cepas en los de sangre fría, incluso en la piel de muchos reptiles).

Provocan 3 tipos de enfermedades:

a) La salmonelosis, gastroenteritis de transmisión alimentaria, con origen en animales y aguas fecales que bañan y contaminan los vegetales;

b) las fiebres tifoideas, con bacteriemia, necrosis, hemorragias y hasta choque séptico, que se transmiten de persona a persona y no deben confundirse con el tifus de Rickettsia transmitido por piojos;

c) y las fiebres paratifoideas, con gastroenteritis e incluso septicemia.

Shigella spp.

es otro género de Enterobacterias, de bacilos Gram negativos, anaerobios facultativos, inmóviles, sin esporas.

Sus 4 especies o serogrupos (Sh.dysenteriae –grupo A-, Sh.flexneri –grupo B-, Sh.boydii –grupo C-, y Sh.sonnei –grupo D-)…

…causan, todas ellas,  la disentería bacteriana, una gastroenteritidis transmitida por el agua, los alimentos contaminados y las moscas, que puede ser fatal.

Algunas cepas (no sólo las de la especie más letal: Sh.dysenteriae) producen la toxina Shiga, muy similar a la verotoxina de E.coli O157, lo que agrava en ellas la probabilidad de letalidad en los afectados, llegando a clasificarse estas cepas como de riesgo biológico grupo 3.

 

 

2-Los tipos de productos donde la legislación exige su búsqueda o recuento, así como otros tipos de productos donde a nuestro criterio, sería recomendable analizarlos

-Alimentos,

Salmonella ausencia en 25 g en: aditivos, cacao, cárnicos y derivados,  cereales, comidas  preparadas, dietéticos, condimentos y especias, semiconservas, cuajo, frutas, hortalizas, ensaladas, zumos, verduras, galletas, gelatina, colágeno, grasas, harinas, helados, horchatas, jarabes, lácteos, miel, ovoproductos, pastelería, bollería, confitería, repostería, aperitivos, productos de la pesca, moluscos, crustáceos, salsas, semillas germinadas, infusiones, turrones, mazapanes, comida para animales de compañía… y

Shigella, ausencia en 25 g en: cárnicos (incluido el jamón cocido), productos de la pesca, salsas de mesa, té, turrones, mazapanes, horchata, cuajada, nata, cuajo y miel…

Medicamentos,

ausencia de Salmonella

-Cosméticos

no hay mención específica, pero la inocuidad del cosmético derivada del Reglamento UE 1223:2009 implica la ausencia de patógenos

-Superficies

de las fábricas, sus almacenes y resto de instalaciones, queda a criterio de cada uno, al revés que Listeria monocytogenes, que es obligada para todos los lugares relacionados con alimentos

-Aguas,

sólo encontramos legislación en aguas de piscina de Madrid (ausencia en 100 mL) y las de aguas residuales

 

 

3-Los métodos oficiales para su detección/recuento

En alimentos,

es obligada la ausencia de Salmonella spp. en 25g, según la ISO 6579,

revitalizando los 25 g en 225 ml de agua peptonada tamponada,

enriqueciendo selectivamente en Rappaport y en Tetrationato MK,

y aislando en XLD y en otro medio elegido por cada laboratorio de una lista bastante larga en la que se incluye el Agar Cromosalm de Microkit (cromogénico con base DCA) con el nombre en la ISO “ABC”:

 

Las colonias sospechosas se confirman con varias pruebas bioquímicas (sobre todo TSI, Urea y LIA) e inmunológicas (antisueros polivalentes somáticos O, capsulares Vi y flagelares H).

Resulta curiosa la cantidad de tipos de alimentos donde se busca Salmonella spp. y se olvida buscar Shigella spp.

aunque haya legislación que exige también la ausencia de ésta en 25 g.

Y quienes la buscan, la mayoría lo hacen ERRÓNEAMENTE con los mismos medios que Salmonella spp.,

cuando el Rappaport o los medios cromogénicos de Salmonella spp. han sido diseñados para ésta y no para Shigella spp., por lo que dan una enorme cantidad de falsos negativos y en realidad no la están buscando,

con el consecuente riesgo para la salud pública.

Siendo Shigella dysenteriae un patógeno tipificado como riesgo de clase 3, mucho peor que cualquier Salmonella spp. alimentaria (que son de riesgo de clase 2),

Shigella spp. es de obligada búsqueda (según la legislación UE) en los alimentos antes indicados.

Años atrás se hablaba del tándem Salmonella-Shigella, pero desde que se puso de moda el medio Rappaport hace 3 décadas, y dado que éste inhibe a Shigella spp. (y también a varias cepas de Salmonella spp., lo cual es aún más grave),

no ha habido más actualización para el método de Shigella spp. que la ISO 21567 de hace 16 años,

una gran desconocida, por lo que la mayoría de laboratorios la buscan mal al emplear el método ISO de Salmonella spp., con nefastos resultados a causa de usar Rappaport en vez de Shigella Broth (o SS Broth)

y medios de aislamiento en placa que son selectivos para Salmonella spp. (no para Salmonella-Shigella), sobre todo los modernos cromogénicos, pero también muchos medios clásicos diferentes al XLD y al SS Agar.

En medicamentos,

Farmacopea exige la búsqueda de Salmonella spp. en medicamentos no estériles

y se suelen emplear tras el TSB o el Agua de Peptona Tamponada Salina, Tetrationato MKT y Rappaport,

y después XLD y BGA ó DCA.

En cosméticos

no hay método oficial obligado, pero muchos laboratorios (sobre todo los que fabrican cosmética oral pero también muchos otros que asumen que sus cosméticos pueden acabar rozando por accidente la boca de sus clientes),

han seguido una variante de la ISO 6579 de alimentos, con resultados excelentes, tras la inactivación de conservantes en LPT Neutralizing Broth

en vez del Agua Peptonada Tamponada

y tras el enriquecimiento en SS Broth

en vez de en Rappaport,

usando para aislar en estrías el XLD y el Cromosalm.

En aguas de consumo humano

no se busca obligadamente, ya que se asume que el indicador E.coli es suficiente (si no hay E.coli, es de suponer que no hay Salmonella spp. ni Shigella spp.).

Los laboratorios que buscan activamente Salmonella spp, lo suelen hacer con diferentes variantes de las ISO 6579 y 19250.

Lo curioso es que la mayoría no miran Shigella spp, cuando es por vía acuática que la cepa mortal (riesgo biológico grupo 3) de Shigella, la Sh.dysenteriae, se transmite más frecuentemente.

 

 

4-Los métodos alternativos que mejoran la rapidez de los resultados y la robustez del análisis

Es abrumadora la cantidad de métodos y kits diferentes que existen para detectar Salmonella spp.

Como siempre, casi todos se olvidan de Shigella spp.

Tal y como indica la ISO 17381 sobre los requisitos para la elección de kits (aunque sea una Norma dedicada al análisis de aguas, es extrapolable también a alimentos, cosméticos y otras matrices)…

…un kit debe usarse, según el criterio profesional del usuario, si ahorra tiempo/puntos críticos/manipulaciones y funciona (al menos) tan bien como el método oficial.

Esto permite el uso del criterio profesional personal, al revés de la inmoral tendencia cada vez más frecuente de exigir gastos inviables a los diseñadores y fabricantes de métodos alternativos.

Enriquecimiento selectivo

Ya desde 1994 existe el medio SS Broth que permite el enriquecimiento selectivo del tándem Salmonella y Shigella sin los problemas del Rappaport:

Medios cromogénicos

Desde finales del siglo pasado, comenzaron a desarrollarse medios cromogénicos para Salmonella spp (no para Shigella spp), que permiten ahorrar (al menos en el caso de nuestro Cromosalm “ABC”) grandes cantidades de tiempo y dinero en confirmaciones

que en medios clásicos son necesarias y aquí ya no,

al no confundir los interferentes (Citrobacter spp., colonias negras, Proteus spp., colonias incoloras…) con las colonias diana de Salmonella spp., verdes (página anterior).

Acortando tiempos

Destacamos la reducción de tiempo en Salmonella que supone el protocolo Salmoquick,

que aúna el preenriquecimiento revitalizador con el post-enriquecimiento selectivo.

No cae en el error de emplear caldo Rappaport, que elimina algunas cepas de Salmonella spp. y por supuesto las de Shigella spp.

Además tiene en cuenta el efecto matriz en muestras con conservantes, el gran y terrible olvido en microbiología alimentaria.

Se puede emplear en dos versiones:

-con medios deshidratados y

-con medios preparados.

Al igual que en el método oficial, si salen colonias sospechosas deben confirmarse.

Pero si no aparecen, la industria se ahorra 36h en stock de producto en cuarentena que perdería, de seguir el método oficial.

La diferencia entre Salmoquick y la mayoría de métodos alternativos es el precio,

que puede llegar a ser tan reducido como 2 €/test completo (confirmaciones no incluidas si crecen colonias sospechosas).

Placas deshidratadas

Destacan también las dos DryPlates  (única marca de placas deshidratadas cuyo diseño permite sembrar también en estrías)

que se incluyen en Salmoquick preparado y se pueden adquirir también por separado para estriar los caldos enriquecidos:

-DryPlates-SAL con Cromosalm Agar (Salmonella: colonias verdes), y

-DryPlates-XLD (Salmonella: colonias negras)

 

 Confirmación de colonias sospechosas.

También existen multitud de métodos de confirmación.

Los más usados son diferentes galerías de identificación, cuya base de datos, meramente clínica, provoca bastantes errores en cepas menos comunes.

Y antisueros O, Vi y H.

También los látex que aúnan éstos con una interpretación mucho más fácil y casi inmediata de los positivos, por aglutinación muy visual de las partículas del látex.

 

 

5-Cómo vemos el futuro en la detección de este grupo

Insistimos que existe un mala práctica en productos donde la legislación exige la ausencia de Shigella spp: buscarla con medios diseñados para Salmonella spp; o peor aún: olvidarse de que hay que buscarla. Lo que está creando un grave riesgo para la Salud Pública.

https://www.microkit.es/fichas/SALMONELLA-SHIGELLA-MICROKIT-BROTH.pdf

https://www.microkit.es/fichas/CROMOSALM-ABC-MICROKIT-AGAR-MODIF-1-2022.pdf

https://www.microkit.es/fichas/XLD-AGAR.pdf?v=2023

https://www.microkit.es/pdf/Salmoquick-2016.pdf

Si desea esta monografía  completa en pdf, con las fotos que aqui no aparecen, solicítela en consultastecnicas@microkit.es

Aerobios totales, bacterias heterótrofas aerobias, recuento total

Aerobios totales, bacterias heterótrofas aerobias, recuento total. Standard Methods Agar (Plate Count Agar) y sus versiones cromogénicas

Aerobios totales, bacterias heterótrofas aerobias, recuento total

LAS MONOGRAFÍAS DE MICROKIT. Tema 2

MONOGRAFÍA Aerobios totales

 

1-El microorganismo y su interrelación con el ser humano

Se denominan organismos aerobios , en contraposición a los anaerobios, a los microorganismos (bacterias y otros microorganismos detectables en medios de cultivo generales)  que pueden vivir o desarrollarse en presencia del oxígeno del aire.

Los que viven en presencia de niveles menores de oxígeno, se denominan microaerófilos.

El metabolismo aerobio (respiración) surgió en la evolución después de que la fotosíntesis oxigénica por parte de las cianobacterias, la forma más común de fotosíntesis, liberase a la atmósfera gran proporción de oxígeno, hasta llegar al 21% actual;

el cual hasta entonces había sido muy escaso.

Esta fue la primera gran extinción masiva de las 6 que ha sufrido el planeta y relegó a los anaerobios, hasta entonces los dominantes, a los fondos anóxicos de los lagos (y posteriormente al tracto digestivo de los grandes animales superiores).

Inicialmente este metabolismo aeróbico representó una forma de contrarrestar la toxicidad del oxígeno (el oxígeno nos da la vida a los seres superiores, pero es quien acaba matándonos a causa de los radicales libres acumulados del envejecimiento), más que una manera de aprovecharlo.

Como la oxidación de la glucosa y otras sustancias libera mucha más energía que su utilización anaerobia (por ejemplo, la fermentación), los seres aerobios pronto se convirtieron en los nuevos organismos dominantes en la Tierra.

La aerobiosis es un proceso de respiración celular, en el que se usa el oxígeno para la oxidación del sustrato (por ejemplo azúcares y grasas, para obtener energía);

por ejemplo, el oxígeno se usa durante la oxidación de la glucosa y se produce agua, COy energía.

Recuento total con colonias hemisféricas (por siembra en superficie) y ovaladas (por siembra en masa).

¿Cómo podemos definir los aerobios totales?

1-¿Los microorganismos que crean colonias en los medios generales, incubados sin atmósferas especiales?

2-¿La suma de los recuentos de todos los microorganismos buscados por el laboratorio en medios especiales, por ejemplo aerobios + levaduras + enterobacterias + Listeria + estafilococos+…?

3-¿El total de bacterias que no son anaerobias estrictas (es decir, la suma de aerobios y anaerobios facultativos), que hay en mi muestra?

Las tres son definiciones plausibles, pero en la práctica nos sorprendería ver las grandes diferencias de recuento obtenidas en estas tres definiciones, al alza o a la baja, y según cada tipo de muestra, motivadas por la población que se ha denominado “no vivificables”.

Los recuentos totales en la realidad NO SON el total de microorganismos que hay en mi muestra (expresado en ufc/g),

sino el total de colonias que soy capaz de obtener en mi medio general.

La correlación entre ambas realidades no es lineal, como demuestran otros métodos indirectos más rápidos,

pero algo hemos de ser capaces de contar y registrar, aunque la incertidumbre del recuento sea un disparate.

Y por eso la definición aceptada de aerobios totales es la primera de las tres antedichas en este párrafo: porque necesitamos estandarizar el parámetro para que todos hablemos de lo mismo.

¿Cuál es el microorganismo más buscado del mundo? E.coli? Legionella pneumophila? Listeria monocytogenes?

NO, son los aerobios y su recuento.

¿Para que se busca este parámetro? Es el más típico y básico indicador de higiene en los productos.

Sin que eso tenga por qué ver nada con la presencia o no presencia de patógenos, como creen muchos laboratorios.

A efectos prácticos, existen diferentes poblaciones de aerobios.

Lo describen bien los medios de cultivo estándar:

Según PCA, en alimentos hay que incubar a 30 ºC para la detección de aerobios mesófilos, a 55 ºC para los termófilos y a 7 ºC para los psicrófilos.

Según YEA, en aguas hay que incubar a 36 ± 2 ºC (para flora patógena y asociada) y duplicados a 22 ± 2 ºC (para flora saprófita).

Esto sucede también en otras matrices (medicamentos, cosméticos…) donde suele incubarse a 32,5 ± 2,5 ºC

y pocos laboratorios contemplan que no es lo mismo un recuento de aerobios a temperaturas cercanas al cuerpo humano (microbiota aportada en los diferentes puntos de la cadena por personas y animales de sangre caliente),

que un recuento de aerobios alterativos a temperaturas similares a las del ambiente donde se almacenarán sus productos (21-25ºC en general, 4-8 ºC si son productos de nevera), aportada por el aire y las superficies.

Pocas veces coinciden lo más mínimo los recuentos realizados a estos diferentes grupos de temperaturas, que proponemos denominar (dadas las temperaturas que realmente nos interesan):

-ambiente humano o veraniego (aprox. 30-35ºC),

-ambiente primaveral (aprox.20- 25ºC)

-y ambiente invernal o de nevera (aprox.7ºC).

Cada laboratorio debería elegir cuales dos o tres temperaturas son las que pueden afectar a sus productos (la de 35ºC aprox, afecta a todos), y no cegarse con las temperaturas que digan los métodos estándar que más le atañen

(ya hemos visto la gran variabilidad de temperaturas que proponen según sea el tipo de muestra).

Tampoco caer en el error de creer que los aerobios totales son la suma de los hallados a las tres temperaturas, ya que aun siendo poblaciones muy diferentes, tienen miembros que se solapan,

es decir, hay aerobios de ambiente veraniego e invernal que también crecen bien a temperaturas primaverales, por lo que el recuento de aerobios totales es siempre inferior al recuento de aerobios de ambiente veraniego + primaveral + invernal.

 

 

2-Los tipos de productos donde la legislación exige su búsqueda o recuento, así como otros tipos de productos donde a nuestro criterio, sería recomendable analizarlos

-Medicamentos

-Cosméticos

-Aguas de consumo, aguas envasadas

-Alimentos

-Además, sea o no por orden oficial, se miran en:

-Otros productos industriales donde su proliferación altera las propiedades del producto (ej: keroseno, taladrinas…)

-Aires interiores

-Superficies

 

 

3-Los métodos oficiales para su detección/recuento

Pharmacopea en medicamentos:

TSA en medicamentos y ambientes (el mismo medio general que ha elegido la ISO 11133-2 de control de calidad de medios),

y R2A en aguas (medio de excelentes resultados para los oligotróficos que resisten en las aguas ultrapurificadas).

No existe método oficial en cosméticos, aunque muchos laboratorios siguen la Norma Técnica ISO que invita al uso de TSA

(y R2A en sus aguas por asimilación a Pharmacopea).

Otros prefieren usar agares con inactivadores de los conservantes (Eugon, Letheen, LPT Neutralizing Agar) aunque ya hayan pasado una fase previa de inactivación en el caldo de la solución madre.

Las placas preparadas de cualquiera de estos medios son utlizadas por algunos laboratorios, pero quedan fuera de rango de recuento, ya que no pueden absorber 1 mL de la solución madre (-1),

a no ser que el mL se reparta en 3 placas, y por ello en quienes no lo hace en 3 placas, 1 colonia/0,1 ml equivale a 100 ufc/g,

lo cual queda fuera del rango de recuento en placa (mínimo 10-15 colonias para que sea aceptable, es decir, 1000-1500 ufc/g).

En aguas de consumo y envasadas debe usarse por Directiva Europea (traducida en Real Decreto) la siembra en masa de 1 mL del agua en YEA (PCA-Water), que es un PCA especial para oligotrofos (sin glucosa).

También se llama Agar Nutritivo con Triptona y Extracto de Levadura.

En alimentos y otros productos se emplea por tradición ISO el PCA (Standard Methods Agar)

y en algunos lácteos el PCA-Milk.

La siembra en masa de 1 ml de las diferentes diluciones decimales, invita al uso de PCA con 10,5 g/L de agar-agar (“PCA aeróbico”) en lugar de 15 g/L del mismo,

para evitar la falta de crecimiento en la zona del fondo de la placa donde no llega el aire cuando la concentración del gelificante es la alta.

Las placas preparadas de PCA no sirven para los recuentos oficiales por siembra en masa de producto, sólo para aire y filtración de membrana

(aquí sí que deben ser de 15 g/L de agar-agar).

En caldo para filtración de membrana con la técnica del cartón absorbente se denomina M-TGE.

Existe controversia sobre si recupera más el TSA o el PCA, los dos grandes medios del recuento total.

En nuestra experiencia, depende de la matriz y de las cepas, ya que algunas de éstas crecen bien en TSA y no en PCA, y otras a la inversa, porque unas prefieren la sal y la soja del TSA y otras prefieren la glucosa y el extracto de levadura del PCA.

En aires y superficies, la gran desconocida Norma ISO 100.012 exige el uso del LPT Neutralizing Lilac Agar

(que nosotros llamamos LPT Neutralizing Agar Purple y en USA se llama D/E Neutralizing Agar),

porque hay que inactivar los residuos de desinfectantes si queremos obtener recuentos representativos de la realidad.

Al parecer casi nadie hace caso a esta Norma y cada uno emplea el medio que usa para sus productos, olvidando la importancia crítica de la afirmación de la frase anterior.

 

 

4-Los métodos alternativos que mejoran la rapidez de los resultados y la robustez del análisis

Hay otros muchos medios que han demostrado obtener recuentos incluso superiores a los oficiales en diferentes matrices,

por ejemplo el Agar BHI (mucho más rico que el PCA o el TSA para cualquier matriz),

el PCA carbón para superficies,

el Total Marine Agar para productos del mar,

el Agar Sangre para muestras clínicas,

el HPC-Heterotrophic Plate Count Agar en aguas,

el MDA-Microkit Diferencial Agar en superficies y aires,

las diversas versiones de Nutrient Agar,

el OSA-Orange Serum Agar en alimentos de pH ácido…

El R2A es oficial en aguas farmacéuticas ultrapurificadas, pero funciona de forma mediocre en otras aguas, a pesar de que países como Brasil lo han adoptado para el recuento total en aguas de consumo humano.

Y funciona muy mal en aires y superficies, por ejemplo.

 

El descubrimiento en la ultima década del siglo pasado de los agares cromogénicos, permite  no sólo una detección mucho más fiable de patógenos

(enzimática, en vez de la bioquímica que es propia de los medios de cultivo convencionales),

sino que además, en casos como nuestros famosos PCA-cromogénico (o PCA-Milk cromogénico, o YEA-cromogénico, o TSA-Maxim Cromokit Agar…),

permite una detección más evidente al ojo humano en los recuentos de aerobios,

al crecer las colonias con un color rojo opaco de contraste contra el medio de cultivo y ante los artefactos que no son colonias (partículas de muestra, burbujas…).

Una actualización (con cromógeno termoestable) al siglo XXI del clásico TTC termolábil,que había que añadir al PCA cuando ya se había enfriado a 45ºC.

El PCA cromogénico de MICROKIT respeta los 10,5 g/L de agar-agar en vez de 15 g/L, para que la siembra en masa obtenga mayores resultados por mejor penetración del aire hasta el fondo de la placa.

Si a ello sumamos el gran invento de la placa deshidratada (en nuestro caso, Dry-Plates),

nos ahorraremos el enorme retraso de tiempo que supone  autoclavar-fundir-enfriar medios, homogeneizar placas, esperar que solidifiquen…

Y nos ahorraremos además el gravísimo punto crítico de la temperatura de adición del medio fundido a la muestra,

que destruye grandes proporciones de aerobios presentes en la muestra, como llevamos décadas observando en intercomparación, incluso cuando se hace estrictamente a 45ºC.

Disponemos de Dry-Plates de recuento de aerobios de todos los medios mencionados para los diferentes sectores:

-TSA para medicamentos,

-TSA cromogénico (Maxim Agar) para cosméticos,

-YEA cromogénico para aguas,

-PCA cromogénico para alimentos y otros productos.

 

Por otra parte, los protocolos de análisis microbiológicos de medicamentos, cosméticos y aguas tienen en cuenta que la muestra contiene o puede contener inhibidores

(añadidos o no deliberadamente a la muestra como los conservantes, el Cloro…).

Pero no es así en los protocolos oficiales de alimentos, que “olvidan” sistemáticamente este hecho.

Cada vez hay más laboratorios de alimentos que, por vivirlo en la intercomparación, cambian del diluyente estándar (Buffered Peptone Water, TSB, Ringer, solución salina…)

al Buffered Peptone Neutralizing Water (patente MICROKIT) en todos los parámetros que analizan,

https://www.microkit.es/fichas/BUFFERED-PEPTONE-NEUTRALIZING-WATER.pdf

y se dan cuenta del gran error que supone que nadie les haya dicho que las especias y condimentos, la sal, el azúcar, las hierbas aromáticas (labiadas y compuestas), el ajo, el pimiento, las crucíferas, las umbelíferas…

más que saborizantes, son realmente conservantes descubiertos desde la prehistoria del hombre para conservar alimentos, cada uno más o menos adecuado para los distintos microorganismos.

Y que a veces es necesario hacer los análisis desde la dilución (-2) porque el producto es tan inhibitorio que en la (-1) no se detecta nada,

como todo el mundo conoce en cosmética como “excesivo poder inhibitorio intrínseco de la muestra”.

Tras usar Buffered Peptone Neutralizing Water en alimentos o LPT Neutralizing Broth en cosméticos, lo ideal es mantener la inactivación de conservantes,

usando en el recuento de aerobios  el LPT Neutralizing Agar

(sea con o sin púrpura, aunque ésta alerta, por viraje del medio a amarillo, mucho antes de que se manifiesten las colonias).

 

No son necesarias pruebas de confirmación en aerobios, ya que todas las colonias que crecen en cualquiera de los medios mencionados, se consideran aerobios si se han cultivado en aerobiosis (no anaerobios).

Muchas veces crecen levaduras y mohos en estos medios de aerobios; dado que no se pueden distinguir a simple vista las colonias de bacterias de las de levaduras

(a pesar de algunas leyendas urbanas que dicen lo contrario),

Recuento total con colonias hemisféricas (por siembra en superficie) y ovaladas (por siembra en masa).

se consideran éstas también como aerobios.

Sucede algo parecido a quienes buscan flora acidoláctica (ej: Lactobacilos),

ya que incluso en los medios especiales para ellos (ej: MRS)

los aerobios interfieren con las diana por tener colonias muy similares

(aunque los Lactobacilos tienen colonias blancas y opacas, no traslucidas y/o de otros colores como los aerobios).

Lo que creemos que sería necesario en este caso, es  verificar la productividad del medio, es decir, qué porcentaje de aerobios reales es capaz de recuperar cada medio;

a causa del concepto de no vivificables, no cultivables, subletales, letárgicos o como queramos llamarlos.

Esto debería hacerse (para muestras idénticas) con todos los medios mencionados para cada tipo de matriz,

y así emplear después de rutina el que más altos (reales) resultados proporcione en cada caso.

Sorprenderán las enormes diferencias de hasta 3 órdenes de magnitud entre unos medios y otros en función de la matriz analizada,

a quienes todavía son pioneros, apuesten por mejorar las cosas preconcebidas y hagan este experimento revelador con sus productos concretos.

Hay por inercia multitud de laboratorios haciendo las cosas como les han enseñado o como dicen los métodos oficiales,

sin plantearse que por  ejemplo, un producto de pH 4, pasado por una agua peptonada tamponada a pH 7, no ha sido contemplado en esos métodos oficiales,

y probablemente haya perdido su flora natural (o su capacidad para manifestarse) mientras la analiza:

doble error, no se manifiesta en el medio de cultivo, pero sí en el producto.

Lo mismo que el ejemplo de productos hiperosmóticos a los que se hace la microbiología a la dilución (-1)

en vez de hacérsela a la (-2) para permitirles que se manifiesten.

Sin duda, queda mucho por implantar en microbiología de alimentos.

También en microbiología de cosméticos,

donde sigue habiendo numerosos laboratorios que toman como única referencia el recuento de aerobios y el de hongos en 1 g (en realidad en 0,1 g, al partir obligadamente de la dilución (-1)),

y deciden unilateralmente que si sale “0”, ya no hay patógenos.

Gravísimo error, cuando los patógenos necesitan enriquecimiento revitalizador para manifestarse

y no aparecen por arte de magia en 0,01 g de muestra sembrada en superficie (0,1 mL de la dilución (-1)) en una placa de TSA

a no ser que estén a concentraciones masivas en la muestra, lo cual es muy raro que ocurra en una matriz tan inhibitoria.

 

 

5-Cómo vemos el futuro en la detección de este grupo

Como hemos esbozado antes, defendemos que cada laboratorio debería tener la libertad de elegir el medio de cultivo para recuento de aerobios que mejor le demuestre que los enumera en sus propios productos.

El estándar debe ser el recuento más alto obtenido, porque será el más cercano a la realidad para que podamos convertir con confianza,

tras aplicar el factor de dilución empleado,

las colonias/placa en ufcs/g.

 

Si desea esta monografía  completa en pdf, con las fotos que aqui no aparecen, solicítela en consultastecnicas@microkit.es

https://www.microkit.es/fichas/PLATE-COUNT-AGAR-polvo-aerobico-STANDARD-METHODS.pdf

https://www.microkit.es/fichas/PLATE-COUNT-AGAR-CROMOGENICO.pdf

 

 

Staphylococus aureus: detección

Staphylococus aureus: detección y recuento rápidos en alimentos, cosméticos, superficies, aire, agua…… Baird Parker cromogénico

Staphylococus aureus: detección

LAS MONOGRAFÍAS DE MICROKIT. Tema 1: ESTAFILOCOCO DORADO

 

1-El microorganismo y su interrelación con el ser humano

Staphylococcus aureus (abreviado S.aureus o St.aureus y popularmente conocido como estafilococos dorado) es un coco Gram positivo (se tiñe de azul-violeta en Gram al microscopio y no filamenta en Neogram directo en la colonia)

cuyas células coloniales se agrupan en forma de racimos cuando se miran al microscopio.

Se comporta como facultativa (aerobia o anaerobia a conveniencia).

La mayoría de sus cepas son coagulasa positivas, termonucleasa positivas, oxidasa negativas y catalasa positivas.

No tiene flagelos (es inmóvil) ni necesita esporas (su diminuta célula esférica ya es en si una forma de resistencia).

Se desarrolla bien en todos los medios de cultivo convencionales, fermenta lentamente carbohidratos, como el manitol, pero sin producir gas.

Produce pigmentos que varían de unas cepas a otras y de unos medios a otros, desde un color blanco hasta un amarillo intenso.

Aparte de otros muchos hábitats (se considera ubicuo), se encuentra como comensal en la piel y mucosas de cerca del 30% de personas (portadores asintomáticos)

junto con otros estafilococos no patógenos (S.epidermidis, S.hominis y otras muchas cepas que provocan el olor a sudor, normalmente más acentuado en los varones por tener mayor proporción de S.hominis y S.aureus).

Esta bacteria se localiza en el cuerpo humano en el interior de la nariz, pliegues (ingles, perineoaxilas…)  y vagina.

Dado su ligero tamaño (0,5 a 1 μm de diámetro), todos ellos viven sin problema suspendidos en el aire (no “caen”), vía por donde se transmiten.

St.aureus puede producir una amplia gama de enfermedades, sobre todo en personas inmunodeprimidas,

que van desde infecciones de la piel y mucosas: foliculitis (infección en los orificios de los folículos pilosos, con lesiones dolorosas, rojizas y pequeñas), forunculosis (granos con pus amarillo), conjuntivitis…,

a otras enfermedades (celulitis, mastitis, abscesos profundos, osteomielitis…)

e incluso a enfermedades sistémicas mortales (sepsismeningitisendocarditis, neumonía…).

La Toxina-1 del síndrome de shock tóxico (TSST-1) es una toxina termoestable y resistente a proteólisis que actúa como un superantígeno.

Esta patología está asociada con la infección de una herida por S. aureus. Provoca un mortalidad elevada en ausencia de tratamiento.

Además, provocan toxiinfecciones alimentarias incluso cuando ya no están presentes en el alimento:

el calor destruye sus células, pero el 30% de cepas de S.aureus puede producir una enterotoxina muy termoresistente, en correlación con la termonucleasa,

estable incluso al calentar los alimentos más de 100 °C durante 30 minutos,

además es resistente a la hidrólisis por enzimas gástricas y pancreáticas).

De ahí que su ausencia no implique necesariamente que un alimento sea comestible, si ha estado presente en sus materias primas o antes del tratamiento térmico en el producto final).

Esta realidad se tiene en cuenta en alimentos, pero no en otras matrices que no se ingieren (aguas de baño y cosméticos). ¿Qué sucede en medicamentos?

La intoxicación provoca vómitos intensos, diarrea y cólicos que inician entre 2 y 6 horas después de la ingesta.

La resolución es rápida (menos de 24 h).

Es el mayor agente actual de infecciones nosocomiales (adquiridas por los pacientes en los propios hospitales),

debido a su resistencia a diversos antibióticos, incluidas las penicilinas (el 80% de S. aureus en la actualidad es resistente a la penicilina),

entre ellas Meticilina y Oxacilina, la primera de las cuales le ha dado a esta bacteria su nombre clínico de moda: MRSA o SARM (siglas de St.aureus Meticilin Resistente).

Las ß lactamasas son enzimas que inactivan a la penicilina, uno de los mecanismos de defensa de SARM.

Estas enzimas pueden inhibirse para así evitar que destruyan a las penicilinas susceptibles, lo cual se logra mediante la adición de ácido clavulánico junto con la penicilina.

Esta bacteria es uno de los mejores ejemplos de la guerra sin fin entre los microorganismos y el hombre con los diferentes antibióticos aplicados desde que se descubrieron.

 

2-Los tipos de productos donde la legislación exige su búsqueda o recuento, así como otros tipos de productos donde a nuestro criterio, sería recomendable analizarlos

Medicamentos

Cosméticos

Aguas de baño (en algunas CCAA)

Los siguientes alimentos:

caldos, cremas, carnes refrigeradas, congeladas o picadas (y derivados), jamón cocido, productos de la pesca, comidas preparadas con y sin tratamiento térmico…

…productos dietéticos, semiconservas,  cuajo, vegetales congelados, galletas, gelatinas, productos lácteos y helados derivados de lácteos…

…horchata, levadura, ovoproductos, pastelería, bollería, confitería, repostería, aperitivos, turrones, mazapanes

A nuestro entender, debería buscarse además en todo alimento manipulado por personas

y en aguas de baño en todas las CCAA.

Del mismo modo, en todo alimento y medicamento oral deberían buscarse las cepas termonucleasa positivas.

 

3-Los métodos oficiales para su detección/recuento

Pharmacopea en medicamentos:

Mannitol Salt Agar o Vogel Johnson Agar (el Baird Parker Agar fue eliminado) y coagulasa

No existe método oficial en cosméticos,

aunque muchos laboratorios siguen la Normas Técnica ISO que invita al uso de Baird Parker Agar, lo cual genera numerosos resultados falsamente positivos y falsamente negativos, al ser un medio diseñado para eliminar una alta carga acompañante (alimentos) sin tener en cuenta las cepas estresadas/subletales de S.aureus

No existe método oficial en aguas de baño

y por extrapolación suele emplearse filtración de membrana sobre Baird Parker Agar (mismas salvedades que hemos indicado en cosméticos)

ISO 6888 en alimentos,

con Giolitti Cantoni para enriquecimiento y Baird Parker Agar para aislamiento y recuento. Coagulasa.

 

4-Los métodos alternativos que mejoran la rapidez de los resultados y la robustez del análisis

El caldo Manitol Salt Broth

permite un enriquecimiento más selectivo que el Giolitti-Cantoni Broth (y por supuesto que el TSB, agua de peptona, LPT Broth…) cuando la carga de microbiota acompañante es elevada y, en vez de recuento, se busca la ausencia de S.aureus.

Medios cromogénicos

El descubrimiento en la ultima década del siglo pasado de los agares cromogénicos permite  una detección mucho más fiable (enzimática, en vez de la bioquímica que es propia de los medios de cultivo convencionales).

Por ejemplo el BPX19 Agar (Baird Parker cromogénico) detecta con mayor fiabilidad que el Baird Parker clásico, el rpf, el Vogel Johnson o el Manitol Salt Agar las cepas de estafilococos.

En dicho medio, S.aureus crece con pequeñas colonias azul oscuro o violeta (a veces con viraje hacia el púrpura), mientras las demás cepas de estafilococos crecen con pequeñas colonias verdes.

Pueden crecer especies de Bacillus con tonos azulados, pero lo hacen con colonias muy grandes, nada similares a las de estafilococos.

Si añadimos yema de huevo (sin telutito) a este medio, veremos además la actividad lecitinasa de cada colonia (por su halo de lisis).

La coagulasa 

está ​ presente en la mayoría de las cepas de S. aureus, y constituye una prueba muy sensible y específica para esta bacteria.

La coagulasa puede unirse al fibrinógeno y convertirlo en fibrina insoluble, la cual tiende a formar depósitos donde los estafilococos pueden agregarse (semejando a las plaquetas) y formar grupos.

Los látex de coagulasa permiten detectarla en escasos segundos a partir de las colonias sospechosas.

Los medios que incluyen detector de coagulasa (rpf) demuestran en intercomparación no interpretarse bien por parte de sus usuarios (cerca del 50% de falsos positivos y del 50% de falsos negativos).

Catalasa

En la prueba para detectar la catalasa, al aplicar peróxido de hidrógeno a la colonia, en la mayoría de cepas de S.aureus se nota la aparición de pequeñas burbujas de oxígeno, pero hay algunas cepas catalasa negativas, por lo que es una prueba menos específica que la coagulasa.

Mannitol

En la prueba de fermentación de manitol, el cambio de color de naranja a amarillo indica el empleo del manitol (Agar Mannitol Hipersalino). Pero muchas cepas de S.aureus no fermentan el manitol, por lo que dan falso negativo en este medio; y muchas de otras cepas sí lo fermentan, por lo que dan falso positivo en este medio.

Termonucleasa

Las cepas que generan enterotoxina termoresistente se detectan gracias al crecimiento con halo en el agar DNA-asa, que se convierte en agar termonucleasa al añadirle azul de toluidina, para mejor visualización de los halos rosas de lisis que provocan las colonias en el ADN presente en el medio cuando se añade HCl.

La detección concreta de las enterotoxinas en las cepas de S. aureus  tiene un costo elevado. Por esta razón generalmente no se realiza y se asume que las cepas productoras de coagulasa y termonucleasa son enterotoxigénicas.

 

5-Cómo vemos el futuro en la detección de esta cepa

Dada la facilidad de intercambio genético entre células de diferentes especies de estafilococos, en vez de S.aureus proponemos buscar estafilococos patógenos (coagulasa positivos, con motivo de la facilidad de uso de látex de respuesta prácticamente inmediata).

Esto acabaría con la incongruencia de la Norma ISO 6888, que dice que S.aureus forma colonias negras con borde blanco y halo de lisis en BairdParker,

pero a veces las colonias crecen sin halo,

a veces no son negras…

Y permitiría el uso con mayor fiabilidad de medios enzimáticos (cromogénicos) como BPX19 Agar, haciendo la coagulasa a cualquier colonia diminuta, fuese azul-violácea, fuese azul-turquesa o verdosa.

Aunque la prueba de la DNA-asa no es inmediata, se debería añadir a la de la coagulasa en alimentos y medicamentos orales,

para demostrar la ausencia de enterotoxina estafilocócica que podría haber sido dejada como contaminante por células de St.aureus que estuvieron presentes en alguna de las materias primas y ya no lo están.

Si desea esta monografía  completa en pdf, con las fotos que aqui no aparecen, solicítela en consultastecnicas@microkit.es

https://www.microkit.es/fichas/BAIRD-PARKER-AGAR-polvo.pdf

https://www.microkit.es/fichas/baird-parker-bpx19-cromogenic-agar-polvo.pdf

https://www.microkit.es/fichas/STAPH-COAGULASA-M-IDENT-LATEX.pdf

 

Levaduras y Mohos (Hongos), detección y recuento rápidos en alimentos, cosméticos, superficies, aire, agua…

Levaduras y Mohos (Hongos): Detección y Recuento Rápido en Alimentos, Cosméticos, Superficies, Aire y Agua

Introducción

Las levaduras y los mohos forman parte del Reino Fungi, un grupo biológico esencial en la naturaleza y de gran relevancia en microbiología industrial y sanitaria. A diferencia de las plantas, los hongos no realizan fotosíntesis: obtienen su energía a partir de materia orgánica, por lo que desempeñan un papel fundamental en los ecosistemas y en la industria.

Candida albicans, levadura

oportunista en mucosas

Aunque muchas especies de hongos son beneficiosas, otras pueden causar deterioro de productos, problemas de salud o reacciones alérgicas, por lo que su detección y recuento rápido resulta clave en el control de calidad de alimentos, cosméticos, medicamentos, aguas y ambientes industriales.


1. Los Hongos y su Relación con el Ser Humano

Los hongos pueden ser unicelulares, como las levaduras, o pluricelulares y filamentosos, como los mohos.

  • Levaduras: forman colonias similares a las bacterianas (ejemplo: Candida albicans, levadura oportunista en mucosas).
  • Mohos: desarrollan estructuras filamentosas visibles, como Aspergillus flavus (amarillo, productor de aflatoxinas) o Aspergillus fumigatus (verde, patógeno oportunista).

Como eucariotas, los hongos se diferencian fácilmente de las bacterias: poseen núcleo, orgánulos y un tamaño celular mayor. Además, pueden crecer en medios con antibióticos como cloranfenicol u oxitetraciclina, que inhiben el crecimiento bacteriano.


2. Nichos Ecológicos y Preferencias de Crecimiento

Los hongos prefieren ambientes ácidos, mientras que las bacterias prosperan en medios neutros o alcalinos.
Esta característica se aprovecha en el diseño de medios selectivos de cultivo.

En la naturaleza, hongos y bacterias coexisten, pero el tipo de materia orgánica determina qué grupo predomina.


3. Hongos Beneficiosos y Patógenos

Mohos y levaduras beneficiosos:

  • Saccharomyces cerevisiae: fermentación del pan, vino y cerveza.
  • Kluyveromyces marxianus (Candida kefir): excelente probiótico simbionte humano.
  • Saccharomyces boulardii: probiótico hospitalario durante tratamientos antibióticos.
  • Penicillium chrysogenum: fuente del antibiótico penicilina.
  • Penicillium camemberti: responsable de la corteza blanca de los quesos blandos.

Hongos y levaduras patógenos:

  • Candida albicans: comensal que puede causar infecciones en situaciones de estrés o inmunodepresión.
  • Aspergillus fumigatus, Alternaria alternata, Fusarium spp.: causantes de micosis, alergias y producción de micotoxinas (aflatoxinas, ocratoxinas, zearalenona, etc.).

4. Detección y Recuento: ¿Qué Exige la Legislación?

Dado que los hongos están presentes en todos los entornos, no se exige su ausencia total, sino que sus recuentos se mantengan por debajo de los límites normativos, los cuales varían según el producto:

Ámbitos de análisis más frecuentes:

  • Alimentos: cereales, golosinas, frutas, harinas, miel, bollería, conservas, productos dietéticos…
  • Medicamentos y cosméticos
  • Aguas envasadas y refrescos
  • Superficies y aire de fábricas, oficinas o entornos laborales
  • Ambientes interiores con riesgo de proliferación fúngica

5. Métodos Oficiales de Detección y Recuento

En alimentos

Según la ISO 21527:2008, los medios recomendados son:

  • DRBC Agar (Dichloran Rosa Bengala Cloramfenicol) para alimentos con actividad de agua > 0,95.
  • Aspergillus flavus aflatoxigénico (amarillo), Aspergillus fumigatus, grave
    patógeno oportunista (verde), y otros hongos y levaduras de crecimiento
    lento que en otros medios no serían capaces de crecer
  • DG18 Agar (Dichloran Glicerol 18%) para alimentos secos.

Otros medios utilizados según el tipo de producto:

  • Potato Dextrose Agar (PDA) y Malt Extract Agar: obtención de biomasa y esporulación.
  • Orange Serum Agar: para zumos y conservas ácidas.
  • WL Nutrient Agar o Wort Agar: para bebidas alcohólicas.
  • M-Green Broth: para bebidas muy ácidas.

En cosméticos y medicamentos

Las farmacopeas siguen utilizando Sabouraud Agar, Potato Dextrose Agar y Corn Meal Agar.
Sin embargo, su lentitud hace recomendable el uso de medios más rápidos y modernos, como los desarrollados por MICROKIT.

En aguas, superficies y aire

La ISO 10012 recomienda el Rosa Bengala Agar, ampliamente usado también en control ambiental y en fábricas de piensos o alimentos.


6. Prácticas Habituales y Errores Frecuentes

  • Evitar la siembra en masa: los hongos son altamente aerófilos, y esta práctica reduce su crecimiento, incluso en muchas levaduras como Candida albicans:

 

 

 

 

 

  • Diluciones incorrectas: las esporas de mohos flotan rápidamente; si la toma de muestra se retrasa, el recuento será inexacto. Véase en la foto todas las esporas concentradas en superficie tras pocos segundos tras la agitación:
  • Uso de medios bacteriológicos: muchos laboratorios aún emplean caldos sin azúcares, inadecuados para el crecimiento fúngico.

7. Innovación: Rapid YM Agar

Durante la pandemia, MICROKIT desarrolló el Rapid YM Agar, un medio cromogénico que acelera la detección y el recuento de levaduras y mohos a solo 18 horas, frente a los 3-5 días necesarios con medios convencionales.

Este avance permite a las industrias:

  • Reducir tiempos de liberación de lotes.
  • Mejorar la eficiencia del control microbiológico.
  • Evitar pérdidas económicas derivadas de resultados lentos o imprecisos.

El Rapid YM Agar está disponible en todos los formatos: deshidratado, placas, tubos, frascos y DryPlates.


8. El Futuro de la Detección Fúngica

La tendencia en microbiología industrial es hacia métodos rápidos, precisos y respetuosos con la microbiota ambiental.
MICROKIT lidera esta evolución con medios como Rapid YM Agar, DRBC o Rosa Bengala Caf Agar, que ofrecen resultados fiables y reducen el tiempo de análisis.


Si desea esta monografía completa en PDF, con imágenes y ejemplos prácticos, puede solicitarla en:
consultastecnicas@microkit.es
Más información: https://www.microkit.es/fichas/rapid-ym-agar.pdf

No se pierda nuestro video: https://youtu.be/qE2gNZH9KWQ?si=sAKHe8KqtGkBua9V

Microcistinas y otras Cianotoxinas en el agua: Nodularinas, Cilindrospermopsinas, Anatoxinas, Saxitoxinas… detección de quienes las generan

LAS MONOGRAFÍAS DE MICROKIT. Tema 12: Cianobacterias y Microalgas de interés en aguas y alimentos

Microcistinas y otras Cianotoxinas en el agua: Nodularinas, Cilindrospermopsinas, Anatoxinas, Saxitoxinas… detección de quienes las generan

 

1-El microorganismo y su interrelación con el ser humano

Las cianobacterias o “algas cianofíceas” son los procariotas que realizan la fotosínteis oxigénica (agua à oxígeno, como los vegetales eucariotas),

a diferencia de los procariotas fotosintéticos anaeróbicos, a menudo rojos y visibles en capas menos superficiales del sedimento.

Teoría simbionte

Fueron los primeros seres vivos en desarrollar esta fotosíntesis, la que hoy predomina en la Tierra gracias a los vegetales (en realidad, gracias a las cianobacterias, como endosimbiontes de los vegetales).

La teoría simbionte de Lynn Margulis sitúa las cianobacterias como los precursores de los cloroplastos de las células eucariotas vegetales (lo mismo que sitúa las eubacterias como precursores de las mitocondrias de todo tipo de células eucariotas, las espiroquetas como precursores de los flagelos eucariotas, etc).

Etimología

Su nombre deriva de “algas azules” a causa del color azul de uno de sus pigmentos fotosintéticos, la ficocianina, aunque algunas son rojas a causa de la ficoeritrina y los carotenoides, otras verdes por predominio de la clorofila, otras marrones o negras por mezcla de varios pigmentos.

Las cianobacterias y Gaia

Su importancia fue tan vital en la era Proterozoica (cuando aun no existían los eucariotas, desde hace 3.700 millones de años) que provocaron hace unos 2.500 millones de años la primera de las 6 extinciones masivas de especies de La Tierra, al convertir la atmósfera original, reductora y roja, en oxidante, azul (el actual cielo azul),

con la cantidad estable de oxígeno que tiene desde entonces (21%) gracias a la homeóstasis global denominada Gaia por Lovelock.

¿Algas o bacterias?

Son bacterias Gram negativas y a menudo pluricelulares, por eso se estudian en botánica, ya que forman colonias que en muchos casos  llegan a ser macroscópicas (las bacterias más largas que existen), con formas características según cada especie (algo homólogo a los líquenes, simbiosis de hongo y alga o cianobacteria).

Sus mayores colonias son los estromatolitos costeros (enormes piedras) y las segundas las costras negras de Nostoc (enormes «mocos» color oliva cuando hay humedad) en algunos suelos naturales y las semiesferas costeras verde-botella de Rivularia.

Su complejidad se constata mediante diversos tipos de células especializadas:

acinetos de reserva,

heterocistos para la fijación de Nitrógeno,

necridios desde donde los tricomas se dividen,

hormogonios o cortos filamentos móviles fruto de la reproducción asexual,

nanocitos o exósporas…

Algunas aún son capaces de realizar fotosíntesis anoxigénica (ya que sus antecesores evolutivos realizaban este metabolismo), convirtiendo el ácido sulfhídrico en azufre molecular.

Utilidad

La importancia de las cianobacterias para el ser humano, aparte de que sin ellas no habríamos llegado aquí, ni seguiríamos aquí, radica en las adicionalmente beneficiosas (productoras sobre todo de proteina para pienso,

como la famosa Spirulina,

de bioetanol, de colorantes alimentarios, de suplementos dietéticos…).

También son las elegidas (algunas endolíticas) para la colonización y generación de atmósfera respirable en otros planetas habitables antes de que el Sol extinga todo vestigio de vida en La Tierra dentro de unos pocos millones de años.

Y tambien destaca la importancia de las perjudiciales, generadas por aportes humanos de abonos al agua, que provocan blooms de cianobacterias

(sobre todo de Anabaena, Microcystis, Aphanizomenon…)

y éstos generan cianotoxinas y malos olores en el agua de recreo, baño e incluso de consumo humano.

España es uno de los 9 primeros países del mundo cuya legislación controló (desde 2003) en el agua potable, la ausencia de cianotoxinas (microcistinas, nodularinas, cilindrospermopsinas, anatoxinas, saxitoxinas…).

Cultivo para su detección

El éxito del Cianokit y del Cianagar desarrollados por Microkit desde hace 30 años, muestran la importancia de este grupo bacteriano para muchos laboratorios de salud pública, Confederaciones Hidrográficas y para muchas potabilizadoras de agua.

Algas eucariotas

Al final de Proterozoico aparecieron los primeros eucariotas:

junto con los protozoos, las algas eucariotas, entre ellas diversas algas verdes, dinoflagelados, haptófitos cocolitofóridos y diatomeas, sobre todo,

que más adelante darían lugar a las macroalgas verdes, rojas y pardas que hoy dominan la biomasa de la zona fótica de las costas.

Es un grupo sumamente polifilético, hasta algunos autores hablan de reinos diferentes entre diferentes algas.

Utilidad de las algas

Pero aquí nos interesan solo las microalgas, que son capaces de crecer en medios de cultivo (aunque es precisamente una macroalga, Gelidium sesquipedale, la principal productora de agar-agar microbiológico para fabricar medios de cultivo).

Las microalgas se buscan en las aguas envasadas (como alterativos de los caracteres organolépticos –olor, sabor y aspecto-).

Pero la importancia principal de las microalgas en nuestro terreno se debe a las intoxicaciones de productos del mar (almejas, mejillones, crustáceos, peces…) que pasan al ser humano y son provocadas por las mareas rojas de dinoflagelados

(Alexandrium, Gymnodinium, Gonyaulax, Pyrodinium, Prorocentrum, Dinophysys…), ya que son productores de diferentes tipos de toxinas: saxitoxina y gonyatoxinas -PSP Paralytic Shellfish Poisoning-, ácido okadaico -DSP Diarreica-, brevitoxinas –NSP Neurotóxica-, ciguatoxina –CFP Ciguatera-.

Por otra parte, hay diatomeas que producen ácido domoico -ASP Amnésico-.

Tambien son importantes diversas microalgas (ej: Chlorella) como beneficiosos en su cultivo para la producción de diferentes moléculas o incluso como simple forraje en cápsulas, ensaladas y otros platos.

El éxito del Ficokit y del Algae Agar desarrollados por Microkit desde hace 30 años, muestran la importancia de este grupo microbiano en muchos laboratorios medioambientales y en las envasadoras de agua.

 

2-Los tipos de productos donde la legislación exige su búsqueda o recuento, así como otros tipos de productos donde a nuestro criterio, sería recomendable analizarlos

-La legislación Española (Real Decreto 902/2018 de 20/7) siguen exigiendo, desde la versión del Real Decreto 140 de 2003, el control de algunas Cianotoxinas (sobre todo las más famosas: las Microcistinas) en aguas de consumo humano.

-Tambien deberían mirarse los blooms de cianobacterias en aguas de recreo y baño, ya que se han reportado numerosas intoxicaciones de personas sólo por nadar o incluso navegar o hacer piragüismo sobre blooms de cianobacterias y sus Microcistinas (y demás Cianotoxinas).

-Tambien existe legislación en cuanto a las toxinas del fitoplancton marino (mareas rojas de Dinoflagelados, sobre todo), por ejemplo el Real Decreto 571/1999 de 9 de Abril en bivalvos.

-Las envasadoras de agua deberían controlar, por su propia imagen, como ya hacen varias de ellas, la ausencia de microalgas en su aguas, pero tambien deberían controlar las cianobacterias a causa de las tóxicas Microcistinas y demás Cianotoxinas.

 

3-Los métodos oficiales para su detección/recuento

Son métodos químicos o ELISA para las Microcistinas; o de recuento de células de cianobacterias al microscopio

  

4-Los métodos alternativos que mejoran la rapidez de los resultados y la robustez del análisis

Cianagar y Agar Algas

MICROKIT diseñó desde sus comienzos el Cianagar para cianobacterias y el Algae Agar para microalgas.

Dado que son medios inorgánicos que se exponen a la luz en vez de en estufa convencional, no es posible la confusión de las colonias (de cianobacterias en el primer caso o de microalgas en el segundo), con otros microorganismos.

Hay mohos capaces de crecer en ellos a expensas de la materia orgánica generada por el crecimiento de cianobacterias o de las algas, pero es un crecimiento posterior.

La colonias de las microalgas tienen los colores de la fotosíntesis (cianobacterias verde botella, clorofíceas verde-amarillentas, diatomeas beige-marrón…).

Cianokit y Ficokit

Para ahorrarse la filtración, se puede buscar la presencia o ausencia de cianobacterias en 100 mL de agua con los frascos Cianokit P/A y la de microalgas con los frascos Ficokit P/A.

Ambos derivados de Cianagar y Agar Algas, en versión caldo

También se puede añadir dentro del frasco la membrana filtrada para buscar la ausencia de cianobacterias o de microalgas en volúmenes mayores de agua

¿Cómo distinguir cianobacterias de microalgas?

Al microscopio es muy fácil distinguir las cianobacterias de las microalgas, sean unicelulares, sean filamentosas,

ya que (independientemente de que las segundas tengan núcleo), ni siquiera hace falta teñir: las células de cianobacterias  tienen un contenido homogéneo, grumoso, mientras las de microalgas  siempre tienen corpúsculos (cloroplastos) sean de la forma que sean, claramente distinguibles del resto de la célula.

Todos ellos son métodos indirectos para la búsqueda de las Microcistinas y demás Cianotoxinas, ya que con ellos lo que se busca es a su productor.

Documentación

MICROKIT pone a su disposición 3 herramientas que no encontrará en ningún otro lugar, ya que las elaboró su Director Técnico (Jorge Sanchis Solera) cuando hizo la carrera de biología y se especializó en algas:

-Claves de identificación de los géneros de Cianobacterias de España con láminas de dibujos de todos ellos (8 páginas)

-Claves de identificación de los géneros de Microalgas no marinas de España con láminas de dibujos de todos ellos (29 páginas)

-Protocolo para el recuento de Cianobacterias toxigénicas a niveles peligrosos (53 páginas)

Aprovechamos para ofrecer el libro de plantas silvestres comestibles del autor, para quien guste de pasear por el campo, hacer excursiones, senderismo o supervivencias, ya que es autoedición y no está disponible en librerías o internet. Una guía de bolsillo con fotografías a todo color,  como las de las setas, pero para plantas, que están todo el año presentes en las excursiones: incluso en pleno invierno nevado se encuentra comida en la naturaleza.

 

 

5-Cómo vemos el futuro en la detección de este grupo

Seguirán apareciendo casos de intoxicaciones en aguas de baño y recreo por Microcistinas y otras Cianotoxinas; y seguirán apareciendo botellas de agua envasada con aguas verdes y marrones, mientras no se regule oficialmente la búsqueda de cianobacterias y microalgas en dichas aguas.

 

Si desea esta monografía  completa en pdf, con las fotos que aqui no aparecen, solicítela en consultastecnicas@microkit.es

 

https://www.microkit.es/fichas/CIANAGAR.pdf?v=2023

AGUAS DE USO COSMÉTICO: CONTROL MICROBIOLOGICO ADECUADO

AGUAS COSMÉTICAS MICROBIOLOGÍA, EMPLEE LOS KITS Y PARÁMETROS ADECUADOS PARA EVITAR RETIRADAS DE MERCADO DE SUS COSMÉTICOS

AGUAS COSMÉTICAS MICROBIOLOGÍA: CONTROL MICROBIOLOGICO ADECUADO

La industria cosmética ha sido, como es habitual, la gran olvidada en la legislación. En el  nuevo Real Decreto de aguas de consumo humano de Enero de 2023, se reitera lo que ya se venía haciendo en cuanto a los 4 parámetros típicos:

la ausencia de E.coli/coliformes, Enterococos fecales y Clostridium perfringens en 100 mL de muestra y los recuentos de heterótrofas a 22 ° C en 1 mL de muestra, que han de ser inferiores a 100 ufc/mL.

hay muy interesantes novedades en cuanto a colífagos, Pseudomonas aeruginosa en hospitales, frecuencia del control microbiológico en fábricas de alimentos…

pero nada de mencionar la industria cosmética.

La industria farmacéutica está amparada por Farmacopea, al emplear aguas ultrapurificadas que sólo requieren un control de aerobios en R2A y a lo sumo, una búsqueda de Pseudomonas aeruginosa y de Burkholderia cepacia,

tras cumplir con los 4 parámetros microbiológicos mencionados del Real Decreto de aguas de consumo humano en los grifos de entrada.

Pero… ¿qué sucede con la industria cosmética? Naturalmente las fábricas de medicamentos que también fabrican cosméticos, lo tienen resuelto, al emplear el mismo tipo de agua para ambos procesos.

Pero los demás, raramente se pueden permitir unas instalaciones de esa categoría y coste, y han de purificar con menos recursos el agua de entrada a su fábrica, sea de red de aguas de consumo humano, sea de pozos, sea comprada a proveedores.

Y precisamente la materia prima más crítica y más conflictiva en las fábricas de cosméticos es el agua, principal vector de entrada de dos de los microorganismos que más retiradas de mercado provocan en producto cosmético final y que nadie ha buscado por ellos en las aguas de consumo humano original: Pseudomonas aeruginosa y Burklholderia cepacia.

De modo que empleando R2A para el recuento de aerobios como si se tratase de agua farmacéutica, y analizando el agua de red de origen en los 4 parámetros obligados, nadie les garantiza que puedan emplear esa agua por ausencia de los otros dos patógenos antes mencionados.

LEYENDAS URBANAS SOBRE EL RECUENTO DE AEROBIOS

Porque tener un recuento de aerobios bajo o incluso nulo no es garantía de que no se trate precisamente de estos dos patógenos.

Ya que son propios del biofilm y lo que se encuentra en las muestras de agua (incluso de 100 mL) son formas de dispersión planctónicas que escapan del biofilm de forma discontinua.

De modo que la distribución «contagiosa» (de Poisson o Binomial Negativa, no la Normal de Gauss) de los microorganismos en una muestra, tiene su máximo exponente en las instalaciones de aguas supuestamente limpias.

Por lo que el concepto de ufc y de muestra mínima se disparan aquí con su máxima incertidumbre.

En definitiva, para que un agua de uso cosmético podamos garantizar que cumpla las GMPs (trasladadas a  la Norma ISO 22716), y no contamine el producto final, debemos analizarle no sólo los 4 parámetros de potabilidad

(ausencia de E.coli/coliformes, Enterococos fecales y Clostridium perfringens en 100 mL de muestra y los recuentos de aerobios en 1 mL de muestra),

sino ademas la ausencia de Pseudomonas aeruginosa y de Burklholderia cepacia en muestras de 100 mL en diferentes puntos de las instalaciones.

AGUAS COSMÉTICAS MICROBIOLOGÍA: FRECUENCIA DE MUESTREO

La frecuencia del muestreo queda a criterio profesional de cada instalación, en función del volumen de agua que emplee cada fábrica.

Pero parece un chiste que sea 1 vez al año o 1 vez al mes, como indicaba el anterior Real Decreto de aguas potables para las fábricas de alimentos.

Deberían ser varias muestras al día, ya que el agua es el mayor contaminante del cosmético, mucho más que los operarios, los envases, la maquinaria o el aire.

METODOLOGÍA AGUAS COSMÉTICAS MICROBIOLOGÍA

En cuanto al método de análisis, como siempre queda a criterio de cada profesional.

MICROKIT ha demostrado ya en numerosas ocasiones (mediante intercomparación y en múltiples validaciones)

que el método más habitual (la filtración de membrana MF) estresa a los microorganismos y obtiene una proporción absolutamente inaceptable de resultados falsamente negativos:

21% para E.coli/Coliformes,

6% para Enterocos fecales,

49% para Clostridium perfringens y

33% para Pseudomonas aeruginosa

(todavía no hay suficientes datos  comparativos en el caso de Burkholderia cepacia, pero tampoco es que sean tan necesarios, a la vista de los anteriores).

EL MÉTODO QUE MEJOR FUNCIONA, NO ES SOLO QUE SEA MÁS CÓMODO DE EMPLEAR

Y por ello, promovimos el método y creamos medios adecuados para todos los parámetros, del otro procedimiento que demuestra la máxima sensibilidad (escasez de falsos negativos): el método Presencia/Ausencia (P/A).

En vez de filtrar los 100 mL de agua por una membrana contra la que chocan los microorganismos, y depositarla sobre una placa preparada de cada medio selectivo sólido, como se hace en el método estresante MF;

el método P/A consiste en dar alimento selectivo (caldo de cultivo específico) a las ufcs presentes en los 100 mL de agua y esperar a ver el cambio de color que provoca su crecimiento, evitando el estrés y la letargia de las células que quedan dañadas en MF.

GAMA COMPLETA

MICROKIT ha diseñado y validado hace ya más de 3 décadas todos los medios cromogénicos y selectivos adecuados para cada microorganismo:

Pseudomonas aeruginosa: Pseudocult P/A, que vira a rosa en 24-48h cuando está presente

Burkholderia cepacia: BCPT P/A, que vira a color vino tinto y opaco en 24 h cuando está presente

E.coli/Coliformes: MCC Colicult P/A, que vira a azul en 18 h en presencia de coliformes y da fluorescencia bajo luz de 366 nm y anillo rosa de indol positivo en caso de E.coli

Enterococos fecales : Enterocult P/A, que vira a negro y opaco en 18h cuando están presentes

Clostridium perfringens: Clostricult P/A,  que vira a negro y opaco en 24-48h cuando está presente

Si se quiere conocer el número de ufcs de cada positivo, resulta tan fácil como emplear estos mismos caldos cromogénicos, en vez de en botes de 100 mL, con las cubetas reutilizables ¡cuidemos el medio ambiente! NMP Racks de MICROKIT;

y leer los pocillos positivos (los que viran al color indicado) en las tablas oficiales del método Número Más Probable (NMP, MPN), que era el oficial antes de la MF y vuelve a serlo ahora en el nuevo Real Decreto de este año 2023 gracias a los métodos alternativos que en él se mencionan.

MICROKIT ha desarrollado estos caldos en tres formatos.

-El más cómodo, en frascos tomamuestras, para añadir los 100 mL de muestra de agua en cada medio

-La versión más empleada, en viales prepesados para añadir a un bote con 100 mL de agua de muestra cada medio

-El más económico (1 €/u), en botes de 100 g de medio en polvo estéril con cucharilla dosificadora

Así, el mejor método de detección de patógenos e indicadores en agua, queda al alcance de todos los gustos.

AGUAS COSMÉTICAS MICROBIOLOGÍA: RECUENTO DE AEROBIOS

Por fin, para el recuento de aerobios en 1 mL de agua, MICROKIT ha creado y validado hace ya más de una década el único método alternativo que permite pasar de la muestra a la estufa de incubación en 10 segundos:

DryPlates-TC-Water, con el medio normativo indicado en el Real Decreto: el YEA Nutritivo.

Simplemente se añade 1 mL de muestra de agua a una placa con su DryPlate, se deja embeber unos segundos para la siembra en masa, sin tener que calentar ni enfriar agares, y se incuba.

Las colonias de aerobios heterotrofos crecen rojas y mucho más evidentes que con el método clásico;

y sin el punto crítico más destructivo de la microbiología clásica: la adición de agar caliente sobra la muestra.

Las DryPlates son las únicas placas deshidratadas que también están disponibles con Agar R2A-Farmacopea.

https://www.microkit.es/pdf/KITS-PA-AGUAS-EN-FRASCOS-TOMAMUESTRAS.pdf

https://www.microkit.es/pdf/KITS-PA-VIALES-POLVO-CALDOS-CROMOGENICOS-2021.pdf

https://www.microkit.es/pdf/KITS-PA-BOTES-100g-ESTERILES-CON-CUCHARITA.pdf

https://www.microkit.es/fichas/Dry-Plates-TC-Water-Prospecto.pdf

https://www.microkit.es/fichas/Dry-Plates-TC-R2-Prospecto.pdf

Si prefiere seguir con el método MF, MICROKIT también dispone de todos los medios de cultivo adecuados en plaquitas herméticas de filtración «PLAQUIS»:

https://www.microkit.es/pdf/plaquis.pdf

En Abril de 2024 MICROKIT lanza al mercado SEILAGUAS-COSMÉTICAS, único servicio intercomparativo para controlar la calidad de sus análisis de aguas de uso cosmético, en todos los parámetros que resultan necesarios. Solicite información para poder inscribirse (una ronda al año) en consultastecnicas@microkit.es

No se pierda nuestro vídeo de los viales P/A:

https://youtu.be/6OfsD7zU_8U

CROMOKIT CLOSTRIDIUM PERFRINGENS AGAR

MEDIO CROMOGÉNICO PARA CLOSTRIDIUM PERFRINGENS

Clostridium perfringens Cromogenic Agar permite la detección y recuento más eficaces que el TSC Agar en aguas, alimentos y otras muestras

En MICROKIT seguimos innovando a pesar de que las normas ISO se estén convirtiendo en un freno a la innovación, son armas de doble filo, ya que:

-por un lado permiten a todos usar el mismo medio, pero

-por otro lado estancan a todos los que se someten ciegamente a ellas, al no poder usar medios más modernos que funcionan mejor, por el simple hecho de que la Norma es más antigua que el medio

Así es, por ejemplo este nuevo medio de cultivo que funciona mil veces mejor que el Agar TSC, no va a poder ser empleado por los laboratorios acreditados ISO 17025,

al menos hasta que alguien pague una fortuna para validarlo internacionalmente, algo que MICROKIT no se puede permitir.

La gran diferencia entre este medio y el TSC es que las colonias no revierten de negro a gris o blanco al sacarlas de la atmósfera de anaerobiosis

Eso en el TSC provoca numerosos falsos negativos que, al no tener colonias negras cuando se observan fuera de la jarra/bolsa, no se confirman, y se dan como negativas

En cambio en CROMOKIT-CP Agar, las colonias de Clostridium perfringens son naranjas, y siguen naranjas tras sacar las placas de la anaerobiosis

Además la extraordinaria fertilidad del medio provoca hasta un 500% más de colonias de C.perfringens en la placa de Cromokit-CP Agar con respecto a la placa de TSC Agar, como ya nos tienen habituados los medios enzimáticos respecto a los clásicos medios bioquímicos:

 

 

https://www.microkit.es/fichas/CROMOKIT-C-perfringens-Agar.pdf?v=2023

Prepárese para más de una sorpresa informativa cuando vea nuestro video sobre los medios Cromogénicos: https://www.youtube.com/watch?v=-JVPVWxY8ZE&t=271s