Archivo de la categoría: microbiologia de aguas

Optimización en los análisis microbiológicos de
AGUAS Y BEBIDAS.
Nuevos métodos de análisis microbiológicos utilizados exitosamente en los laboratorios líderes

BURKHOLDERIA CEPACIA-BCPT AGAR (BASE)

BURKHOLDERIA CEPACIA-BCPT AGAR (BASE)

BURKHOLDERIA CEPACIA-BCPT AGAR (BASE)  es el Agar para aislamiento selectivo y diferencial de Burkholderia cepacia en aguas, cosméticos y otras muestras.

Funciona mucho mejor que BCSA y que OFPBL, sobre todo en su versión cromogénica (Ver Cromokit BCPT Agar)

 

 COMPOSICIÓN

  • Polipeptona bacteriológica      6.00 gbcpt
  • Piruvato sódico                          6.00 g
  • Dihidrógeno fosfato potasio   4.35 g
  • Hidrógeno fosfato sodio         1.42 g
  • Sales biliares                             1.50 g
  • Amonio sulfato                         1.00 g
  • Magnesio sulfato                      0.20 g
  • Sulfato férrico amónico           0.01 g
  • Rojo fenol                                   0.02 g
  • Cristal violeta                             0,01 g
  • Agar-agar                                   12.0 g

(Fórmula por litro) pH final: ajustar a 6.2 ± 0.2

B. cepacia suplemento selectivo

  • Polimixina B               150.000 UI/L
  • Ticarcilina                   500,0 mg/L

Añadir cuando el medio esté a 45-50º C.

 

PREPARACIÓN

  1. Disolver 32,5 g de medio en 1 litro de agua bidestilada. Calentar hasta ebullición, agitando hasta la total homogeneización. No sobrecalentar.
  2. Autoclavar a 121 ºC durante 15 minutos.
  3. Enfriar a 45-50 °C y añadir 14 ml de solución BCPT Suplemento estéril selectivo (SMT301) para análisis de aguas (no es imprescindible para analizar muestras cosméticas de escasa carga microbiana, pero en tal caso toda colonia crecida debe identificarse para evitar falsos positivos). Para máxima selectividad y evitar falsos positivos de Sphingomonas spp. y Moraxella spp., se puede añadir Gentamicina, aunque forman colonias diminutas y diferentes a las típicas de Burkholderia cepacia. En cambio Ochrobactrum anthropi y Delftia acidovorans sólo resultan distinguibles mediante identificación molecular, ya que las galerías comerciales dan, igual que este medio, falso positivo de B.cepacia.

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO. AGITE EL BOTE ANTES DE USAR. MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO, EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO.

DESHIDRATADO CÓDIGO: DMT004

MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO, EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO. PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO.

NOTA:

Antes Pseudomonas cepacia, Burkholderia cepacia es una especie muy resistente que agrupa numerosas cepas de bacilos Gram negativos, Oxidasa positivos (a menudo oxidasa-lentos), No Fermentadores de Glucosa, Móviles.

Algunas cepas pueden crecer en Agar Cetrimida sin fluorescencia y en Agar CN.

Muchas cepas no crecen a más de 35°C.

En TSA crecen con colonias regulares, redondeadas, blanquecinas, crema o amarillas. Deben identificarse como tal con galerías miniaturizadas específicas para microorganismos no fermentadores (KBH262).

Debe el nombre genérico a su descubridor y el específico, a haber sido descubierta infectando cebollas, aunque se encuentra también en aguas y biofilms.

Es una de las bacterias más versátiles que se conocen, capaz de usar más de 200 compuestos como nutrientes, entre los cuales se encuentran antibióticos, desinfectantes, pesticidas, hidrocarburos aromáticos policíclicos (HPA), tricloroetileno, policlorobifenilos, ftalatos… además de producir sus propios antibióticos para suprimir el crecimiento de otros competidores, así como matrices especiales para generar biofilms, lo que la hace extremadamente difícil de erradicar.

Es frecuente como saprófito en aguas, ambientes húmedos y suelos. Se emplea en biorremediación de contaminaciones y en control de plagas fúngicas agrícolas,  pero tambien algunas cepas son serios patógenos oportunistas en infecciones nosocomiales.

Parece que junto a otros Pseudomonadinos esta bacteria fué, desde el Arcaico, corresponsable del paso de la vida a Tierra, al sintetizar ciertas macromoléculas que actúan como inductores de la lluvia.

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…).

DESHIDRATADO:Polvo, rosado

PREPARADO: Estéril, crema-anaranjado a menudo con precipitados negros del hierro

CONTROL DE CRECIMIENTO 24-48 h a 35°C aproximadamente:

  • Burkholderia cepacia MKTA 25416, Crece abundantemente y deprisa, con colonias blancas, amarillas o asalmonadas, vira el medio a rosa-fucsia. Con respecto a PCA estandarizado*, recuento medio 275-294 %.
  • Pseudomonas aeruginosa MKTA 9027, Inhibido o escaso, lento (1 semana) y sin viraje.
  • Pseudomonas fluorescens MKTA 13525, Inhibido o lento y sin viraje
  • Bacillus subtilis MKTA 6633, Inhibido
  • Staphylococcus aureus MKTA 6538, Inhibido
  • Escherichia coli MKTA 25922, Inhibido

* El que cumple con recuperación superior al 92-125% con respecto a cepas cuantitativas trazables a cepa tipo.

 

 

MODO DE EMPLEO Y LECTURA DE RESULTADOS

Sembrar 1 ml de cosmético (o de su dilución madre enriquecida) equitativamente en la superficie de 3 placas y repartir con asa de Digralsky (en agua, sembrar una membrana por la que se hayan filtrado 100 ml) e incubar a 30-35°C durante 24-72 horas, ideal 48 h. Contar las colonias de 1,5-2 mm de diámetro, blancas o salmón con halo fucsia en el medio (si se enriqueció, no contar, ya que las ufc iniciales se habrán multiplicado; tampoco en tal caso hace falta el triplicado de placas y basta con sembrar en una por estría de agotamiento). Identificar con galerías para No Fermentadores (KBH262). El recuento/ml será la suma de los recuentos de las tres placas (por filtración, el recuento será el número de colonias/los 100 ml filtrados). De todas formas, no debe aparecer ni una sola colonia confirmativa en 1 g de cosmético enriquecido ni en 100 ml de agua farmacéutica o cosmética.

PRESENTACIÓN

MEDIO DESHIDRATADO 500g (DMT004) y suplemento en frasco pinchable estéril 100 ml (SMT301) c.s.p.7 litros de medio final. Tubo 20 ml Agar Base (TPL005) para preparar una placa tras fundir, enfriar y añadir 0,3 ml de suplemento SMT301. Frascos Agar BASE 100 ml: RPL024 para preparar 5 placas tras fundir, enfriar y añadir 1,5 ml de suplemento SMT301. Plaquita 55 mm hermética (PLAQUIS ®), medio completo, ref: PPL920.

Si desea más información sobre nuestros MEDIO BURKHOLDERIA CEPACIA-BCPT AGAR (BASE), rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

 https://www.microkit.es/monograficos/8-Burkholderia-cepacia-complex-monograf–a.pdf

 

KIT PISCINAS-MICROKIT

MICROKIT P/A-PISCINAS (CONTIENE INACTIVADORES DEL CLORO): Test para el análisis microbiológico de aguas de baño. Kit para uso en piscinas y en todo tipo de aguas de baño

kit piscinasKit piscinas-MICROKIT para análisis microbiológico de piscinas.

El cloro no es suficiente, por eso sigue habiendo otitis y conjuntivitis tras los baños en piscinas. El cloro en el agua tiene un efecto bactericida (no es algicida, fungicida ni virucida) sólo a altas dosis y por un periodo de tiempo muy limitado, a causa de su evaporación y de su ineficacia a pHs bajos.

Además su efectividad es menor cuanto mayor sea el número de bañistas diarios. Si lo añadimos en exceso es irritante para los bañistas pero si lo añadimos en defecto pueden proliferar, no sólo sobrevivir, microorganismos patógenos para los bañistas.

Para controlar que el nivel de microorganismos en el agua es el adecuado  MICROKIT ha diseñado este kit de fácil uso para la detección de los patógenos más típicamente transmitidos por vía acuática. Realice un análisis poco antes de la hora punta de bañistas y otro cuando se van, poco antes de añadir el cloro.

MODO DE EMPLEO E INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS (>4 veces/año)

1. Bacterias patógenas e indicadoras:

Con la jeringa (una por muestra para todos los parámetros), añadir 100 ml de agua (2 jeringazos de 50 ml) en cada uno de los 5 frascos, suavemente para evitar la formación de espuma: Coliformes-E.Coli, Enterococos fecales, Clostridium perfringens, Pseudomona aeruginosa, Staphylococcus aureus. Cerrar y voltar sin agitar. Incubar 1-2 días en una habitación cálida (ideal 35ºC aprox., pero válido 25 y 40ºC).

Si el frasco de Coliformes-E.Coli (paja) kit picinas2se vuelve azul hay contaminación fecal por infiltración de aguas residuales o bañistas poco escrupulosos. La ausencia de coliformes garantiza la ausencia de Salmonella.

Si el frasco de Enterococos (ámbar con superficie azulada) se vuelve negro-opaco hay contaminación fecal por infiltración de aguas residuales, lejana en el espacio o en el tiempo (días).

O si el frasco de Clositridios (ámbar con sobrenadante incoloro) se vuelve negro, hay contaminación fecal por infiltración de aguas residuales muy lejana en el espacio o en el tiempo (semanas o meses) y puede haber presencia de enterovirus y protozoos. 

Si el frasco de Pseudomonas (paja) se pone rosa, hay contaminación por heridas, oídos, etc. infectados de bañistas, que podrían infectar a los bañista sanos, provocando otitis y otras infecciones. Si se pone rojo se trata de otros microorganismos.

O si el frasco de Estafilococos (rojo) se vuelve amarillo o naranja, hay contaminación por heridas, gargantas, etc., infectadas de bañistas, que podrían infectar a bañistas sanos provocando otitis, faringitis y otras infecciones.

2. Cianobacterias:

Añadir 50 ml de agua en el frasco de algas dejando una gran cámara de aire. Cerrar y agitar. Incubar 7-14 días a temperatura ambiente (ideal 25 ºC), en un lugar con mucha luz diurna pero evitando que el sol directo suba la temperatura del contenido hasta que éste queme las manos. Por la noche, no iluminar. Si aparecen coloraciones verdes en el caldo o en las paredes del recipiente, es que hay algas clorofíceas. Si son pardas, es que hay algas diatomeas. El problema es que sean verde-azuladas, rojizas o azules, ya que entonces probablemente se trata de algas cianoficeas, muchas de ellas tremendamente tóxicas o alergénicas por simple contacto con la piel e incluso por inhalación.

3. Hongos:

Las levaduras como Candida albicans, provocan molestas infecciones en las mucosas a menudo por mantener la ropa húmeda. Los hongkit piscinas3os dermatofitos como el pie de atleta (Trichophyton mentagrophytes), la tiña del pie (Epidermophyton flocosum) y otras micosis se transmiten de bañistas infectados a otros sanos en las duchas, arenas de playas y vestuarios. El kit para su detección es diferente a los otros porque es difícil aislarlos del agua y es más  fácil  en  las  superficies.  No  necesita  la jeringa.  Abrir  el  tapón,  doblarlo y tocar con las dos láminas el suelo de duchas, arenas, hamacas… durante unos segundos, apretando suavemente y sin barrer. Repetir con el otro tubo en otro lugar. Cerrar e incubar 1-3 días a aprox. 35 ºC (entre 25 ºC y 40 ºC). Si la cara naranja se ha vuelto roja, hay  hongos dermatofitos. O si en cualquiera de las dos caras aparecen colonias blancas y redondas con olor a levadura, es probable que se trate de Candida albicans. Si aparecen mohos algodonosos no hay problema mientras no enrojezcan.

kit piscinas44. Recuento total de aerobios:

Añadir 1 ml de agua (cuidado, la pipeta marca hasta 3) en el centro de la Compact Dry Plate ® TC. Incubar 1-2 días en una habitación cálida (ideal 35 ºC aprox., pero válido entre 25 y 40° C). Si aparecen más de 200 puntos rojos (200 ufc/ml) hay un exceso de microorganismos aerobios totales. 

Kit análisis microbiológico piscinas

OJO:

Ante cualquier resultado positivo, desinfectar el agua de baño y el suelo con un nivel adecuado de cloro, alguicidas y/o fungicidas o bien consultar con un especialista biólogo, farmacéutico… y repetir el análisis hasta la obtención de aguas no contaminadas.

DESTRUCCIÓN:

El usuario final es el único responsable de la destrucción de los microorganismos que se hayan multiplicado en el interior de cada tubo o frasco, de acuerdo con la legislación medioambiental vigente. Añada cloro o lejía hasta el borde, con cuidado de no tocar ni derramar  el cultivo, antes de desechar a la basura. Si al abrir los botes sale gas a presión o líquido y se salpica, lavar las manos con agua corriente y jabón.

CONTENIDO:

6 frascos P/A, 1 jeringa estéril 50 ml, 2 laminocultivos, 1 pipeta estéril 1-3 ml, 1 Compact Dry Plate ® TC. CÓDIGO: RPL399

Kit análisis microbiológico piscinas. El cloro no es suficiente, por eso sigue habiendo otitis y conjuntivitis tras los baños en piscinas.

https://www.microkit.es/pdf/kit-piscinas.pdf

MICROKIT® MUG PLUS CCA CROMOGENIC AGAR AGAR CROMOGÉNICO COLIFORMES Y E.COLI

MICROKIT® MUG PLUS CCA CROMOGENIC AGAR (CROMOGÉNICO COLIFORMES Y E.COLI)  S/BOE 31-MARZO-2009

MICROKIT® MUG PLUS CCA cromogénico E.coli-coliformes. Agar selectivo para la detección simultánea confirmativa de coliformes totales/fecales y E.coli en aguas y alimentos (cromógenos según ISO 16649-1:2001, AFNOR V08053-4)

INTRODUCCION

Inventado por MICROKIT en 1995, es el primer medio cromogénico que ha entrado en una Norma ISO (la ISO 9308-1) de aguas de consumo humano y envasadas. Los substratos cromógenicos  Salmon-Gal y X-Glucurónido, permiten la detección simultánea de coliformes

MICROKIT® MUGPLUS: Agar cromogénico para E. coli (colonias azules -olas-) y demás coliformes (colonias rosas -surf-). Campylobacter y Shigella crecen con colonias verdes (hierba) y otros Gram negativos con colonias crema (Pseudomonas -montañas-).

E.coli (colonias azules -olas-) y demás coliformes (colonias rosas -surf-). Campylobacter y Shigella (colonias verdes-hierba) y otros Gram negativos con colonias crema (Pseudomonas -montañas-).

(colonias rojas) y E.coli (colonias azules) en el mismo medio de cultivo.
La acción simultánea de las peptonas seleccionadas en el medio, del piruvato y de los tampones fosfato, garantiza un rápido crecimiento colonial, incluso para los coliformes en estado subletal. El crecimiento de la flora acompañante Gram positiva, queda inhibido gracias al lauryl sulfato y a la mezcla de antibióticos Cefsulodina + Vancomicina.
El enzima Beta-D-galactosidasa, característica de los coliformes, actúa sobre el Salmon-GAL provocando la pigmentación roja o rosada en las colonias de coliformes.
E.coli, coliforme Beta-D-glucuronidasa positivo, actúa sobre el Salmon-GAL y sobre el X-Glucurónido (5-bromo-4-chloro-3-indoxyl Beta-D-glucurónido) de modo que sus colonias crecen de azul oscuro al añil.

COMPOSICION (g/l)

Inconfundibles colonias añil (no violetas ni esmeralda) de E.coli

Inconfundibles colonias añil (no violetas ni esmeralda) de E.coli

  • Peptonas 3´0
  • Cloruro Sódico 5´0
  • Dihidrógeno Fosfato Sódico 2´2
  • Hidrógeno Fosfato Disódico 2´7
  • Piruvato Sódico 1´0
  • Triptófano 1´0
  • Tergitol 7 0´15
  • Sorbitol 1´0
  • Mezcla cromogénica
  • (Salmon Gal 0,2 y X-Glu 0,2) 0´4
  • Agar-Agar 10´0
  • pH Final: 6´8 ± 0´2

MODO DE EMPLEO CCA cromogénico E.coli coliformes

Agitar el bote. Disolver 26,5 g en 1 litro de agua destilada, calentando hasta ebullición. Mantener durante 1 minuto. Agitar hasta su completa disolución. Añadir asépticamente, cuando el medio se haya enfriado a 55 ºC, 5 mg de Cefsulodina + 5 mg de Vancomicina (total 5 ml de solución estéril MICROKIT SMS400) para aumentar la selectividad del medio y eliminar la flora acompañante Gram positiva. No autoclavar. El medio final es blanquecino. No refundir más de una vez.
En alimentos, la siembra en profundidad elimina los Gram negativos no fermentadores, que en la técnica de Filtración de Membrana para análisis de aguas pueden dar lugar a falsos positivos y además reducir en un 50% la recuperación de los microorganismos diana; para evitarlo, añadir sobre la membrana una segunda capa de medio agarizado, previamente enfriado a 50 ºC. Esto no es tan necesario en aguas potables o poco contaminadas por flora acompañante.

LECTURA DE RESULTADOS

Nueva imagen (5)Tras 18-24 horas de incubación a 35-37 ºC aproximadamente (ó 44,5 ºC aproximadamente para C. fecales), los resultados son: E.coli: Colonias de azul oscuro a añil (Salmon GAL y X-Glucurónido positivo) que resultan indol positivas (puede comprobarse directo en la colonia). Coliformes: Colonias rosas- rojas (Salmon GAL positivo) + las azules (E.coli). Otras enterobacterias: Colonias incoloras, excepto cepas como las Salmonella o Shigella Beta-D glucuronidasa positivas, que aparecen de color azul claro a turquesa. Muchas cepas de Shigella y de Campylobacter crecen con colonias verdes, pero también es del máximo interés que sean detectados, al ser microorganismos patógenos.

Unas pocas cepas de Enterococcus durans crecen con colonias rojas, pero también indican contaminación fecal del agua. Ciertas cepas de Staphylococcus aureus y de Bacillus crecen con colonias naranjas, pero nunca rosas-rojas. Otras cepas crecen con colonias crema que no se han de tener en cuenta. Las colonias con colores intermedios (violáceo-lila) proceden de ufc mixtas: diluir y repetir el análisis, o mirar una placa sembrada con una dilución mayor.
Confirme E.coli pinchando ó cubriendo sus colonias con reactivo de Kovacs. Si éste
vira a rojo-cereza antes de 1 minuto, la reacción es, definitivamente, confirmativa.

Color de la colonia Salmon-GAL X-Glucurónido Indol Rto. PCA estandarizado*

CRECIMIENTOS TÍPICOS

  • E.coli Azul oscuro-añil o turquesa + + + 58-125% **
  • Citrobacter freundii Rojo-rosa + – – 98-106%
  • Klebsiella oxytoca Lila-Granate + – – >99%
  • Enterobacter cloacae Rojo-rosa + – – 58-104%
  • Salmonella enteritidis Incoloro – – – 29-202%
  • Shigella flexneri Incoloro (azul en superficie) – – –
  • Salmonella MUG+ Azul claro – + –
  • E. coli O157 : H7 Rojo-rosa + – + 230%
    * El que cumple con recuperación superior al 92-125% con respecto a cepas cuantitativas trazables a cepa tipo.
    Incertidumbres detectadas entre todos los lotes a lo largo de un año (la mayoría de la incertidumbre se debe a la cepa y a la proporción de cepas acompañantes inoculadas, no al medio).
    ** En superficie, ya que en masa recupera el 200% más que en superficie
    Un estudio comparativo independiente (*) de validación cuantitativa entre este medio, otros cromogénicos, Endo y MFC demuestra que MUG PLUS® es el mejor medio de recuento de E. coli en aguas. La validación interna realizada por MICROKIT con centenares de muestras y la revalidación trimestral en Seilagua ®, Seilalimentos y Seilaparfum, lo confirman para agua y para todo tipo de matrices alimentarias y cosméticas.

CCA cromogénico E.coli coliformes

VENTAJAS SOBRE OTRAS MARCAS

Ser los pioneros en el diseño de este medio nos da dos ventajas claras:

1-Gracias a ciertos secretos de fabricación, las colonias azules de presuntos E.coli se pueden confirmar directamente añadiendo reactivo de indol sobre la colonia, ya que en caso positivo, habrá un claro viraje del reactivo amarillo a rosa alrededor de las colonias del microorganismo diana.

2-Las colonias rosas de presuntos coliformes se pueden confirmar directamente añadiendo reactivo de la citocromo-oxidasa en goteros monodosis sobre las colonias, incluso bañando toda la placa, ya que en caso positivo (oxidasa positivo, no coliforme), habrá un claro viraje del reactivo incoloro a azul oscuro alrededor de las colonias del microorganismo diana.

PRESENTACIÓN

* Botes de 100 g de medio de cultivo deshidratado en polvo agarizado. Referencia DMT400-
* Suplemento en frasco de 100 ml, con 100 mg de solución estéril de Cefsulodina + Vancomicina, para 20 litros de medio (5 ml/l). Ref. SMS400.
* Frascos de 100 ml de agar MUG PLUS® preparado con Cefsulodina+Vancomicina. Referencia RPL444.
* Frascos de 200 ml de agar MUG PLUS® preparado con Cefsulodina+Vancomicina. Ref. RPL244.
* Tubos de 20 ml de agar MUG PLUS® preparado con Cefsulodina+Vancomicina. Referencia TPL400.
* Viales 2 ml de caldo MUG PLUS® de MF con Cefsulodina+Vancomicina. Ref. FPL400.
* Viales pinchables de 100 ml de caldo MUG PLUS® de MF con Cefsulodina+Vancomicina. Ref. RPL400.
* Plaquitas herméticas de Agar MUGLUS® preparado con Cefsulodina+Vancomicina . Referencia PPL902

El usuario es el único responsable de la eliminación de los microorganismos según la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.

https://www.microkit.es/pdf/mugplus-agar.pdf

https://www.microkit.es/monograficos/11-E.coli-y-dem–s-coliformes-monograf–a.pdf

Prepárese para más de una sorpresa informativa cuando vea nuestro video sobre los medios Cromogénicos: https://www.youtube.com/watch?v=-JVPVWxY8ZE&t=271s

KITS DIDÁCTICOS DE ENSEÑANZA: AQUANATUR

AQUANATUR

Kit enseñanza microbiología aguas: con AQUANATUR enseñe a sus alumnos a defenderse en análisis microbiológicos de aguas de consumo humano

¿Sabías que ya puedes realizar tú mismo un control microbiológico de la potabilidad del agua de bebida? ¡Y sin necesidad de aparatos de filtración!

La legislación Europea garantiza la calidad del agua a la salida de la potabilizadora, pero no a la salida de los grifos privados que utiliza el consumidor, ni de las industrias no-alimentarias, ni de los pozos, manantiales u otras fuentes naturales de agua supuestamente potable. Las continuas obras públicas sobre la red de aguas residuales, así como las obras internas de los edificios, ponen en grave peligro la seguridad final del agua, por posible mezcla de aguas. Las catástrofes naturales y las inundaciones mantienen en jaque la potabilidad del agua durante semanas e incluso meses en las zonas afectadas. Por ello es imprescindible su control por parte de todo usuario comprometido con la salud de los suyos.

Los kits P/A de MICROKIT están validados y demuestran que el método no sólo es tan bueno como el estándar de Filtración de membrana, sino incluso mucho mejor en sensibilidad (escasez de falsos negativos), especificidad (escasez de falsos positivos) y límite inferior de detección. Además, es mucho más sencillo y rápido de manejar. La adición en este MINI-DRINKING-WATER KIT de las Dry Plates® para aerobios, permite el análisis completo.
Puedes realizar tú mismo un análisis diario, semanal o mensual para verificar que el agua que sale de la potabilizadora municipal llega pura a tu casa y a la fábrica donde trabajes en el futuro, y se mantiene limpia en ellas, sin infiltración de aguas residuales ni otros serios problemas microbiológicos.

Según la reglamentación actual un agua sólo es apta para consumo humano o para uso en fabricación de alimentos, si no contiene patógenos o sus indicadores (Coliformes- E. coli, Enterococos fecales, Clostridium perfringens y sus esporas) en 100 ml y si el recuento total de bacterias aerobias asociadas al hombre es inferior a 20 ufc/1 mililitro (incubando 24 h a 37 ºC) en medio nutritivo YEA. Todo ello se comprueba con este kit. Hay kits similares para aguas de baño, para el control de las superficies y aire.

Para remediación de los problemas detectados, utilice AIRESANO Y REALCE para aire y superficies, DAROMIX para manos y TOALLITAS DESINFECTANTES para manos y superficies.
CONSERVACIÓN: MANTENER LOS KITS A TEMPERATURA AMBIENTE (4-25ºC). ES MUY IMPORTANTE MANTENERLOS AL RESGUARDO DE LA LUZ Y DE LA HUMEDAD. NO TOCAR CON LOS DEDOS LOS CALDOS NI EL INTERIOR DE LAS PLAQUITAS, Y MENOS AÚN TRAS SER UTILIZADOS.

MICROCOSMOS-3: AQUANATUR, CODIGO KJM003 (Cajas con 40 test completos.)

CONTENIDO:

  • 1×40 viales P/A Coliformes- E. coli, 1×40 viales P/A Enterococos
  • 1×40 viales P/A Clostridium perfringens + sus esporas)
  • 1×60 Dry-Plates®-TC Water, 60 jeringas estériles de 1 ml

120 bolsas tomamuestras estériles con tiosulfato sódico para eliminar las trazas de cloro. CADUCIDAD APROX: 1 año desde fabricación

MODO DE EMPLEO E INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS

1.Kits para Presencia o Ausencia de Coliformes-E.coli, Enterococos, Clostridium perfringens y sus esporas:

Añadir aprox.100 ml del agua de muestra a cada una de 3 de las bolsas incluidas, hasta la línea indicada; la bolsa llena se quedará de pie. Añadir a una el polvo contenido en un vial MCC, a otra el de un vial Enterocult y a otra de un vial Clostricult. Cerrar enrollando varias vueltas la zona de arriba de la bolsa y después doblando el alambre apretado hacia ambos lados. Mezclar el polvo con el agua agitando y dejar 1 día en una zona cálida (a temperatura ambiente entre 30-40ºC, si se dispone de estufa, poner a 37°C aprox). Si la bolsa de Coliformes – E.coli (paja) se vuelve azul, la de Enterococos (ámbar con superficie azul iridiscente) se vuelve negra y/o la de Clostridium perfringens y sus esporas (paja) se vuelve negra (empieza por el fondo), hay contaminación fecal por infiltración de aguas residuales.

Con que una de las tres bolsas vire al color indicado, el agua está contaminada y no se puede beber. En caso contrario, siga incubando hasta dos días más por si acaso la contaminación es muy débil o la temperatura ambiente de incubación es demasiado baja. La presencia de cualquiera de estos microorganismos impide el uso del agua para consumo humano. No vierta el contenido en la naturaleza para que los microorganismos no contaminen los alrededores: añada lejía en las bolsas usadas, antes de desecharlas a la basura, o bien autoclávelas. Si el kit indica negativo, puede verter el agua sin cambios de color por el desagüe del baño o en un agujero en tierra.

2.Plaquitas para Recuento de aerobios:

Añadir con una jeringa 1 ml del agua de muestra en el centro de una placa vacía, tras abrir la tapa. Depositar encima el disco Dry-Plate ®. Dejar embeber y cerrar. Repetir con otra placa y la misma jeringa. Dejar una placa 1-2 días en una zona templada (aprox 22ºC) y otra en una zona cálida (aprox 35ºC). Si se emplea incubador (ej: Microkit SIL12AR), no voltear las placas, evitar que las placas toquen el metal (suelo, paredes, techo) de la estufa, poner al lado un vaso siempre lleno de agua. Contar que haya menos de 100 puntos rojizos (colonias, procedentes cada una de una bacteria o ufc de aerobios saprófitos) en la primera placa y menos de 20 colonias de aerobios asociados a animales de sangre caliente en la segunda.

Según la reglamentación actual (BOE-Aguas-1-8-2018-10940, R.D.140 de 2003, UE Directive 1998/83/CE) un agua sólo es apta para consumo humano o para uso en elaboración de alimentos, si no contiene patógenos o sus indicadores (Coliformes-E.coli, Enterococos fecales, Clostridium perfringens y sus esporas) en 100 ml y si el recuento total de aerobios asociados al hombre a 35ºC es inferior a 20 ufc/1 mililitro y a 100 ufc/ml el numero de aerobios saprófitos si se incuba a 22°C).

CÓMO DESTRUIR LO QUE HA CRECIDO:

Mientras realiza cada análisis, guarde todos los desechos de los reactivos empleados en la bolsa autosellable de la placa de aerobios. El usuario es el único responsable de la destrucción de los microorganismos generados en el interior del kit durante su uso, de acuerdo con la legislación medioambiental vigente: Añadir lejía o hervir una vez finalizado el análisis. No devolver a la naturaleza. Mantener fuera del alcance y de la vista de los niños. No ingerir. Evitar el contacto con la piel y las mucosas. No utilizar si tiene dudas sobre su modo de empleo o destrucción. No tocar el interior de los componentes.

Kit enseñanza microbiología aguas: con AQUANATUR enseñe a sus alumnos a defenderse en análisis microbiológicos de aguas de consumo humano

https://www.microkit.es/fichas/Microcosmos-3-Aquanatur.pdf

No te pierdas el video que lo explica: https://youtu.be/Y3dy5M0iJCQ?si=GHEcQAYS1c1Z-QkZ

Rapidtest

Rapidtest detección rápida microbios: Tubos de caldo cromogénico para la detección rápida de contaminación bacteriana

El primer medio cromogénico del mundo fué inventado por MICROKIT en 1995, antes incluso que el famoso MugPlus Agar que ahora todo el mundo llama CCA por su aceptación en la ISO 9308-1 de E.coli-coliformes  en aguas. Y ese primer medio cromogénico es precisamente Rapidtest.

A mayor concentración bacteriana del producto analizado, más rápido vira el tubo de Rapidtest. Por ejemplo, una materia prima, agua, alimento, orina… con una carga microbiana de 10.000.000 ufc/g ó mL, virará a rojo en aproximadamente 2-3 horas, una con 100.000 ufc/g ó mL, virará a rojo en aproximadamente 7 horas, y una con 1.000 ufc/g ó mL, virará aproximadamente en 13 horas.

Si por ejemplo, nuestro producto no debe tener más de 1.000 ufc/g ó mL, con mirar la estufa a las 13 horas y ver si ha virado a rojo, tendremos una estimación de que el producto anda mal, mucho antes de esperar el recuento de colonias en placa.

El kit funciona mejor y más rápido cuanto más carga microbiana es aceptable en el producto (ej: aguas residuales, petróleo, taladrinas…)

Rapidtest detección rápida microbios

Vídeo sobre el Modo de empleo de Rapidtest:

https://www.youtube.com/watch?v=ri7B9aauoPc

Si desea más información sobre nuestros rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto. O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

M-Ident VIRAPID LEGIONELLA

LEGIONELLA M-IDENT® VIRAPID

M-IDENT VIRAPID CONFIRMACIÓN COLONIAS LEGIONELLA:

M-IDENT VIRAPID CONFIRMACIÓN COLONIAS LEGIONELLA: inmunocromatograma de oro coloidal, sustituye los látex con mayor robustez, a precio similar

Este inmunocromatograma de oro coloidal sustituye los látex con enorme robustez y a precio similar. Simplemente disolviendo la colonia sospechosa en un vial (incluido en el kit) y añadiendo el contenido homogeneizado a los dos pocillos del stick, comprobará en breves minutos su triple identificación: si se trata de Legionella (género), de la especie L.pneumophila e incluso del serogrupo (1 ó demás). En MICROKIT conseguimos la exclusividad para el mercado ambiental e industrial desde que dos españoles se encontraron en Alemania en la feria Medica-Dusseldorf de 2010. Basado en una tesis doctoral, su marcado ce lo hace directamente utilizable, sin necesidad de validación, a los laboratorios acreditados ISO 17025.

Disfrute de la comodidad y robustez de este kit, que ni siquiera requiere refrigeración en su almacenamiento y en su envío.

Muy fácil interpretación, sin las subjetividades de los látex: Cada una de las dos tiras (la de género por un lado, y la de especie y serogrupo, por otro) termina en una banda test que sirve de control de que el análisis ha sido correctamente realizado, ya que vira a rojo en ese caso.

Si no hay viraje a rojo de la banda test de la izquierda, la colonia no es de Legionella.

El viraje a rojo de la banda test de la izquierda, indica que la colonia es del género Legionella spp.

Si en ese caso, no hay viraje de ninguna de las dos bandas de la derecha, se trata de una especie diferente a L.pneumophila.

Y si hay viraje a rojo de la banda de arriba a la derecha, es que se trata de Legionella pneumophila.

Si además hay viraje a rojo de la banda de abajo a la derecha, es que se trata de Legionella pneumophila ser.1.

Y si no hay además ese viraje a rojo de esta banda de abajo a la derecha, es que se trata de Legionella pneumophila ser 2-15.

Si desea más información sobre nuestros productos y servicios, rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

VIRAPID CONFIRMACIÓN COLONIAS LEGIONELLA:

https://www.microkit.es/pdf/legionella-virapid.pdf

https://www.microkit.es/monograficos/9-Legionella-monograf–a.pdf

Y aqui puede ver el estudio de verificación del kit con respecto al látex más conocido:

M-Ident VIRAPID Legionella-2025 Informe verificación

gracias al cual las entidades de acreditación han rectificado en sus alcances de certificación, la obsoleta palabra «inmunoaglutinación» por la palabra «inmunoensayo» que implica el uso de M-Ident Virapid Legionella

CEPAS CUANTITATIVAS EN LENTÍCULAS

CEPAS EN LENTÍCULAS CUANTITATIVAS

CEPAS CUANTITATIVAS EN LENTÍCULAS: siga la Norma ISO 11133-2 de Control de calidad de medios de cultivo, realice sus validaciones y sus Challenge Test, gracias a las diferentes concentraciones de estas cepas cuantitativas.

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Las lentículas cuantitativas de MICROKIT contienen cantidades precisas de cepas microbianas (de colección o salvajes-nativas-in house), cantidades que se indican (exactitud y precisión del lote) en su certificado de control de calidad. Y todo ello en 2 (y a veces hasta 3) medios de cultivo diferentes (TSA o SDA como medio general y el medio selectivo o cromogénico más usado para la cepa en cuestión). En el mismo certificado aparece la trazabilidad y el pase desde la cepa TIPO (1, 2 ó 3), el color de las lentículas del lote y otros muchos datos de interés sobre la cepa.

Empleamos la nomenclatura de la ISO 11133-2: WDCM (colección Universal).

La caducidad

de estas cepas desde fabricación es excepcionalmente larga (2 años en casi todas ellas), lo cual hemos conseguido gracias al proceso de fabricación, que no las estresa como sucede con las cepas liofilizadas. Excepto en 2 cepas que solo tienen 1 año de caducidad, si se acerca la caducidad del lote (< 6 meses) y aun no hemos elaborado otro más reciente, le regalamos el 50% del valor en la misma cepa.

Vendemos docenas a precio de decena, para que las dos sobrantes las invierta en controlar con qué concentración han llegado a sus instalaciones, para que si hubiera variado significativamente con respecto a la concentración que certificamos, pueda calcular y aplicar su propio factor de corrección.

El espacio que ocupan

en el congelador de la nevera es ínfimo: cada lentícula está dentro de un tubito Eppendorf con silicagel, los 12 tubitos dentro de un tubo hermético con tapón de silicagel, y éste en sobrecito Faraday de aluminio de sólo 12 x 18 cm. Así, con este minimalismo en su packaging, en un cajón de congelador normal de nevera caben perfectamente hasta 100 cepas diferentes.

Ofrecemos la gama completa

que necesitará para seguir la Norma ISO 11133-2 (si no encuentra la cepa que busca, la podemos fabricar).

Tambien fabricamos lotes especialmente para algunos clientes que necesitan lentículas especiales para sus intercomparativos; así como cuantificadas a partir de sus microorganismos aislados de monitorización ambiental para realizar el test de promoción de crecimiento tal y como se indica en el Anexo 1 de fabricación de medicamentos estériles de las NCF.

Podemos fabricar a tres rangos: BAJO (aprox 1.000 ufc/lentícula, diluyéndola en 10 mL obtendremos 10 inóculos de <100 ufc/mL), MEDIO (>1.000 Y < 100.000 ufc/lentícula) y ALTO (>100.000 y <100.000.000 ufc/lentícula, para Challenge test y validaciones donde se emplean muchos inóculos en un mismo día de trabajo)

CEPAS CUANTITATIVAS EN LENTÍCULAS

https://youtu.be/4WJ8FQl6GIE

 

SEILASESORIA – VALIDACIÓN (Servicio de consultoría práctica con validación in situ)

SEILASESORIA – VALIDACIÓN (Servicio de consultoría práctica con validación in situ)

SEILASESORIA – VALIDACIÓN, CURSO de Formación que incluye la validación in situ del parámetro microbiológico que desee, por el método de pares

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Hay clientes, auditores e inspectores que le exigirán la validación de cualquier método, kit o medio de cultivo alternativo que emplee, AUNQUE YA ESTÉ VALIDADO por su diseñador y fabricante.

Esto implica realizar un experimento con un número concreto de muestras previamente contaminadas con los microorganismos diana, interferentes y acompañantes. En su propio laboratorio. Realizado por sus propios analistas. Comparando el método, kit o medio nuevo con el clásico universalmente aceptado. Y también implica aplicar estadística para evaluar parámetros muy concretos:

-En métodos cualitativos (detección o presencia/ausencia): sensibilidad, especificidad, eficacia, límite de detección, conformidad, concordancia…

-En métodos cuantitativos (recuentos): Límites de cuantificación o rango, Exactitud, Precisión, Linealidad, Inclusividad, Exclusividad, Robustez del parámetro, Incertidumbre de las medidas…

Nadie nos ha enseñado , ni en la carrera ni en masters o cursos posteriores, a validar correctamente.

Microkit lleva 3 décadas validando sus diseños (kits, medios y procedimientos) y por ello es de las únicas entidades que encontrará, capacitadas para impartir estos cursos prácticos, en los que además de formarse, tendrá validado el parámetro que elija, sea cualitativo, sea cuantitativo.

Es importante no confundir una validación microbiológica con una validación química, ya que no se parecen en nada, de modo que intentar realizar una validación microbiológica desde el punto de vista químico, con herramientas y mentalidad química, como propone la Norma ISO 16140, es perder el tiempo y el dinero.

Nuestros cursos de formación (iniciación, auditorías de optimización y validaciones) están avalados en el alcance de nuestro certificado ISO 9001 desde 1999.

En MICROKIT le ayudamos a demostrar, con pruebas estadísticamente significativas y con limites de aceptabilidad bien claros y argumentados, si el método que desea emplear o seguir empleando es válido porque detecta o enumera adecuadamente:

1-Diseñamos el experimento

2-Nos desplazamos a guiarle durante el mismo en una jornada completa de trabajo

3-Elaboramos el informe completo de hasta 40 páginas con los resultados del experimento, en el que se refleja todo lo indicado y las conclusiones absolutas.

4-Le enviamos un diploma externo que avala su participación en la validación

No lo piense más, contrátenos este servicio: sus análisis no tienen  por qué volver a ser sometidos a técnicas del siglo pasado. Avance con el I+D de sus proveedores de kits, medios y procedimientos.

http://SEILASESORIA-Validaciones-in-situ.pdf

EL METODO P/A (PRESENCIA/AUSENCIA) PARA ANALISIS DE AGUAS:  KITS PREPARADOS Y CONVERSIÓN A RECUENTO NMP

EL MÉTODO P/A (PRESENCIA AUSENCIA) Y RECUENTO NMP MEDIANTE LOS KITS P/A DE MICROKIT PARA TODOS LOS PARÁMETROS. NMP-RACKS

1- POTABILIDAD MICROBIOLOGICA DE LAS AGUAS MEDIANTE EL METODO DE PRESENCIA/AUSENCIA (Kits preparados sin necesidad de Filtración de Membrana ni de Número Más Probable)

Extraído de la Directiva Europea sobre aguas de consumo humano, (obligada desde el 3/XI/2001, y sobre todo desde su transcripción a B.O.E. 45 de fecha 21/2/2003).

Esta Normativa, además de afectar a las aguas potables y envasadas, también afecta a todas las aguas de uso en industrias alimentarias, para producción, lavado, etc.:

TIPO DE ANÁLISIS  PARÁMETRO                      NIVEL GUIA KIT P/A MICROKIT

Desde la publicación de estos datos, la técnica MPN para controlar la potabilidad de aguas queda obsoleta, quedando relegada sólo a recuento en productos no filtrables;

en efecto, al hablar la legislación de ausencia en 100 ml no se puede utilizar la técnica de MPN y extrapolar resultados a partir de una muestra significativamente inferior (33 ml) a los 100 ml requeridos.

Los recuentos en 100 ml pueden realizarse con la técnica de MF, pero en el caso que nos ocupa podemos utilizar las MPN-RACKS (Ref: 1001020) para convertir cualquier kit P/A en Número Más Probable.

Por todo ello surge con fuerza la nueva técnica de Presencia /Ausencia (P/A), útil tanto para trabajo de campo como para Laboratorio, cuando lo que se precisa no es recuento, sino detección de un microorganismo en grandes muestras.

Todos los kits P/A de MICROKIT en frascos preparados incorporan inactivadores de la eventual presencia de cloro en el agua, que actuaría como bacteriostático y enmascararía los resultados como falsos negativos.

El método P/A es mucho más sensible (tienen muchos menos falsos negativos) que el método MF, pero es menos específico (tienen más falsos positivos).

Por ello es tan útil como screening negativo, para poder procesar un gran número de muestras.

Si el kit da negativo, el resultado es negativo y no hace falta hacer nada más.

Y si el kit sale positivo, hay que confirmar esa muestra estriando en placa e identificando colonias aisladas.

Nuestros kits están validados para uso en aguas continentales, no marinas ni salinas.

NOTA: Para analizar agua de mar, se debe diluir ésta a razón 1:10 en agua destilada estéril, ya que la salinidad del mar (3,7-4,5%) sería excesiva para los kits.

Todos nuestros kits P/A permiten ahorrar 4-8 horas de incubación si, antes de inocularlos, se precalienta a 37°C la muestra de agua en un baño María.

 

EL MÉTODO P/A (PRESENCIA AUSENCIA) Y RECUENTO NMP MEDIANTE LOS KITS P/A DE MICROKIT PARA TODOS LOS PARÁMETROS. NMP-RACKS

1-A  KIT P/A DE DETECCION DE COLIFORMES (TOTALES Y/O FECALES) Y E.COLI EN 100 ml DE AGUA (Caldo MICROKIT® P/A MCC-COLICULT ® Cromofluorogénico) Referencia: RPL303

La legislación española (BOE 21/2/03) exige la ausencia de E.coli y de Coliformes totales en 100 ml de agua de consumo humano (la clásica potable y además la de uso en industria alimentaria).

Las dos posibilidades contempladas hasta ahora para este análisis (Número Más Probable ‑NMP‑ y Filtración de Membrana ‑FM‑) eran tediosas en su manipulación (9 tubos la primera, aparato de filtración la segunda)

y los resultados obtenidos en Coliformes implicaban un alto porcentaje de resultados falsamente negativos (18 % en el primer caso y 36 % en el segundo

según JACOBS & Co., Mayo ’86, Comparison of Membrane Filter, Multiple Fermentation Tube and Presence/Absense (P/A) Techniques for detecting Total Coliforms in Small Community Water Systems, App. Env. Microbiol., Vol. 51, n.º 5, pp. 1007-1012).

Con el nuevo método de Presencia/Ausencia, que ya es oficial en U.S.A., el porcentaje de falsos negativos se reduce considerablemente,

ya que la muestra es de 100 ml (muy superior que en la técnica NMP) y las bacterias no sufren como en la técnica de FM.

Además de su mayor sensibilidad, el método P/A es el más cómodo de inocular y el más simple de interpretar.

Cada vez son más los autores que coinciden en que no hay mejor parámetro indicador de la contaminación fecal de las aguas que la especie Escherichia coli.

Efectivamente, las enterobacterias son un grupo demasiado extenso que contiene muchos representantes naturales en las aguas, que no indican contaminación fecal.

Y los coliformes también cuentan con especies naturales en las aguas, además de ser un grupo artificial (hay especies como el mismo E. coli con cepas que son coliformes y con cepas que al no producir gas al fermentar la lactosa, ni tener galactosidasa, no son coliformes).

Su división en coliformes totales y coliformes fecales (parámetro éste más selectivo) no resolvía  totalmente el problema.

Por ello el kit de Coliformes y E. coli P/A resulta de gran interés para análisis de potabilidad como parámetro más estricto que el descrito en la legislación anterior a Febrero de 2003,

y cumple perfectamente con la nueva legislación, al haberse validado en ensayos intercolaborativos y en el intercomparativo SEILAGUA, realizados en España durante 1999-2003,

donde demuestra un 10% más de sensibilidad (escasez de falsos negativos) que el método MF para el parámetro E.coli.

El kit se basa en la moderna y reconocida técnica del MUG, o fluorescencia indicadora de E. coli.

Se incuba a 35 ó 44,5 ºC (según se busquen, además de E. coli, coliformes totales o fecales, respectivamente) durante sólo 24 (-48) horas.

Y del X-Gal que hace que los coliformes viren el agua a azul turquesa a aprtir de la fermentación del sorbitol, con lo cual no se escapan los coliformes lactosa negativos.

Haya o no coliformes (hay cepas de E. coli que no fermentan la lactosa ni el sorbitol ni, por tanto, pueden considerarse coliformes strictu sensu), observar en la oscuridad completa con luz U.V.A. de 366 nm (linterna MICROKIT).

Si aparece fluorescencia azul claro (comparar con un control positivo -kit inoculado con cepa de E. coli– y con un control negativo -kit inoculado con agua estéril-), añadir  1 ml de reactivo de Indol Kovacs (MICROKIT SBH056).

Si tras unos segundos aparece en superficie un anillo de color rojo-cereza, la presencia de E. coli es absolutamente confirmativa, por lo que no son necesarias identificaciones posteriores.

Como control positivo puede utilizarse la cepa E. coli en cómodas lentículas de MICROKIT.

Recomendamos asimismo la participación en servicios intercomparativos como SEILAGUAS FARMACOSMÉTICAS, para validar los procedimientos y los operarios.

MODO DE EMPLEO

  1. Añadir 100 ml de agua de muestra abriendo el tapón o bien pinchando en el obturador.
  2. Cerrar el tapón sin apretar a fondo (para que escape el exceso de gas que se pueda generar).
  3. Agitar para mezclar.
  4. Incubar en posición vertical a 35 ºC  0,5 durante 24‑48 horas.
  5. Si se buscan específicamente Coliformes fecales, incubar a 44,5 ºC (aunque si no había Coliformes totales, lógicamente tampoco habrá Coliformes fecales).

INTERPRETACION DE RESULTADOS

Observar la producción de turbidez (crecimiento bacteriano inespecífico),

el viraje del medio incoloro a azul (reacción positiva ONPG-XGal, típica de los coliformes)

y la fluorescencia en la oscuridad con luz ultravioleta de 366 nm (reacción positiva del MUG, típica de E.coli).

En este último caso añadir unas gotas de Kovacs (SBH056) directamente, para confirmar E.coli (formación de anillo rojo) con la prueba del indol.

PRESENTACION

Cajas con 10 frascos. Caducidad desde fabricación: 1 año.

Conservar entre 4 y 25 ºC, en la oscuridad.

Este kit sustituye, desde principios de 1998, al antiguo RPL303 de Coliformes + E.coli con campana Durham y al antiguo RPL300 de Coliformes totales + Coliformes Fecales con campana Durham.

Validación: Realizada durante 7 años de intercomparación de 70 laboratorios de toda España en más de 700 muestras duplicadas.

Se demuestra comparado con filtración de membrana en el medio oficial (Tergitol Chapman TTC Agar), una sensibilidad del 100% frente al 97,7% del método oficial para coliformes, así como una sensibilidad del 100% para E.coli frente al 95,65% del método oficial.

Una especificidad del 100% para coliformes frente al 94,25% del método oficial y del 100% para E.coli frente al 94,57% del método oficial.

Y un límite de detección de hasta 3±2 ufc/100 ml frente a 5±2 ufc/100 ml del método oficial.

Si analiza muchas muestras al día, vea las versiones viales P/A y Botes P/A.

 

EL MÉTODO P/A (PRESENCIA AUSENCIA) Y RECUENTO NMP MEDIANTE LOS KITS P/A DE MICROKIT PARA TODOS LOS PARÁMETROS. NMP-RACKS

1-B  KIT AUXILIAR PARA RECUENTO TOTAL EN 1 ml DE AGUA: TUBOS NUTRIENT AGAR TTC + PLACAS Petri (Agar Nutritivo TTC, Agar Común TTC)                   Referencia: RPL305

Según el B.O.E. 226 de 20/09/90, en un agua potable no han de aparecer más de 10 bacterias aerobias por mililitro (incubando a 37 ºC) ni más de 100 bacterias aerobias por mililitro (incubado a 22 ºC).

El recuento en 1 ml puede realizarse con la técnica MF (MICROKIT UFM006, UFM012), pero resulta más lógico utilizar la técnica tradicional como en alimentos,

dado que la técnica MF encuentra sus ventajas cuando el tamaño de la muestra es muy superior a 1 ml (de hecho, si se utiliza MF para 1 ml hay que añadir al menos 25 ml de Agua Peptonada estéril para que la filtración sea homogénea en toda la membrana).

Con el Kit que presentamos, Ud. ya no necesita autoclavar medios deshidratados, ni realizar recuentos aproximados.

El medio esta estéril y listo para su empleo, y el recuento es exacto.

Las colonias crecen rojas sobre el medio, blanquecino. No hace falta tratar la muestra contra el cloro, el medio ya incorpora Tiosulfato Sódico.

La caducidad de 2 años, permite mantener un stock sin riesgo de echar a perder reactivos, ventaja importante sobre las placas preparadas.

Para seguir más estrictamente el BOE 21/2/2003 (ISO 6222) usar tubos de Yeast Extract Agar (TPL060).

MODO DE EMPLEO E INTERPRETACION DE RESULTADOS

  1. Fundir 2 tubos al Baño María (98 ºC aproximadamente). No sobrecalentar o el medio virará a rosa-rojo.
  2. Añadir 1 ml de agua de muestra en una placa Petri estéril. Duplicar la operación.
  3. Trabajar junto a la llama de un mechero para conseguir unas condiciones asépticas en el ambiente.
  4. Verter el contenido de un tubo (atemperado hasta que no queme la mano), a una de las placas con muestra. Duplicar la operación en la otra placa con muestra.
  5. Cerrar las placas y hacerlas girar 10 veces en cada sentido para mezclar la muestra con el medio. Dejar solidificar.
  6. Incubar las placas con el agar arriba, una a 37 ºC durante 24 horas y otra a 22 ºC durante 72 horas.
  7. Contar todas las colonias, que habrán virado a rojo, contrastando estupendamente con el medio de cultivo y haciendo el recuento sumamente fácil.
  8. No deben aparecer más de 10 colonias en la primera placa, ni más de 100 en la segunda.

PRESENTACION

Kits de 40 tubos + 40 placas para 20 análisis dobles de recuento total en 1 ml de agua. Caducidad desde fabricación: 1 año. Conservar entre 2 y 25 ºC, en la oscuridad.

Como control positivo puede utilizarse una cepa de E.coli (CRIOSTRAIN MKTA 25922) o de

Como control positivo puede utilizarse la cepa E. coli, de Pseudomonas aeruginosa y/o de Enterococcus faecalis en cómodas lentículas de MICROKIT.

Recomendamos asimismo la participación en servicios intercomparativos como SEILAGUAS FARMACOSMÉTICAS, para validar los procedimientos y los operarios.

Material necesario no incluido: Estufa a 35-37 ºC (VRP001), Pipetas estériles 1 ml (VFR273), Zona aséptica:

Si no dispone de cabina de flujo laminar, puede usar el Portabunsen de MICROKIT.

NOTA: Desde la creación de las DryPlates®-TC-Water,

estas plaquitas resultan mucho más adecuadas para recuento total en 1 ml de agua porque absorben directamente el ml de muestra de agua sin necesidad de fundir medios como sucede en el método clásico, incluido el kit mencionado arriba.

Los resultados de la validación para aguas no pueden ser más alentadores y demuestran que la siembra por fusión en masa de agares calientes es un punto crítico más importante de lo que se cree.

Nos remitimos al folleto de las DryPlates®-TC y al certificado de validación intercolaborativa de Microkit sobre las mismas.

 

EL MÉTODO P/A (PRESENCIA AUSENCIA) Y RECUENTO NMP MEDIANTE LOS KITS P/A DE MICROKIT PARA TODOS LOS PARÁMETROS. NMP-RACKS

1-C KIT P/A PARA LA DETECCION DE ENTEROCOCOS FECALES GRUPO D DE LANCEFIELD EN 100 ml DE AGUA (ENTEROCULT MICROKIT® P/A modificado) Ref: RPL301

Bilis Aesculina Azida (BEA) es un medio ISO para detección de enterococos fecales en muestras de aguas.

Aplicado a la concentración adecuada, y con ciertas modificaciones (pasarlo de agar a caldo), permite la utilización en kits P/A.

MODO DE EMPLEO

  1. Añadir 100 ml del agua de muestra.
  2. Cerrar sin apretar a fondo.
  3. Agitar para mezclar.
  4. Incubar a 37 ºC (41°C) durante 24‑48 horas.

Como control positivo puede utilizarse la cepa Enterococcus faecalis en cómodas lentículas de MICROKIT.

Recomendamos asimismo la participación en servicios intercomparativos como SEILAGUAS FARMACOSMÉTICAS, para validar los procedimientos y los operarios.

INTERPRETAClON DE RESULTADOS

La aparición de turbidez con ennegrecimiento indica que la muestra tiene estreptococos fecales, sobre todo si el medio pierde su fluorescencia natural bajo luz de 366 nm (linterna MICROKIT). Además se vuelve opaco.

PRESENTACION: Cajas con 10 frascos. Caducidad desde fabricación: 1 año.

Conservar entre 2 y 25 ºC, en la oscuridad.

Validación: Realizada durante 7 años de intercomparación de 70 laboratorios de toda España en más de 700 muestras duplicadas.

Se demuestra comparado con filtración de membrana en el medio oficial para enterococos fecales (Slanetz-Bartley Agar + Bilis Esculina Azida Agar), una sensibilidad del 100% frente al 95,6%  del método oficial.

Una especificidad del 100%  frente al 61,0% del método oficial.

Y un límite de detección coincidente en ambos métodos.

Si analiza muchas muestras al día, vea las versiones viales P/A y Botes P/A.

 

EL MÉTODO P/A (PRESENCIA AUSENCIA) Y RECUENTO NMP MEDIANTE LOS KITS P/A DE MICROKIT PARA TODOS LOS PARÁMETROS. NMP-RACKS

1-D KIT AUXILIAR PARA RECUENTO DE CLOSTRIDIOS SULFITO REDUCTORES EN 20‑50 ml DE AGUA (Agar SPS parafinado modificado concentrado)                   Referencia: RPL062

Los anaerobios no crecen muy bien con el método de Filtración de Membrana (MICROKIT UFM014, UFM011) y el método P/A no es válido en muchas legislaciones, que admiten 1 UFC de Clostridio Sulfito-Reductor en 20-50 ml de agua.

Por ello, hemos diseñado un kit especialmente preparado para poder realizar recuento y P/A en muestras de gran volumen (hasta 50 ml).

MODO DE EMPLEO E INTERPRETACION DE RESULTADOS:

  1. Fundir al Baño María a 98 ºC.
  2. Inocular en profundidad, mediante una pipeta caliente, los 20-50 ml de agua de muestra calentada a 75 ºC (si la parafina solidifica antes de sacar la pipeta, recalentar el conjunto a 75 ºC durante el mínimo tiempo necesario para que la parafina vuelva a licuar).
  3. El shock térmico elimina las formas vegetativas y activa la germinación de las esporas.
  4. Voltear sin agitar para mezclar sin airear el medio, una sola vez.
  5. Incubar a 35‑37 ºC durante 24‑48 horas.

PRESENTACION: Cajas con 10 frascos. Caducidad desde fabricación: 1 año.

Como todos los kits para anaerobios, NO debe guardarse en nevera, para impedir que el medio se oxigene con el frío.

Conservar a 21-25 ºC, en la oscuridad.

Como control positivo puede utilizarse la cepa Clostridium perfringens en cómodas lentículas de MICROKIT.

Recomendamos asimismo la participación en servicios intercomparativos como SEILAGUAS FARMACOSMÉTICAS, para validar los procedimientos y los operarios.

NUEVO KIT:

Emplee Quanti-P/A Clostricult para detección y recuento de Clostridium perfringens con TSC (o bien de Clostridium sulfito redutores con SPS) y sus esporas, sin neesidad de alentar medios.

 

EL MÉTODO P/A (PRESENCIA AUSENCIA) Y RECUENTO NMP MEDIANTE LOS KITS P/A DE MICROKIT PARA TODOS LOS PARÁMETROS. NMP-RACKS

1-E KIT PARA P/A DE CLOSTRIDIUM PERFRINGENS Y SUS ESPORAS CLOSTRICULT MICROKIT® P/A Referencia: RPL 308

Elaborado a partir de caldo TSC (CLOSTRICULT-2) para adaptarse a las optimizaciones observadas mediante los servicios SEILAGUA®, desde Octubre de 2005, se optimiza de nuevo en Mayo 2007 para facilitar la anaerobiosis con más agentes reductores y con parafina líquida.

Añadir 100 ml de agua de muestra, dejando una cámara de aire de 5 cm de altura.

Cerrar el tapón sin apretar a fondo.

Voltear sin agitar, para mezclar sin oxigenar.

Incubar a (37 ºC) 44-46 ºC durante 18-48-(72) horas.

Si busca sólo esporas, realizar un shock térmico de 5-10 minutos a 86 ºC.

El viraje a negro (que suele expandirse de abajo arriba) a 44-46 ºC indica presencia de Clostridium perfringens (o de sus esporas si se realizó shock térmico).

El viraje a negro a 37 ºC indica sólamente presencia de Clostridios sulfito-reductores (o de sus esporas si se realizó shock térmico).

Como control positivo puede utilizarse la cepa Clostridium perfringens en cómodas lentículas de MICROKIT.

Recomendamos asimismo la participación en servicios intercomparativos como SEILAGUAS FARMACOSMÉTICAS, para validar los procedimientos y los operarios.

El usuario final es el único responsable de la destrucción de los microorganismos que se hayan multiplicado en el interior de cada tubo o frasco, de acuerdo con la legislación medioambiental vigente.

Añada cloro o lejía hasta el borde con cuidado de no tocar ni derramar el cultivo (si al abrir los botes sale gas a presión o líquido, lavar bien las manos con agua corriente y jabón), o bien autoclavar, antes de desechar a la basura.

Validación: Realizada durante 7 años de intercomparación de 70 laboratorios de toda España en más de 700 muestras duplicadas.

Se demuestra comparado con filtración de membrana en el medio oficial para Clostridium perfringens y sus esporas (mCP Agar y también frente a TSC Agar), una sensibilidad del 77,3 % frente al 14,33%  del método oficial y al 56,0% del TSC.

Una especificidad del 100%  frente al 100% del método oficial y del 95,8% del TSC.

Y un límite de detección de 3 a 10 veces más cercano a 1 ufc/100 ml que el método oficial: 2±1 ufc/100 ml con un 85% de detecciones frente a 8±7 ufc/100 ml en TSC Agar con sólo un 40% de detecciones.

Si analiza muchas muestras al día, vea las versiones viales P/A y Botes P/A de polvo estéril.

 

2- EL METODO MICROKIT® P/A PARA OTROS PARAMETROS (Kits preparados sin necesidad de Filtración de Membrana ni de número Más Probable)

Además del parámetro de POTABILIDAD en las aguas, existen otros de gran importancia en la industria y medio ambiente.

Presentamos los kits P/A diseñados especialmente para todos ellos.

Todos cuentan con 1 año de caducidad desde fabricación en frascos preparados, se presentan en cajas de 10 unidades e incorporan inactivadores de la eventual presencia de cloro en el agua.

Si analiza muchas muestras al día, vea las versiones viales P/A y Botes P/A de polvo estéril.

Se almacenan entre 2 y 25 ºC al abrigo de la luz.

El modo de empleo también es común a todos ellos: Añadir hasta 100 ml del agua o del líquido de muestra, agitar e incubar.

Se describen a continuación la utilidad, las condiciones de incubación y la interpretación de resultados de todos ellos:

 

EL MÉTODO P/A (PRESENCIA AUSENCIA) Y RECUENTO NMP MEDIANTE LOS KITS P/A DE MICROKIT PARA TODOS LOS PARÁMETROS. NMP-RACKS

2-A  MICROKIT® P/A PARA LA DETECCION DE PSEUDOMONAS sp. (Y AEROMONAS / PLESIOMONAS) EN 100 ml DE AGUA (Caldo GSP modificado)      Referencia: RPL309

La presencia de estos microorganismos es indicadora de infiltración de aguas naturales, residuales o no, y puede provocar la formación de limos obstructores de circuitos.

En ciertos países, como Holanda, la legislación exige la ausencia de Aeromonas en las aguas potables.

La aparición de Pseudomonas diminuta en aguas filtradas por 0,22 µm implica la rotura de los filtros.

Además distintas especies como Pseudomonas aeruginosa son patógenas para el hombre;

ciertas especies de Aeromonas son patógenos animales muy indeseables en piscifactorías:

y algunas cepas de Aeromonas hydrophila han provocado enfermedad en el hombre;

y Plesiomonas shigelloides provoca en el hombre cuadros gastroenteríticos similares a los de Shigella o Vibrio.

Este kit es útil para análisis de aguas purificadas en laboratorios cercanos al mar, a cauces de ríos y lagos, a pozos…, así como para análisis de aguas de piscinas y playas, aguas de barcos, acuicultura, etc.

El kit se incuba a 30-37 ºC durante 24-72 horas.

El viraje a naranja o amarillo es indicador presuntivo de Aeromonas/Plesiomonas.

El viraje a azulado o violáceo es indicador presuntivo de especies de Pseudomonas.

Cualquier turbidez sin viraje es sospechosa.

Turbidez y/o viraje deben confirmarse sembrando una gota del líquido del kit en la superficie de una placa de GSP Agar (MICROKIT DMT148) e identificando las colonias crecidas (MICROKIT KBH262).

Como control positivo puede utilizarse la cepa Pseudomonas aeruginosa en cómodas lentículas de MICROKIT.

Recomendamos asimismo la participación en servicios intercomparativos como SEILAGUAS FARMACOSMÉTICAS, para validar los procedimientos y los operarios.

 

EL MÉTODO P/A (PRESENCIA AUSENCIA) Y RECUENTO NMP MEDIANTE LOS KITS P/A DE MICROKIT PARA TODOS LOS PARÁMETROS. NMP-RACKS

2-B  MICROKIT® P/A PSEUDOCULT PARA LA DETECCION DE PSEUDOMONAS AERUGINOSA EN 100 ml DE AGUA (Caldo Cetrimida altamente selectivo y muy modificado, con cromógenos)

Referencia: RPL302

Este patógeno debe estar ausente en el agua de cualquier laboratorio, sobre todo si es de una fábrica de medicamentos o productos cosméticos, de aguas envasadas o en quirófanos y uvis en los hospitales.

El frasco se cierra, se pincha en la parte elástica del tapón una aguja provista de filtro y se introduce a incubar en estufa a 37±1ºC de 18 horas a 5 días.

El viraje a rosa en 18-24h, con fluorescencia en 48h bajo luz UVA de 366 nm (linterna MICROKIT VMT050) es altamente presuntivo de Pseudomonas aeruginosa, aunque tras las 48h puede virar a rojo.

El viraje a salmón es presuntivo de Burkholderia cepacia.

Un viraje a rojo intenso, opaco y rápido (24h), puede ser ocasionado por E.coli y, en aguas marinas, por ciertas especies de Aeromonas y de Vibrio.

Debe confirmarse aislando colonias, estriando en Agar Cetrimida (MICROKIT DMT034, PPL011, TPL100, RPL010) e identificando las mismas (MICROKIT 245000).

Como control positivo puede utilizarse la cepa Pseudomonas aeruginosa en cómodas lentículas de MICROKIT.

Recomendamos asimismo la participación en servicios intercomparativos como SEILAGUAS FARMACOSMÉTICAS, para validar los procedimientos y los operarios.

La validación interna del kit demuestra su excelente capacidad de detección, que resulta incluso del 100% de sensibilidad para inóculos de 1-2 ufc de P.aeruginosa/100-250 ml de agua, lo cual es un límite de detección inmejorable.

En 7 años de intercomparación de 70 laboratorios de toda España en más de 700 muestras duplicadas, se demuestra comparado con filtración de membrana en el medio oficial (Cetrimida CN Agar) una sensibilidad y una especificidad del 100% frente al 73,4%  y al 91,3% respectivamente del método oficial,

así como un límite de detección 50 veces más cercano a 1 ufc/100 ml que el método oficial.

Si analiza muchas muestras al día, vea las versiones viales P/A y Botes P/A.

 

EL MÉTODO P/A (PRESENCIA AUSENCIA) Y RECUENTO NMP MEDIANTE LOS KITS P/A DE MICROKIT PARA TODOS LOS PARÁMETROS. NMP-RACKS

2-B-BIS: MICROKIT® P/A PARA LA DETECCION DE BURKHOLDERIA CEPACIA EN 100 ml DE AGUA (Caldo BCPT  selectivo, color anaranjado) Referencia: RPL323

Este oportunista del biofilm del agua se detecta incubando el kit a 35 ºC durante 24 horas.

Sólo B.cepacia es capaz de crecer tan deprisa en este caldo cromogénico, provocando el viraje a rojo tinto.

Como siempre, confirme los positivos estriando en placa de agar selectivo  e identificando las colonias (MICROKIT 245000).

A las 48-72 horas otros microorganismos pueden provocar falsos positivos con virajes tardíos del mismo tono.

Puede conseguir que el kit sea muy selectivo añadiendo a cada frasco 0,14 ml del suplemento SMT301.

Como control positivo puede utilizarse la cepa Burkholderia cepacia en cómodas lentículas de MICROKIT.

Recomendamos asimismo la participación en servicios intercomparativos como SEILAGUAS FARMACOSMÉTICAS, para validar los procedimientos y los operarios.

Si analiza muchas muestras al dia, vea las versiones viales P/A y Botes P/A.

 

EL MÉTODO P/A (PRESENCIA AUSENCIA) Y RECUENTO NMP MEDIANTE LOS KITS P/A DE MICROKIT PARA TODOS LOS PARÁMETROS. NMP-RACKS

2-C  MICROKIT® P/A PARA LA DETECCION DE VIBRIO HALÓFILOS  EN 100 ml DE AGUA (Caldo Alcalino HiperSalino MICROKIT)          Referencia: RPL310P

Las especies Vibrio alginolyticus, Vibrio vulnificus y Vibrio parahaemolyticus pueden producir intoxicaciones alimentarias e infecciones graves en heridas.

Por ello, este kit es muy necesario para análisis de aguas de piscifactorías, ríos, cetareas, viveros, barcos, playas, piscinas y demás aguas naturales.

El kit se incuba antes de que transcurran 8 horas desde la inoculación, a 35 ºC durante 24 horas para los Vibrio halófilos.

El viraje del medio de azul oscuro a azul-verdoso es presuntivo, por lo que debe confirmarse aislando en TCBS Agar (MICROKIT DMT119, PPL048) y Vibrio Saline TSAT ISO 8914 (MICROKIT DMT172).

Las colonias verdes, azules y amarillas en TCBS y rojas en TSAT son de distintas especies patógenas de Vibrio, que se identificarán con kits adecuados (MICROKIT KBH262).

En TSAT, Vibrio parahaemolyticus crece con colonias de 2-3 mm y color rojo oscuro.

Confirmar con TSI Agar: Vibrio parahaemolyticus provoca pico rojo, fondo amarillo, sin ennegrecimiento ni gas.

Vibrio alginolyticus crece con colonias rojas o blancas, pero muy grandes y lobuladas.

Vibrio cholerae y V.vulnificus crecen con colonias incoloras-crema.

 

EL MÉTODO P/A (PRESENCIA AUSENCIA) Y RECUENTO NMP MEDIANTE LOS KITS P/A DE MICROKIT PARA TODOS LOS PARÁMETROS. NMP-RACKS

2-C Bis  MICROKIT® P/A PARA LA DETECCION DE VIBRIO CHOLERAE EN 100 ML DE AGUA (Caldo TCBS modificado) Referencia: RPL312

Vibrio choleare es el agente causal del cólera, desgraciadamente cada vez más extendido en su cepa menos conocida y peligrosa a países desarrollados.

Otras muchas especies de Vibrio son inocuas y muy didácticas.

Este patógeno es frecuente en países tropicales y en la ruta de inmigración de africanos a Francia a través de España.

El  kit se incuba 24 horas a  28 ºC, que es la temperatura ideal para este microorganismo, cuyo hábitat son los peces, de sangre fría. El viraje a amarillo es presuntivo de Vibrio cholerae.

Confirmar en Agar TCBS (DMT119, TPL503) e identificar las colonias con KBH262 y antisueros (ZM05, ZM06, ZM07, BAA001).

El servicio SEILAGUA 2002-2003 demuestra que este kit es infinitamente más sensible (ausencia total de falsos negativos) que el método MF en TCBS Agar (con 100% de falsos negativos!!!).

Sin embargo es poco específico, con frecuentes falsos positivos (por ej. E.coli), de ahi la necesidad de confirmar en placa:

A diferencia de las Enterobacterias, Vibrio cholerae es oxidasa positivo.

Como diferencia de los Coliformes, es lactosa negativo.

A diferencia de otros Vibrio, no crece con >6% (60 g/l) de ClNa.

NUEVO: V.cholerae P/A Cromogénico,

los positivos viran a rojizo (naranja, púrpura, ámbar) en 36h (y hasta en  5 dias para detectar los casos de estress extremo). Referencia: RPL312C

 

EL MÉTODO P/A (PRESENCIA AUSENCIA) Y RECUENTO NMP MEDIANTE LOS KITS P/A DE MICROKIT PARA TODOS LOS PARÁMETROS. NMP-RACKS

2-D  MYCOKIT P/A PARA LA DETECCION DE HONGOS (LEVADURAS Y MOHOS) EN 100 ml DE AGUA (Caldo Rosa Bengala Cloranfenicol modificado)      Referencia: RPL315

Izda: Mohos en superficie y fondo, Dcha: Levaduras enturbiando

Los laboratorios, industrias de refrescos y las aguas naturales pueden verse invadidas por distintas especies de hongos que a menudo son alterativas de las propiedades organolépticas de los productos fabricados.

Por ello, este kit resulta de gran interés en industria alimentaria y cosmética, sobre todo, así como en aguas de baños (hongos dermatofitos), como piscinas, playas, duchas…

Conviene que la muestra de agua sea de la superficie, sobre todo si hay espuma o suciedad, pues es ahí donde se acumulan estos microorganismos y sus esporas.

El kit se incuba a 21-25 ºC durante 3-7 días.

La turbidez demuestra presencia de levaduras, al ser el medio selectivo contra bacterias.

Los fieltros superficiales o floculantes indican presencia de mohos.

Si se desea, se pueden identificar las especies de levaduras (Rapid-Yeast) y de mohos (microscopio y claves MICROKIT).

Como control positivo puede utilizarse la cepa Candida albicans como levadura y Aspergillus niger como moho, en cómodas lentículas de MICROKIT.

Recomendamos asimismo la participación en servicios intercomparativos como SEILAGUAS FARMACOSMÉTICAS, para validar los procedimientos y los operarios.

NUEVO: MYCOKIT P/A Cromogénico,

los positivos viran a verde desde las primeras 48h (y hasta 3 dias para los más lentos). Ref: Viales FPA950 (no se puede elaborar en frascos preparados tomamuestras P/A)

 

EL MÉTODO P/A (PRESENCIA AUSENCIA) Y RECUENTO NMP MEDIANTE LOS KITS P/A DE MICROKIT PARA TODOS LOS PARÁMETROS. NMP-RACKS

2-E  MICROKIT® P/A PARA LA DETECCION DE ESTAFILOCOCOS EN 100 ml DE AGUA (Caldo Mannitol hipersalino muy modificado)      Referencia: RPL320

La presencia de estafilococos en agua es muy frecuente en aguas de baño, que pueden quedar contaminadas por personas portadoras.

Por ello, este kit es necesario para completar el análisis de aguas de piscinas, playas y baño en general, según la legislación actual, además de su interés en Laboratorios Farmacéuticos y cosméticos.

El kit se incuba a 37 ºC durante 24-48 horas.

La turbidez prueba la presencia de estafilococos.

El viraje de rojo a naranja o amarillo es presuntivo de presencia de Staphylococcus aureus, con cepas patógenas del hombre.

Dada la posible presencia de falsos positivos (y a pesar de la adición de numerosos agentes selectivos al caldo Mannitol, que se ha optimizado en Mayo de 2007 mediante la adición de más agentes reductores y parafina líquida, que disminuyen el nivel de falsos positivos de micrococos y otros aerobios halófilos)…

…confirmar estriando en Agar Baird Parker (MICROKIT DMT016, PPL002, TPL125, RPL003, MBN106)

y si aparecen colonias negras con borde blanco y halo, se trata de S. aureus;

o bien en Agar Mannitol (DMT078, TPL066, RPL023, PPL907…) y si aparecen colonias amarillas, se trata de S.aureus.

Confirmar si es cepa patógena con la prueba de la coagulasa (MICROKIT KWD094).

El servicio SEILAGUA 2002-2003 demostró que este kit, incluso antes de su optimización de Mayo de 2007, es sumamente más sensible (ausencia total de falsos negativos) que el método MF en  Baird Parker o en Mannitol Salt Agar (con 29% de falsos negativos!!!).

Sin embargo es poco específico, con frecuentes falsos positivos, de ahi la necesidad de confirmar estriando en placa selectiva.

Como control positivo puede utilizarse la cepa Staphylococcus aureus, en cómodas lentículas de MICROKIT.

Recomendamos asimismo la participación en servicios intercomparativos como SEILAGUAS FARMACOSMÉTICAS, para validar los procedimientos y los operarios.

Validación: En 7 años de intercomparación de 70 laboratorios de toda España en más de 700 muestras duplicadas, se demuestra comparado con filtración de membrana en el medio oficial (Baird Parker Agar y Mannitol Salt Agar)…

…una sensibilidad del 100% frente al 71,0%  y al 60,0% respectivamente del método oficial,

así como una especificidad 96,0% frente al 65,0% y 83,0% respectivamente.

El límite de detección resulta un 70% más cercano a 1 ufc/100 ml que el del método oficial.

 

EL MÉTODO P/A (PRESENCIA AUSENCIA) Y RECUENTO NMP MEDIANTE LOS KITS P/A DE MICROKIT PARA TODOS LOS PARÁMETROS. NMP-RACKS

2-F  FICOKIT (MICROKIT® P/A PARA LA DETECCION DE ALGAS MICROSCOPICAS EN 100 ml DE AGUA) (Caldo Algas Modificado) Referencia: RPL307

Para la detección de todo tipo de algas microscópicas en aguas (Cianofíceas, Clorofíceas, Diatomeas, etc.), desarrollamos FICOKIT, test de presencia / ausencia en 100 ml de muestra.

De gran interés en acuicultura, piscinas, aguas envasadas, aguas naturales, aguas de refrigeración y lavado, etc,

FICOKIT contiene un caldo de cultivo especialmente formulado para microorganismos fotosintéticos en general, a alta concentración, estéril y listo para su uso,

al que se han añadido agentes que aceleran el crecimiento vegetal.

Tomar la muestra de agua (50‑100 ml) rascando las superficies bañadas por la misma y agitando.

Es recomendable que la muestra sea lo más representativa posible, por lo que pueden añadirse pequeños trozos del medio ambiente cercano

y, si el agua de muestra es muy limpia, un filtro enrollado de 0,45 um de poro por el que se hayan filtrado 5 litros o más del agua de muestra.

Pero siempre añadiendo directamente al kit un mínimo de 50 ml de agua, ya que el medio está a alta concentración y un máximo de 100 ml de agua, ya que hay que dejar una cámara de aire.

Incubar junto a una ventana con cortina traslúcida donde no incida directamente la luz del sol,

durante 2‑30 días (los resultados serán siempre más rápidos en primavera, dado el fotoperiodo ideal).

La temperatura ambiente ideal es de 21‑25 ºC.

Sobre todo en lugares poco soleados y en invierno, pueden reproducirse artificialmente estas condiciones…

…con fotoperiodo de 16 horas de luz/8 horas de oscuridad

mediante fluorescentes de menos de 3.200 LUX situados a 4,5 metros de los frascos de FICOKIT.

La aparición de fieltros, mucosidades, filamentos o turbidez con los colores  propios de la fotosíntesis (verde, verde azulado, verde amarillento, rojizo, pardo…), indica presencia de microorganismos fotosintéticos en la muestra.

Estos microorganismos alteran las propiedades organolépticas, producen limos obturadores y en algunos casos (cianobacterias) son tóxicos.

Solicite con su pedido de FICOKIT las claves de microalgas MICROKIT para diferenciar cianofíceas, clorofíceas, diatomeas, etc. al microscopio y poder identificar incluso a nivel de géneros.

Como control positivo puede pedir a MICROKIT la cepa Chlorella vulgaris.

No se pierda nuestro video de Ficokit y Cianokit:

https://www.youtube.com/watch?v=TZYC3ZKcSQM&t=252s

 

EL MÉTODO P/A (PRESENCIA AUSENCIA) Y RECUENTO NMP MEDIANTE LOS KITS P/A DE MICROKIT PARA TODOS LOS PARÁMETROS. NMP-RACKS

2-G  CIANOKIT (MICROKIT® P/A PARA LA DETECCION DE ALGAS CIANOFICEAS O CIANOBACTERIAS Y OTRAS BACTERIAS FOTOSINTETICAS EN 100 ml DE AGUA)    (Caldo Algas con suplemento para cianobacterias)   Referencia: RPL306

De gran interés para acuicultura, piscinas, aguas minerales, aguas estancadas, aguas de abastecimiento, etc., este kit diseñado por MICROKIT, contiene un medio de cultivo especial para cianofíceas, estéril y listo para su uso.

Las cianofíceas/cianobacterias son algas/bacterias muy primitivas que pueden provocar problemas de toxicidad en las aguas donde proliferan.

Oscillatoria erythraea, especie planctónica marina, produce una toxina mortal para los peces, cuando su concentración es elevada, y que intoxica la cadena alimenticia, pudiendo ser mortal para el hombre (enfermedad tropical «ciguatera»).

Lyngbya majuscula puede provocar dermatitis necrótica a los bañistas de playas contaminadas por ella.

En aguas continentales, sobre todo, Aphanizomenon flos-aquae, Anabaena flos-aquae, Schizothrix calcicola, Lyngybya gracilis, Oscillatoria nigroviridis, Calothrix crustacea, Nostoc muscorum, Symploca muscorum, Tolypothrix byssoidea y Microcoleus lyngbyaceus son varias especies que se ha comprobado producen una amplia gama de cianotoxinas.

Anabaena circinalis, Symploca hydroides y algunas especies de Microcystis, provocan dermatitis por simple baño en aguas donde proliferan.

Recientemente Paul R. Hunter (Sept.1995, Cyanobacteria in fresh waters, Microbiology Europe Vol. 3, Nº 5) recopila los ultimos casos de mayor relevancia internacional,

con dolor de cabeza, diarrea, vómitos, conjuntivitis, otitis, fiebre, urticaria, asma…

provocados en personas tras 2-48 horas del contacto

(a veces simple baño, ni siquiera consumo) con aguas donde se ha dado un bloom algal de cianofíceas en Inglaterra.

En cualquier caso, un agua con abundantes cianofíceas jamás debe ser consumida.

Incluso deben cerrarse las aguas con blooms de cianofíceas a las actividades recreativas, pues se han dado casos de neumonía a canoistas que navegaban sobre un bloom algal de Microcystis aeruginosa.

Se establece una clasificación de la polución de las aguas, en función de los grupos de cianocífeas existentes:

En aguas extremadamente polutas, proliferan especies de Spirulina y Anabaena.

En cambio en aguas polutas, proliferan especies de Oscillatoria y Phormidium.

Y en aguas moderadamente polutas, proliferan Anabaena flos-aquae, Aphanizomenon flos-aquae, y diversas especies de Nostoc y Oscillatoria.

Se consideran puras las aguas ricas en especies de la Stigonematácea Hapalosiphon.

En aguas estancadas de verano, sobre todo, las sustancias nitrogenadas se agotan y las cianofíceas, capaces de fijar nitrógeno atmosférico (con heterocistes, sobre todo), libres de competencia, proliferan.

Esto es más frecuente en aguas continentales que en aguas marinas.

Y cada vez más frecuente en aguas europeas, por el aporte fosfatado que proporcionan los vertidos de fertilizantes en agricultura.

Con CIANOKIT puede detectarse la presencia de cianofíceas antes de que sea demasiado tarde.

Con las claves de identificación de géneros de cianobacterias que pueden solicitarse a MICROKIT con sus pedidos de CIANOKIT, puede, además, avanzarse en el pronóstico de la toxicidad del agua.

Las algas acuáticas pueden encontrarse en superficie, flotando como NEUSTON (sus proliferaciones se denominan «flores de agua» y pueden crear anoxia en las aguas inferiores);

o bien en la masa de agua, formando el PLANCTON;

o bien adheridas a superficies y en el fondo, o BENTOS.

A menudo colorean el agua de diversos tonos azulados (cianofíceas),

rojos (dinofíceas-mareas rojas- y cianofíceas),

pardos (diatomeas)

o verde-amarillentos (clorofíceas) cuando se encuentran en grandes concentraciones.

Una buena recolección de muestras, debe incluir los tres tipos de hábitats descritos: El NEUSTON se recoge dejando entrar agua superficial en un bote, sin agitar. Si es visible se toma con pinzas.

El PLANCTON se puede coger con una red de 20-60µm de poro, aunque si su concentración es suficientemente alta, bastará con tomar una muestra de 250 ml en un frasco, entre dos aguas, sin agitar y sin rapidez.

El BENTOS se tomará rascando la superficie sólida con una navaja o pasando un tubo de recolección suavemente por la zona superficial del sedimento.

Sembrar cada tipo de muestra (Neuston, Plancton y Bentos) en un frasco de CIANOKIT.

El Plancton es preferible sembrarlo tras dejar sedimentar el frasco de muestra de 3 a 24 horas, y tomando la muestra del fondo con una pipeta o jeringa.

Dejar una buena cámara de aire (medio frasco). Cerrar. Agitar para mezclar la muestra con el medio de cultivo.

La incubación se realizará junto a una ventana.

En zonas poco soleadas y en invierno, se hará mejor en una habitación con una temperatura de 20ºC,

con fluorescentes de luz blanca fría, situados a 4’5 metros de los frascos (intensidad jamás superior a 3.200 LUX),

con un fotoperiodo de 16 horas de luz/8 horas de oscuridad,

durante 2-30 días.

Nunca se debe dejar que la luz directa del sol incida sobre los frascos, aunque si es indirecta ayudará a acelerar los resultados.

Debe realizarse, al menos, un análisis semanal, para que la prevención sea eficaz.

Las cianofíceas se denominan también «algas azules», pero muchas especies son verdes, rojas, violetas, negras…

Cualquiera de estos colores, desarrollado en el líquido o en las paredes y fondo de CIANOKIT, son indicadores de presencia de cianofíceas,

independientemente del aspecto afieltrado, mucoso, turbio o filamentoso que pueda adquirir.

Debe confirmarse al microscopio, pues otras algas pueden dar lugar a falsos positivos.

Otras bacterias fotosintéticas también pueden proliferar en CIANOKIT, aunque es difícil porque precisan las condiciones anaerobias que consiguen en los sedimentos de los lagos.

NOTA: PARA RECUENTO, UTILICE EL MEDIO DESHIDRATADO O LAS PLAQUIS® HERMETICAS DE CIANAGAR.

Control de calidad positivo:  Pida el mix e cianobacterias de MICROKIT.

https://www.microkit.es/fichas/PRESENCIA-AUSENCIA-KITS-INTRODUCCION.pdf

 

EL MÉTODO P/A (PRESENCIA AUSENCIA) Y RECUENTO NMP MEDIANTE LOS KITS P/A DE MICROKIT PARA TODOS LOS PARÁMETROS. NMP-RACKS

PUEDE CONVERTIR TODOS LOS KITS P/A DE MICROKIT EN RECUENTO NMP GRACIAS A LAS CUBETAS NMP-RACKS  https://www.microkit.es/fichas/MPN-RACK.pdf

El usuario final es el único responsable de la destrucción de los microorganismos que se hayan multiplicado en el interior de cada frasco, de acuerdo con la legislación medioambiental vigente. Añada cloro o lejía hasta el borde, con cuidado de no tocar ni derramar  el cultivo, antes de desechar a la basura. Si al abrir los botes sale gas a presión o líquido y se salpica, lavar las manos con agua corriente y jabón.

¿Necesita asesoría sobre los kits y formatos (frascos, viales o botes) que se adaptan mejor a su caso? consulte en el email consultastecnicas@microkit.es

Si desea más información sobre nuestros KITS P/A, póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es

Haga sus pedidos de kits P/A en pedidos@mirokit.es

https://www.microkit.es/monograficos/21-Monograf–a-M–todos-alternativos-en-Control-microbiol–gico-de-aguas.pdf1

No se pierda nuestro vídeo de los viales P/A:

https://youtu.be/6OfsD7zU_8U

 

LEGIONELLA GVPC, BCYE (con Fe y Cys), BCYE-Cys, (AGAR BASE)

LEGIONELLA GVPC, BCYE (con Fe y Cys), BCYE-Cys, (AGAR BASE)

LEGIONELLA GVPC

Aislamiento selectivo de Legionella por el método MF o por siembra directa

(ISO 11731:2017, ISO 11731-2:2004)

COMPOSICIÓN

Medio BASE:

  • Carbón activado                              2,0 g
  • Extracto de levadura                        10,0 g
  • Agar‑Agar                                        22,0 g
  • Alfa-ketoglutarato (sal  mono-K) *  1,0 g
  • (Fórmula por litro)
  • pH final: 6,9 ± 0,1

GVPC Suplemento Selectivo+Nutritivo estéril en solución 200 ml SBL604

Agite contundentemente y añada en asepsia 40 ml a 500 ml de medio enfriado a 50 ºC (o bien 8 ml a 100 ml de medio).

Puede contener precipitados por su elevada concentración pero desaparecen al diluir en el medio BCYE base. c.s.p. 2’5 l de medio.

Contiene las proporciones precisas, según ISO 11731, de: Tampón ACES, «-Cetoglutarato, KOH, Clorhidrato de L-Cisteina, Pirofosfato férrico, Vancomicina, Cicloheximida, Polimixina y Glicina.

Contiene elementos tóxicos, evitar el contacto con la piel.

NOTA 1: La ref. SBL609 es idéntica al suplemento GVPC (con Fe y Cys) pero sin los tres antibióticos del GVPC selectivo, para elaborar el BCYE (con Fe y Cys).

La ref. SBL605 es idéntica al suplemento GVPC pero sin la Cisteína, para elaborar el BCYE-Cys, aunque éste se puede sustituir por simple TSA.

NOTA 2: EL caldo GVPC para preenriquecimiento revitalizador, es idéntico al Agar GVPC pero sin Agar-Agar y con el carbón granulado (ver kit P/A Legionella en tubos preparados, ref.RPL330).

Ideal para usar antes de la ISO 11731 y encontrar de forma mucho más eficaz la Legionella tras revitalización.

PREPARACIÓN (conversión del medio deshidratado en medio preparado)

Disolver 17 gramos de medio en 500 ml de agua bidestilada.

Calentar hasta hervir para la total disolución.

Autoclavar a 121 ºC, 15 minutos.

El color final del medio es negro.

Enfriar a 45-50 ºC y, para el medio selectivo GVPC, añadir asépticamente 40 ml de Legionella Supplement-200 ml (SBL604, tampón ACES/KOH; nutritivo con α-ketoglutarato, clorhidrato de L-cisteina y pirofosfato férrico;

y selectivo, con Vancomicina, Polimixina, Cicloheximida y Glicina);

para el medio no-selectivo BCYE con Fe y Cys, añadir 40 ml de SBL609 (con Fe y Cys pero sin los antibióticos).

Para el medio BCYE-Cys,  añadir 40 ml de Legionella-Cys Supplement-200 ml (SBL605, tampón ACES/KOH, α-ketoglutarato y pirofosfato férrico), aunque como es para ver que en él no crecen las Legionellas, se puede sustituir por simple TSA, donde tampoco crecen.

Mezclar muy bien y verter 20 ml/placa cuando el medio esté a punto de solidificar, para que la distribución del carbón activo sea lo más homogénea posible.

No sobrecalentar o el agar se volverá demasiado blando: Es posible que sea necesario añadir aún más Agar-agar (BCB006)  para minimizar la friabilidad del agar,  si se va a sembrar con asa (aceptado en ISO 11731).

PARA USO EXCLUSIVO

EN LABORATORIO.

MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO

EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO.

DESHIDRATADO CODIGO: DMT007

CONTROL DE CALIDAD DE LOS MEDIOS GVPC y BCYE + Fe + Cys

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio,

tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

DESHIDRATADO: Polvo, Negro

PREPARADO: Estéril, Negro.

CONTROL DE CRECIMIENTO 2 semanas a 37°C aproximadamente:

Legionella pneumophila MKTN 12821 serogrupo1, Correcto, colonias gris-azuladas, cristalinas, mucosas, en 2-15 días, en medio suplementado GVPC y en BCYE+Fe+Cys.

No crece en medio BCYE-Cys, sin suplemento nutritivo de hierro y cisteína.

En el medio BCYE con suplemento nutritivo pero sin antibióticos, crece aproximadamente el doble de población que en el GVPC.

Con respecto a PCA estandarizado y suplementado,* recuento 126 %, pero de forma selectiva.

Legionella pneumophila serogrupo 2-15, MKTLeg-2, Idem.

Escherichia coli, MKTA 25922 parcialmente inhibido. Con respecto a PCA estandarizado y suplementado,* recuento 27 %.

Micrococcus luteus MKTA 9341, inhibido en el GVPC selectivo.

* El que cumple con recuperación superior al 92-125% con respecto a cepas cuantitativas trazables a la cepa tipo. Incertidumbres detectadas entre todos los lotes a lo largo de un año (la mayoría de la incertidumbre se debe a la cepa y a la proporción de cepas acompañantes inoculadas, no al medio).

PRESENTACION: MEDIO DESHIDRATADO (BCYE BASE) Y SUPL. GVPC / BCYE+Fe+Cys,

KITS P/A caldo revitalizante,

PLAQUIS HERMÉTICAS Y PLACAS MF GVPC,

FRASCOS PREPARADOS 100 ml (BCYE-BASE) + SUPL. GVPC / BCYE+Fe+Cys.

Suplemento selectivo + nutritivo para GVPC (SBL604).

El suplemento sin Cysteina para BCYE-Cys.

Suplemento nutritivo Fe + Cys sin antibióticos para BCYE.

Nuevo: Placa preparada GVPC (con glicina, cisteína, hierro, ACES y antibióticos) pH 6,8 s/ISO 11731:2017 (Ref: PPLM60) y placa preparada BCYE (idem sin antibióticos ni glicina)  pH 6,8 s/ISO 11731:2017 (Ref: PPLM61)

MODO DE EMPLEO E INTERPRETACION DE RESULTADOS

Medio selectivo GVPC:

Inocular  una membrana de filtración de 0’22 µm (VAC022,  no usar de 0,45 µm), o mejor 0´1 ml de un extracto del fondo del tubo tras la centrifugación a 2500 r.p.m., 20′ de una muestra rascada,

o bien 0’1 ml del fondo del caldo de enriquecimiento concentrado (RPL330) sobre una placa.

O aplicar una placa de contacto sobre la superficie, o bien introducirla en un aparato de control de aire.

Preincubar estrictamente 30 minutos a 50 ºC para eliminar flora competitiva acompañante.

Incubar a 35 ºC aproximadamente, en atmósfera húmeda de 2 a 14 días.

Las colonias de Legionella pneumophila son blanco-azuladas, brillantes, mucosas, de 1-2 mm Ø, circulares, lisas, algo elevadas y con los bordes enteros,

fluorescentes (verde mate a menudo teñido de amarillo) en la oscuridad bajo luz UVA (linterna MICROKIT VMT050).

Subcultivar 3 colonias en  BCYE+Fe+Cys  (sin antibióticos)  y en BCYE-Cys (o TSA), al menos 2 días a 36 ± 1°C.

Legionella crece en BCYE (con Fe y Cys) sin antibióticos (y en GVPC), pero no crece en BCYE-Cys (ni en medios generales tipo TSA, agar sangre, PCA, YEA, Nutrient Agar…).

Las colonias deben confirmarse con oxidasa positivo, a menudo lento (KOT050), catalasa positiva (KMT299) y serotipado (M-IDENT-LEGIONELLA-VIRAPID VR002, QUE PUEDE USARSE DIRECTAMENTE EN EL PRIMER AISLAMIENTO DE GVPC Y AHORRARSE ASÍ EL TIEMPO Y COSTE DE LAS OTRAS PLACAS DE BCYE (con Fe y Cys) y BCYE-Cys (o TSA).

Contar sólo la placa de GVPC con más colonias de Legionella pneumophila.

Si no se encuentra, expresar los resultados como “no detectada”, ya que a veces está presente y no crece.

Peligro, microorganismos de alto riesgo para inmunodeprimidos, por inhalación de aerosoles (pero no llega a considerarse de Clase III).

NOTA:

Los otros dos medios mencionados en la ISO 11731:2017 (BCYE con suplementos selectivos: BCYE+AB, Modified Wadowsky Yee: MWY) son alternativos, no son necesarios.

Esta nueva versión 2017 de la Norma describe la fluorescencia de otras especies de Legionella:

L.anisa, L.bozemanii, L.cherrii, L.dumoffii, L.gormanii, L.gratiana, L.parisiensis, L.steigerwaltii y L.tucsonensis) tienen autofluorescencia blanca brillante;

L.erythra y L.rubrilucens aparecen rojas;

L.pneumophila verde mate, a menudo teñido de amarillo .

El usuario final es el único responsable de la destrucción de los organismos que se hayan multiplicado, según la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.

Si desea más información sobre nuestro  LEGIONELLA GVPC, BCYE (con Fe y Cys), BCYE-Cys, (AGAR BASE) rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto.

O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

https://www.microkit.es/fichas/LEGIONELLA-GVPC-y-BCYE-AGAR-BASE.pdf

https://www.microkit.es/monograficos/9-Legionella-monograf–a.pdf