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informacion, novedades, nuevos métodos relacionados con los medios de cultivo, Microbiología de alimentos, aguas, medicamentos, cosméticos y ambiente:

BACILLUS ANTHRACIS SELECTIVE AGAR

Bacillus anthracis selective Agar

o Antrax Agar es el medio selectivo para aislar este patógeno y sus esporas, selectivo para la detección y recuento de Bacillus anthracis en todo tipo de muestras (lana, tierra, superficies, aire, heridas…).

COMPOSICIÓN

  • Infusión de corazón           17,5 g
  • Peptona pancreát.gelatina   10,0 g
  • Triptosa                               10,0 g
  • Extracto de levadura             1,5 g
  • Cloruro sódico                     5,0 g
  • Glucosa                               10,0 g
  • Agar-Agar                           14,0 g

pH final: 7,3 ± 0,2

En suplemento pinchable aparte:

  • Factor Lz                              40 mg
  • Polimixina B                       30.000 UI

 

PREPARACIÓN

Disolver 68 gramos en 1 litro de agua  bidestilada. Agitar  calentando hasta ebullición.  Autoclavar a 121° C durante 15 minutos. El color final del medio es crema. No sobrecalentar. Enfriar a 47°C y añadir asépticamente 20 ml del suplemento selectivo para Bacillus anthracis SMT008 (Polimixina B + Factor Lz). Agitar hasta su completa solidificación para evitar grumos.

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO. AGITE EL BOTE ANTES DE USAR. MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO.

DESHIDRATADO CODIGO: DMT018

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO:

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…).

DESHIDRATADO: Polvo grueso, Crema           PREPARADO: Estéril, Crema

CONTROL DE CRECIMIENTO 48-72 h a 37°C aproximadamente, o bien 3-5 días a temperatura ambiente (21-28°C aproximadamente):

Bacillus anthracis MKTA 23445, Excelente.

Staphylococcus aureus MKTA 6538P, Crece, pero tras 48 horas, colonias redondas y discretas.

Pseudomonas aeruginosa MKTA 27853, Inhibido.

Escherichia coli MKTA 25922, Inhibido.

 

PRESENTACIÓN:

MEDIO DESHIDRATADO. PLAQUITAS HERMÉTICAS PREPARADAS (PLAQUIS ®).

SIEMBRA E INTERPRETACIÓN

Para evitar interferencias o inhibición del crecimiento por parte de ciertos componentes de la muestra (residuos de desinfectantes u otros inhibidores, flora interferente…), para lana, tierra, sobres, etc. es preferible realizar la suspensión inicial (1:10) en LPT Neutralizing Broth (deshidratado DMT217, frascos 90 ml RPL054) y dejar actuar 20-30 minutos.

Sembrar en superficie 0,1-0,3 ml de la suspensión inicial de la muestra y su serie de diluciones decimales.

Si se trata de controlar superficies, aplicar la placa de contacto durante 10 segundos, apretando sin restregar.

Si se analiza el aire, tomar 5 muestras de 200 litros cada una con muestreador de impacto con placa de contacto (MICROFLOW VAQ055) a fin de minimizar el efecto desecación y el efecto rebote, respectivamente.

Incubar 8-24 horas a 35 °C aprox.

B.anthracis crece con colonias grandes, a veces lobuladas.

Al microscopio se ven cadenas cortas de 2-4 bacilos Gram positivos con espora redonda, central, que no deforma la pared celular. La esporulación se ve inhibida con altas concentraciones de CO2, como las que hay en el interior del huésped.

Las cepas patógenas poseen una gran cápsula que se evidencia al teñir con tinta india.

NOTA:

Bacillus anthracis fué la primera bacteria detectada como patógena, en 1877 por Robert Kock.

La palabra antrax viene del griego, carbón, a causa de la lesión negra que provoca en la piel del ganado y el hombre.

La enfermedad se llama carbunco y es una zoonosis transmitida por herbívoros infectados a humanos expuestos, como los pastores, veterinarios…

Es frecuente en suelos alcalinos y de ahi pasa a la lana, piensos, etc.

Existen al menos 89 cepas conocidas, algunas altamente virulentas (como las empleadas en la guerra bacteriológica y terrorismo) y otras benignas, las cuales siempre carecen de cápsula.

La virulencia depende de la posesión de ciertos genes que producen un polipéptido capsular antifagocitario (substancia P, generada por el plásmido pX02) y una exotoxina (generada por el plásmido pX01).

Su diferenciación bioquímica de otras especies (B.cereus, B.coagulans, B.mycoides y B.thuringiensis) es imposible (todas ellas pueden crecer en agar anaerobio, a pH 5,7 y no acidifican la arabinosa) por lo que es probable que se trate de distintas formas de una misma especie.

Si desea más información sobre nuestros MEDIO BACILLUS ANTHRACIS SELECTIVE  AGAR  rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto .

O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

https://www.microkit.es/fichas/BACILLUS-ANTHRACIS-SELECTIVE-AGAR.pdf

https://www.microkit.es/monograficos/10-Bacillus-monograf–a.pdf

 

CETRIMIDE RAPID CROMOGENIC AGAR (BASE)

RAPID CETRIMIDE RAPID CROMOGENIC AGAR (BASE)

Medio cromogénico selectivo para la detección rápida de Pseudomonas aeruginosa
Basado en el medio farmacopéico USP “Medium N”
Detección en las primeras 18–24 horas en productos farmacéuticos y cosméticos (USP, ISO 22717)

C.N. CROMOG.

COMPOSICIÓN (por litro)

Componente Cantidad
Peptona pancreática de gelatina 20,0 g
Cetrimida 0,3 g
Cloruro magnésico 1,4 g
Sulfato dipotásico 10,0 g
Mezcla cromogénica c.s.
Agar-agar 13,6 g

pH final: 7,2 ± 0,2


PREPARACIÓN

  1. Disolver 44,5 g del medio en 1 litro de agua destilada.

  2. Añadir 10 ml de glicerol.

  3. Calentar hasta ebullición, agitando constantemente hasta la disolución completa.

  4. Autoclavar a 121 ºC durante 15 minutos. No sobrecalentar.

  5. El medio final es blanquecino, pudiendo presentar tonalidades rosadas tras la autoclave que desaparecen tras la oxigenación al vertirlo en placas.

Para uso exclusivo en laboratorio.
Agite el bote antes de usar.
Mantenga el bote bien cerrado, en lugar seco, fresco y oscuro.

Código del medio deshidratado: DMT550


CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

El control se realiza en nuestro laboratorio. Se recomienda repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones de almacenamiento o manipulación (por ejemplo, más de 3 meses sin uso, tras desinfección, exposición a altas temperaturas o cambios de aspecto).

Aspecto del medio:

  • Deshidratado: Polvo grueso, blanco.

  • Preparado: Medio estéril, blanco; puede verse rosado cuando está caliente o antes de oxigenarse en placa.


CONTROL DE CRECIMIENTO (24–48 h a 37 °C o 21–28 °C)

Microorganismo Resultado esperado Observaciones
Pseudomonas aeruginosa MKTA 27853 Correcto Colonias rojas en 24 h con fluorescencia verde-amarillenta a las 48 h. Recuento 92–99 % respecto a TSA estandarizado*, medio selectivo.
Burkholderia cepacia MKTA 25416 Correcto Colonias rojas sin fluorescencia. Recuento ≈72 % respecto a TSA estandarizado*, medio selectivo.
Staphylococcus aureus MKTA 6538P Inhibido Sin crecimiento.
Escherichia coli MKTA 25922 Inhibido Sin crecimiento.

*TSA (Tryptic Soy Agar) estandarizado con recuperación ≥ 92–125 % respecto a cepas cuantitativas trazables a la cepa tipo.


NOTA TÉCNICA

Medio selectivo para Pseudomonas aeruginosa conforme a la Farmacopea USP XXI.
El cetil trimetil amonio bromuro (cetrimida), un compuesto de amonio cuaternario, inhibe la mayoría de la flora acompañante.

Este medio estimula la producción de fluoresceína y piocianina, y la mezcla cromogénica termoestabilizada permite una detección precoz en las primeras 24 horas, observándose pequeñas colonias rojas, que a las 48 horas presentan mayor tamaño y fluorescencia.


SIEMBRA E INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS

  1. Verter 20 ml de medio en cada placa de Petri estéril.

  2. Dejar enfriar; el medio oxigenado recupera su color blanquecino.

  3. Sembrar en superficie.

    • En el caso de placas de contacto, aplicar suavemente sobre la superficie sin mover.

  4. Incubar a 37 ºC durante 18–48 horas.

Resultados esperados:

  • Pseudomonas aeruginosa forma colonias rojas rodeadas de fluorescencia verde-amarillenta, especialmente visible bajo luz UV de 366 nm (linterna MICROKIT VMT050).

  • Confirmar con:

    • Tiras de citocromo-oxidasa (KOT050) — usar exclusivamente asa de platino (VCS147).

    • Galerías de identificación bioquímica MICROKIT (ref. 245000).


PRESENTACIÓN

Medio deshidratado. Plaquis herméticas.


INFORMACIÓN ADICIONAL

Ficha técnica RAPID CETRIMIDE CROMOGENIC AGAR (PDF)
Versión CN RAPID para aguas envasadas
Correo: microkit@microkit.es


Prepárese para más de una sorpresa informativa cuando vea nuestro video sobre los medios Cromogénicos: https://www.youtube.com/watch?v=-JVPVWxY8ZE&t=271s

AGUA DE MAR

AGUA DE MAR, SALES PURAS DE AGUA DE MAR DESECADA PARA LA PREPARACIÓN DE MEDIOS DE CULTIVO PARA MICROORGANISMOS MARINOS Y PARA PREPARAR RINGER CON OLIGOELEMENTOS (MAXIMA RECUPERACIÓN DE TODO TIPO DE MICROORGANISMOS)

Sales para preparar agua marina.AguadeMar

PREPARACIÓN
Disolver 37-42 g de medio en 1 litro de agua destilada. (Según salinidad deseada del mar en cuestión, mayor en el Mediterráneo -42 g/L- que en el Atlántico -37 g/L-) Calentar hasta ebullición, agitando hasta la completa disolución. Autoclavar a 121 ºC durante 15′.

Si lo que se desea es preparar un Ringer completo con todo tipo de oligoelementos, disolver 9 g/L

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO

MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO. AGITE EL BOTE ANTES DE USAR.

DESHIDRATADO CODIGO: DMT149

CONTROL DE CALIDAD
Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…).

DESHIDRATADO: Sal fina, Blanco. La eventual hidratación ambiental puede convertir el polvo fino en agregados más gruesos, sin que ello tenga importancia alguna en sus propiedades.

PREPARADO: Estéril, Incoloro

CONTROL DE CRECIMIENTO: Sustitutivo del agua de mar especialmente indicado para la microbiología del petróleo y productos marinos NO SE REALIZA CONTROL MICROBIOLOGICO.

PRESENTACION: MEDIO DESHIDRATADO

NOTA: Se utiliza como aditivo del agua bidestilada para medios de cultivo (PCA, Vibrio TCBS…) cuando se desean realizar estudios con microorganismos marinos. También es muy útil para rellenar acuarios marinos en lugares lejanos a la costa, o incluso cercanos a ella, cuando se busca agua sin patógenos.

El usuario es el único responsable de la eliminación de los microorganismos según la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.

Si desea más información sobre nuestro AGUA DE MAR no dude en contactar con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es, o  en nuestro telefono 91-897 46 16.

SLANETZ-BARTLEY AGAR BASE (SIN TTC)

Enterococos fecales SLANETZ-BARTLEY AGAR , medio ISO 7899 para detección y recuento de Enterococos fecales en aguas

Selección de enterococos fecales  por filtración de membrana (ISO 7899-2:2001, UNE 77-076:1991, BOE 45 de 21/2/2003 de aguas de consumo humano, BOE 259 de 29/X/2003 de aguas de bebida envasadas).

COMPOSICIÓN

 

  • Triptosa                        20,00 g
  • Extracto de levadura              5,00 g     SLANETZ SIN ttc
  • Glucosa                         2,00 g
  • Hidrog.Fosfato di-K              4,00 g
  • Azida sódica (Na N3)              0,40 g
  • Agar-agar                      12,00 g
  • (Fórmula por litro)
  • pH final: 7,2 ± 0,2

 PREPARACIÓN

Disolver 43.5 g de medio en 1 litro de agua bidestilada. Calentar, agitando, hasta ebullición para su total homogeneización y dejar 5 minutos más en agua hirviendo. Evitar el excesivo calentamiento y enfriar rápidamente. No autoclavar. Una vez enfriado a 50-60°C, añadir 10 ml de una solución de TTC al 1% (MICROKIT SDA018). El color final del medio es incoloro-paja. Este medio sustituye al Slanetz-Bartley completo, sin tener que preocuparse de los eventuales sobrecalentamientos que vuelven de color rosa a éste.

 PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO. AGITE EL BOTE ANTES DE USAR. MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO.

DESHIDRATADO CODIGO: DMT117

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

DESHIDRATADO: Polvo fino, Amarillo     PREPARADO: Estéril, Crema

CONTROL DE CRECIMIENTO CUANTITATIVO 48 h a 37°C aprox.:

E.coli MKTA 25922, Inhibido.

Bacillus subtilisMKTA 6633, Inhibido.

Enterococcus duransMKTA 10541, Bueno, Colonias rosas-granates, pequeñas. Con respecto a TSA estandarizado*, recuento 120-133%, pero de forma selectiva.

Enterococcus faecalis MKTA 29212, Bueno, Colonias rosas-granates, pequeñas. Con respecto a PCA estandarizado*, recuento 111-270%, pero de forma selectiva.

* El que cumple con recuperación superior al 92-125% con respecto a cepas cuantitativas trazables a la cepa tipo. Incertidumbres detectadas entre todos los lotes a lo largo de un año (la mayoría de la incertidumbre se debe a la cepa y a la proporción de cepas acompañantes inoculadas, no al medio).

 PRESENTACIÓN: MEDIO DESHIDRATADO. NUEVO: PLAQUIS ® PREPARADAS HERMÉTICAS PARA M.F. con TTC: Ref. PPL909

En caldo preparado con TTC: Viales 2 ml, Viales Pinchables 100 ml.

Medio selectivo indicado para aislamiento y recuento de estreptococos fecales en agua y en alimentos, con la técnica de filtración de membrana o con el método de siembra en superficie. 

SIEMBRA.

Sembrar en superficie 0.1 ml de muestra y extender con asa de Digralsky, o bien la membrana filtrada. Incubar a 36 ºC aproximadamente, 44 horas (para mejor selectividad, a 44-45 ºC aproximadamente, preferiblemente tras 4h a 36°C aproximadamente). 

INTERPRETACIÓN.

 Las colonias rojas, rosas o castañas, elevadas y diminutas se consideran presuntivas de estreptococos fecales del subgrupo de los Enterococos. El color rojizo es menos intenso cuanto más viejo es el medio. Deben confirmarse resembrándolas en Agar Bilis Esculina Azida (MICROKIT DMT160), donde crecen con halo tostado-negro en sólo 2 horas adicionales. Resembrando la membrana, se confirma el 100% de las colonias. Tambien es diferencial la prueba rápida del PYR (KWD103).

Si desea más información sobre nuestro MEDIO SLANETZ BARTLEY BASE,  rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

https://www.microkit.es/fichas/SLANETZ-BARTLEY-AGAR-BASE-SIN-TTC.pdf

Si necesita mayor rapidez, consulte estos otros dos medios para siembra directa en ellos:

https://www.microkit.es/fichas/BILE-ESCULIN-AZIDE-AGAR.pdf

https://www.microkit.es/fichas/CROMOKIT-ENTEROCOCCUS-AGAR.pdf

https://www.microkit.es/monograficos/16-Enterococos-fecales-monograf–a.pdf

 

R2A CROMOGENIC AGAR

R2A CROMOGENIC AGAR (A.P.H.A, Pharmacopea medio S, mejorado) permite obtener recuentos muy superiores de aerobios oligotrofos en aguas

Recuento total en aguas potables, con máxima recuperación , al continuar las células en un medio tan oligotrófico como la muestra de agua. Recomendado para recuento en aguas cloradas y farmacéuticas. La adición de un cromógeno termoestable permite el contraste de las colonias, rojas, con el color del medio con el de la membrana.

COMPOSICIÓN.

  • Extracto de levadura       0,50 g         r2 cromog
  • Extracto de carne            0,50 g
  • Hidrolizado de caseina    0,50 g
  • Dextrosa-Glucosa           0,50 g
  • Almidón soluble              0,50 g
  • Di-K Hidrógeno Fosfato0,30 g
  • Sulfato de Magnesio       0,024 g
  • Piruvato de Sodio           0,30 g
  • Mezcla cromogénica        c.s.
  • Agar-Agar                       15,00 g
  • (Fórmula por litro)
  • pH final: 7,2 ± 0,2

 

PREPARACIÓN

Disolver 19 gramos de medio en 1 litro de agua bidestilada .

Agitar, calentando hasta ebullición,hasta la total homogeneización.

Autoclavar a 121 ºC durante 15 minutos. No sobrecalentar y enfriar rápidamente para evitar que el medio vire a rosa, lo que haría contrastar peor a las colonias rojas.

MANTENER EL BOTE BIEN CERRADO, EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO.   AGITE EL BOTE ANTES DE USAR.

PARA USO EN LABORATORIO.

DESHIDRATADO CODIGO: DMT545

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

DESHIDRATADO: Polvo grueso, Beige.

PREPARADO: Estéril, Blanquecino.

CONTROL DE CRECIMIENTO CUANTITATIVO 72 h a 37°C aproximadamente (o bien 5 días a Tª ambiente 21-28°C aproximadamente):

Escherichia coliMKTA 25922, Correcto, colonias rojas. Con respecto a PCA estandarizado*, recuento 132-161%

Enterococcus faecalisMKTA 29212, Correcto, colonias rojas. Con respecto a PCA estandarizado*, recuento 166-177 %

Pseudomonas aeruginosaMKTA 9027, Correcto, colonias rojas. Con respecto a PCA estandarizado*, recuento 85-143%

Staphylococcus aureus MKTA 6538P, Correcto, colonias rojas. Con respecto a PCA estandarizado*, recuento 111-133%

Aeromonas hydrophilaMKTA 49141, Correcto, colonias rojas. Con respecto a PCA estandarizado*, recuento >100%.

* El que cumple con recuperación superior al 92-125% con respecto a cepas cuantitativas trazables a la cepa tipo. Incertidumbres detectadas entre todos los lotes a lo largo de un año (la mayoría de la incertidumbre se debe a la cepa y a la proporción de cepas acompañantes inoculadas, no al medio).

PRESENTACIÓN: MEDIO DESHIDRATADO, FRASCOS PREPARADOS, PLAQUITAS HERMETICAS MF.

MODO DE EMPLEO E INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS.

Inocular 1 ml en profundidad o mejor 0,1 ml en superficie, o aún mejor una membrana en superficie por la que se hayan filtrado 1-250 ml de muestra. Duplicar la muestra. Incubar una placa 5-7 días a 22 ºC aprox. para mesófilos y la otra 3 días a 30-37 ºC aprox. para termófilos. Contar todas las colonias, que serán rojas y muchas más que en medios normales como PCA, TSA, Nutrient Agar, LPT Neutralizing Agar… (Sanchís, 9/99, Interlaboratorio sobre la recuperación de medios nutritivos para recuento total en aguas, XVII Congreso S.E.M.). La flora termófila se asocia a procedencia humana. La mesófila al proceso de depuración. Este medio no es adecuado para recuento en alimentos, superficies o aire, sólo es mucho más sensible en aguas puras.

Si desea más información sobre nuestro R2 CROMOGENIC AGAR, rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

Mejora del R2A para el recuento de aerobios en aguas oligotróficas

https://www.microkit.es/fichas/CROMOKIT-R2-AGAR.pdf

Prepárese para más de una sorpresa informativa cuando vea nuestro video sobre los medios Cromogénicos: https://www.youtube.com/watch?v=-JVPVWxY8ZE&t=271s

CEPAS CUANTITATIVAS

CEPAS EN LENTÍCULAS CUANTITATIVAS Y ESTABLES, para sus controles de calidad de medios, sus validaciones, sus Challenge Test, etc.

Con las cepas cuantitativas en lentículas estabilizadas de MICROKIT, obtiene grandes ventajas:

1-Nomenclatura de la colección universal WDCM (ISO 11133-2)

2-Caducidad de 2 años desde fabricación en el 98% de cepas

3-Gama completa excepto las que se resisten a este formato (Legionella, Campylobacter y Vibrio)

4-Son tan estables, que viajan a temperatura ambiente y al exportarlas resisten retenciones aduaneras de hasta una semana a temperatura ambiente en países tropicales, sin afectar a su viabilidad ni a sus recuentos

5-La incertidumbre se dispara mucho mas en cepas fabricadas a concentración baja, que en las diluciones que pueda Ud. hacer de cepas a concentraciones más altas

6-Las concentraciones medias y altas permiten darle a una sola lentícula muchos más usos  (en el mismo día) que las concentraciones bajas. Y son las únicas válidas en ciertas validaciones y en el Challenge Test

7-Por cada tubo que nos compra con 10 lentículas de una cepa, le regalamos 2 adicionales para sus controles de recepción (ofrecemos docenas a precio de decenas)

8-El sobre Faraday de aluminio protege a las cepas de radiaciones durante el transporte y durante su almacenamiento

9-Hemos minimizado el tamaño de su presentación (la mitad que otras marcas) para que ahorre en el espacio más costoso del laboratorio: el congelador

10-Únicas lentículas de cepas cuantitativas fabricadas en España, con inmenso stock para entrega inmediata

Solicite el listado actualizado en microkit@microkit,es, ya que se cambia cada mes

Diapositiva1Diapositiva2Diapositiva3Diapositiva4Diapositiva5Si desea más información sobre nuestro LISTADO DE CEPAS no dude en contactar con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es, o por teléfono en nuestro telefono 91-897 46 16.

Consulte el folleto:

https://www.microkit.es/pdf/CEPAS-CUANTITATIVAS.pdf

Y el video:

https://youtu.be/4WJ8FQl6GIE

 

M-IDENT NEOGRAM

Neogram provoca la filamentación inmediata de las colonias de los Gram negativos, por lo que ahorra tiempo y trabajo en la pre-identificación de las colonias

GRAM INMEDIATO NEOGRAM FILAMENTA TODA COLONIA GRAM NEGATIVA Y NO FILAMENTA TODA COLONIA GRAM POSITIVA, EN SEGUNDOS

M-IDENT NEOGRAM es un test rápido para la diferenciación inmediata de Gram en colonias bacterianas in vitro.

 

M-IDENT NEOGRAM altera la pared de las bacterias Gram Negativas, transformando instantáneamente la colonia bacteriana en un filamento muy parecido a la fibrina, bien visible a simple vista.

Cuando el aspecto de la colonia no permite estar seguro del grupo bacteriano al que pertenece, es necesario realizar la clásica y larga tinción de Gram.

NEOGRAM permite conocer en 20 escasos segundos la diferenciación de Gram de las colonias aisladas en los medios de cultivo. La correlación con la tinción de Gram es total.

El ahorro de tiempo es notorio en la fase previa a la elección de las galerías o pruebas a utilizar en la identificación.

Si es necesario concretar la morfología celular, NEOGRAM puede complementarse con un examen microscópico.

La formación de un filamento elástico que une la gota de NEOGRAM o el palillo con la colonia es indicadora de bacteria Gram Negativa.

La no formación de dicho filamento es indicadora de bacteria Gram Positiva. En este caso, es recomendable repetir la prueba para confirmar.

El reactivo destruye la colonia, por lo que si se requieren pruebas posteriores, hay que haberla repicado antes.

Precaución: corrosivo, no tocar ni inhalar. Contiene bases fuertes.

nEOGRAM

GRAM INMEDIATO NEOGRAM FILAMENTA TODA COLONIA GRAM NEGATIVA Y NO FILAMENTA TODA COLONIA GRAM POSITIVA, EN SEGUNDOS

https://www.microkit.es/fichas/NEOGRAM-M-IDENT-REACTIVO-GRAM-KIT.pdf

 

Tambien en video:

https://youtu.be/knxE5wH-kCI

Para más información sobre nuestros kit M-IDENT NEOGRAM,  no dude en ponerse en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16. 

 

LPT NEUTRALIZING BROTH INCOLORO

LPT Neutralizing Broth: La Solución Definitiva para la Neutralización de Conservantes

LPT Neutralizing Broth (incoloro) es una modificación avanzada del medio Letheen/Eugon ISO. Está diseñado para ofrecer la máxima recuperación de microorganismos en muestras que contienen componentes que interfieren con la flora, superando las limitaciones de los medios tradicionales.

Propósito Clave: Neutralización y Dispersión

LPT Broth es el medio de elección para la solución madre, diluciones y pre-enriquecimiento en matrices problemáticas.

Funcionalidad Beneficio Específico
Neutralización Universal Inactiva TODO TIPO de conservantes modernos y residuos desinfectantes (incluidos los que inactivan los medios clásicos con Lecitina/Tween) y metabolitos microbianos.
Emulsión de Grasas Emulsiona eficientemente los productos grasos, asegurando una buena dispersión del inóculo.
Aplicación Ideal Cosméticos, desinfectantes, y alimentos grasos y/o con conservantes (naturales o añadidos).

El Poder de la Neutralización Total

LPT Neutralizing Broth garantiza que la viabilidad del microorganismo no se vea comprometida por los compuestos presentes en la muestra. Neutraliza una amplia gama de agentes, incluyendo:

  • Derivados de Amonio Cuaternario
  • Conservantes Modernos: Parabenos e Isotiazolinona
  • Compuestos Fenólicos: Fenoxietanol, Feniletanol, Anilidos, etc.
  • Agentes Oxidantes: Peróxidos, Halógenos (Cloro, Iodo, etc.) y Lejía.
  • Aldehídos: Formaldehído, Glutaraldehído y compuestos liberadores de formol.
  • Otros: Imidazoles, Clohexidina, Biguanida, y Sales Metálicas (Cu, Zn, Hg).

Además, inactiva los metabolitos generados por la flora acompañante, que en otros caldos pueden enmascarar o impedir el crecimiento del organismo diana.

Rendimiento Comprobado y Validado

La eficacia de LPT Broth no es solo teórica; está respaldada por estudios y comparaciones interlaboratoriales:

  • Recuperación General: En un estudio intercolaborativo (SANCHIS, 1998), LPT Broth fue el medio que más flora total recuperó entre todos los caldos generales evaluados.
  • Recuperación de Patógenos: Fue el segundo medio que más patógenos recuperó (solo por detrás de BHI Broth).
  • Validación Externa: Demuestra ser el mejor medio inicial para recuentos (diluciones) y para la búsqueda de patógenos (revitalización/pre-enriquecimiento) en los servicios intercomparativos SEILAPARFUM y SEILALIMENTOS.

Documentación:

Puede descargar la validación actualizada para microbiología cosmética en la web de www.microkit.es (pestaña publicaciones y validaciones

En este link tiene el folleto actualizado, incluida su validación y un estudio de máximo interés sobre los tiempos ideales de incubación de los enriquecimientos para aislamiento de patógenos:

https://www.microkit.es/fichas/LPT-NEUTRALIZINGBROTH-INCOLORO.pdf

ValidadoLPT Neutralizing

Izda: Sin inocular.

Dcha: Tubo turbio, con crecimiento a pesar de los conservantes

 Para más información sobre nuestros medios de cultivo y kits,  no dude en ponerse en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16.

Ver tambien el LPT Neutralizing Broth Purple, basado en D/E Neutralizing Broth ISO pero tambien actualizado para neutralizar todos los conservantes que se usan en la actualidad en cosmética:

https://www.microkit.es/fichas/LPT-NEUTRALIZING-BROTH-PURPLE.pdf

Olvide los caldos obsoletos ISO (Eugon, Letheen, D/E…) y use los caldos neutralizantes validados del Siglo XXI

M-IDENT®-Bacillus cereus

KIT DE CONFIRMACIÓN DE COLONIAS DE PRESUNTOS BACILLUS CEREUS

Confirmación Bacillus cereus en KIT, para alimentos, según ISO 7932. Incluye todo lo necesario para la confirmación de colonias sospechosas: M-IDENT®-Bacillus cereus

m.ident bacillus

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO MANTENGA LA CAJA CERRADA, EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO.

CODIGO: KMT009

VENTAJA: Su extremadamente larga caducidad, de 1 año asegurado.

PRESENTACION

KIT DE 6 TEST para la confirmación de colonias sospechosas de Bacillus cereus:

– 6 tubos sólidos de color violeta de Agar DTA-Polimixina (TPL092)

– 6 tubos líquidos incoloros de MRVP (TPL025).

– 1 kit de reactivos de Voges Proskauer 1 + 2 de 5 ml cada uno, suficiente para las 6 pruebas (SRH083).

– 6 tubos semisólidos e incoloros de Medio Nitratos-Movilidad (TPL079).

– 1 kit de Reactivos de Nitratos A + B de 5 ml cada uno, suficiente para las 6 pruebas (SMN001).

EL KIT NO INCLUYE:

  • Cepas de reserva, de trabajo o cuantitativas para validar los reactivos una vez llegados a fábrica o tras almacenamientos prolongados o inadecuados.
  • Participación en servicios intercomparativos como SEILALIMENTOS para validar los procedimientos y los operarios

CONTROL DE CALIDAD DEL KIT

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

TUBOS PREPARADOS DTA-polimixin Agar: Estéril, violeta-púrpura, sólido, inclinado.

Y TUBOS PREPARADOS MRVP Broth: Estéril, líquido, incoloro-paja.

TUBOS PREPARADOS Nitratos-Movilidad: Estéril, incoloro, semisólido.

KIT VP: NO estéril, goteros 1 + 2 con 5 ml cada uno. IRRITANTE.

KIT Nitratos: NO estéril, goteros 1 + 2 con 5 ml cada uno. IRRITANTE.

CONTROL DE CRECIMIENTO a 30°C durante 24 horas, en aerobiosis:

En el tubo violeta de DTA-polimixina, Bacillus cereus MKTA10876 crece con viraje del medio a amarillo-crema.

Y en el tubo líquido incoloro de MRVP Broth, Bacillus cereus MKTA10876 crece y tras añadir los reactivos VP vira a rosa.

En el tubo crema de Buffered Nitrate-Motility Medium, Bacillus cereus MKTA10876 crece con difusión/movilidad y reduce el nitrato a nitrito con viraje a rojo tras añadir los reactivos de Nitratos.

MODO DE EMPLEO E INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS

Inocular una porción de colonia sospechosa pura, procedente, de B.cereus Agar Mossel, en estría en el tubo violeta de DTA-Polimixina; por dilución en el tubo de caldo MRVP y por picadura en el tubo semisólido crema de Buffered Nitrate-Motility Medium. Incubar los tres tubos a 30+2º C durante 21+3 horas, en condiciones aerobias. Observar el viraje a amarillo del DTA, el viraje a rosa de MRVP 1 hora después de añadir 0,5 ml de los reactivos VP, el viraje a rojo de los Nitratos 15 minutos después de añadir 0,5 ml de los reactivos de Nitratos, y la movilidad, positiva si hay crecimiento difuso desde la línea de picadura.

Bacillus cereus, según Norma ISO 7932:1998 adaptada, es toda colonia sospechosa procedente de Agar Mossel, que crece en DTA-polimixina con viraje del medio violeta a amarillo, que provoca test positivo de VP en MRVP (viraje a rosa),  que provoca test positivo de Nitratos en el medio de Nitratos-Movilidad  (viraje a rojo) y que crece difuso, por movilidad, a partir de la picadura en el medio de Nitratos-Movilidad.

NOTA:

La versión más moderna de esta Norma no habla de Bacillus cereus, sino de presuntos B.cereus, por lo que no la aplicamos.

 

Si desea más información sobre nuestros M-IDENT®-Bacillus cereus, rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

https://www.microkit.es/fichas/Bacillus-cereus-M-IDENT-KIT-UE-2-2019-alimentos.pdf

https://www.microkit.es/monograficos/10-Bacillus-monograf–a.pdf

 

AGAR SANGRE DE CORDERO

 

Agar Sangre de Cordero (Base Columbia)

agar sangre de cordero

Descripción General y Aplicaciones Críticas

El Agar Sangre de Cordero con base Columbia es un medio de cultivo altamente nutritivo, diseñado para la detección de la actividad hemolítica en una amplia variedad de microorganismos patógenos.

Su fórmula enriquecida permite el crecimiento de especies tanto exigentes como no exigentes, superando la capacidad del agar sangre con base clásica. Esto lo convierte en el medio de elección en entornos donde se requiere el aislamiento de microorganismos con requerimientos nutricionales complejos.

Aplicaciones Fundamentales:

  • Detección de Hemólisis: Visualización precisa de los halos de hemólisis $(\alpha, \beta, \gamma)$ para la identificación de especies bacterianas.
  • Aislamiento y Confirmación: Ideal para patógenos clave como Listeria monocytogenes, Clostridium perfringens, Bacillus cereus, y Legionella pneumophila.
  • Entornos Clínicos: Su riqueza nutritiva lo hace indispensable para el aislamiento de microorganismos en ambientes frecuentados por personas enfermas o inmunodeprimidas (hospitales, quirófanos, UVIs).

 

Composición de Calidad Superior al Agar Sangre típico

La formulación Columbia se caracteriza por la variedad de peptonas que ofrecen un suministro óptimo de nitrógeno, aminoácidos y péptidos de cadena larga, garantizando un crecimiento robusto.

El medio una vez preparado incluye 5 mL de sangre desfibrinada de cordero por cada 100 mL, para observar claramente las reacciones de hemólisis.

Componente Cantidad por Litro (g)
Peptona de Caseína 10 g
Peptona de Carne 5 g
Extracto de Levadura 3 g
Extracto de Corazón 3 g
Cloruro Sódico 5 g
Almidón de Maíz 1 g
Agar Bacteriológico 15 g
Sangre de Cordero 50 mL

Fórmula por Litro: pH 7.2 +/- 0.2


 

Control de Calidad y Crecimiento

Garantizamos un estricto control de calidad en nuestras instalaciones. Le recomendamos encarecidamente repetir estas pruebas si observa cambios en las condiciones de almacenamiento (ej. más de 3 meses sin usar, fluctuaciones de temperatura).

  • Estado Deshidratado: Polvo, color Beige.
  • Estado Preparado (Placa): Estéril, color Rojo Cereza por la sangre.

Control de Crecimiento Cuantitativo (48 horas a $\mathbf{37 °C}$):

Cepa de Referencia (MKTA) Resultado de Crecimiento Actividad Hemolítica
Clostridium sporogenes 11437 Crecimiento Correcto (crecimiento > 50% con inoculación < 100 ufc)
Streptococcus viridans Crecimiento Excelente alpha-Hemolítico
Listeria monocytogenes 7644 Buen Crecimiento beta-Hemolítico
Enterococcus faecalis 29212 Buen Crecimiento gamma-Hemolítico (No hemolítico)

 

Siembra e Interpretación de Resultados

Para obtener resultados óptimos, asegúrese de que las placas hayan alcanzado la temperatura ambiente y presenten una superficie húmeda, pero sin condensación excesiva.

 

1. Métodos de Siembra

  • Análisis de Muestras: ESTRÍE la muestra diluida o enriquecida en la superficie de la placa hasta obtener colonias aisladas por agotamiento.
  • Análisis Cualitativos de Aire: Deje las placas abiertas en los puntos de muestreo críticos durante 10 a 30 minutos.
  • Análisis Cuantitativos de Aire (Recomendación profesional): Utilice un muestreador tipo Microflow con cabezal para placas Petri de $\text{90 mm}$.
    • Mantenga el flujo de aire perpendicular a la superficie del medio.
    • Se recomienda analizar $\text{200 L}$ de aire a un caudal de $\text{0.5 L/seg}$ para máxima recuperación.
    • Cálculo: Multiplique el recuento de colonias en la placa por 5 para obtener el recuento total por metro cúbico. Para ambientes limpios, sume los resultados de 5 muestras de $\text{200 L}$ para obtener el recuento por metro cúbico.

 

2. Incubación y Lectura

  • Condiciones: La incubación estándar es en atmósfera aerobia a la temperatura óptima de crecimiento del microorganismo buscado o, por defecto, a $\text{37 °C}$ (aprox.).
    • Nota: Ciertas especies, como Campylobacter spp., requieren una atmósfera enriquecida con 5-10% de $\text{CO}_2$.
  • Tiempos: La lectura debe realizarse entre las $\mathbf{18}$ y $\mathbf{48}$ horas. Las reacciones de hemólisis se aprecian mejor entre las $\mathbf{18}$ y $\mathbf{24}$ horas.

Es fundamental que las reacciones hemolíticas y el aspecto de las colonias (ej. umbilicación en neumococo) se ajusten a las descripciones típicas para una identificación certera.


 

Información de Producto

  • Presentación: Dada la inestabilidad de la sangre, este medio completo solo está disponible en placa preparada.
  • Para Uso Exclusivo en Laboratorio.
  • Conservación: Las placas preparadas deben conservarse en refrigeración (entre 4 y 15 °C y manipularse con cuidado para evitar choques térmicos. Respete rigurosamente la fecha de caducidad.
  • Código de Producto: PPLS01
  • Medio Deshidratado (Base Columbia): Consulte la referencia DMT308.

 

CONSULTAS

Para consultas y precios actualizados sobre AGAR SANGRE DE CORDERO o cualquiera de nuestros productos no dude en ponerse en contacto con nosotros a través del teléfono 91-897 46 16 o el correo electrónico microkit@microkit.es.

https://www.microkit.es/fichas/BLOOD-AGAR-BASE.pd

Tambien en placas preparadas con la sangre ya añadida:

https://www.microkit.es/fichas/BLOOD-AGAR-SHEEP-PREPARADO.pdf