Archivo de la categoría: medios de cultivo

informacion, novedades, nuevos métodos relacionados con los medios de cultivo, Microbiología de alimentos, aguas, medicamentos, cosméticos y ambiente:

CROMOKIT® Medios de cultivo cromogénicos

MEDIOS CROMOGÉNICOS MICROKIT: CROMOKIT. DESDE QUE CREAMOS EL PRIMERO (1995), NO HEMOS PARADO, AHORA OFRECEMOS 30 AGARES Y 11 CALDOS EN 2023, Y SEGUIMOS INVESTIGANDO

CROMOKIT® Medios de cultivo cromogénicos

RAPIDTEST Broth Diferentes tonos de viraje en función de la carga microbiana total y el tiempo de incubación

RAPIDTEST Broth
Diferentes tonos de viraje en función de la carga microbiana total y el tiempo de incubación

MUGPLUS Cfs.Agar E.coli: colonias azul-violetas, demás coliformes: colonias rosas

MUGPLUS Cfs.Agar
E.coli: colonias azul-violetas, demás coliformes: colonias rosas

MCC Broth Coliformes: Caldo azul turquesa. E.coli: Fluorescente bajo luz UVA de 366 nm e indol (anillo rojo) positivo

MCC Broth
Coliformes: Caldo azul turquesa. E.coli: Fluorescente bajo luz UVA de 366 nm e indol (anillo rojo) positivo

CHROMOSALM Agar Salmonella: colonias verde-azuladas falsos positivos de otros medios (Proteus, Citrobacter y demás enterobacterias): colonias negras o incoloras

CHROMOSALM Agar
Salmonella: colonias verde-azuladas
falsos positivos de otros medios (Proteus, Citrobacter y demás enterobacterias): colonias negras o incoloras

T.B.X. Agar E.coli: colonias verde-azuladas

T.B.X. Agar
E.coli: colonias verde-azuladas

CHROMOCYTOGENES Agar Listeria monocytogenes: colonias verdes con halo, Rhamnosa positivas y Xylosa negativas

CHROMOCYTOGENES Agar
Listeria monocytogenes: colonias verdes con halo, Rhamnosa positivas y Xylosa negativas

PCA-Cromogenic Agar YEA-Cromogenic Nutrient Agar

PCA-Cromogenic Agar

YEA-Cromogenic Nutrient Agar

YEA-Cromogenic Nutrient Agar

PCA-MILK-Cromogenic Agar En los tres medios las colonias rojas contrastan con el color del medio, las partículas, las burbujas y la membrana.

PCA-MILK-Cromogenic Agar
En los tres medios las colonias rojas contrastan con el color del medio, las partículas, las burbujas y la membrana.

Medios Cromogénicos MICROKIT® – Innovación y Precisión en Microbiología Desde 1991

En Laboratorios MICROKIT® somos pioneros en el diseño y fabricación de una de las gamas más amplias de medios cromogénicos del mercado mundial.
Desde los años 90, desarrollamos agares y caldos cromogénicos para el análisis microbiológico de alimentos, aguas, cosméticos, superficies y aire, fabricados íntegramente en España con la más alta calidad.

Ofrecemos nuestros productos tanto en versión deshidratada como en formato preparado, disponibles en múltiples presentaciones: tubos, frascos, ampollas MF, placas herméticas PLAQUIS® y kits Presencia/Ausencia (P/A).


Ventajas de los Medios Cromogénicos MICROKIT®

AGARES CROMOGÉNICOS

  • Permiten una identificación visual clara y específica, ya que solo las colonias (y no el medio) se colorean con el cromógeno.
  • Diferencian fácilmente colonias solapadas de microorganismos distintos.
  • Utilizan sustratos enzimáticos, mucho más específicos que los colorantes bioquímicos tradicionales.

CALDOS CROMOGÉNICOS

  • Ofrecen un rápido despistaje de muestras negativas con una sensibilidad superior a los medios clásicos.
  • Detectan la presencia o ausencia del microorganismo diana en menos tiempo y con mayor fiabilidad.

Evolución de Nuestros Medios Cromogénicos

1991 – RAPIDTEST Broth

Nuestro primer caldo cromogénico, diseñado para la detección rápida de la carga microbiana aerobia mediante un viraje de color a rojo.
Ideal para la industria alimentaria y química, permite determinar el bioburden en solo 4 a 24 horas.

  • 10⁶ ufc/g → viraje en 3–4 h
  • 10⁵ ufc/g → viraje en 7–8 h
  • 10⁴ ufc/g → viraje en 10–12 h
  • 10³ ufc/g → viraje en 13–18 h

Si el producto no debe superar 10⁴ ufc/g, bastan 12 horas de incubación para confirmar su validez.
Incluso es posible detectar de forma precoz el viraje inicial (color rosado) antes del resultado final, dependiendo de la matriz.


1999 – MUGPLUS Cfs.Agar

Primer agar cromogénico MICROKIT®.

  • E. coli: colonias azules (X-Glu)
  • Coliformes: colonias rosas (Salmon-Gal)
    Resultados en 18–24 horas en una sola placa, tanto por filtración de membrana como por siembra directa.

Comparado con medios como Endo, M-FC, COLITAG o COLI-ID, MUGPLUS ofrece mayor sensibilidad, especificidad y precisión.
Cumple la Norma ISO 9308-1 y presenta correlación 100% con el medio validado de otra marca pionera.


2001 – MCC Broth

Caldo Lauryl-Sulfato con MUG y X-Gal que permite la detección simultánea de Coliformes y E. coli en 18–24 horas en un mismo tubo.

  • E. coli: fluorescencia azul bajo luz UVA (366 nm) + indol positivo con reactivo de Kovacs.
  • Coliformes: viraje a azul turquesa.

No requiere campanas Durham ni agua de triptona posterior.
Ideal para recuentos NMP o detección P/A en aguas y bebidas.
Validado por más de 15 años de estudios intercomparativos.


2002 – CHROMOSALM ABC Agar

El medio más específico y sensible para la detección de Salmonella.

  • Salmonella: colonias verdes (X-α-Gal).
  • Otras Enterobacterias: colonias incoloras o negras (CHE-Gal).

Evita interferencias de Proteus y Citrobacter, comunes en otros medios incluso cromogénicos.
Elimina la necesidad de kits de confirmación adicionales.
Cumple la Norma ISO 6579 y ha demostrado máxima eficiencia en estudios intercolaborativos.


2003 – T.B.X. Agar

Agar para la detección de E. coli con colonias verde-azuladas.
Basado en el T.B.A. (ISO 9308-1), al que se ha añadido el cromógeno X-Glu.
Cumple las Normas ISO/TC 34/SC9 e ISO/TS 16649-2.


2004 – CHROMOCYTOGENES Agar

Diseñado según la Norma ISO 11290-2004 para la detección de Listeria monocytogenes.
Fuimos los primeros en ofrecerlo en formato deshidratado, ampliando su vida útil frente a las placas preparadas.
Demuestra correlación 100% con los medios Ottaviani & Agosti (ALOA).


2006 – PCA-Cromogenic Agar, PCA-MILK-Cromogenic Agar, YEA-Cromogenic Nutrient Agar y TSA Maxim Agar

Cuatro medios diseñados para el recuento total de aerobios en diferentes matrices:

  • PCA-Cromogenic: alimentos (ISO 4833, AOAC, APHA).
  • PCA-MILK-Cromogenic: lácteos (FIL).
  • YEA-Cromogenic: aguas (ISO 6222).
  • TSA MAXIM Agar: cosméticos con visualización más rápida y evidente

Las colonias crecen rojas sobre fondo crema, aumentando la visibilidad y precisión del recuento (>110% de sensibilidad frente a medios clásicos).
El analista deja de forzar la vista y distingue fácilmente colonias de partículas, burbujas o la membrana filtrante.


Innovación Continua: Nuestro Departamento de I+D+i

En Laboratorios MICROKIT® seguimos desarrollando nuevos medios cromogénicos que optimizan la eficiencia y fiabilidad de los análisis.
Nuestros últimos lanzamientos incluyen medios específicos para la detección de:

  • Candida albicans
  • Burkholderia cepacia
  • Pseudomonas aeruginosa
  • Microorganismos UTI
  • Patógenos emergentes en cosméticos
  • Esporulados termoresistentes HRS
  • Staphylococcus aureus
  • Clostridium perfringens
  • Campylobacter spp.
  • Enterococos fecales
  • E.coli O157
  • Lactobacilos
  • Levaduras y mohos
  • Bacillus cereus
  • Vibrio parahaemolyticus
  • Enterobacter (Cronobacter) sakazakii

Nuestra innovación es suya: desarrollamos soluciones prácticas, seguras y eficientes para los laboratorios del presente y del futuro.

Todas las publicaciones y estudios que avalan los resultados mencionados están disponibles en nuestra web oficial:
http://www.microkit.es

Desde que se editó esta noticia hemos diseñado numerosos medios cromogénicos nuevos. El folleto más actualizado es este, pero nuestro I+D es mucho más rápido que nuestras entradas al blog (y por supuesto muchísimo más rápida que la Normalización de métodos):

https://www.microkit.es/pdf/CROMOKIT-2021.pdf

Prepárese para más de una sorpresa informativa cuando vea nuestro video sobre los medios Cromogénicos: https://www.youtube.com/watch?v=-JVPVWxY8ZE&t=271s

Si desea más información y precios actualizados sobre nuestros MEDIOS póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

https://www.microkit.es/monograficos/17-Medios-cromog–nicos-monograf–a.pdf

 

LACTOSE SULFITE BROTH BASE

LACTOSE SULFITE BROTH BASE, caldo para la confirmación bioquímica de Clostridium  perfringens (ISO y Farmacopea)

PHARMACOPEA MEDIO R
Confirmación bioquímica de Clostridium  perfringens (ISO 7937:1997, UNE- EN  13401:2000, ISO/CD 6461-2:2002).

COMPOSICIÓN

De izquierda a derecha: Lactose Sulfite Broth sin inocular, Cl. sporogenes (turbio sin gas), Cl. perfringens (turbio con gas).

De izquierda a derecha: Lactose Sulfite Broth sin inocular,
Cl. sporogenes (turbio sin gas), Cl. perfringens (turbio con gas).

Digestato enzimático de caseína 5.00 g
Extracto de Levadura 2.50 g
Cloruro Sódico 2.50 g
Lactosa 10.00 g
L-Cisteína 0.30 g

(Fórmula por litro)
pH final: 7.1 ± 0,2

 

 

 

 

 

PREPARACIÓN

Disolver 20,3 gramos de medio en 1 litro de agua bidestilada. Repartir en tubos con campana. Autoclavar a 121 ºC durante 15 minutos. Añadir 0,75 g de Metabisulfito de sodio (SDA006) y 0,63 g de Citrato-ferro-amónico (SDA007), o bien dos viales estériles de suplemento de ambos componentes (VMT136). Para elaborar menor cantidad de medio, se pueden realizar alícuotas de un vial disuelto en agua estéril (los precipitados negros son normales, agitar inmediatamente para repartir lo más homogéneo posible), pero éstas no se deben autoclavar, todo lo más calentar un instante a 87°C para que pierdan su oxigenación tras su almacenamiento e inmediatamente antes de añadir al medio.

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO.
AGITE EL BOTE ANTES DE USAR. MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO.
DESHIDRATADO CODIGO: DMT140

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

DESHIDRATADO: Color marfil
PREPARADO: Paja-ámbar

CONTROL DE CRECIMIENTO 24-48 h a 44-46°C aproximadamente, sin aerobiosis:

  • Cl. perfringens MKTA 13124, perfecto, SH2 + (ennegrecimiento), con producción de gas
  • Cl. sporogenes MKTA 11437, perfecto, SH2 + (ennegrecimiento), sin producción de gas
  • Staphylococcus aureus MKTA 6538P, inhibido
  • Bacillus subtilis MKTA 6633, Inhibido

PRESENTACION: MEDIO DESHIDRATADO, TUBOS PREPARADOS CON CAMPANA DURHAM.

MODO DE EMPLEO E INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS

Inocular, en cada tubo, 5 gotas del cultivo crecido en FTM (DMT122) con una pipeta estéril. Incubar a 46 ºC aproximadamente, durante 18-24 h. La aparición de precipitado negro y la formación de gas que queda retenido en la campana Durham, es prueba positiva. Las bacterias que formen colonias características en TSC Agar (DMT175, TPL137) o TSN Agar (DMT175) y que den resultado positivo en este medio se consideran Clostridium perfringens.

El usuario final es el único responsable de la eliminación de los microorganismos de acuerdo con la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura

Si desea más información sobre nuestros MEDIO LACTOSE SULFITE BROTH BASE rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

https://www.microkit.es/fichas/LACTOSE-SULFITE-CLOSTRIDIUM-BROTH.pdf

 

EMB LEVINE AGAR

EMB LEVINE AGAR es un medio de cultivo clásico para detección y recuento de E.coli/coliformes en lácteos (y ahora en cosméticos por ISO)

Detección y diferenciación de coliformes (USP, APHA, ICMSF, ISO 21150 cosméticos)

emb levine

COMPOSICIÓN

  • Peptona pancreática gelatina 10,0 g
  • Lactosa                                       10,0 g
  • Fosfato dipotásico                      2,0 g
  • Eosina                                           0,4 g
  • Azul de metileno                    65,0 mg
  • Agar‑agar                                   15,0 g

(Fórmula por litro)   pH final: 7,1 ± 0,2

PREPARACIÓN

Disolver 37,5 g de medio en 1 litro de agua destilada. Calentar hasta ebullición, agitando para su completa disolución. Repartir en tubos o frascos. Autoclavar a 121 ºC durante 15 minutos.

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO. AGITE EL BOTE ANTES DE USAR. MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO.

DESHIDRATADO CODIGO: DMT050

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

DESHIDRATADO: Polvo grueso, Rojizo   PREPARADO: Estéril, Rojo vino

CONTROL DE CRECIMIENTO 24-48 h a 37°C aproximadamente:

  • Enterobacter aerogenes MKTA 9489, Bueno.
  • Salmonella abony MKTN 6017, Bueno, Colonia incolora.
  • Staphylococcus aureus MKTA 6538P, Pobre, Colonia incolora.
  • Escherichia coli MKTA 25922, Excelente, Colonia verde‑metálica

PRESENTACIÓN: TUBOS PREPARADOS 20 ml, FRASCOS PREPARADOS, MEDIO DESHIDRATADO.

NOTA: Medio para el aislamiento e identificación de E. coli, Enterobacter y otras bacterias intestinales Gram ‑. También es útil para el cultivo de Acinetobacter, Aeromonas, Pseudomonas, Plesiomonas, Yersinia, Candida albicans y estafilococos coagulasa positivos. La mayoría de flora contaminante queda inhibida a causa de los colorantes.

SIEMBRA

Preparar placas con los tubos 20 ml o con los frascos 100 ml, fundiéndolos y agitándolos para oxidar el azul de metileno. Sembrar en estría e incubar a 37 ºC aproximadamente, durante 24 h. 

INTERPRETACION 

E. coli: Colonias violetas de 2‑3 mm y con brillo metálico verdoso bajo luz reflejada. Enterobacter: Colonias de 2‑3 mm con centro pardo‑grisáceo bajo luz transmitida. Citrobacter: Colonias violetas con ligero reflejo metálico. Klebsiella: Colonias pardas mucosas. Salmonella y Shigella: Colonias transparentes, ambarinas. Candida albicans: Colonias en forma de telaraña o de pluma. Estafilococos coagulasa +: Colonias en punta de alfiler.

Si desea más información sobre nuestros MEDIO EMB LEVINE AGAR rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

https://www.microkit.es/fichas/EMB-LEVINE-AGAR.pdf

 

 

 

 

CORN MEAL AGAR

CORN MEAL AGAR Mantenimiento de hongos y estimulación de la formación de clamidósporas en Candida albicans (ISO 18416 en cosméticos).

Mantenimiento de cultivos de hongos y estimulación de la formación de clamidósporas en Candida albicans (ISO 18416 de C.albicans en cosméticos).

COMPOSICIÓN

Aspergillus niger, crecimiento mantenido y esporulación en este medio

Aspergillus niger, crecimiento mantenido y esporulación en este medio

Extracto de harina de maíz 2,0 g
Agar Agar 15,0 g

(Fórmula por litro)

pH final 6,0 ± 0,2

MANTENGA EL BOTE BIEN  CERRADO, EN LUGAR SECO,  FRESCO Y OSCURO.
PARA USO EXCLUSIVO EN  LABORATORIO.  AGITE EL BOTE ANTES DE USAR.

PREPARACIÓN, MODO DE EMPLEO E INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS

Disolver 17 g en 1 litro de agua destilada (para seguir la ISO 18416 de Candida albicans en cosmética añadir 65 g/l y 10 ml de Tween 80). Calentar hasta ebullición para su completa disolución. Autoclavar a 121 ºC durante 15 minutos. No sobrecalentar.
Si se desea, añadir al medio un 1% de Tween 80, para aumentar aún más la capacidad de Candida albicans para formar clamidósporas.  Resulta ideal para mantenimiento de hongos, dada la pobreza nutricional, sobre todo de hongos negros. La adición de 0,2% de glucosa aumenta la capacidad cromógena de Trichophyton rubrum pero inhibe la producción de clamidósporas de Candida albicans.

Se incuba 24-48 horas a 22 ºC aproximadamente. Y se puede mantener durante varias semanas a 2-8 ºC.

COD: DMT219
PRESENTACIÓN: 500 g

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

DESHIDRATADO: Polvo fino, Blanco
PREPARADO: Blanquecino-grumoso.

CONTROL DE CRECIMIENTO 48 h a temperatura ambiente (21-28°C aproximadamente):

  • Staphylococcus aureus MKTA 6538P, Parcialmente inhibido.
  • E.coli MKTA 25922, Parcialmente inhibido.
  • Aspergillus niger MKTA 16404, Correcto, Colonias negras y esporuladas en 5 días.
  • Candida albicans MKTA 10231, Correcto.
  • Saccharomyces cerevisiae MKTA 9763, Correcto.

NOTA: El precipitado amarillo de maiz en el fondo de la placa es inevitable, y no debe confundirse con colonias, que crecen en la superficie.

El usuario es el único responsable de la eliminación de los microorganismos según la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.

Si desea más información sobre nuestros MEDIO CORN MEAL AGAR rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

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LACTOSE-GELATIN MEDIUM

LACTOSE-GELATIN MEDIUM confirma las colonias de presuntos Clostridium perfringens en aguas (Norma ISO/CD 6461-2:2002)

COMPOSICIÓN

Lactose-Gelatin Medium sin inocular (rojo y sólido), Clostridium perfringens (naranja y licuado).

Lactose-Gelatin Medium sin inocular (rojo y sólido), Clostridium perfringens (naranja y licuado).

Casein Enzimatic Digest 15 g
Yeast Extract 10 g
Gelatin 120 g
Lactose 10 g
Phenol Red 0,05 g
(Fórmula por litro)
pH final: 7,5 ± 0,1

 

 

PREPARACIÓN

Añadir 155 g a 1 litro de agua bidestilada. Llevar a ebullición lentamente, agitando hasta su disolución completa. Autoclavar a 121 ºC durante 15 minutos. El color final del medio es rojo y el aspecto, gelatinoso.

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO

MANTENGA EL BOTE CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO

AGITE EL BOTE ANTES DE USAR

DESHIDRATADO CODIGO: DMT056

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

DESHIDRATADO: Polvo fino, crema
PREPARADO: Estéril, rojo y gelatinoso

CONTROL DE CRECIMIENTO a 37°C aproximadamente, durante 24 horas, en anaerobiosis:

  • Clostridium perfringens MKTA 13124 (=NCTC 8237), el medio vira a amarillo y la gelatina está líquida
  • Bacillus subtilis MKTA 6633, el medio se mantiene rojo y la gelatina sólida

PRESENTACION: MEDIO DESHIDRATADO, KIT M-IDENT-Cl.perfringens, TUBOS PREPARADOS.

MODO DE EMPLEO E INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS

Inmediatamente antes de su uso, regenerar el tubo preparado, hirviéndolo 15 minutos para eliminar su oxigenación. Enfriar rápidamente a unos 70-80°C. Inocular la colonia sospechosa, procedente de TSC o del medio elegido, en picadura. Incubar a 36 ± 2 °C durante 21 ± 3 horas, en anaerobiosis. Observar la producción de ácido por viraje a amarillo. Enfriar los tubos en una nevera a 5 ± 3°C durante 1-2 horas y comprobar si hay liquefacción de la gelatina. Si han solidificado, reincubar a 36 ± 2°C durante 21 ± 3 horas y volver a comprobar si hay liquefacción de la gelatina.
El usuario es el único responsable de la eliminación de los microorganismos según la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.

Si desea más información sobre nuestros MEDIO LACTOSE-GELATIN MEDIUM rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

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EE BROTH ENTEROBACTERIAS MOSSEL

EE BROTH ENTEROBACTERIAS MOSSEL. para detección y enriquecimiento de Enterobacterias (PHARMACOPEA MEDIO E)

Enriquecimiento de Enterobacterias (ICMSF). Enumeración por el método MF (UNE 34-557:1983, ISO 21528:2004)

BOTE 500

COMPOSICIÓN

  • Peptona de gelatina            10,0 g
  • Glucosa                                    5,0 g
  • Hidrógenofosfato DiNa         8,0 g
  • Dihidrógenofosfato K            2,0 g
  • Sales Biliares                         20,0 g
  • Verde Brillante                    0,015 g

(Fórmula por litro) pH final: 7,2 ± 0,2

 PREPARACIÓN

Disolver 45 g de medio en 1 litro de agua bidestilada fría. Distribuir en tubos o en frascos y autoclavar a 121 ºC durante 5 minutos, abreviando al mínimo los tiempos de subida y bajada de presión del autoclave. El color final del medio es verde esmeralda. No sobrecalentar. Enfriar rápidamente.

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO. AGITE EL BOTE ANTES DE USAR. MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO.

PRECAUCIÓN: CONTIENE SALES BILIARES.

DESHIDRATADO CODIGO: DMT049

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

ee broth

DESHIDRATADO: Polvo, Verde  PREPARADO: Estéril, Verde esmeralda

EVALUACIÓN DEL RENDIMIENTO ISO/TS 11133-2, 24 h a 37 ºC: (Aplicando el método UNE 34-557: 83, ISO 8523: 1991, ISO 7402 o el indicado en el Manual MICROKIT actualizado)

  • Escherichia coli MKTA 25922, Excelente, Acidifica a amarillo. Tras estriar una alícuota en VRBG e incubar, aparecen más de 10 colonias típicas.
  • Enterobacter aerogenes MKTA 9489, Excelente.
  • Proteus mirabilis MKTA 14153, Excelente.
  • Salmonella abony MKTN 6017, Excelente.
  • Staphylococcus aureus MKTA 6538P, Inhibido.
  • Enterococcus faecalis MKTA 29212, Totalmente inhibido: tras incubar, estriar en TSA e incubar, no aparecen colonías.

Las colecciones TIPO prohiben el uso de su referencia por lo que indicamos la nuestra, directamente trazable a la colección TIPO.

 

PRESENTACIÓN: TUBOS PREPARADOS 9 ml, FRASCOS PREPARADOS, VIALES MF, MEDIO DESHIDRATADO.

 

NOTA: Medio de enriquecimiento para enterobacterias, incluidas las no fermentadoras de lactosa, mucho más selectivo que el Lactose Broth, al contener Verde Brillante y Sales Biliares. También se utiliza para el recuento de Enterobacterias por el método del Número Más Probable (MPN). No confundir con el Agar Mossel para Bacillus cereus.

 

SIEMBRA

Sembrar 10 ml de muestra en 100 ml de medio para enriquecer, o bien en tubos para enumerar según la técnica NMP. O bien añadir 2 ml del medio a cada cartón en la técnica de M.F. y colocar la membrana filtrada. Incubar a 37 ºC aproximadamente, durante 18-24h. 

INTERPRETACIÓN

Todo tubo o frasco turbio se considera positivo, resembrar en estría en agar VRBG (Pharmacopea armonizada) o VRBG+L (USP medio F). Contar todas las colonias de M.F. como Enterobacterias.

Si desea más información sobre nuestros MEDIO EE BROTH ENTEROBACTERIAS MOSSEL, rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

https://www.microkit.es/fichas/EE-BROTH-ENTEROBACTERIAE-MOSSEL.pdf

 

COOKED MEAT MEDIUM

COOKED MEAT MEDIUM (GRÁNULOS) para aislamiento y mantenimiento de anaerobios, incluso los de crecimiento difícil.

COMPOSICIÓN

Nueva imagen (21)

 

 

 

 

Cooked meat granules 75.0 g/litro
Beef Extract 10.0 g/litro
Balanced Peptone No.1 10.0 g/litro
Sodium chloride 5.0 g/litro
pH final: 7’2 ± 0’2

PARA USO EXCLUSIVO EN  LABORATORIO.

MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO.

PRESENTACIÓN: DESHIDRATADO EN GRÁNULOS (COD: BCD127), TUBOS PREPARADOS PARAFINADOS (COD:TPL082).

PREPARACIÓN, MODO DE EMPLEO E INTERPRETACIÓN DE LOS RESULTADOS

Añadir 1,0 gramos de gránulos a un tubo con 10 ml de agua. Autoclavar a 121 ºC, 15 minutos. Justo antes de usar, regenerar 15 minutos a 100 ºC, inocular la muestra bajo la parafina e incubar 48 h (a 37 ºC aproximadamente para los mesófilos y a la temperatura adecuada para los termófilos). Los sacarolíticos acidifican el medio, con olor ácido y gas, a veces enrojecimiento. Los proteolíticos degradan el medio, con olor pútrido, ennegrecimiento, a veces formación de cristales blancos.

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Control realizado en las instalaciones de MICROKIT. Para evitar amplificar problemas, es prudente repetirlo en su laboratorio tras el transporte, tras almacenamientos prolongados, tras desinfecciones del laboratorio, tras fallos en la Tª u oscuridad de almacenamiento, tras adquirir aspectos extraños u otras eventualidades, aunque no haya llegado la fecha de caducidad óptima. Los resultados de este informe son aplicables directamente a la muestra que se ha analizado del producto que se certifica; y, estadísticamente, al resto del medio.

LIBRE de materias primas sospechosas de portar el agente infeccioso BSE.

Tubo preparado con Cooked Meat Medium

Tubo preparado con Cooked Meat Medium

DESHIDRATADO: Gránulos marrones.
PREPARADO: Estéril, Pardo con precipitado
insoluble.

 

 

 

CONTROL DE CRECIMIENTO/INHIBICIÓN DE CEPAS 48 h a 37°C aproximadamente, en
anaerobiosis:

  • Clostridium perfringens MKTA 13124, Excelente.
  • Clostridium sporogenes MKTA 11437, Excelente.
  • Streptococcus pyogenes MKTA 19615, Excelente.

El usuario es el único responsable de eliminar los microorganismos de acuerdo con la legislación mediambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.

Si desea más información sobre nuestros MEDIO COOKED MEAT MEDIUM rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

https://www.microkit.es/fichas/COOKED-MEAT-MEDIUM.pdf

 

LACTOSE BROTH

LACTOSE BROTH Farmacopea (medio D) Enriquecimiento y enumeración de Coliformes, E.coli y Salmonella (ISO 9308-2:1990).

Enriquecimiento y enumeración de Coliformes, E.coli y Salmonella (ISO 9308-2:1990).

COMPOSICIÓN

Peptona de gelatina 5 g
Extracto de carne de buey 3 g
Lactosa 5 g
(Fórmula por litro)
pH final: 6,9 ± 0,2

PREPARACIÓN

Disolver 13 g de medio en 1 litro de agua destilada.
Repartir en tubos con campana Durham o en frascos.
Autoclavar a 121 ºC durante 15 minutos.

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO.

AGITE EL BOTE ANTES DE USAR.

MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO.

DESHIDRATADO CODIGO: DMT063

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

DESHIDRATADO: Polvo grueso, Beige
PREPARADO: Estéril, Paja claro
CONTROL DE CRECIMIENTO 24-48 h a 37°C aproximadamente:

  • Escherichia coli MKTA 25922, Excelente, con gas.
  • Pseudomonas aeruginosa MKTA 27853, Crece sin gas.
  • Salmonella abony MKTN 6017, Excelente, sin gas.
  • Enterococcus faecalis MKTA 29212, Crece sin gas.
  • Klebsiella oxytoca MKTA 13182, Excelente, con gas.

PRESENTACIÓN: TUBOS CON CAMPANA DURHAM 9 ml, FRASCOS 100, MEDIO DESHIDRATADO.

NOTA: El caldo Lactosado es un medio recomendado por la APHA para determinación presuntiva de coliformes totales por el método del Número Más Probable, en aguas, como alternativa al caldo Lauryl Sulfato Sódico. También lo aconseja la ICMSF para enriquecimiento no selectivo de Salmonella o pre enriquecimiento. También es útil para enriquecimiento de E.coli.

SIEMBRA

Para enriquecimiento, sembrar 1-25 g de muestra en frascos de 100 ml. Para análisis de aguas, sembrar tubos con campana de acuerdo con el método NMP. Incubar a 35 ºC aproximadamente, durante 24 horas y, si no aparece gas en la campana, incubar otras 24 horas.

INTERPRETACION

La formación de gas en la campana antes de 48 horas es índice de presencia de coliformes totales. Confirmar los positivos en BGBL 2%.

El usuario es el único responsable de la eliminación de los microorganismos según la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.

Si desea más información sobre nuestros MEDIO LACTOSE BROTH rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

https://www.microkit.es/fichas/LACTOSE-BROTH.pdf

 

EC MEDIUM

EC MEDIUM Detección de COLIFORMES (37 ºC) y E.coli (44,5 ºC) (APHA,ICMSF) por el método NMP (ISO 9308-2:1990)

COMPOSICIÓN

  • Triptosa                 20,0 g
  • Lactosa                    5,0 g
  • Fosfato potásico    5,5 g
  • Cloruro sódico       5,0 g
  • Sales biliares          1,5 g

(Fórmula por litro) pH final: 6,9 ± 0,2.

PREPARACIÓN

Disolver 37 g en 1 litro de agua destilada. Distribuir en tubos con campana Durham. Autoclavar a 121 ºC durante 15 minutos.

PRECAUCIÓN: CONTIENE SALES BILIARES.

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO

AGITE EL BOTE ANTES DE USAR. MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO.

DESHIDRATADO CODIGO: DMT047

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

DESHIDRATADO: Polvo grueso, Crema

PREPARADO: Estéril, Beige

EVALUACIÓN DEL RENDIMIENTO ISO/TS 11133-2  24-48 h a 44 ºC, aplicando el método ISO 7251, ISO 9308, o el indicado en el Manual MICROKIT actualizado:

  • Escherichia coli MKTA 25922, 9 tubos turbios forman gas en 1/3 de la campana Durham.
  • Pseudomonas aeruginosa MKTA 27853, no hay turbidez, ni crecimiento

Las colecciones TIPO prohiben el uso de su referencia por lo que indicamos la nuestra, directamente trazable a la colección TIPO.

PRESENTACIÓN: MEDIO DESHIDRATADO

NOTA: Medio recomendado por la APHA y la ICMSF para la detección de coliformes fecales en aguas y alimentos por el método del Número Más Probable (MPN).

SIEMBRA. 

Transferir inóculos de acuerdo con la técnica MPN en 9 tubos, a partir de tubos de caldo Lauryl que hayan resultado gas‑positivos, o bien directamente de la muestra.

Incubar a 44 ºC aproximadamente, durante 24 horas.

INTERPRETACIÓN. 

Los tubos con crecimiento y gas se consideran positivos. Calcular la densidad de coliformes fecales utilizando las tablas del NMP.

Si desea más información sobre nuestros MEDIO EC MEDIUM, rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

https://www.microkit.es/fichas/EC-MEDIUM.pdf

 

COLUMBIA AGAR

COLUMBIA AGAR base sangre Farmacopea Q, microorganismos difíciles, confirmación L.monocytogenes (ISO 11290) y L. pneumophila (ISO 11731)

Detección de microorganismos de crecimiento difícil, recuento total y ambiental, confirmación de Listeria monocytogenes (UNE-EN ISO 11290-1:1997 y UNE-EN ISO 11290-2:2000) y de Legionella pneumophila (ISO 11731:1998 y ISO 11731-2:2002)

COMPOSICIÓN

Aislamiento de microorganismos de crecimiento difícil en Agar Columbia suplementado con sangre de carnero al 5-7%

Aislamiento de microorganismos de crecimiento difícil en Agar Columbia suplementado con sangre de carnero al 5-7%

Digestato pépsico de carne 5,0 g
Digerido pancreático de corazón 3,0 g
Triptona 10,0 g
Extracto de Levadura 5,0 g
Cloruro sódico 5,0 g
Almidón de maiz 1,0 g
Agar-agar 15,0 g

(Fórmula por litro)
pH final: 7,3 ± 0,2

 

 

 

PREPARACIÓN

Disolver 44 gramos de medio en 1 litro de agua bidestilada. Calentar hasta ebullición, agitando, para su total homogeneización. Repartir en tubos o frascos. Autoclavar a 121 ºC durante 15 minutos. Enfriar, Si se desea mayor sensibilidad, enriquecer añadiendo 50-70 ml de sangre estéril desfibrinada de cordero (o caballo….). Evitar cualquier recalentamiento tras la adición de la sangre si no se desea “chocolateada”. Si no se añade sangre también permite el crecimiento de la mayoría de microorganismos.

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO. AGITE EL BOTE ANTES DE USAR, PARA ASEGURAR LA HOMOGENEIZACIÓN DE LOS EVENTUALES GRADIENTES DE DENSIDAD DE LOS COMPONENTES. MUY HIGROSCÓPICO: MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO

DESHIDRATADO CODIGO: DMT308

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)
DESHIDRATADO: Polvo, Beige PREPARADO: Estéril, Rojo cereza tras añadir la sangre, ámbar antes de añadirla.
CONTROL DE CRECIMIENTO 24-48 h a aproximadamente 37°C, se añaden comentarios hemolíticos si se añade sangre:

  • Escherichia coli MKTA 25922, Bueno, grises, Beta Hemolíticas.
  • Enterococcus faecalis MKTA 29212, Bueno, No hemolítico (gamma).
  • Streptococcus pyogenes MKTA 19615, Bueno, blancas, Beta Hemolíticas.
  • Streptococcus pneumoniae MKTA 6303, Bueno, grises, Alfa-hemolítico
  • Listeria monocytogenes MKTA 7644, Bueno, Beta Hemolítico.
  • Clostridium sporogenes MKTA 11437, Bueno, grises, hemolíticas o no.

PRESENTACIÓN: MEDIO DESHIDRATADO BASE SIN SANGRE
NOTA: Medio de uso general utilizable para cultivar microorganismos de crecimiento difícil. El suplemento de sangre, además de enriquecer el medio con nutrientes especiales que permiten el crecimiento de los microorganismos más difíciles, permite detectar la actividad hemolítica de los estreptococos, estafilococos y otros microorganismos. Se suele usar de carnero o de caballo, pero cualquiera es válida, incluso la del operario siempre que no tenga enfermedades transmisibles a sus compañeros, o la excedente de un banco de sangre. Aunque es un medio muy rico sin siquiera la adición de sangre. Aún así, puede hacerse selectivo con la adición de diferentes suplementos en microbiología clínica. Resulta ideal para controles de contaminación ambiental, sobre todo en laboratorios farmacéuticos. Y para confirmación de la ausencia de Clostridios en medicamentos, incubando en anaerobiosis a partir del Reinforced Clostridial Medium (DMT307).

SIEMBRA E INTERPRETACIÓN

Sembrar en superficie, en estría o por agotamiento. O bien dejar placas abiertas durante 10-30 minutos, a las que se haya añadido al fabricarlas 1 gota/litro de agente antiburbujas (SBL001) para evitar su desecación durante la exposición.
Incubar a 35 ó 37 ºC aproximadamente, 24-72 horas, aeróbica o anaeróbicamente, en función de los microorganismos buscados. Aislar e identificar las colonias aisladas. Si se añade sangre, las cepas alfa-hemolíticas crecen con colonias rodeadas de un pequeño halo de lísis de sangre. Las beta-hemolíticas, con un gran halo. Las gamma-Hemolíticas, sin halo.

Bacillus thuringiensis en Agar Columbia suplementado con sangre

Bacillus thuringiensis en Agar Columbia suplementado con sangre

El usuario es el único responsable de la eliminación de los microorganismos según la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.

Si desea más información sobre nuestros MEDIO COLUMBIA AGAR rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

https://www.microkit.es/fichas/COLUMBIA-AGAR.pdf