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informacion, novedades, nuevos métodos relacionados con los medios de cultivo, Microbiología de alimentos, aguas, medicamentos, cosméticos y ambiente:

LEGIONELLA BCYE AGAR

LEGIONELLA AGAR (BCYE , BCYE -Cys, GVPC…) son los medios de cultivo estándar para la detección y recuento de Legionella

Aislamiento selectivo de Legionella por  el método MF o por siembra directa  (ISO 11731:1998, ISO 11731-2:2004)

COMPOSICIÓN

Nueva imagen (9)

 

Medio BASE (BCYE-Cys):

  • Carbón activado 2,0 g
  • Extracto de levadura 10,0 g
  • Agar Agar 22,0 g
  • Alfa-ketoglutarato (sal mono-K) * 1,0 g
  • (Fórmula por litro)
  • pH final: 6,9 ± 0,1

GVPC Suplemento Selectivo+Nutritivo estéril en solución 200 ml SBL604
Agite contundentemente y añada en asepsia 40 ml a 500 ml de medio enfriado a 50 ºC (o bien 8 ml a 100 ml de medio).

Puede contener precipitados por su elevada concentración pero desaparecen al diluir en el medio BCYE base. c.s.p. 2’5 l de medio.

Contiene las proporciones precisas, según ISO 11731, de: Tampón ACES, -Cetoglutarato, KOH, Clorhidrato de L-Cisteina, Pirofosfato férrico, Vancomicina, Cicloheximida, Polimixina y Glicina.

Contiene elementos tóxicos, evitar el contacto con la piel.

NOTA 1: La ref. SBL605 es idéntica al suplemento GVPC pero sin la Cisteína.

NOTA 2: EL caldo GVPC para preenriquecimiento revitalizador, es idéntico al Agar GVPC pero sin Agar-Agar y con el carbón granulado (ver kit P/A Legionella en tubos preparados, ref.RPL330). Ideal para usar antes de la ISO 11731 y encontrar de forma mucho más sensible y exacta la Legionella.

PREPARACIÓN (conversión del medio deshidratado en medio preparado)

Disolver 17 gramos de medio en 500 ml de agua bidestilada.

Calentar hasta hervir para la total disolución.

utoclavar a 121 ºC, 15 minutos.

El color final del medio es negro.

Enfriar a 45-50 ºC y, para el medio selectivo GVPC, añadir asépticamente 40 ml de Legionella Supplement-200 ml (SBL604, tampón ACES/KOH; nutritivo con -ketoglutarato, clorhidrato de L-cisteina y pirofosfato férrico; y selectivo, con Vancomicina, Polimixina, Cicloheximida y Glicina) ;

para el medio BCYE-Cys, añadir 40 ml de Legionella-Cys Supplement-200 ml (SBL605, tampón ACES/KOH, -ketoglutarato y pirofosfato férrico);

y para el medio BCYE, no son imprescindibles los antibióticos.

Mezclar muy bien y verter 20 ml/placa cuando el medio esté a punto de solidificar, para que la distribución del carbón activo sea lo más homogénea posible.

No sobrecalentar o el agar se volverá demasiado blando: Es posible que sea necesario añadir aún más Agar-agar (BCB006) para minimizar la friabilidad del agar, si se va a sembrar con asa (aceptado en ISO 11731).

PARA USO EXCLUSIVO
EN LABORATORIO.

MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO
EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO.

DESHIDRATADO CODIGO: DMT007

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio,
tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

DESHIDRATADO: Polvo, Negro
PREPARADO: Estéril, Negro.

CONTROL DE CRECIMIENTO 2 semanas a 37°C aproximadamente:

  • Legionella pneumophila MKTN 12821 serogrupo1, Correcto, colonias gris-azuladas, cristalinas, mucosas, en 2-15 días, en medio suplementado BCYE+GVPC. No crece en medio BCYE base, sin suplemento nutritivo de hierro y cisteína. En el medio BCYE con suplemento nutritivo pero sin antibióticos, crece aproximadamente el doble de población que en el GVPC. Con respecto a PCA estandarizado y suplementado,* recuento 126 %, pero de forma selectiva.
  • Legionella pneumophila serogrupo 2-15, MKTLeg-2, Idem.
  • Escherichia coli, MKTA 25922 parcialmente inhibido. Con respecto a PCA estandarizado y suplementado,* recuento 27 %.
  • Micrococcus luteus MKTA 9341, inhibido.

* El que cumple con recuperación superior al 92-125% con respecto a cepas cuantitativas trazables a la cepa tipo. Incertidumbres detectadas entre todos los lotes a lo largo de un año (la mayoría de la incertidumbre se debe a la cepa y a la proporción de cepas acompañantes inoculadas, no al medio).

PRESENTACION: MEDIO DESHIDRATADO (BCYE-BASE) Y SUPL. GVPC, KITS P/A caldo revitalizante, PLAQUIS HERMÉTICAS MF GVPC, FRASCOS PREPARADOS 100 ml (BCYE-BASE) + SUPL. GVPC.

MODO DE EMPLEO E INTERPRETACION DE RESULTADOS

Medio selectivo GVPC:

Inocular una membrana de filtración de 0’22 µm (VAC022, no usar de 0,45 µm), o mejor 0´1 ml de un extracto del fondo del tubo tras la centrifugación a 2500 r.p.m., 20′ de una muestra rascada, o bien 0’1 ml del fondo del caldo de enriquecimiento concentrado (RPL330) sobre una placa.

O aplicar una placa de contacto sobre la superficie, o bien introducirla en un aparato de control de aire.

Preincubar estrictamente 30 minutos a 50 ºC para eliminar la flora competitiva acompañante. Incubar a 35 ºC aproximadamente, en atmósfera húmeda de 2 a 14 días.

Las colonias de Legionella pneumophila son blanco-azuladas, brillantes, mucosas, de 1-2 mm Ø, circulares, lisas, algo elevadas y con los bordes enteros, fluorescentes en la oscuridad bajo luz UVA (linterna MICROKIT).

Subcultivar 3 colonias en BCYE (sin antibióticos) y en BCYE-Cys, al menos 2 días a 36 ± 1°C. Legionella crece en BCYE sin antibióticos (y en GVPC), pero no crece en BCYE-Cys (ni en medios generales tipo agar sangre, PCA, TSA, YEA, Nutrient Agar…).

Las colonias deben confirmarse con oxidasa positivo, a menudo lento (KOT050), catalasa positiva (KMT299) y serotipado (M-IDENT-LEGIONELLA-VIRAPID MKTVR2, QUE PUEDE USARSE DIRECTAMENTE EN EL PRIMER AISLAMEINTO DE GVPC Y AHORRARSE ASÍ EL TIEMPO Y COSTE DE LAS OTRAS PLACAS DE BCYE y BCYE-Cys).

Contar sólo la placa de GVPC con más colonias de Legionella pneumophila. Si no se encuentra, expresar los resultados como “no detectada”, ya que a veces está presente y no crece. Peligro, microorganismos de alto riesgo para inmunodeprimidos, por inhalación de aerosoles (pero no llega a ser de Clase III).

El usuario final es el único responsable de la destrucción de los organismos que se hayan multiplicado, según la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura. 

Si desea más información sobre nuestros MEDIOS LEGIONELLA BCYE AGAR,  póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

https://www.microkit.es/fichas/LEGIONELLA-GVPC-y-BCYE-AGAR-BASE.pdf

https://www.microkit.es/monograficos/9-Legionella-monograf–a.pdf

 

 

LB LENNOX BROTH

LB LENNOX BROTH es un caldo para E.coli, empleado en estudios de biología molecular (ver tambien Terrific Broth)

Enriquecimiento, mantenimiento y propagación de E. coli
en estudios de microbiología molecular

COMPOSICIÓN

Triptona 10.0 g
Extracto de Levadura 5.0 g
Cloruro Sódico 5.0 g
(Fórmula por litro)
pH final: 7,0 ± 0,2

PREPARACIÓN

Disolver 20 g de medio en 1 litro de agua bidestilada. Agitar, calentando hasta ebullición para su completa disolución. Distribuir en tubos o frascos. Autoclavar a 121ºC durante 15 minutos. El color final del medio es ámbar claro, ligeramente opalescente. Incubar el tiempo y Tª adecuados para la cepa, en principio 18-24 horas a 35-44 °C.

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO.
AGITE EL BOTE ANTES DE USAR
MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO.
DESHIDRATADO CODIGO: BCD095

PRESENTACIÓN: MEDIO DESHIDRATADO

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)
DESHIDRATADO: Polvo crema
PREPARADO: Blanquecino
CONTROL DE CRECIMIENTO 24-48 h a 37°C aproximadamente:

  • Escherichia coli MKTA 25922, Excelente
  • Pseudomonas aeruginosa MKTA 9027, Excelente
  • Staphylococcus aureus MKTA 6538P, Excelente

El usuario final es el único responsable de eliminar los microorganismos de acuerdo con la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.

Si desea más información sobre nuestros MEDIO LB LENNOX BROTH, rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

https://www.microkit.es/fichas/LB-LENNOX-BROTH.pdf

Ver tambien Terrific Broth:

https://www.microkit.es/fichas/TERRIFIC-BROTH.pdf

y LURIA Agar Miller:

https://www.microkit.es/fichas/LURIA-AGAR-BASE.pdf

Haga sus consultas de este medio en: microkit@microkit.es

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ENTEROCOCCUS CROMOKIT AGAR (EPA)

ENTEROCOCCUS EPA AGAR es el medio de cultivo cromogénico aprobado por la EPA de USA para el recuento de Enterococos fecales en aguas

Agar selectivo y cromogénico para la detección y recuento de enterococos fecales en aguas (MF) y en alimentos, en sólo 24 h  (US-EPA).

enterococos cromokit agar

COMPOSICIÓN

  • Peptona                               10,0 g.
  • Extracto de levadura         30,0 g
  • Aesculina                               1,0 g
  • Cicloheximida                     0,05 g
  • Azida Sódica                       0,15 g
  • Cloruro sódico                   15,0 g
  • X-Glucosido                        0,75 g
  • Agar-Agar                           15,0 g

(Fórmula por litro)    pH final: 7,1 ± 0,2

PREPARACIÓN

Disolver 72 gramos en 1 litro de agua  bidestilada. Agitar  calentando hasta ebullición.  No sobrecalentar! Autoclavar a 121° C durante 15 minutos, acortando los tiempos de enfriamiento. El color final del medio es crema-ámbar.

Si se desea que el medio sea más selectivo, añadir, una vez enfriado a 47°C aproximadamente, justo antes de verter en placas, Ac.Nalidíxico a razón de 0,24 g disueltos en 5 ml de agua estéril que contenga unas gotas de NaOH 0,1 N (para facilitar su disolución).

 

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO. AGITE EL BOTE ANTES DE USAR, PARA ASEGURAR  LA  HOMOGENEIZACIÓN DE LOS EVENTUALES GRADIENTES DE DENSIDAD DE LOS COMPONENTES. MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO.

DESHIDRATADO CODIGO: DMT322

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO:

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…).

DESHIDRATADO: Polvo grueso, Crema           PREPARADO: Estéril, Crema

CONTROL DE CRECIMIENTO 18-24 h a 37-41°C aproximadamente:

  • Enterococcus faecalis MKTA 19433, Excelente, colonias azules, diminutas.
  • Enterococcus faecium MKTA 9790, Excelente, colonias azules, diminutas.
  • Pseudomonas aeruginosa MKTA 27853, Inhibido.
  • Escherichia coli MKTA 25922, Inhibido.

 

 

PRESENTACIÓN: MEDIO DESHIDRATADO.

 

 

SIEMBRA E INTERPRETACIÓN

 

Filtrar 100 ml de agua (o bien la cantidad deseada) y colocar la membrana filtrada sobre una placa con medio. O bien sembrar en masa 1 ml de la solución madre del alimento. Incubar a 41°C aprox durante 18-24 horas. Las colonias azules, diminutas, son confirmativas para Enterococos fecales.

 

 NOTA

 

Medio desarrollado para detección confirmativa en un solo paso, sin necesidad de transferir membranas en dos medios, con la ventaja adicional de permitir el recuento de enterococos fecales en las primeras 18-24 horas. La incubación a 41°C permite la detección más selectiva. La esculina es hidrolizada por los enterococos con formación de esculetina y dextrosa. La cicloheximida inhibe la aparición de levaduras y mohos y la Azida Sódica impide el crecimiento de Gram negativos. El X-Glucósido es el sustrato cromogénico específico para los enterococos glucosidasa positivos.

 

Medio robusto, diseñado para todo tipo de aguas (potables, envasadas, de baño, incluidas las marinas y las de estuarios, acuarios, cetareas…) e incluso para alimentos y avalado por la US Environmental Protection Agency (EPA).

Si desea más información sobre nuestros MEDIOS ENTEROCOCOS CROMOKIT AGAR, rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

https://www.microkit.es/fichas/CROMOKIT-ENTEROCOCCUS-AGAR.pdf

https://www.microkit.es/monograficos/17-Medios-cromog–nicos-monograf–a.pdf

Prepárese para más de una sorpresa informativa cuando vea nuestro video sobre los medios Cromogénicos: https://www.youtube.com/watch?v=-JVPVWxY8ZE&t=271s

Enterococos fecales en Agar EPA de MICROKIT:

LAURYL TRYPTOSE MANNITOL BROTH

LAURYL TRYPTOSE MANNITOL BROTH WITH TRYPTOPHAN es un caldo para la detección y recuento NMP de coliformes y E.coli (Indol +)

Detección y enumeración confirmativa de coliformes y E.coli en 24 horas por NMP (ISO 9308-1 y 2:1990)

COMPOSICIÓN

Izda: Sin crecimiento. Centro: Coliformes (gas y turbidez). Dcha: E.coli (coliformes con indol directo positivo)

Izda: Sin crecimiento. Centro: Coliformes (gas y turbidez). Dcha: E.coli (coliformes con indol directo positivo)

Tryptose 20,00 g
Mannitol 5,00 g
Sodium Cloride 5,00 g
Monopotassium phosphate 2,75 g
Dipotassium phosphate 2,75 g
Sodium laurylsulfate 0,10 g
L-Tryptophane 0,20 g

(Fórmula por litro)
pH final: 6,8 ± 0,2

PREPARACIÓN

Disolver 35,8 gramos en 1 litro de agua bidestilada, evitando la agitación brusca para que no se forme excesiva espuma. Dispensar 5-9 ml en tubos con campana Durham.
Autoclavar a 121 ºC durante 10 minutos.
No sobrecalentar. Dejar enfriar .

MANTENER EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO.

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO.

DESHIDRATADO CODIGO: DMT212

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

DESHIDRATADO: Polvo grueso, Amarillo.
PREPARADO: Estéril, Pajizo.

EVALUACIÓN DEL RENDIMIENTO ISO/TS 11133-2 24-48 h a 30-37 y a 44°C ºC, aplicando el método ISO 4831, ISO 9308 o el indicado en el Manual MICROKIT actualizado:

  • Escherichia coli MKTA 25922, 9 tubos turbios forman gas en 1/3 de la campana Durham, indol positivos tras añadir Kovacs a 37 ºC y a 44 ºC.
  • Klebsiella oxytoca MKTA 13182, 9 tubos turbios con gas, Indol positivos tras añadir Kovacs (a 37ºC pero no a 44 ºC).
  • Citrobacter freundii MKTA 43864, 9 tubos turbios forman gas en 1/3 de la campana Durham, indol negativos tras añadir Kovacs.
  • Salmonella abony MKTN 6017, 9 tubos turbios pero sin gas.
  • Enterococcus faecalis MKTA 29212, Inhibido, no hay turbidez ni gas.

Las colecciones TIPO prohiben el uso de su referencia por lo que indicamos la nuestra, directamente trazable a la colección TIPO.

PRESENTACIÓN: MEDIO DESHIDRATADO.

SIEMBRA E INTERPRETACIÓN

Añadir las colonias sospechosas de coliformes procedentes de Agar Chapman Tergitol u otro medio presuntivo o bien sembrar tubos con campana de acuerdo con el método NMP. Incubar hasta 48 horas para observar la producción de gas retenido en la campana Durham, que es confirmativa de coliformes a 37 ºC aproximadamente y presuntiva de E.coli a 44 ºC aproximadamente. La adición de triptófano permite confirmar E.coli con la prueba del indol, de forma más rápida.

El usuario es el único responsable de la eliminación de los microorganismos según la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.

Si desea más información sobre nuestros MEDIO LAURYL TRYPTOSE MANNITOL BROTH, rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

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CZAPEK DOX AGAR

Cultivo de Hongos y bacterias consumidores de Nitrato sódico

COMPOSICION

Hongo del suelo (Mixomicete en fase de plasmodio)

Hongo del suelo (Mixomicete en fase de plasmodio)

Nitrato sódico 2,00 g
Cloruro potásico 0,50 g
Sulfato magnésico 0,50 g
Sulfato ferroso 0,01 g
Fosfato dipotásico 1,00 g
Sacarosa 30,00 g
Agar agar 12,00 g

(Fórmula por litro) pH final: 6,8 ± 0,2

PREPARACION

Disolver 46 g en 1 litro de agua destilada. Calentar y agitar hasta su completa disolución.
Autoclavar a 115 ºC durante 20 minutos.
Mezclar bien antes de verter en las placas.
Para ajustar el pH a 3’5, añadir 10 ml de solución estéril de ácido láctico al 10% por litro de medio.
No recalentar.

PARA USO EN LABORATORIO.
MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO.
DESHIDRATADO CODIGO: DMT040
AGITE EL BOTE ANTES DE USAR

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…).

DESHIDRATADO: Polvo fino, Blanco
PREPARADO: Estéril, Ambar precipitado

CONTROL DE CRECIMIENTO 1 semana a temperatura ambiente (21-28°C aproximadamente):
Aspergillus niger MKTA 16404, Correcto, Colonias negras y esporuladas en 5 días.
Candida albicans MKTA 10231, Correcto.

PRESENTACION: MEDIO DESHIDRATADO

NOTA: Se utiliza principalmente para el cultivo de bacterias y hongos del suelo. La única fuente de Carbono es la Sacarosa y la de Nitrógeno es el nitrato sódico. El tiempo y la temperatura de incubación varía según las especies buscadas, aunque pueden servir de guía 1 2 semanas a 15-25 ºC aproximadamente.

MODO DE EMPLEO E INTERPRETACION DE RESULTADOS

Sembrar en superficie 0,1 ml de muestra y su serie de diluciones decimales. Incubar 1-2 semanas a 15-25 ºC aproximadamente.

El usuario es el único responsable de la eliminación de los microorganismos según la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.

Si desea más información sobre nuestros MEDIO CZAPEK DOX AGAR, rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

https://www.microkit.es/fichas/CZAPEK-DOX-AGAR.pdf

LAURYL SULFATE TRYPTOSE BROTH

Caldo Lauril Sulfato Triptosa (LST Broth): El Estándar para Coliformes y E. coli

El Caldo Lauril Sulfato Triptosa (LST Broth) es el medio clásico de Caldo NMP (Número Más Probable) utilizado para la detección y enumeración de bacterias coliformes en muestras de agua, lácteos y alimentos. Este medio es un estándar reconocido y se aplica en metodologías oficiales como ISO 4831:1991 e ISO 7251:1993.

  • Innovación en el Recuento: Es importante destacar que el método LST tradicional, que utiliza campanas Durham, puede ser sustituido por medios más modernos como Colicult o Lauryl Broth MUG, que simplifican el proceso al eliminar la necesidad de las campanas Durham.
Izda: Sin crecimiento. Dcha: Coliformes (turbidez y gas en la campana Durham).

Izda: Sin crecimiento.
Dcha: Coliformes (turbidez y gas en la campana Durham).

 

1. Composición y Principio de Acción

El LST Broth proporciona un entorno nutricional rico que estimula el crecimiento de los coliformes, al mismo tiempo que inhibe la flora bacteriana acompañante.

Componente Cantidad por Litro (g) Función Principal
Triptosa 20.00 g Fuente primaria de Nitrógeno de alto valor biológico.
Lactosa 5.00 g Carbohidrato fermentable, indicador de coliformes.
Cloruro Sódico 5.00 g Mantiene el equilibrio osmótico.
Fosfato Di/Monopotásico 5.50 g Sistema tampón para mantener el pH.
Lauril Sulfato Sódico 0.10 g Agente selectivo que inhibe el crecimiento de la mayoría de las bacterias Gram positivas.

Fórmula por Litro

pH final: 6.8 +/- 0.2

2. Preparación y Control de Calidad

Preparación del Medio Deshidratado

  1. Disolución: Disuelva 35.7 g del medio deshidratado en 1 litro de agua destilada.
  2. Esterilización: Autoclave a 121 °C durante 15  minutos.
  • Código Deshidratado: DMT064.

Control de Calidad y Rendimiento

Nuestra fórmula deshidratada es un Polvo grueso, Tostado, que resulta en un medio Estéril, color Paja una vez preparado.

Cepa de Referencia Resultado de Crecimiento Detección de Gas (en Campana Durham)
Escherichia coli 25922 Turbidez en los 9 tubos 9 tubos con gas en1/3 de la campana)
Citrobacter freundii 43864 Turbidez en los 9 tubos 9 tubos con gas en 1/3 de la campana)
Salmonella abony 6017 Turbidez en los 9 tubos Sin producción de gas (Falso negativo de Coliforme)
Enterococcus faecalis 29212 Inhibido Sin turbidez ni gas

3. Protocolo de Siembra e Interpretación

Siembra

Utilice el método del Número Más Probable (NMP) para la enumeración.

  1. Inoculación Estándar: Inocule 1 mL de la muestra (y su serie de diluciones decimales) en los tubos.
  2. Inoculación de Alto Volumen: Para volúmenes de muestra grandes 10 mL, utilice tubos con el medio preparado a doble concentración.
  3. Incubación General (Coliformes): Incubar a 32 -35 °C aproximadamente, durante 24-48 horas.
  4. Incubación para E. coli (Coliformes Fecales): Incubar a 44  °C aproximadamente.

Interpretación de Resultados

La reacción positiva en el LST Broth se basa en la fermentación de la lactosa:

  • Resultado Positivo (Presencia de Coliformes): Se confirma por la turbidez del medio (crecimiento) acompañada de la aparición de gas retenido en la campana Durham en un periodo de 48 horas.
  • Resultado Negativo (Ausencia de Coliformes): Ausencia de turbidez o presencia de turbidez sin gas.

Recomendación de Confirmación:

Se recomienda la confirmación posterior de los tubos positivos en Caldo Bilis Verde Brillante (BGBL). Una alternativa más eficiente es sustituir directamente el LST Broth por el Lauryl Broth MUG o sembrar en un un medio Cromofluorogénico (Colicult) o agar cromogénico (MugPlus), que permiten la confirmación y enumeración simultánea de E. coli y demás coliformes

Presentación y Uso

  • Presentación: Tubos preparados con campana Durham 9 mL y Medio Deshidratado.
  • Uso: Medio ideal para la detección y enumeración de coliformes en el control de calidad de aguas, lácteos y otros productos alimentarios.

Almacenamiento: Para mantener la integridad del producto, agite el bote antes de usar y manténgalo bien cerrado en un lugar seco, fresco y oscuro.

El usuario es el único responsable de la eliminación de los microorganismos según la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.

Si desea más información y precios actualizados sobre nuestros MEDIO LAURYL SULFATE TRYPTOSE BROTH,  póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

https://www.microkit.es/fichas/LAURYL-SULFATE-TRYPTOSE-BROTH.pdf

M ENDO BROTH

ENDO: M‑ENDO BROTH en el caldo clásico de filtración de membrana para la detección y recuento de coliformes (Incl.E.coli) en aguas naturales

Detección y enumeración de Coliformes por el método de filtración de membrana

endo broth

 COMPOSICIÓN

  • Triptona                             5,000 g
  • Peptona de carne             5,000 g
  • Triptosa                            10,000 g
  • Extracto de levadura        1,500 g
  • Cloruro sódico                   5,000 g
  • Lactosa                             12,500 g
  • Fosfato dipotásico             4,375 g
  • Fosfato monopotásico      1,375 g
  • Sulfito sódico                      2,100 g
  • Desoxicolato sódico          0,100 g
  • Lauril sulfato sódico          0,050 g
  • Fucsina básica                    1,050 g

(Fórmula por litro)      pH final: 7,2 ± 0,1

PREPARACIÓN

Disolver 48 g. en 1 litro de agua destilada fría conteniendo 20 ml. de etanol. Esterilizar por filtración o bien 1 minuto a 116 ºC. NO sobrecalentar.

PRECAUCION: La Fucsina básica es potencialmente cancerígena.

Proteger rigurosamente el medio preparado de la luz.

PARA USO EN LABORATORIO. TOXICO. Ensucia fácilmente y es difícil de limpiar (J usar lejía en caliente). MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO, EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO. AGITE EL BOTE ANTES DE USAR. DESHIDRATADO CODIGO: DMT168

Nueva imagen (4)

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

DESHIDRATADO: Polvo grueso, Púrpura

PREPARADO: Estéril, Rosa, luego Rojo vino precipitado

CONTROL DE CRECIMIENTO 24-48 h a 37°C aproximadamente:

  • Enterobacter aerogenes MKTA 9489, Negativo.
  • Escherichia coli MKTA 25922, Moderado, Colonia rojo rosadas, centro negro y brillo metálico verdoso.
  • Salmonella abony MKTN 6017, Moderado, colonias incoloras sin brillo metálico.
  • Pseudomona aeruginosa MKTA 9027, Moderado, colonias incoloras sin brillo metálico.

 

PRESENTACIÓN: VIALES FM, MEDIO DESHIDRATADO

 

NOTA: Medio extraordinariamente selectivo para la enumeración de coliformes en agua y otros productos por la técnica de Filtración de Membrana (FM), de acuerdo con la APHA. Los coliformes viran el medio a púrpura, con mayor o menor brillo metálico (E. coli, máximo reflejo).

 

SIEMBRA

Añadir un vial o 2 ml de medio sobre un cartón absorbente previamente colocado dentro de una placa Petri estéril de 55 mm de diámetro, depositar encima la membrana de filtración (tras filtrar la muestra) con cuidado de que no se formen burbujas entre la membrana y el cartón con medio. Incubar a 35-37 ºC aproximadamente, durante 24-48 horas.

 

INTERPRETACIÓN

Las colonias rojo‑violáceas son de coliformes; las de otros colores son de otros microorganismos.  PRECAUCIONES: 1‑ La fucsina básica es potencialmente cancerígena: no tocar ni inhalar el medio en polvo o preparado. 2‑ Conservar a 4‑25 ºC protegido de la luz, para preservar su coloración característica. 3‑ No sobrecalentar. 4- El medio es excesivamente selectivo, por lo que recomendadmos su sustitución por MUGPLUS Cfs. Broth (viales y viales pinchables, no existe deshidratado

 

Si desea más información sobre nuestros ENDO BROTH, rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

https://www.microkit.es/fichas/ENDO-BROTH.pdf

 

CROSSLEY MILK MEDIUM

CROSSLEY MILK MEDIUM es un medio para diferenciar Clostridios y otros anaerobios en comidas enlatadas y otras muestras

Detección de anaerobios en alimentos enlatados. Identificación de clostridios.

COMPOSICIÓN

Skim milk 100,0 g
Peptone 10,0 g
Bromcresol Purple 0,1 g
(Fórmula por litro)
pH final: 7,2 ± 0,2

Izda: Tubo parafinado, sin inocular . Dcha: Tubo con Cl.perfringens, amarillo, cuajado y con gas que separa el tapón de parafina

Izda: Tubo parafinado, sin inocular .
Dcha: Tubo con Cl.perfringens, amarillo, cuajado y con gas que separa el tapón de parafina

PREPARACIÓN

Añadir a 110 g de medio un poco de agua destilada y remover hasta que se forme una pasta homogénea. Ir añadiendo agua destilada hasta 1 litro sin parar de remover. Esterilizar por vaporización a 121 ºC durante 5 minutos. Repetir tres veces para eliminar las esporas que pueda contener el medio.

MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO.
AGITE EL BOTE ANTES DE USAR.
PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO.
DESHIDRATADO CODIGO: DMT045

PRESENTACIÓN: MEDIO DESHIDRATADO, TUBOS PREPARADOS PARAFINADOS.

MODO DE EMPLEO E INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS

Fundir la parafina a 98 ºC. Inocular 1 g de muestra en un tubo con 9 ml y agitar vigorosamente. Reposar el tubo vertical para que la parafina forme un tapón de anaerobiosis. Incubar 3-4 días a 37 ºC aproximadamente.

  • Clostridium perfringens produce viraje a amarillo y mucho gas (parafina muy separada del caldo).
  • Clostridium centrosporogenes produce coagulación sin viraje y poco gas.
  • Clostridium putrificum, Clostridium sporogenes, Clostridium novyi y Clostridium histolyticum producen suero parduzco sin acidificación y con sedimento negro.
  • Clostridium sphenoides produce acidificación ligera (amarillo-pálido) con coágulo blanco y suero, y poco gas.
  • Clostridium butyricum produce acidificación (amarillo brillante) con mucho gas y coágulo.
  • Clostridium tertium produce acidificación y coagulación tumultuosa, con poco gas y suero espeso.
  • Bacillus cereus, Bacillus coagulans y Bacillus megaterium producen ligera acidificación y coagulación.
  • Bacillus subtilis produce alcalinización (violeta intenso).

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

DESHIDRATADO: Polvo grueso, cremoso
PREPARADO: Estéril, Verdoso-Parduzco-lila, precipitado.

CONTROL DE CRECIMIENTO 3-5 días a 37°C aproximadamente:

  • Bacillus subtillis MKTA 6633, Bueno, Azul.
  • Bacillus cereus MKTA 10876, Bueno, Azul.
  • E.coli. MKTA 25922, Bueno, Amarillo y cuaja la leche.
  • Clostridium perfringens MKTA 13124, Bueno (lento), Amarillo y cuaja la leche/ gas.

El usuario es el único responsable de la eliminación de los microorganismos según la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.

Si desea más información sobre nuestros MEDIO CROSSLEY MILK MEDIUM , rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

https://www.microkit.es/fichas/CROSSLEY-MILK-MEDIUM.pdf

LAURYL PRESENCE/ABSENCE E.COLI BROTH MUG

LAURYL E.COLI BROTH MUG es un caldo fluorogénico para recuento NMP o detección P/A de E.coli/Coliformes, precursor del Colicult MCC

Detección y enumeración de coliformes y E.coli en 24 horas (ISO 11866-1:2005)

COMPOSICIÓN

Triptosa 20,00 g
Hidrogenofosfato di-K 2,75 g

1: E.coli (gas y fluorescencia), 2: Coliformes incluido E.coli O157 (gas sin fluorescencia), 3: Sin inocular, 4: E.coli (gas y fluorescencia), 5: E.coli Cepa Lactosa negativo (sin gas pero con fluorescencia).

1: E.coli (gas y fluorescencia), 2: Coliformes incluido E.coli O157 (gas sin fluorescencia), 3: Sin inocular, 4: E.coli (gas y fluorescencia), 5: E.coli Cepa Lactosa negativo (sin gas pero con fluorescencia).

K dihidrogenofosfato 2,75 g
Cloruro sódico 5,00 g
Lactosa 5,00 g
Laurilsulfato sódico 0,10 g
Triptófano 1,00 g
MUG 0,10 g
(Fórmula por litro)
pH final: 6,8 ± 0,1

PREPARACIÓN

Disolver 36,5 g de medio en 1 litro de agua destilada. Autoclavar a 121 ºC durante 15 minutos.

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO.
MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO.

DESHIDRATADO CODIGO: DMT161

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

DESHIDRATADO: Polvo grueso, Beige                                                                                                          PREPARADO: Estéril, Beige

EVALUACIÓN DEL RENDIMIENTO ISO/TS 11133-2 24-48 h a 30-37 ºC, aplicando el método ISO 4831, o el indicado en el Manual MICROKIT actualizado:

  • Escherichia coli MKTA 25922, 9 tubos turbios forman gas en 1/3 de la campana Durham y son fluorescentes bajo luz de 366 nm, a 37 ºC y a 44 ºC..
  • Citrobacter freundii MKTA 43864, 9 tubos turbios forman gas en 1/3 de la campana Durham, no fluorescentes.
  • Salmonella abony MKTN 6017, 9 tubos turbios pero sin gas ni fluorescencia.
  • Enterococcus faecalis MKTA 29212, Inhibido, no hay turbidez ni gas.

Las colecciones TIPO prohiben el uso de su referencia por lo que indicamos la nuestra, directamente trazable a la colección TIPO.

PRESENTACIÓN: MEDIO DESHIDRATADO.
NOTA: El MUG añadido al caldo lauryl-sulfato permite la detección y recuento (NMP) rápidos de E.coli de forma confirmativa.

SIEMBRA

Inocular 9 tubos por el método del Número Más Probable (MPN) si se desea recuento. O bien 1 ml de muestra si se desea la detección cualitativa. También puede usarse una membrana de filtración enrollada si la muestra es líquida. O bien colocar la membrana sobre un cartón absorbente embebido en medio dentro de una placa Petri. Incubar a 30 37 ºC aproximadamente, durante 18 48 horas (desde 4 h. si se parte de muestra muy contaminada por E.coli). Incubar a 44°C aproximadamente para coliformes fecales.

INTERPRETACIÓN

La fermentación de lactosa (turbidez) con producción de gas (campana Durham) son indicadores de coliformes. Además, la fluorescencia con luz de 366 nm (linterna MICROKIT) es indicadora presuntiva de E.coli. Confirmar instantáneamente con la prueba del indol, añadiendo unas gotas de reactivo de Kovacs y esperando un viraje a rojo en superficie, confirmativo de E.coli. El 5% de las cepas de E .coli son anaerogénicas, por lo que si confirmamos también los tubos sin gas, pero fluorescentes, con la prueba del indol, este medio es más efectivo que otros más clásicos.

El usuario es el único responsable de la eliminación de los microorganismos según la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.

Si desea más información sobre nuestros MEDIO LAURYL PRESENCE/ABSENCE E.COLI BROTH MUG  , rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

https://www.microkit.es/fichas/LAURYL-BROTH-MUG.pdf

https://www.microkit.es/monograficos/11-E.coli-y-dem–s-coliformes-monograf–a.pdf

 

M ENDO AGAR

M-ENDO AGAR

Versión sólida del Caldo M-Endo para detección y recuento de E. coli y coliformes por filtración de membrana (MF)
Medio selectivo y diferencial recomendado por la ICMSF

 

endo

DESCRIPCIÓN GENERAL

El M-ENDO AGAR es la versión sólida del Caldo M-Endo, diseñada para la detección y enumeración de coliformes y Escherichia coli mediante el método de filtración por membrana (MF) en aguas y alimentos, según las recomendaciones de la ICMSF (International Commission on Microbiological Specifications for Foods).

Su formulación permite una detección rápida, selectiva y diferencial basada en la fermentación de lactosa y la reducción de sulfito, evidenciada por la aparición de colonias con brillo metálico característico en E. coli.

Es un medio altamente selectivo gracias a la presencia de fucsina básica y sulfito sódico, que inhiben parcialmente la flora acompañante Gram positiva y no fermentadora de lactosa.


COMPOSICIÓN (por litro)

Componente Cantidad
Peptona pépsica de carne 10,0 g
Lactosa 10,0 g
Fosfato dipotásico 3,5 g
Sulfito sódico 2,5 g
Fucsina básica 0,5 g
Agar-agar 15,0 g

pH final: 7,5 ± 0,2


PREPARACIÓN DEL MEDIO

  1. Disolver 41,5 g de medio en 1 litro de agua destilada que contenga 20 ml de etanol al 95%.

  2. Calentar con agitación hasta ebullición para asegurar su completa disolución.

  3. Esterilizar 1 minuto a 116 ºC, minimizando los tiempos de subida y bajada de temperatura del autoclave.

  4. Enfriar a 45–50 ºC antes de verter en placas de Petri estériles.

⚠️ Precaución:

  • Medio tóxico (contiene fucsina básica).

  • No inhalar ni tocar directamente.

  • Limpiar derrames o manchas con lejía caliente.

  • Proteger de la luz y no sobrecalentar.


CONDICIONES DE ALMACENAMIENTO

  • Mantener el bote bien cerrado, en lugar seco, fresco y oscuro.

  • Agitar antes de usar.

  • Uso exclusivo en laboratorio.

Código: DMT051

Aspecto del producto:

  • Deshidratado: Polvo grueso, color púrpura.

  • Preparado: Medio estéril, rosáceo con posible precipitado.


CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

El control de calidad se realiza en nuestro laboratorio. Se recomienda repetirlo en cada instalación cuando cambien las condiciones (p. ej. más de 3 meses sin uso, limpieza del laboratorio, exposición a altas temperaturas o alteración visual del producto).

Evaluación del rendimiento (24–48 h a 37 ºC):

Microorganismo Resultado esperado Observaciones
Escherichia coli MKTA 25922 Moderado Colonias rojo-rosadas con centro negro y brillo metálico verdoso
Enterobacter aerogenes MKTA 9489 Negativo No desarrolla brillo metálico
Salmonella abony MKTN 6017 Moderado Colonias incoloras, sin brillo metálico
Pseudomonas aeruginosa MKTA 9027 Moderado Colonias incoloras, sin brillo metálico

PRESENTACIÓN DISPONIBLE

  • Medio deshidratado, formato estándar de laboratorio.


MODO DE EMPLEO

Método de siembra:

  1. Fundir el medio y verter en placas estériles.

  2. Dejar enfriar hasta solidificar.

  3. Opción A: Sembrar en superficie a partir de tubos positivos de:

    • Caldo Bilis Verde Brillante 2%

    • Caldo Lactosado

    • Caldo Lauril Sulfato Sódico.

  4. Opción B: Depositar cuidadosamente la membrana filtrante sobre la superficie del agar, evitando burbujas.

  5. Incubar a 35–37 ºC durante 24–48 horas.


INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS

Tipo de microorganismo Apariencia de colonias Observaciones
Coliformes (lactosa +) Rojo-violáceas Reflejo metálico variable
E. coli Rojo-rosadas con centro negro y brillo metálico verdoso Típico
No fermentadores de lactosa Incoloras o rosa pálido Sin brillo metálico
Gram positivos Parcialmente inhibidos Por sulfito sódico y fucsina básica

⚠️ La fucsina básica es potencialmente cancerígena. Manipular con guantes, mascarilla y gafas de seguridad.
Medio altamente selectivo.
Alternativa menos tóxica y actualizada a la legislación actual de aguas de consumo y envasadas: MUG PLUS Cfs. Agar (DMT400-).


APLICACIONES PRINCIPALES

  • Detección y recuento de coliformes totales y E. coli en:

    • Aguas potables, naturales y residuales (método de filtración de membrana).

    • Alimentos y bebidas.

    • Productos cosméticos o farmacéuticos con control microbiológico.


INFORMACIÓN ADICIONAL

Ficha técnica M-ENDO AGAR (PDF)
Correo: microkit@microkit.es
Teléfono: 91 897 46 16