LISTERIA OXFORD AGAR (BASE) es un medio de Aislamiento selectivo de Listeria en alimentos, sobre todo en lácteos (ISO 11290-1, ISO 11290-2)

Aislamiento selectivo de Listeria en alimentos, preferiblemente en lácteos (ISO 11290-1:1997, ISO 11290-2:2000)

COMPOSICIÓN

Listeria monocytogenes

• Peptona de carne 23,00 g
• Almidón de maíz 1,00 g
• Cloruro sódico 5,00 g
• Esculina 1,00 g
• Citrato férrico amónico 0,50 g
• Cloruro de Litio 15,00 g
• Agar-agar 14,00 g

(Fórmula por litro)
pH final: 7,0 ± 0,2.

PREPARACIÓN

Disolver 29,2 gramos en 500 ml de agua bidestilada. Calentar, agitando, hasta ebullición, para la total homogeneización. Autoclavar a 121 ºC durante 15 minutos. Enfriar a 50 ºC y añadir 10 ml de Suplemento Oxford estéril (SBH258) (=437 mg). Mezclar bien y verter en placas Petri.

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO
AGITE EL BOTE ANTES DE USAR.
MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO

DESHIDRATADO CODIGO: DMT194

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

DESHIDRATADO: Polvo fino, crema
PREPARADO: Estéril, crema

EVALUACIÓN DEL RENDIMIENTO ISO/TS 11133-2: 24-48 h a 37 ºC, aplicando el método UNE EN ISO 11290, o el indicado en el Manual MICROKIT actualizado)

• Listeria monocytogenes MKTA 7644, Crecimiento correcto, Colonias grises-negras con halo negro. PR > 0,5, en concreto >80-108% de colonias respecto al número de ufc certificadas e inoculadas en TSA; esta variabilidad de la productividad depende de la composición y carga de la flora acompañante inoculada.
• Escherichia coli MKTA 25922, Inhibido completamente: Ni una sola colonia.
• Enterococcus faecalis MKTA 29212, Inhibido completamente: Ni una sola colonia
• Candida albicans MKTA 10231, Inhibido completamente: Ni una sola colonia

Las colecciones TIPO prohiben el uso de su referencia por lo que indicamos la nuestra, directamente trazable a la colección TIPO.

PRESENTACIÓN: MEDIO DESHIDRATADO

Recomendado por FIL e IDF para lácteos.

MODO DE EMPLEO E INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS

Sembrar en superficie. Incubar 24-48 horas a (30) 37 ºC aproximadamente, en aerobiosis o en microaerofilia (KKM037, KKM101). Listeria crece con colonias menores de 1 mm, negras y con halo pardo-negruzco, (y cóncavas). Tomar 5 colonias típicas (esculina positiva) para realizar confirmaciones inmunológicas (KMB402) y ver si producen -hemólisis en agar sangre (L.monocytogenes).

https://www.microkit.es/fichas/LISTERIA-OXFORD-AGAR.pdf

Ver medios más modernos, rápidos y efcicientes de la actualidad, como el Cromocytogenes Agar (O&A)

El usuario final es el único responsable de eliminar los microorganismos de acuerdo con la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.

Si desea más información sobre nuestros LISTERIA OXFORD AGAR (BASE) , rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

https://www.microkit.es/monograficos/3-Listeria-monocytogenes-monograf–a.pdf

HEKTOEN ENTERIC AGAR es un medio clásico para la detección y diferenciación de Enterobacterias (UNE-EN ISO 6579:2003)

COMPOSICIÓN  

• Peptona de carne                12,00 g
• Extracto de levadura            3,00 g
• Sales biliares                          9,00 g
• Lactosa                                 12,00 g
• Sacarosa                              12,00 g
• Salicilina                                2,00 g
• Cloruro sódico                     5,00 g
• Tiosulfato de sodio             5,00 g
• Citrato férrico amoniacal   1,50 g
• Azul de bromotimol            0,06 g
• Fucsina ácida                       0,04 g
• Agar‑agar                           15,00 g

(Fórmula por litro)    pH final: 7,4 ± 0,2.

PREPARACIÓN

Disolver 76´5 g de medio en 1 litro de agua destilada. Calentar agitando hasta ebullición. Mantener la ebullición durante 2 minutos. Se puede autoclavar a 116 ºC durante 5 minutos, enfriando rápidamente. Si queda lleno de precipitados, desaparecerán en 48 h de contacto con el aire, funcionando perfectamente.

PRECAUCIÓN: CONTIENE SALES BILIARES.

MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO,

FRESCO Y OSCURO. AGITE EL BOTE ANTES DE USAR. PARA USO EN LABORATORIO. DESHIDRATADO CODIGO: DMT059

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

DESHIDRATADO: Polvo fino, Verdoso

PREPARADO: Estéril, Verde‑pardorojizo

EVALUACIÓN DEL RENDIMIENTO ISO/TS 11133-2 (Aplicando el método ISO 6579, ISO 12824, o el indicado en el Manual MICROKIT actualizado), 24-48 h a 37 ºC:

Salmonella abony MKTN 6017, Colonias negras, medio azul. PR > 0,5, en concreto >50-96% de colonias respecto al número de ufc certificadas e inoculadas en TSA; esta variabilidad de la productividad depende de la composición y carga de la flora acompañante inoculada. Si procede de enriquecimiento, buen crecimiento en estría.

• Shigella flexneri MKTA 12022, colonias incoloras, medio verde, buen crecimiento.
•  E.coli MKTA 25922, Inhibición parcial o total, colonias y medio color salmón.
• Enterococcus faecalis MKTN 775, Inhibición completa: Ni una sola colonia.
• Staphylococcus aureus MKTA 6538P, Inhibición completa: Ni una sola colonia.

Las colecciones TIPO prohiben el uso de su referencia por lo que indicamos la nuestra, directamente trazable a la colección TIPO.

PRESENTACIÓN: FRASCOS 100 ml, MEDIO DESHIDRATADO, DESINFECTEST-EC

NOTA: Medio de aislamiento diferencial de las enterobacterias patógenas. Excelente para la detección de Salmonella‑Shigella.Proteus no invade la placa. La Fucsina Acida y el Azul de Bromotimol permiten una diferenciación muy evidente. Para mayor selectividad de Salmonella y Shigella es más recomendable usar SS Agar y XLD Agar.

SIEMBRA

Aplicar la Placa de Contacto sobre la superficie durante un instante y sin mover, o bien introducirla en un aparato para control del aire. Fundir los frascos para preparar placas. Estas se siembran en superficie. Incubar a 37 ºC aproximadamente, durante 24‑48 horas.

INTERPRETACIÓN

La fermentación de la Lactosa, Sacarosa y Salicina, y la producción de H₂S permiten diferenciar: Colonias amarillo‑salmón: Escherichia, Citrobacter, Klebsiella, Enterobacter, Arizona, Serratia. Idem con centro negro: Proteus vulgaris. Verdes o azules: Shigella, Salmonella, Providencia, Proteus morganii, Proteus rettgeri. Idem con centro negro: Proteus mirabilis, Salmonella. Azules o pardas, pequeñas: Pseudomonas.

https://www.microkit.es/fichas/HEKTOEN-ENTERIC-AGAR.pdf

https://www.microkit.es/monograficos/5-Salmonella-y-Shigella-monograf–a.pdf

MALT EXTRACT AGAR es un agar extracto de malta para la detección, enumeración y aislamiento de levaduras y mohos.

COMPOSICIÓN

• Extracto de malta 30 g
• Peptona de Soja 3 g
• Agar agar 15 g

(Fórmula por litro)
pH final: 5,4 ± 0,2 tras ajustarlo con ácido láctico

PREPARACIÓN

Disolver 48 g en 1 litro de agua destilada. Calentar agitando hasta ebullición. Autoclavar a 121ºC durante 15 minutos (o mejor aún, 116 °C, 15 minutos).Para un óptimo crecimiento fúngico, enfriar a 55°C tras autoclavar y acidificar con Ácido Láctico estéril al 10% (SAJ003). No recalentar el medio.  Se puede añadir 1 ml/l de glicerol (SDA073) para evitar el desecamiento de placas con cultivos lentos.

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN  LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO.  AGITE EL BOTE ANTES DE USAR.

DESHIDRATADO CODIGO: DMT226

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

DESHIDRATADO: Polvo fino, Tostado
PREPARADO: Estéril, Ámbar

CONTROL DE CRECIMIENTO 3-5 días a temperatura ambiente (21-28°C aproximadamente):

• Aspergillus niger MKTA 16404, Correcto, Colonias negras y esporuladas en 5 días. Con respecto a SDA standarizado*, recuento 129 %, pero de forma selectiva.
• Candida albicans MKTA 10231, Correcto. Con respecto a SDA standarizado*, recuento 83 %, pero de forma selectiva.
• Saccharomyces cerevisiae MKTA 9763, Correcto. Con respecto a SDA standarizado*, recuento 109 %, pero de forma selectiva.
• Staphylococcus aureus MKTA 6538P, Parcialmente Inhibido.
• E.coli MKTA 25922, Parcialmente Inhibido.

* El que cumple con recuperación superior al 92-125% con respecto a cepas cuantitativas trazables a la cepa tipo.

PRESENTACIÓN: MEDIO DESHIDRATADO

MODO DE EMPLEO E INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS

Agite bien la muestra segundos antes de la siembra. Inocular 0,1 ml de muestra y su serie de diluciones decimales, en superficie, repartiendo con triángulo de vidrio (VRR154) o asas desechables de Digralsky (VCL155). Incubar 3-5 días a 21-25ºC aproximadamente. Contar las colonias no filamentosas de levaduras y filamentosas de mohos.

El usuario final es el único responsable de eliminar los microorganismos de acuerdo con la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.

Si desea más información sobre nuestros MALT EXTRACT AGAR, rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

https://www.microkit.es/fichas/MALT-EXTRACT-AGAR.pdf

Ver tambien este mismo medio en versión selectiva (con cloranfenicol) para evitar los falsos positivos de bacterias

LISTERIA MICROBLUE AGAR (BASE) Medio modificado para el aislamiento selectivo de las especies de Listeria, y diferencial para L.monocytogenes (ISO 11290-1:1997, ISO 11290-2:2000 MODIFICADAS)
Medio que en su día supuso una revolución ante el Palcam o el Oxford, aunque actualmente es más recomendable el Cromocytogenes por su rapidez.

COMPOSICIÓN

• Peptona de carne 10,0 g
• Extractode carne 1,00 g
• Extracto de levadura 3,00 g
• Almidón de maíz 1,00 g
• Glucosa 0,50 g
• Mannitol 10,0 g
• Cloruro de Litio 15,0 g
• Cloruro Sódico 5,00 g
• Mezcla cromogénica A 0,02 g
• Agar-Agar 12,0 g

Listeria monocytogenes, amarilla sin viraje en 24h

(Fórmula por litro)
pH final: 6,8 ± 0,2

En vial aparte 50 ml:
Mezcla cromogénica B 5,00 g
Ceftacidina 20,00 mg
Polimixina B Sulfato 10,00 mg
Acriflavina 20,00 mg
(Fórmula por litro final de medio)

PREPARACIÓN

Fundir en agua hirviendo un frasco con 100 ml de medio. No sobrecalentar: en cuanto esté homogéneamente licuado, transparente, debe retirarse del baño María. Si el medio, violeta, ha virado a verdoso o amarillento durante su almacenamiento o fusión, por acidificación atmosférica, es imprescindible ajustar ahora el pH con NaOH 1 N hasta que el medio esté violeta.

Enfriar a 50°C, hasta que el frasco esté caliente pero sea soportable por la mano, y aún esté líquido. Añadir entonces, a cada frasco de 100 ml de medio base, 2 ml del suplemento estéril MICROBLUE (SMT260), pinchando con jeringa el frasco de 50 ml de suplemento (c.s.p. 25 frascos x 100 ml de MICROBLUE Agar BASE, para elaborar 125-175 placas).

Agitar bien y verter sobre 5-7 placas Petri estériles. Dejar solidificar y una vez frío voltear las placas para que el agua de condensación no barra la superficie del medio. Cerrar con cinta de sellado (Ref. MICROKIT: PARAFIL). Las placas que no se vayan a usar en el día se guardan en nevera (4-15°C) y en total oscuridad hasta su utilización (máximo una semana). Si se desea sembrar en masa, verter 1 ml de muestra cuando se están elaborando las placas.

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO. MANTENGA LOS FRASCOS DE AGAR Y DE SUPLEMENTO A 4-15°C, EN TOTAL OSCURIDAD. PRESENTACIÓN: MEDIO SÓLIDO PREPARADO EN FRASCO ESTÉRIL 100 ml, CÓDIGO RPL073. SUPLEMENTO LÍQUIDO PREPARADO EN FRASCO ESTÉRIL 50 ml, CÓDIGO SMT260

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar el laboratorio, tras conservar a alta Tª por fallos de refrigeración, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de su etiqueta…)

DESHIDRATADO: No existe. PREPARADO: Agar base violeta, homogéneo, traslúcido. Suplemento amarillo, translúcido, puede contener precipitados por su elevada concentración, que se disuelven tras agitar y añadir al medio base.

CONTROL DE CRECIMIENTO (48 h a 37°C aproximadamente):

• Listeria monocytogenes MKTN 7644, correcto, colonias color amarillo limón o crema en 24 horas, con halo amarillo a las 48h. Con respecto a PCA estandarizado*, recuento 97-103%, pero de forma selectiva.
• Listeria innocua MKTN 12210, correcto, colonias color amarillo limón o crema con halo amarillo en 24 horas. Con respecto a PCA estandarizado*, recuento 103%, pero de forma selectiva.
• Listeria ivanovii MKTA 19119, Listeria grayi MKTA 19120, Listeria seeligeri ATCC MKTA y
• Listeria welshimeri MKTA 35897, correcto, colonias blancas, amarillas, naranjas o violáceas, pero sin halo amarillo en 48 horas. Con respecto a PCA estandarizado*, recuento 92% (L.ivanovii), 87% (L.grayi) y 83% (L.welshimeri), pero de forma selectiva.
• Staphylococcus aureus MKTA 25923, parcialmente inhibido, colonias tardías (48 horas) blanquecinas o amarillas con medio amarillo. Con respecto a PCA estandarizado*, recuento 39%.
• Enterococcus faecalis MKTA 29212, parcialmente inhibido, colonias tardías (48 horas) blanquecinas. Con respecto a PCA estandarizado*, recuento 22%.
• Pseudomonas aeruginosa MKTA 10145, inhibido
• Proteus vulgaris MKTA 13315, parcialmente inhibido, colonias tardías amarillas, medio amarillo. Con respecto a PCA estandarizado*, recuento 21%.
• Bacillus cereus MKTA 10876, colonias céreas, blanquecinas. Con respecto a PCA estandarizado*, recuento 78%.

* El que cumple con recuperación superior al 92-125% con respecto a cepas cuantitativas trazables a la cepa tipo. Incertidumbres detectadas entre todos los lotes a lo largo de un año (la mayoría de la incertidumbre se debe a la cepa y a la proporción de cepas acompañantes inoculadas, no al medio).

MODO DE EMPLEO E INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS

Para aislamiento, sembrar el caldo de enriquecimiento en superficie, por agotamiento. Para recuento, sembrar 0,1 ml del caldo por extensión, con asa de Digralsky (VRR154, VCL155) o bien 1 ml en masa cuando se están elaborando las placas. Incubar 24-48 horas a 35-37°C aproximadamente. Medio altamente selectivo para el género Listeria, y diferencial para L.monocytogenes: sólo L.monocytogenes crece con colonias amarillo-anaranjadas (desde caldo LEB, crema desde Fraser), con halo amarillo en el medio en 48h. Alguna cepa de L.innocua y de L.welshimeri podría crecer con colonias amarillas (desde caldo LEB, crema desde Fraser), en el primer caso con halo amarillo en 24 h y en el segundo sin halo; para descartarlas y confirmar Listeria monocytogenes, añadir sobre la colonia presuntiva un disco de Aminoacyl--naftilamida (M-IDENT®-DISCOS L.monocytogenes KIN023). Incubar 2 horas a 35-37°C aproximadamente.

Añadir 2 gotas de solución de p-dimetilaminobenzaldehido (gotero del kit KIN023). Si se desarrolla inmediatamente en el disco un suave color asalmonado, o no se desarrolla ningún color, se confirma la colonia como perteneciente a la especie Listeria monocytogenes. El resto de especies de Listeria generan un viraje del disco a amarillo. Un estudio interno del medio MICROBLUE con 40 cepas indica que la selectividad es del 97,5 % para el género Listeria y el carácter diferencial resultante fue: colonias amarillo-anaranjadas en 24 h, con halo amarillo en 48 h, y sin viraje a amarillo de los discos, en el 100% de las cepas de L.monocytogenes y en el 0% en cepas de Listeria sp. non monocytogenes.

Listeria monocytogenes:
El disco vira a rosa-blanco

El usuario final es el único responsable de eliminar los microorganismos de acuerdo con
la legislación medioambiental vigente. Autoclavar o inundar en lejía antes de desechar a la basura.

Si desea más información sobre nuestros LISTERIA MICROBLUE AGAR (BASE) , rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

http://LISTERIA-CROMOCYTOGENES-OTTAVIANI-AGOSTI-AGAR.pdf

https://www.microkit.es/monograficos/3-Listeria-monocytogenes-monograf–a.pdf

MALT AGAR (Agar Malta)

Medio APHA para la detección y recuento de hongos (levaduras y mohos)
Uso: Cultivo masivo y mantenimiento de cepas fúngicas

Fusarium graminearum, fitopatógeno, productor de tricotecenos y patógeno oportunista

Obtención de un cultivo masivo de Penicillium candidum antes de inocularlo a un embutido (fuet).

Penicillium expansum, alterativo de frutas y productor de patulina

DESCRIPCIÓN GENERAL

El MALT AGAR (Agar Malta) es el medio recomendado por la APHA (American Public Health Association) para la detección, aislamiento y recuento de hongos filamentosos y levaduras en alimentos, bebidas y muestras ambientales.

Es un medio nutritivo y ligeramente ácido, ideal tanto para la obtención de cultivos masivos de mohos y levaduras como para el mantenimiento de cepas fúngicas en laboratorio.

⚠️ No debe confundirse con el Malt Extract Agar (MEA):
El MALT AGAR base carece de peptona; si se desea convertirlo en Malt Extract Agar, basta con añadir 3,0 g/l de Peptona de Soja (DMT008).

COMPOSICIÓN (por litro)

pH final: 4,8 – 5,5

PREPARACIÓN DEL MEDIO

1. Disolver 45 g de medio en 1 litro de agua destilada.

2. Calentar con agitación hasta ebullición, asegurando su completa disolución.

3. Autoclavar a 121 ºC durante 15 minutos.

4. Ajustar el pH con ácido láctico estéril al 10% si es necesario.

5. No recalentar el medio una vez esterilizado.

CONDICIONES DE ALMACENAMIENTO

• Uso exclusivo en laboratorio.

• Mantener el bote bien cerrado, en lugar seco, fresco y oscuro.

• Agitar antes de usar.

Código: DMT077

Aspecto del producto:

• Deshidratado: Polvo fino, tostado.

• Preparado: Medio estéril, color ámbar.

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

El control de calidad se realiza en nuestro laboratorio; se recomienda repetirlo localmente si las condiciones cambian (más de 3 meses sin uso, desinfección del laboratorio, exposición a altas temperaturas, etc.).

Evaluación del rendimiento (3–5 días a temperatura ambiente, 21–28 ºC):

Observación: El medio favorece el crecimiento de hongos, limitando parcialmente el de bacterias acompañantes.

PRESENTACIÓN DISPONIBLE

• Medio deshidratado (formato estándar)

• Disponible también en presentaciones especiales bajo pedido.

MODO DE EMPLEO

1. Sembrar 0,1 ml de la muestra y sus diluciones decimales en superficie, utilizando:

   • Triángulo de vidrio (VRR154) o

   • Asa de Digralsky (VCL155).

2. Incubar durante 3–5 días a 21–25 ºC.

3. Observar y contar:

   • Levaduras: Colonias lisas, cremosas, no filamentosas.

   • Mohos: Colonias filamentosas, de aspecto aterciopelado o pulverulento.

INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS

El número total de colonias desarrolladas representa el recuento de hongos viables (levaduras + mohos) presentes en la muestra.

Ejemplos de crecimiento típico:

• Penicillium candidum: Cultivos masivos previos a su uso en embutidos.

• Penicillium expansum: Alterador de frutas, productor de patulina.

• Fusarium graminearum: Fitopatógeno productor de tricotecenos.

GESTIÓN DE RESIDUOS

El usuario final es responsable de la eliminación de microorganismos según la legislación medioambiental vigente.
Autoclavar antes de desechar.

INFORMACIÓN ADICIONAL

Ficha técnica MALT AGAR (PDF)
Correo: microkit@microkit.es
Teléfono: 91 897 46 41

LISTERIA FRASER BROTH (BASE) es el caldo ISO de enriquecimiento de Listeria monocytogenes, parecido al clásico LEB de Lovett

Caldo de Enriquecimiento para Listeria (ISO 11290-1:1996, ISO 11290-2:2000)

COMPOSICIÓN

• Peptona de carne 5.00 g
• Peptona de Caseina 5.00 g
  

• Extracto de Levadura 5.00 g
• Extracto de carne 5.00 g
• Cloruro sódico 20.00 g
  

• Fosfato disódico 12.00 g
• Fosfato monopotásico 1.30 g
• Esculina 1.00 g
• Cloruro de Litio 3.00 g
  

  

De izquierda a derecha: Fraser sin inocular y con Listeria monocytogenes.

(Fórmula por litro)
pH final: 7,2 ± 0,2

PREPARACIÓN

Disolver 57.4 g de medio en 1 litro de agua bidestilada. Autoclavar a 121 ºC durante 15 minutos. Tras enfriar por debajo de 50 ºC, disolver 20 ml de suplemento estéril Fraser-Citrato Férrico Amónico (SDA112) y 0, 10 ó 20 ml (recuento, enriquecimiento primario o enriquecimiento secundario, respectivamente) de Suplemento estéril de antibióticos Fraser-UVM2 (SDA111). Remover suavemente.

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO. AGITE EL BOTE ANTES DE USAR
MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO.
DESHIDRATADO CODIGO: DMT192

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)
DESHIDRATADO: Polvo crema
PREPARADO: Amarillo fosforescente

EVALUACIÓN DEL RENDIMIENTO ISO/TS 11133-2, 24 h a 30 ºC (SEMIFRASER) y 24-48 h a 37°C (FRASER) Tras añadir suplementos UVM-2 y/o Citrato Férrico Amónico (Aplicando el método UNE EN ISO 11290-1:y 11290-2, o el indicado en el Manual MICROKIT actualizado):

• Listeria monocytogenes MKTA 7644 (con acompañantes E.coli MKTA 25922 y Enterococcus faecalis MKTA 29212) , Correcto, ennegrece. Tras estriar una alícuota en PALCAM e incubar, aparecen más de 10 colonias típicas.
• Listeria grayii MKTA 19120, Correcto.
• E.coli MKTA 25922, Inhibido completamente: Tras incubar y estriar sobre TSA, no aparece ninguna colonia.
• Enterococcus faecalis MKTA 29212, parcialmente inhibido: tras incubar, estriar en TSA e incubar, aparecen menos de 100 colonías.
• Staphylococcus aureus MKTA 6538P, Inhibido

Las colecciones TIPO prohiben el uso de su referencia por lo que indicamos la nuestra, directamente trazable a la colección TIPO.

PRESENTACIÓN: MEDIO DESHIDRATADO BASE, TUBOS PREPARADOS 9 ml, IDEM [1/2], IDEM sin antibióticos, FRASCOS 225 ml, IDEM [1/2], IDEM sin antibióticos.

MODO DE EMPLEO E INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS

Incubar 25 g de muestra en 225 ml de caldo LEB (DMT070) o de este mismo SEMIFRASER [1/2] (DMT192, RPL229) a 29-31 ºC aproximadamente, 22-26 h. Transferir 0’1 ml de este caldo, virado o no a negro, a un tubo con 10 ml de caldo Fraser (TPL031) e incubar otras 24-48 h a 35-37 ºC aproximadamente. (Para recuento, inocular 0,1 ml de solución madre en un tubo de 10 ml de Fraser sin antibióticos (TPL030), e incubar tan sólo 1 hora a 20°C aproximadamente como revitalización). Los tubos negros son presuntos positivos, resembrar, negros o no , en Agar Oxford (DMT194), Palcam (DMT195, RPL061) o MICROBLUE (RPL073+SMT260).

http://LISTERIA-FRASER-Y-SEMIFRASER-BASE-BROTH.pdf

El usuario final es el único responsable de la destrucción de los organismos que se hayan desarrollado, según la legislación medioambiental vigente.

Si desea más información sobre nuestros LISTERIA FRASER BROTH (BASE), rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

https://www.microkit.es/monograficos/3-Listeria-monocytogenes-monograf–a.pdf

GN HAJNA ENRICHMENT BROTH  es un caldo para enriquecimiento de Gram negativos (Enterobacterias y Shigella, entre otros)

Caldo para el enriquecimiento selectivo de Gram Negativos, en concreto Enterobacterias y más específicamente Shigella, en alimentos, aguas y muestras clínicas.

COMPOSICIÓN

• Triptosa                          20,0 g
• Cloruro Sódico               5,0 g
• Citrato Sódico                5,0 g
• D-Mannitol                     2,0 g
• Dipotasio fosfato          4,0 g
• Monopotasio fosfato      1,5 g
• Dextrosa                         1,0 g
• Desoxicolato Sódico       0,5 g

(Fórmula por litro) pH final: 7,0 ± 0,2

PREPARACIÓN GN HAJNA ENRICHMENT BROTH  

Disolver 39 gramos en 1 litro de agua bidestilada. Agitar calentando hasta la completa disolución. Autoclavar a 121°C durante 15 minutos. No sobrecalentar!

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO. AGITE EL BOTE ANTES DE USAR, PARA ASEGURAR LA HOMOGENEIZACIÓN DE LOS EVENTUALES GRADIENTES DE DENSIDAD DE LOS COMPONENTES. MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO.

DESHIDRATADO CODIGO: DMT349

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO:

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…).

DESHIDRATADO: Polvo grueso, Crema PREPARADO: Estéril, Paja-ámbar

CONTROL DE CRECIMIENTO 24 horas a 35°C aproximadamente:

• Shigella flexneri MKTA 12022, crece bien. Tras estriar una alícuota en XLD e incubar, aparecen más de 10 colonias típicas.
• Salmonella typhimurium MKTA 14028, crece bien. Tras estriar una alícuota en XLD e incubar, aparecen más de 10 colonias típicas.
• Escherichia coli MKTA 25922, crece bien. Tras estriar una alícuota en XLD e incubar, aparecen más de 10 colonias típicas.
• Enterococcus faecalis MKTA 29212, parcialmente inhibido: tras incubar, estriar en TSA e incubar, aparecen menos de 10 colonías típicas.
• Bacillus cereus MKTA 11778, Completamente inhibido.

PRESENTACIÓN: MEDIO DESHIDRATADO.

NOTA: El desoxicolato sódico y el Citrato sódico inhiben el crecimiento de los Gram positivos. El medio contiene más cantidad de manitol que de dextrosa para facilitar el crecimiento de Salmonella y Shigella y limitar el crecimiento de Proteus y otros fermentadores de glucosa. El tampón fosfato ajusta el pH a 7,0, el ideal para el desarrollo de Salmonella y Shigella.

Ver tambien Shigella Broth (DMT173). Sin embargo nuestro medio SS Broth (DMT067) demuestra, en distintos servicios intercomparativos, ser mucho más selectivo y tener mejor recuperación en el enriquecimiento de Salmonella y Shigella.

SIEMBRA E INTERPRETACIÓN

Inocular la muestra e incubar a 35°C aproximadamente durante 6 y durante 24 horas, ya que si Proteus y Pseudomonas están presentes, no interferirán durante las primeras 6 horas en el buen crecimiento de Salmonella y de Shigella.

Resembrar en placas de los medios selectivos adecuados, en estría para poder aislar e identificar las colonias.

https://www.microkit.es/fichas/GN-HAJNA-BROTH.pdf

Si desea más información sobre nuestros MEDIOS GN HAJNA ENRICHMENT BROTH rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

MAGNESIO-LACTOSE BROTH es un caldo de pre-enriquecimiento de Pseudomonas aeruginosa en aguas y en bebidas envasadas

COMPOSICIÓN

• Peptona 10,0 g
• Extracto de carne 6,0 g
• Lactosa 10,0 g
• Sulfato magnésico 1,0 g

(Fórmula por litro)

pH final: 6,9 ± 0,2

PREPARACIÓN

Disolver 27,0 g de medio en 1 litro de agua bidestilada. Agitar hasta su completa disolución. Distribuir en frascos. Autoclavar a 121 ºC durante 15 minutos.

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO.

MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO. AGITE EL BOTE ANTES DE USAR

DESHIDRATADO CODIGO: DMT072

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

DESHIDRATADO: Polvo crema-verdoso
PREPARADO: Verdoso

CONTROL DE CRECIMIENTO 48 h a 37°C aproximadamente:
Pseudomonas aeruginosa MKTA 9027, Correcto

PRESENTACIÓN: MEDIO DESHIDRATADO

MODO DE EMPLEO E INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS

Sembrar 100 ml de agua de muestra en un frasco con 100 ml de medio. Incubar a 37 ºC aproximadamente, durante 48 horas. Otras siembras complementarias para la identificación de Ps. aeruginosa se harán en Cetrimide Agar (DMT034), King A Agar (DMT176) y Nutrient Agar (DMT089) según la legislación vigente (B.O.E. 13-5-1987).

El usuario final es el único responsable de eliminar los microorganismos de acuerdo con la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.

Si desea más información sobre nuestrosn MAGNESIO-LACTOSE BROTH, rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 1

https://www.microkit.es/fichas/MAGNESIO-LACTOSE-PSEUDOMONAS-BROTH.pdf

LISTERIA ENRICHMENT BROTH ¿FRASER O LEB? DESCUBRA EL CALDO PRECURSOR AL FRASER, CON LOS SUPLEMENTOS YA INCLUIDOS EN EL MEDIO

¡FÓRMULA CON SUPLEMENTO INCORPORADO!
Enriquecimiento selectivo de Listeria con gran formación de flagelos para la posterior confirmación.

De izquierda a derecha: LEB sin inocular, E.coli, y Listeria monocytogenes.

COMPOSICIÓN

• Peptona de caseina 15,000 g
• Peptona de soja 5,000 g
• Extracto de levadura 6,000 g
• Cloruro sódico 5,000 g
• Fosfato dipotásico 2,500 g
• Glucosa 2,500 g
• Ácido Nalidíxico 0,040 g
• Acriflavina 0,015 g
• Cicloheximida 0,050 g

(Fórmula por litro) pH final: 7,3 ± 0,2.

PREPARACIÓN

Disolver 36 g de medio en 1 litro de agua destilada.
Autoclavar a 121 ºC durante 15 minutos.

PRECAUCIÓN: La Acriflavina es un posible agente mutagénico (aunque sea muy utilizada como medicamento en acuarios, sin especificar esta salvedad) y la Cicloheximida es irritante. No inhalar. En caso de contacto con piel u ojos, lave con agua y jabón.

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO.
MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO.
DESHIDRATADO CODIGO: DMT070

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

DESHIDRATADO: Polvo fino, Amarillo
PREPARADO: Estéril, Amarillo

CONTROL DE CRECIMIENTO 24-48 h a 30-37°C aproximadamente:

• Listeria monocytogenes MKTA 7644, Correcto.
• Escherichia coli MKTA 25922, Inhibido.
• Staphylococcus aureus MKTA 6538P, Inhibido.
• Listeria grayii MKTA 19120, Correcto.

PRESENTACIÓN: TUBOS PREPARADOS 9 ml, FRASCOS PREPARADOS 225 ml CON PERLAS DE VIDRIO, MEDIO DESHIDRATADO

Medio de enriquecimiento selectivo que basa su selectividad en la presencia de Cicloheximida, Acriflavina y Acido Nalidíxico.

MODO DE EMPLEO E INTERPRETACION DE RESULTADOS

Añadir 25 ml del inóculo al frasco con 225 ml de medio o bien 1 ml del preenriquecimiento al tubo con 9 ml de medio. Homogeneizar con la ayuda de las perlas de vidrio en el primer caso, y por simple agitación en el segundo. Incubar durante 2- 7 días a 30 ºC aproximadamente, o bien durante 12 semanas a 4 ºC aproximadamente. No agitar, para aislar un cultivo más puro de Listeria de 1 cm por debajo de la superficie, ya que crece en microaerofilia. Inocular en un Agar selectivo o directamente en el látex MICROKIT-IDENT-LISTERIA (KMB 402).

NOTA DE MICROKIT:
El caldo Fraser es una modificación del LEB con Esculina (los presuntivos viran a negro, con muchos falsos positivos de Enterococos y Estafilococos). A pesar de ser el elegido en la ISO 11290, no encontramos mejoría alguna con respecto al LEB. De hecho sólo con LEB hemos podido validar, gracias a su facilidad para producir en Listeria una inmensa flagelación, el correcto funcionamiento del kit inmunocromatográfico Microstick-Listeria y el látex M-Ident Listeria para su uso directo en el caldo. Además hemos podido validar la Técnica Rápida de Detección de Listeria monocytogenes: Tras solo 18 h de enriquecimiento en LEB de 8 ufc con 102-103 ufc de flora acompañante e interferente, la siembra directa en Agar Cromocytogenes no produce un solo falso negativo, lo que invita a promover un protocolo de detección en solo 36h con 18 h LEB + 18 h Cromocytogenes.

El usuario final es el único responsable de la destrucción de los organismos que se hayan desarrollado, según la legislación medioambiental vigente.

https://www.microkit.es/fichas/LISTERIA-ENRICHMENT-LOVETT-BROTH.pdf

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https://www.microkit.es/monograficos/3-Listeria-monocytogenes-monograf–a.pdf

GIOLITTI CANTONI BROTH (BASE) FÓRMULA IDF , caldo de enriquecimiento selectivo para Staphylococcus aureus en alimentos y otras muestras

NUEVA FÓRMULA IDF- Standard 60B:1990

Enriquecimiento de St. aureus (FIL-IDF,ICMSF). Detección presuntiva. UNE 34-811:1985, ISO 5944:2001, IDF-Standard 60B

COMPOSICIÓN 

• Triptona                       10,00 g
• Extracto de levadura     5,00 g
• Extracto de carne          5,00 g
• Glicina                             1,20 g
• Cloruro sódico               5,00 g
• Cloruro de litio              5,00 g
• Manitol                          20,00 g
• Piruvato sódico              3,00 g
• Polisorbato Tween 80   1,00 g

(Fórmula por litro)     pH final: 6.9 ± 0,2.

 PREPARACIÓN

Disolver 55.2 gramos de medio en 1 litro de agua bidestilada. Repartir 19 ml por cada tubo. Autoclavar a 115 ºC, 20 minutos o bien a 121°C, 15 minutos. Añadir 0.3 ml de solución estéril de telurito potásico al 3.5% y, si se desea mayor selectividad, 1 ml de parafina.

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO

MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO.

DESHIDRATADO CODIGO: DMT058

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

DESHIDRATADO: Granulado, Tostado

PREPARADO: Estéril, Ambar

CONTROL DE CRECIMIENTO 48 h a 37°C aproximadamente, sin aerobiosis:

• Escherichia coli MKTA 25922, Inhibido.
• Micrococcus luteus MKTA 10240, Inhibido.
• Staphylococcus aureus MKTA 6538P, Bueno, crecimiento con fondo negro

PRESENTACIÓN: MEDIO DESHIDRATADO, TUBOS 9ml CON PARAFINA LÍQUIDA, TUBOS [x2] 10ml CON PARAFINA LÍQUIDA.

NOTA: Medio de enriquecimiento para la detección presuntiva de Staphylococcus aureus en alimentos. El Cloruro de Litio, el Telurito Potásico y la parafina (si se añade) inhiben el crecimiento de otros microorganismos. El Piruvato Sódico y la Glicina favorecen la multiplicación de los estafilococos

SIEMBRA

Transferir 1 ml del inóculo a cada tubo. Voltear sin agitar, para mezclar sin airear. Cubrir con 1 ml de agar, parafina o glicerina. Incubar 24‑48 horas a 37 ºC aproximadamente.

 INTERPRETACIÓN 

Los tubos con precipitado negro son presuntivos de estafilococos, por lo que se inocularán en placas de Baird Parker para confirmar su presencia por obtención de colonias aisladas características. Evidentemente, si se utiliza Giolitti Cantoni no se puede efectuar posteriores recuentos en Baird Parker.

Si desea más información sobre nuestros MEDIOS Giolitti Cantoni rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

https://www.microkit.es/fichas/GIOLITTI-CANTONI-BROTH.pdf