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M GREEN YEAST & MOULDS CAF. BROTH

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M‑GREEN YEAST & MOULDS CAF. BROTH para detección MF en placa con cartón absorbente de hongos acidófilos en bebidas ácidas

Enumeración y detección selectiva de levaduras y mohos acidófilos, alterativos, por el método MF.

COMPOSICIÓN M‑GREEN Broth

  • Extracto de levadura 9,000 g
  • Dextrosa 50,000 g
  • Peptona de caseina 5,000 g
  • Peptona de carne 5,000 g
  • Sulfato magnésico 2,100 g
  • Fosfato monopotásico 2,000 g
  • Diastasa 0,050 g
  • Tiamina 0,050 g
  • Verde de bromocresol 0,026 g
  • Cloranfenicol 0,500 g
    (Fórmula por litro)
    pH final: 4,8 ± 0,2

PREPARACIÓN M‑GREEN Broth

Disolver 73,2 g del medio en 1 litro de agua destilada.
Autoclavar a 121 ºC durante 15 minutos, o mejor a 116 ºC
durante 15 minutos. No sobrecalentar el medio.

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO.
AGITE EL BOTE ANTES DE USAR.
MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO.

DESHIDRATADO COD: DMT055

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

DESHIDRATADO: Polvo grueso, Verdoso PREPARADO: Estéril, Pardo Verdoso

CONTROL DE CRECIMIENTO CUANTITATIVO 2-7 días a temperatura ambiente (21-28°C aproximadamente):

  • Staphylococcus aureus MKTA 6538P, Inhibido.
  • E.coli MKTA 25922, Inhibido.
  • Aspergillus niger MKTA 16404, Correcto, Colonias negras y esporuladas en 5 días. Con respecto a PCA estandarizado, recuento >95%, pero de forma selectiva.
  • Candida albicans MKTA 10231, Correcto. Con respecto a PCA estandarizado, recuento >95%, pero selectivo.
  • Saccharomyces cerevisiae MKTA 9763, Correcto. Con respecto a PCA estandarizado, recuento >100%, pero selectivo.

PRESENTACIÓN: VIALES MF, MEDIO DESHIDRATADO

MODO DE EMPLEO E INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS

Añadir 2 ml a un cartón absorbente introducido en una placa de 60 mm Ø. Colocar encima una membrana por la que se haya filtrado la muestra, sin que se formen burbujas. Incubar 2-7 días a 21-25 ºC aproximadamente. Los mohos crecen con colonias filamentosas y las levaduras con colonias no filamentosas. Las bacterias no crecen a causa del cloranfenicol.

El usuario final es el único responsable de eliminar los microorganismos de acuerdo con la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.

Si desea más información sobre nuestros M GREEN YEAST & MOULDS CAF. BROTH rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

https://www.microkit.es/fichas/M-GREEN-YEAST-MOULDS-BROTH.pdf

 

M-FC BROTH

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M-FC BROTH es el caldo MF para uso con cartón absorbente para enumerar coliformes fecales en aguas y otros líquidos

Enumeración selectiva y diferencial para de coliformes fecales por el método MF (UNE 77-063:1990)

COMPOSICIÓN

Triptosa 10.00 g
Extracto de levadura 3.00 g
Peptona prot.de carne 5.00 g
Sales biliares 1.50 g
Cloruro sódico 5.00 g
Lactosa 12.50 g
Azul de anilina 0.10 g
(Fórmula por litro)
pH final: 7.4 ± 0,2

 

Coliformes fecales (incl.E.coli): colonias azules en placa con cartón absorbente.

Coliformes fecales (incl.E.coli): colonias azules en placa con cartón absorbente.

PREPARACIÓN

Disolver 37 gramos de medio en 1 litro de agua bidestilada. No hace falta añadir ácido rosólico, EDTA ni TTC si las aguas no son residuales o tóxicas. No calentar. Esterilizar por filtración o bien hirviendo durante 5 minutos. ¡NO AUTOCLAVAR!. El color final del medio es azul claro. Proteger el medio preparado de la luz.

PROTEGER EL MEDIO DE LA LUZ O SU ASPECTO FINAL SERÁ INCOLORO, INÚTIL.

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORATORIO.
AGITE EL BOTE ANTES DE USAR.
MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR
SECO, FRESCO Y OSCURO.
PRECAUCIÓN: CONTIENE SALES BILIARES.
DESHIDRATADO CODIGO: DMT164

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

DESHIDRATADO: Polvo grueso, Beige
PREPARADO: Estéril, Azul (púrpura si se añade
ácido rosólico)

CONTROL DE CRECIMIENTO 24-48 h a 44°C
aproximadamente:

  • Escherichia coli MKTA 25922, Bueno, Colonias azules. Con respecto a PCA standarizado*, recuento 100 %, pero de forma selectiva.
  • Salmonella abony MKTN 6017, Inhibido.
  • Shigella flexneri MKTA 12022, Inhibido.
  • Pseudomonas aeruginosa MKTN 10662, crece con colonias grises
  • Enterococcus faecalis MKTA 29212, Inhibido.

 

Nueva imagen (3)

* El que cumple con recuperación superior al 92-125% con respecto a cepas cuantitativas trazables a la cepa tipo.

PRESENTACIÓN: VIALES PARA FILTRACION
DE MEMBRANA (2 y 100ml), MEDIO DESHIDRATADO

Medio selectivo y diferencial para recuento de coliformes fecales por la técnica de Filtración de Membrana en aguas. Debe su selectividad a las sales biliares y a la temperatura de incubación (44,5 ºC).

SIEMBRA

Añadir 2 ml de medio a un cartón del método M.F. Depositar la membrana filtrada sobre el mismo. Incubar a 44.5 ºC aproximadamente, durante 24 horas.

INTERPRETACIÓN

Los coliformes fecales crecen con colonias azules. Otras enterobacterias pueden crecer, pero con colonias rosadas. Puede ahorrar la estufa a 45 ºC y obtener estos mismos colores diferenciales de E. coli (azul) y demás coliformes (rojo) mediante el medio Mug Plus Cfs. Broth (viales y viales pinchables, sólo existe deshidratado agarizado).

El usuario final es el único responsable de la eliminación de los microorganismos según la legislación medioambintal vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.

Si desea más información sobre nuestros M-FC BROTH rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

https://www.microkit.es/fichas/M-FC-BROTH.pdf

M‑FC AGAR

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MFC AGAR es el medio de cultivo sólido para recuento de coliformes fecales en aguas por el método de filtración de membrana

Enumeración selectiva y diferencial de coliformes fecales por el método MF.

COMPOSICIÓN

 

  • Triptosa                    10,0 g
  • Extracto de levadura 3,0 g
  • Peptona proteosa      5,0 g
  • Sales biliares             4,5 g
  • Cloruro sódico          5,0 g
  • Lactosa                      12,5 g
  • Azul de anilina          0,1 g
  • Agar‑agar                  15,0 g
Coliformes fecales (incl.E.coli): colonias azules.

Coliformes fecales (incl.E.coli): colonias azules.

(Fórmula por litro)

pH final 7,2 ± 0,2

PREPARACIÓN

Disolver 55 g de medio en 1 litro de agua destilada.

Calentar hasta ebullición, agitando para su completa disolución, o bien autoclavar a 116 ºC durante 5 minutos. Utilizar de inmediato.

No es necesario añadir ácido rosólico como dice la bibliografía.

PROTEGER EL MEDIO DE LA LUZ O SU ASPECTO FINAL SERÁ INCOLORO, INÚTIL.

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO

AGITE EL BOTE ANTES DE USAR.

MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR

SECO, FRESCO Y OSCURO

PRECAUCIÓN: CONTIENE SALES BILIARES.

DESHIDRATADO CODIGO: DMT166

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

DESHIDRATADO: Polvo grueso, Beige

PREPARADO: Estéril, Azul (púrpura si se añade ácido rosólico)

CONTROL DE CRECIMIENTO 24-48 h a 44°C aproximadamente:

  • Escherichia coli MKTA 25922, Bueno, Colonias azules. Con respecto a PCA standarizado*, recuento 83-100 %, pero de forma selectiva.
  • Salmonella abony MKTN 6017, Inhibido.
  • Shigella flexneri MKTA 12022, Inhibido.
  • Pseudomonas aeruginosa MKTN 10662, crece con colonias grises
  • Enterococcus faecalis MKTA 29212, Inhibido.

* El que cumple con recuperación superior al 92-125% con respecto a cepas cuantitativas trazables a la cepa tipo.

PRESENTACIÓN: MEDIO DESHIDRATADO, PLAQUIS® HERMÉTICAS

NOTAS: Medio selectivo y diferencial para enumeración de coliformes fecales por la técnica de Filtración de Membrana, en aguas. Debe su selectividad a las sales biliares y a la temperatura de incubación (44,5 ºC aproximadamente). Recientes estudios de equivalencia de métodos para coliformes realizados en España (y de los que surge el BOE 31-03-2009) dicen que este medio es poco adecuado; estamos en total desacuerdo porque en dicho estudio no se trabaja en las condiciones que exige este medio para coliformes fecales y que se han detallado en esta ficha técnica. Sin embargo sí estamos de acuerdo en su demostración que el medio cromogénico para coliformes (que nosotros llamamos MUGPLUS es el más adecuado).

 SIEMBRA

Depositar la membrana de filtración sobre una placa recién preparada y enfriada de este medio. Incubar a 44,5 ºC durante 24 horas.

 INTERPRETACIÓN

Los coliformes fecales crecen con colonias azules, mientras que las colonias rosadas son de otras enterobacterias. Puede ahorrar la estufa a 45 ºC y obtener estos mismos colores diferenciales de E. coli (azul) y demás coliformes (rojo) mediante el medio MUG PLUS Cfs. Agar (DMT400-).

 El usuario final es el único responsable de eliminar los microorganismos de acuerdo con la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.

Si desea más información sobre nuestros M‑FC AGAR rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

https://www.microkit.es/fichas/M-FC-AGAR.pdf

 

LYSINE IRON AGAR (LIA)

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Agar Lisina Hierro (LIA): Diferenciación de Salmonella y Arizona

El Lysine Iron Agar (LIA) es un medio de cultivo fundamental en microbiología, diseñado para la confirmación e identificación de Salmonella y Arizona basándose en su capacidad para descarboxilar la L-Lisina. Este medio es un estándar en el control de calidad, siendo referenciado en normativas como UNE-EN ISO 6579:2003.

Su uso es crucial, ya que permite la identificación de cepas de Salmonella y Arizona que podrían dar falsos negativos en el Agar Hierro Kligler (KIA). Por lo tanto, se recomienda su uso en paralelo con el KIA para una identificación completa.

Izda: Sin inocular. Centro y Dcha: Salmonella

Izda: Sin inocular. Centro y Dcha: Salmonella

Composición Nutricional 

La efectividad del LIA reside en su equilibrio entre la L-Lisina, la glucosa (como fuente de carbono) y los indicadores de reacción.

Componente Cantidad por Litro (g) Función Principal
L-Lisina 5.0 g Sustrato clave para la reacción de descarboxilación.
Polipeptona 5.0 g Fuente primaria de Nitrógeno y nutrientes.
Glucosa 1.0 g Fuente de fermentación inicial.
Extracto de Levadura 3.0 g Aporte de vitaminas y oligoelementos.
Citrato Férrico Amoniacal 0.50 g Indicador de H2S.
Tiosulfato Sódico 0.040 g Fuente de azufre para la producción de H2S.
Púrpura de Bromocresol 0.015 g Indicador de pH.
Agar-Agar 15.0 g Agente solidificante.

Fórmula por Litro: pH final: 6.8 +/- 0.2

 

Preparación y Conservación

Preparación del Medio

  1. Disolución: Disuelva 29.5 gramos del medio deshidratado en 1 litro de agua bidestilada.
  2. Homogeneización: Caliente la mezcla agitando hasta alcanzar la ebullición para una disolución completa.
  3. Esterilización: Autoclave a 121 °C durante 10 minutos.
  4. Formato: Vierta en tubos para obtener la configuración de tubo inclinado con pico corto.
  • Código Deshidratado: DMT179.

 

Control de Calidad

El medio se presenta como un Polvo fino, color Beige (deshidratado), y como Púrpura Estéril una vez preparado.

Cepa de Referencia Reacción del Pico (P) Reacción de la Base (B) Producción de H2​S
Salmonella abony MKTN 6017 Alcalina (Azul) Alcalina (Púrpura) Positiva (+) (Ennegrecimiento)
Escherichia coli MKTA 25922 Alcalina (Azul) Alcalina (Púrpura) Negativa (–)
Shigella flexneri MKTA 12022 Alcalina (Azul) Ácida (Amarilla) Negativa (–)

 

Protocolo de Siembra e Interpretación

Siembra

Siembren la colonia de interés en el LIA siguiendo un doble método:

  1. Picadura: Introduzca el asa hasta el fondo de la base del agar.
  2. Estría: Realice un estriado en la superficie inclinada (pico).

Incubación: Incube a 35 – 37 °C aproximadamente, durante 24 horas.

Interpretación de Resultados

El LIA permite evaluar dos reacciones bioquímicas críticas, indicadas por el cambio de color (púrpura de bromocresol) y la presencia de H2S (ennegrecimiento).

1. Reacción de Lisina Descarboxilasa (Base)

  • Resultado Positivo (Descarboxilación): El microorganismo descarboxila la Lisina, produciendo aminas y una fuerte alcalinización del medio, que vira el color del fondo a Azul Púrpura. (Típico de Salmonella typhi, Edwarsiella).
  • Resultado Negativo: No hay descarboxilación, la fermentación de la glucosa predomina y acidifica el medio, virando el fondo a Amarillo. (Shigella, Citrobacter).

2. Reacción de Desaminasa y Glucosa (Pico)

  • Reacción Positiva (Desaminasa): La desaminación de la lisina produce un ácido ceto, lo que acidifica el pico y lo hace virar a Rojo. (Típico de Proteus, Providencia).
  • Reacción Negativa: La fermentación de la glucosa y la neutralización por productos alcalinos vira el pico a Azul Alcalino. (Salmonella, E. coli).

3. Producción de Sulfuro de Hidrógeno (H2S)

  • La reacción del tiosulfato con el Citrato Férrico produce un Ennegrecimiento a lo largo de la línea de picadura. (Típico de Salmonella, Citrobacter, Edwarsiella).
Especie Pico (P) Fondo (B) H2​S
Salmonella Alcalina (Azul) Alcalino (Púrpura) Positivo (+)
Proteus Roja Ácido (Amarillo) Negativo (–)
Shigella Alcalina (Azul) Ácido (Amarillo) Negativo (–)
E. coli Alcalina (Azul) Neutro Negativo (-)
Edwarsiella Alcalina Alcalino (Púrpura) Positivo (+)
Citrobacter Alcalina (Azul) Ácido (Amarillo) Positivo (+)

 

Consideraciones de Uso

  • Presentación: Medio Deshidratado.
  • Disposición: Mantenga el bote bien cerrado, en lugar seco, fresco y oscuro. Agite antes de usar.
  • Responsabilidad: El usuario final debe eliminar los microorganismos cultivados mediante autoclavado antes de su desecho, cumpliendo con la legislación medioambiental vigente.

Si desea más información y precios actualizados sobre nuestro LYSINE IRON AGAR (LIA) póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

https://www.microkit.es/fichas/LYSINE-IRON-AGAR.pdf

TSA-LPT NEUTRALIZING AGAR (LILAC-PURPLE)

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ISO 100012 TSA-LPT NEUTRALIZING AGAR (LILAC-PURPLE) MEDIO NORMATIVO PARA RECUENTO TOTAL EN SUPERFICIES Y AIRES INTERIORES

Recuento total tras desinfecciones; para todo tipo de alimentos grasos, cosméticos, medicamentos, superficies y aire (UNE100012:2005).

COMPOSICIÓN

  • Púrpura de bromocresol* 0,04 g
  • Triptona 15,00 g
  • Extracto de levadura 2,50 g
  • Peptona de soja 5,00 g
  • ClNa 5,00 g
  • Dextrosa 10,00 g
  • Tioglicolato sódico 1,00 g
  • Tiosulfato sódico 0,60 g
  • Bi sulfito sódico 2,50 g
  • Lecitina 1,00 g
  • Agar agar 15,00 g

(Fórmula por litro)
Ajustar a pH final: 7,8 ± 0,2

Recuentos ambientales mucho más sensibles y con muy superior diversidad de especies que los medios clásicos de recuento total.

Recuentos ambientales mucho más sensibles
y con muy superior diversidad de especies que los medios clásicos de recuento total.

* En los medios preparados en placa y Envirocount, no incluimos la púrpura de bromocresol. Las placas y Envirocount con Penasa contienen respectivamente 200.000 UI y 140.000 UI por placa. Las Envirocount LPTAgar Purple con
CEX se elaboran bajo pedido para los países tropicales, dada la ingente proporción de mohos que hay en sus aires, que impide el recuento de bacterias.

Recuento ambiental en el medio sin púrpura

Recuento ambiental en el medio sin púrpura

PREPARACIÓN

Disolver 57,6 g de medio en 1 litro de agua bidestilada con 5 ml de Tween 80.Calentar y agitar hasta ebullición. Autoclavar a 116 ºC durante 30 minutos, o mejor a 121 ºC durante 10 minutos.Agitar hasta su solidificación para evitar la formación de grumos.

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO.
AGITE EL BOTE ANTES DE USAR. MANTENGA
EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO.
DESHIDRATADO CODIGO: DMT066

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO:

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…).

DESHIDRATADO: Polvo grueso, Gris
PREPARADO: Estéril, Lavanda, Turbio

CONTROL DE CRECIMIENTO CUANTITATIVO 48-72 h a 37°C aproximadamente, o bien 3-5 días a temperatura ambiente (21-28°C aproximadamente):

  • Enterococcus faecalis MKTA 29212, Excelente. Colonia blanca, medio amarillo. Con respecto a PCA estandarizado*, recuento 90-220 %. Si se añadió TTC, colonias blancas y medio naranja alrededor.
  • Bacillus subtillis MKTA 6633, Excelente Con respecto a PCA estandarizado*, recuento >108-276 %. Si se añadió TTC, colonias anaranjadas o doradas, medio lila alrededor que más tarde vira a naranja.
  • E.coli MKTA 25922, Bueno, Colonia amarilla, medio virado a amarillo. Con respecto a PCA estandarizado*, recuento 63-127 %. Si se añadió TTC, colonias crema o rojas, medio naranja alrededor.
  • Pseudomonas aeruginosa MKTA 9027, Bueno, Colonia rosada. Con respecto a PCA estandarizado*, recuento 34-122 %. Si se añadió TTC, colonias rojas o doradas, medio lila alrededor.
  • Staphylococcus aureus MKTA 6538P, Excelente, Colonia crema, medio virado a amarillo. Con respecto a PCA estandarizado*, recuento 59-103 %. Si se añadió TTC, colonias anaranjadas, medio naranja alrededor.
  • Candida albicans MKTA 10231, Excelente, colonias blancas. Con respecto a TSA estandarizado*, recuento 48-93 %. Si se añadió TTC, colonias blancas o rosadas, medio lila o naranja alrededor.

* El que cumple con recuperación superior al 92-125% con respecto a cepas cuantitativas trazables a la cepa tipo. Incertidumbres detectadas entre todos los lotes a lo largo de un año (la mayoría de la incertidumbre se debe a la cepa y a la proporción de cepas acompañantes inoculadas, no al medio).

PRESENTACIÓN: TUBOS PREPARADOS, FRASCOS/FRASCOTES PREPARADOS, MEDIO DESHIDRATADO. Placas y Envirocount sin púrpura de bromocresol. Placas y Envirocount con PENASA. Envirocount con CEX.

NOTA:

Medio con base TSA formulado para la detección de microorganismos totales en productos farmacéuticos, cosméticos, grasos y/o desinfectados.

La composición del medio permite asegurar una buena dispersión del inóculo. Emulsiona las grasas e inactiva los derivados de amonio cuaternario, (únicos conservantes que inactivan los medios clásicos con Lecitina yTween) y provoca una total inactivación de los demás conservantes que pueda llevar en su fórmula el cosmético, la superficie, el aire o la muestra…

…ya que está formulado para los inactivadores modernos, incluidos parabens e incluso Isotiazolinona, además de Compuestos fenólicos: fenoxietanol, feniletanol, anilidos…, Amonios cuaternarios, Surfactantes catiónicos, Aldehidos, Formaldehido, compuestos liberadores de formol, Compuestos oxidantes, peróxidos, halógenos (Flúor, Cloro, Bromo…), Imidazoles, Clohexidina, Biguanida, Sales metálicas (Cu, Zn, Hg), compuestos organomercuriales…

La recuperación es muy superior a la de los medios habituales (Esponera & Co, Técnicas de Laboratorio, Junio-92; estudio intercolaborativo, Tecnicas Lab., Nov.2001, media 200% respecto al PCA).

Este es el medio Normalizado para control de aire y superficies según Norma UNE 100012:2005

SIEMBRA E INTERPRETACIÓN

Repartir 0,1 ml en la superficie de una placa. Aplicar una Placa de Contacto un instante sobre la superficie problema, sin moverla, o bien introducirla en un aparato para control microbiológico del aire. Incubar a 21 43 ºC, durante 2 7 días. Contar todas las colonias. Un viraje prematuro del medio a amarillo o verdoso antes de la aparición de colonias indica, si la muestra no es muy ácida (es decir, de pH inferior a 5´4) que el recuento va a ser alto. Si el viraje a amarillo o verdoso ocurre antes de incubar, es que no se ha ajustado bien el pH o que la muestra es muy ácida.

El usuario es el único responsable de la eliminación de los microorganismos según la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.

Si desea más información sobre nuestros TSA-LPT NEUTRALIZING AGAR (LILAC-PURPLE) rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

https://www.microkit.es/fichas/LPT-TSA-NEUTRALIZING-AGAR-PURPLE.pdf

MDA-Microkit Differential Agar (LPT AGAR PURPLE Cromogénico)

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MDA-Microkit Differential Agar (LPT AGAR PURPLE Cromogénico), uno de los primeros medios cromogénicos de MICROKIT, para diferenciar aerobios

Recuento total diferencial tras desinfecciones; para todo tipo de alimentos grasos, cosméticos, medicamentos, superficies y aire (En base a la UNE100012:2005). Ideal para pre-identificación en primera siembra de los patógenos más habituales en ambientes y en cosméticos.

COMPOSICIÓN

  • Púrpura de bromocresol* 0,04 g
  • Triptona 15,00 g
  • Extracto de levadura 2,50 g
  • Peptona de soja 5,00 g
  • ClNa 5,00 g
  • Dextrosa 10,00 g
  • Tioglicolato sódico 1,00 g
  • Tiosulfato sódico 0,60 g
  • Bi sulfito sódico 2,50 g
  • Lecitina 1,00 g
  • Agar agar 15,00 g
    Mezcla cromogénica c.s.
Recuentos ambientales mucho más sensibles y con muy superior diversidad de especies diferenciables a simple vista que los medios clásicos de recuento total.

Recuentos ambientales mucho más sensibles
y con muy superior diversidad de especies diferenciables a simple vista que los medios clásicos de recuento total.

(Fórmula por litro)
Ajustar a pH final: 7,8 ± 0,2

PREPARACIÓN

Disolver 57,6 g de medio en 1 litro de agua bidestilada con 5 ml de Tween 80.
Calentar y agitar hasta ebullición.
Autoclavar a 116 ºC durante 30 minutos, o mejor a 121 ºC durante 10 minutos. Enfriar rápidamente.
Al dispensar, agitar hasta su solidificación para evitar la formación de grumos.

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO.
AGITE EL BOTE ANTES DE USAR. MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO.

DESHIDRATADO CODIGO: BCD512

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO:

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…).

DESHIDRATADO: Polvo grueso, Gris
PREPARADO: Estéril, Lavanda, Turbio

CONTROL DE CRECIMIENTO CUANTITATIVO 48-72 h a 37°C aproximadamente, o bien 3-5 días a temperatura ambiente (21-28°C aproximadamente):

  • Enterococcus faecalis MKTA 29212, Excelente, colonias blancas y medio naranja alrededor. Con respecto a PCA estandarizado*, recuento 90-220 %.
  • Bacillus subtillis MKTA 6633, Excelente, colonias anaranjadas o doradas, medio lila alrededor que más tarde vira a naranja. Con respecto a PCA estandarizado*, recuento >108-276 %.
  • E.coli MKTA 25922, Bueno, colonias crema o rojas, medio naranja alrededor. Con respecto a PCA estandarizado*, recuento 63-127 %.
  • Pseudomonas aeruginosa MKTA 9027, Bueno, colonias rojas o doradas, medio lila alrededor. Con respecto a PCA estandarizado*, recuento 34-122 %.
  • Staphylococcus aureus MKTA 6538P, Excelente, colonias anaranjadas, medio naranja alrededor. Con respecto a PCA estandarizado*, recuento 59-103 %.
  • Candida albicans MKTA 10231, Excelente, colonias blancas o rosadas, medio lila o naranja alrededor. Con respecto a TSA estandarizado*, recuento 48-93%.

* El que cumple con recuperación superior al 92-125% con respecto a cepas cuantitativas trazables a la cepa tipo. Incertidumbres detectadas entre todos los lotes a lo largo de un año (la mayoría de la incertidumbre se debe a la cepa y a la proporción de cepas acompañantes inoculadas, no al medio).

PRESENTACIÓN: MEDIO DESHIDRATADO.

NOTA: Medio con base TSA formulado para la detección de microorganismos totales en productos farmacéuticos, cosméticos, grasos y/o desinfectados, asi como en ambientes interiores. La composición del medio permite diferenciar a simple vista los patógenos más habituales, y además asegurar una buena dispersión del inóculo. Emulsiona las grasas e inactiva los derivados de amonio cuaternario, (únicos conservantes que inactivan los medios clásicos con Lecitina y Tween) y provoca una total inactivación de los demás conservantes que pueda llevar en su fórmula el cosmético, la superficie, el aire o la muestra, ya que está formulado para los inactivadores modernos, incluidos parabens e incluso Isotiazolinona, además de Compuestos fenólicos: fenoxietanol, feniletanol, anilidos…, Amonios cuaternarios, Surfactantes catiónicos, Aldehidos, Formaldehido, compuestos liberadores de formol, Compuestos oxidantes, peróxidos, halógenos (Flúor, Cloro, Bromo…), Imidazoles, Clohexidina, Biguanida, Sales metálicas (Cu, Zn, Hg), compuestos organomercuriales… La recuperación es muy superior a la de los medios habituales (media de un 200% con respecto al PCA).

SIEMBRA E INTERPRETACIÓN

Repartir con asa Digralsky 0,1 ml en la superficie de una placa o bien dejarla abierta para estudios básicos (no repetitivos ni comparables) de aire por sedimentación pasiva. O bien aplicar una Placa de Contacto un instante sobre la superficie problema, sin moverla, o bien introducir una placa o una placa de contacto en un aparato para control microbiológico del aire. Incubar a 21 43 ºC, durante 2 días (hasta 5 días en muestras muy difíciles). Contar todas las colonias. Un viraje prematuro del medio a amarillo o verdoso antes de la aparición de colonias indica, si la muestra no es muy ácida (es decir, de pH inferior a 5´4) que el recuento va a ser alto. Si el viraje a amarillo o verdoso ocurre antes de incubar, es que no se ha ajustado bien el pH o que la muestra es muy ácida.

El usuario es el único responsable de la eliminación de los microorganismos según la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.

Si desea más información sobre nuestros MDA-Microkit Differential Agar (LPT AGAR PURPLE Cromogénico) rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

 

TSA-LPT NEUTRALIZING AGAR INCOLORO

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LPT TSA NEUTRALIZING AGAR INCOLORO , versión sin purpura del agar normativo ISO 100012 para aerobios en superficies y aires

Recuento total tras desinfecciones; para todo tipo de alimentos grasos, cosméticos, medicamentos, superficies y aire (UNE100012:2005).

COMPOSICIÓN

  • Triptona 7,50 g
  • Extracto de levadura 1,25 g
  • Peptona de soja 2,50 g
  • ClNa 2,50 g
  • Dextrosa 5,00 g
  • Tioglicolato sódico 0,50 g
  • Tiosulfato sódico 0,30 g
  • Bi sulfito sódico 1,25 g
  • Lecitina 0,50 g
  • Agar agar 12,00 g
Recuentos ambientales mucho más sensibles y con muy superior diversidad de especies que los medios clásicos de recuento total.

Recuentos ambientales mucho más sensibles
y con muy superior diversidad de especies que los medios clásicos de recuento total.

(Fórmula por litro)
Ajustar a pH final: 7,8 ± 0,2

Las placas y Envirocount con Penasa contienen respectivamente 200.000 UI y 140.000 UI por placa.

PREPARACIÓN

Disolver 33.1 gramos en 1 litro de agua bidestilada que contenga 5 ml de polisorbato Tween 80 (SDA071). Agitar calentando hasta ebullición. Autoclavar a 116 C durante 30 minutos, o mejor a 121º C durante 10 minutos. El color final del medio es crema. No sobrecalentar. Agitar hasta su completa solidificación para evitar grumos. Repartir 0.1 ml de muestra en superficie ó 1 ml en masa. O bien verter en placas de contacto hasta formar menisco y tomar la muestra de superficies apretando sin restregar, durante 10 segundos. Incubar a 25°C durante 5-7 días o bien a 35-37ºC durante 2-5 días. Contar todas las colonias.

NOTA:

Para minimizar la desecación en muestreos de aire y superficies, o para siembra en Spiral, añadir 2 gotas de antiburbujas (SBL001) por cada litro de agua, antes de añadir el medio y antes de autoclavar

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO.
AGITE EL BOTE ANTES DE USAR. MANTENGA
EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO.
DESHIDRATADO CODIGO: DMT227

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO:

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…).

DESHIDRATADO: Polvo grueso, Gris
PREPARADO: Estéril, Lavanda, Turbio

CONTROL DE CRECIMIENTO CUANTITATIVO 48-72 h a 37°C aproximadamente, o bien 3-5 días a temperatura ambiente (21-28°C aproximadamente):

  • Enterococcus faecalis MKTA 29212, Excelente. Con respecto a TSA estandarizado*, recuento 98-220 %. Si se añadió TTC, colonias blancas y medio naranja alrededor.
  • Bacillus subtillis MKTA 6633, Excelente. Con respecto a TSA estandarizado*, recuento >108-276 %. Si se añadió TTC, colonias anaranjadas o doradas, medio lila alrededor que más tarde vira a naranja.
  • E.coli MKTA 25922, Bueno. Con respecto a TSA estandarizado*, recuento 63-127 %. Si se añadió TTC, colonias crema o rojas, medio naranja alrededor.
  • Pseudomonas aeruginosa MKTA 9027, Bueno. Con respecto a TSA estandarizado*, recuento 69-122 %. Si se añadió TTC, colonias rojas o doradas, medio lila alrededor.
  • Staphylococcus aureus MKTA 6538P, Bueno. Con respecto a TSA estandarizado*, recuento 59-103 %. Si se añadió TTC, colonias anaranjadas, medio naranja alrededor.
  • Candida albicans MKTA 10231, Excelente, colonias blancas. Con respecto a TSA estandarizado*, recuento 108 %. Si se añadió TTC, colonias blancas o rosadas.

* El que cumple con recuperación superior al 92-125% con respecto a cepas cuantitativas trazables a la cepa tipo. Incertidumbres detectadas entre todos los lotes a lo largo de un año (la mayoría de la incertidumbre se debe a la cepa y a la proporción de cepas acompañantes inoculadas, no al medio).

PRESENTACIÓN: MEDIO DESHIDRATADO. Placas y Envirocount. Placas y Envirocount con PENASA.

NOTA:

Medio con base TSA formulado para la detección de microorganismos totales en productos farmacéuticos, cosméticos, ALIMENTOS grasos y/o ambientes desinfectados. La composición del medio permite asegurar una buena dispersión del inóculo. Emulsiona las grasas e inactiva los derivados de amonio cuaternario, (únicos conservantes que inactivan los medios clásicos con Lecitina y Tween) y provoca una total inactivación de los demás conservantes que pueda llevar en su fórmula el cosmético, el alimento, la superficie, el aire o la muestra, ya que está formulado para los inactivadores modernos, incluidos parabens e incluso Isotiazolinona, además de Compuestos fenólicos: fenoxietanol, feniletanol, anilidos…, Amonios cuaternarios, Surfactantes catiónicos, Aldehidos, Formaldehido, compuestos liberadores de formol, Compuestos oxidantes, peróxidos, halógenos (Flúor, Cloro, Bromo…), Imidazoles, Clohexidina, Biguanida, Sales metálicas (Cu, Zn, Hg), compuestos organomercuriales… La recuperación es muy superior a la de los medios habituales (Esponera & Co, Técnicas de Laboratorio, Junio-92; estudio intercolaborativo, Tecnicas Lab., Nov.2001, media 200% respecto al TSA).

Este es el medio Normalizado para control de aire y superficies según Norma UNE 100012:2005, sin púrpura de bromocresol.

SIEMBRA E INTERPRETACIÓN

Repartir 0,1 ml en la superficie de una placa. O bien aplicar una Placa de Contacto un instante sobre la superficie problema, sin moverla, o bien introducirla en un aparato para control microbiológico del aire. Incubar las placas en posición invertida a 21 43 ºC, durante 2 7 días, a elegir: Incubar a 34-38 ºC aproximadamente, durante 40-48 horas (flora patógena y asociada) y duplicados 64-72 horas a 20-24 ºC aproximadamente (flora saprófita). Si se busca flora psicotrofa, incubar a 6 ºC aproximadamente durante 10 días y si se busca flora termófila, incubar a 55 ºC aproximadamente durante 48 horas. Contar todas las colonias.

El recuento, como media, será un 127% con respecto a TSA o PCA; esta mayor recuperación se atribuye a los inactivadores de conservantes que, en el caso de no haberlos, actúan sobre los metabolitos generados por la flora más rápida, flora que en otros medios impide el crecimiento de ese 27% adicional de cepas.

El usuario es el único responsable de la eliminación de los microorganismos según la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.

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LPT BROTH NEUTRALIZING PURPLE

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eugon o LPT Neutralizing Broth? Cual de los dos caldos inactivadores de conservantes cosméticos ha demostrado ser el mejor?

Caldo para diluciones con máxima recuperación. Emulsiona productos grasos y neutraliza conservantes. Ideal para cosméticos, desinfectantes y alimentos con aditivos que puedan interferir en la flora, sean naturales o inoculados.

COMPOSICIÓN DE LA VERSIÓN LPT NEUTRALIZING BROTH PURPLE

  • Púrpura de bromocresol 0,04
  • Lecitina 1,00
  • Peptona de caseina 5,00
  • Extracto de levadura 2,50
  • Dextrosa 10,00
  • Tioglicolato sódico 1,00
  • Tiosulfato sódico 0,60
  • Bi sulfito sódico 2,50

(Fórmula en g/l)
Ajustar a pH: 7,6 ± 0,2

Medio púrpura y viraje a crema por crecimiento

Medio púrpura y viraje a crema por crecimiento

Tras añadir el polisorbato 80, este medio puede requerir la adición de hasta 15 ml de NaOH 1 N por cada litro de medio final.

PREPARACIÓN

Disolver 22,5 g en 1 litro de agua destilada que contenga 5 ml de polisorbato Tween 80 atemperado. Si se desea aumentar el poder neutrralizante, pueden añadirse hasta un máximo de: 1,6 g/l de Lecitina, 25 ml/l de Polisorbato-Tween 80, 1 g/l de Histidina, 1 g/l de Tioglicolato Sódico, 2,4 g/l de Disulfito Sódico y 1 g/l de Tiosulfato Sódico. O bien utilizar este caldo a [x2]. Para inactivar además lactámicos, añadir penasa, para tetraciclinas añadir sales de Mg, para aminoglucósidos añadir heparina. Llevar a ebullición agitando. Ajustar bien el pH final, ya que el Tween 80 acidifica incluso más de 1 punto, y en función de la calidad del agua empleada y de la proporción de polisorbato añadida, pueden requerirse hasta 15 ml de NaOH 1 N por cada litro de medio final. Distribuir en recipientes adecuados y esterilizar al autoclave 15 minutos a 121 ºC. Una ligera turbidez es normal, dada la alta concentración de inactivadores. Una turbidez que convierte el medio en opaco es inaceptable, por desactivación de los inactivadores, y es debida a reacciones químicas entre el polvo y la humedad atmosférica. Los tubos con fondo denso e incoloro son aceptables, aunque deben agitarse hasta homogeneizarlos.
PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO. MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO. AGITE EL BOTE ANTES DE USAR. DESHIDRATADO CODIGO: DMT065

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

DESHIDRATADO: Polvo grueso, gris
PREPARADO: Estéril, Lavanda pardusco, turbio, con fondo precipitado.
CONTROL DE CRECIMIENTO 48-72 h a 37°C aproximadamente, o bien a temperatura ambiente (21-28°C aproximadamente):

  • Bacillus subtilis MKTA 6633, Excelente.
  • Escherichia coli MKTA 25922, Excelente.
  • Pseudomonas aeruginosa MKTA 9027, Excelente.
  • Enterococcus faecalis MKTA 29212, Excelente.
  • Staphylococcus aureus MKTA 6538P, Excelente.

PRESENTACIÓN: MEDIO DESHIDRATADO.

NOTA: Medio recomendado para solución madre, diluciones y preenriquecimiento en muestra cuyos componentes interfieran con la flora: La composición del medio permite asegurar una buena dispersión del inóculo. Emulsiona las grasas e inactiva los derivados de amonio cuaternario, (únicos conservantes que inactivan los medios clásicos con Lecitina yTween), y provoca una total inactivación de los demás conservantes modernos que pueda llevar en su fórmula el cosmético, el alimento o la muestra, incluidos parabenes e incluso Isotiazolinona, además de Compuestos fenólicos: fenoxietanol, feniletanol, anilidos…, Amonios cuaternarios, Surfactantes catiónicos, Aldehidos, Formaldehido, glutaraldehido, compuestos liberadores de formol, Compuestos oxidantes, peróxidos, halógenos (Flúor, Cloro, Bromo, Iodo…), lejía, Imidazoles, Clohexidina, Biguanida, Sales metálicas (Cu, Zn, Hg), compuestos organomercuriales… En un estudio intercolaborativo realizado para comparar todos los caldos generales, es el que más flora total recupera y el segundo (tras el BHI Broth) que más patógenos recupera (“Estudio comparativo entre los distintos caldos de cultivo generales”. SANCHIS, J. XI Congreso Nacional de Microbiología deAlimentos. Pamplona, 9/1998).
En el servicio intercompartivo SEILAPARFUM-2005 demuestra ser el mejor medio para todo (recuentos y búsqueda de patógenos). Aún así posteriores servicios SEILAPARFUM demuestran que el LPT Neutralizing broth incoloro (DMT217) es mejor aún.

SIEMBRA E INTERPRETACIÓN

Sembrar 1 ml o 1 gramo de muestra en el tubo o frasco. Dejar actuar 20-30 minutos en reposo, a temperatura ambiente. Incubar a 30 37 ºC durante 7 días si se desea hacer un control de esterilidad. El viraje de púrpura a amarillo demuestra la presencia de microorganismos, más rápido a mayor concentración de los mismos. Incubar a 21 43 ºC durante 48 horas, según la especie buscada, si lo que se desea es efectuar enriquecimientos para posterior investigación de patógenos. No incubar si se trata sólo de un tratamiento de la muestra. En cualquier caso, transferir 1 ml de la solución a un medio agarizado para obtener recuentos (si no se ha enriquecido) o para aislar colonias (si se ha enriquecido), o bien realizar diluciones decimales.

El usuario es el único responsable de la eliminación de los microorganismos según la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.

https://www.microkit.es/fichas/LPT-NEUTRALIZING-BROTH-PURPLE.pdf

Si desea más información sobre nuestros LPT BROTH NEUTRALIZING PURPLE rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

M-CP AGAR (BASE)

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M-CP AGAR (BASE) con fosfatasa ácida para detección y recuento de Clostridium perfringens en aguas de consumo humano

Medio base para el aislamiento y recuento selectivo de Clostridium perfringens y sus esporas, según Directiva 98/83 CE 3/XI/1998 sobre aguas destinadas al consumo humano, según Real Decreto 1074 18/X/2002 sobre aguas de bebida envasadas y según Real Decreto 140 7/II/2003 sobre calidad de las aguas de consumo humano.

COMPOSICIÓN m-CP Agar

  • Triptosa 30,0 g
  • Extracto de levadura 20,0 g
  • Sacarosa 5,00 g
  • Hidrocloruro de L-Cysteina 1,00 g
  • Sulfato Magnésico.7 hidrato 0,10 g
  • Púrpura de bromocresol 0,04 g
  • Agar-Agar 15,0 g
    (Fórmula por litro) pH final: 7,6 ± 0,2

En vial pinchable aparte 100 ml (cócktel de suplememtos MICROKIT SMT001):

  • D-Cicloserina 400 mg
  • Sulfato de Polimixina B 25 mg
  • D-Glucosuro de indoxilo (previamente disuelto en 8 ml de agua estéril) 60 mg
  • Solución Difosfato de fenolftaleína al 0,5 %, esterilizada por filtración 20 ml
  • Cloruro Férrico.6 hidrato al 4,5%, esterilizada por filtración 2 ml

(Fórmula por litro final de medio)

PREPARACIÓN

Disolver 7,1 g de medio en 100 ml de agua destilada. Calentar agitando hasta ebullición. Autoclavar a 121 ºC durante 15 minutos.
Enfriar a 45°C aproximadamente y añadir, pinchando asépticamente, 10 ml del cócktel de suplementos (MICROKIT SMT001).

Si el medio, violeta, ha virado a verdoso o amarillento durante su almacenamiento o fusión, por acidificación atmosférica, es imprescindible ajustar ahora el pH con NaOH 0,1 N hasta que el medio esté violeta.

Agitar bien y verter sobre placas Petri estériles. Dejar solidificar y una vez frío voltear las placas para que el agua de condensación no barra la superficie del medio. Cerrar con cinta de sellado (Ref. MICROKIT: PARAFIL). Las placas que no se vayan a usar en el día se guardan en nevera (8-15°C) y en total oscuridad hasta su utilización (máximo una semana, aunque la oxigenación puede provocar letalidad). De todas formas se recomienda la siembra de la membrana en profundidad antes de añadir el medio a la placa, por lo que es mejor preparar sólo las cantidades de medio que se vayan a consumir en el momento, de ahí el interés de presentar el cócktel de suplementos en vial pinchable.

MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO. AGITE EL BOTE ANTES DE USAR. PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO. MANTENGA EL MEDIO PREPARADO BASE A 15-21°C; Y EL MEDIO COMPLETO Y EL SUPLEMENTO A 8-15°C, EN TOTAL OSCURIDAD.
PRESENTACIÓN: DESHIDRATADO CODIGO: DMT052 Y SUPLEMENTO CÓCKTEL LÍQUIDO PREPARADO EN FRASCO 100 ml, CÓDIGO SMT001

MEDIO COMPLETO PREPARADO EN PLAQUITAS HERMÉTICAS MF, CÓDIGO PPL910. MEDIO COMPLETO PREPARADO EN VERSIÓN LÍQUIDA PARA MF, AMPOLLAS 2 ml, CODIGO FPL602; VIALES PINCHABLES 100ml, CÓDIGO RPL048.

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar el laboratorio, tras conservar a alta Tª por fallos de refrigeración, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de su etiqueta…)

DESHIDRATADO: Polvo gris-violáceo.
PREPARADO: Agar violeta, homogéneo, traslúcido. Suplemento rojizo, translúcido, puede contener precipitados por su elevada concentración, que se disuelven tras agitar y añadir al medio base.

CONTROL DE CRECIMIENTO 24-48 h a 44°C aproximadamente, en anaerobiosis:

  • Clostridium sporogenes MKTA 11437, Bueno, Colonias amarillo-verdosas. Con respecto a PCA estandarizado*, recuento 80-213%.
  • Clostridium perfringens MKTA 13124, Bueno, Colonias amarillo-verdosas. Con respecto a PCA estandarizado*, recuento 117-255%.
  • Bacillus subtillis MKTA 6633, Inhibido
  • Staphylococcus aureus MKTA 6538P, Inhibido.
  • E.coli MKTA 25922, Inhibido.

* El que cumple con recuperación superior al 92-125% con respecto a cepas cuantitativas trazables a la cepa tipo. Incertidumbres detectadas entre todos los lotes a lo largo de un año (la mayoría de la incertidumbre se debe a la cepa y a la proporción de cepas acompañantes inoculadas, no al medio).

MODO DE EMPLEO E INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS m-CP Agar

Sembrar la membrana filtrada evitando la formación de burbujas entre el filtro y el medio. Incubar en estricta ANAerobiosis, 24 horas a 44±1°C. Para detectar las esporas, duplicar la muestra, realizando sobre el duplicado un shock térmico de 5-10 minutos a unos 86 ºC previo a la incubación, a fin de conseguir su germinación.

Medio altamente selectivo para el género Clostridium, y diferencial para Cl.perfringens: sólo Cl.perfringens crece con colonias amarillo-verdosas que, según la bibliografía, viran a rosa tras 30 segundos de exposición a vapores de hidróxido amónico. Hemos comprobado que este viraje a rosa a veces es a azulado o verdoso, en función del nivel de acidificación que provoque la cepa de Cl.perfringens y del ajuste del pH del medio. Sin embargo, una muy superior recuperación se consigue con los medios TSC y TSN (ó TSN+C). Además los vapores de amonio son tóxicos tanto para el usuario como para la cepa, por lo que es mejor confirmar con Lactose Sulfite Broth (DMT140 Medio deshidratado, TPL018 Tubos con campana Durham) s/ UNE EN 13401, o mejor aún con el cómodo M-Ident Clostridium perfringens (KMT008) según ISO/CD 6461-2:2002 de aguas.

El usuario final es el único responsable de eliminar los microorganismos de acuerdo con la legislación medioambiental vigente. Autoclavar o inundar en lejía antes de desechar a la basura.

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LETHEEN LPT NEUTRALIZING BROTH INCOLORO

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LETHEEN, EUGON O LPT NEUTRALIZING BROTH? Olvide ser esclavo de Normas ISO que no son de obligado cumplimiento, use lo mejor en cosméticos: LPT NEUTRALIZING BROTH

Caldo neutralizante y de enriquecimiento, con máxima recuperación. Emulsiona productos grasos y neutraliza TODO TIPO de conservantes. Ideal para cosméticos y desinfectantes. Con factores dopping para detectar tambien los hongos en menos tiempo (Candida albicans, Aspergillus spp…)

COMPOSICIÓN DE LA VERSIÓN LPT NEUTRALIZING BROTH SIN PÚRPURA

  • Lecitina 1,40 g
  • Triptona 20,00 g
  • Extracto de levadura 10,00 g
  • Cloruro Sódico 10,00 g
  • Tioglicolato sódico 2,00 g
  • Tiosulfato sódico 2,00 g
  • Bi sulfito sódico 4,80 g
  • Histidina 2,00 g
    (Fórmula en g/l)
    Ajustar a pH: 7,6 ± 0,2
Izda: Sin inocular. Dcha: Tubo turbio, con crecimiento a pesar de los conservantes

Izda: Sin inocular.
Dcha: Tubo turbio, con crecimiento a pesar de los conservantes

Este medio puede requerir hasta 15 ml de NaOH 1 N por cada litro de medio final

PREPARACIÓN

Disolver 26,1 g en alimentos y cosmética general (y a [x2], hasta 52,2 g en cosméticos muy inhibitorios, aunque el caldo quedará turbio) en 1 litro de agua bidestilada que contenga 5 ml de Polisorbato-Tween 80 atemperado.

Si se desea aumentar el poder neutralizante a mayor nivel que la [x2], debe añadirse a los 52,2 g/l, hasta un máximo de: 1,6 g/l de Lecitina, 30 ml/l de Polisorbato-Tween 80 y 5,4 g/l de Suplemento mix completo SMT002 (1 g/l de Histidina, 1 g/l de Tioglicolato Sódico, 2,4 g/l de Disulfito Sódico y 1 g/l de Tiosulfato Sódico).

Para inactivar además lactámicos, añadir penasa, para tetraciclinas añadir sales de Mg, para aminoglucósidos añadir heparina.

Agitar calentando hasta ebullición; en este medio la homogeneización puede requerir más tiempo del habitual.

Ajustar bien el pH final, ya que el Tween 80 acidifica incluso más de 1 punto, y en función de la calidad del agua empleada y de la proporción de polisorbato añadida, pueden requerirse hasta 15 ml de NaOH 1 N por cada litro de medio final.

Autoclavar 15 minutos a 121 ºC.

No sobrecalentar.

Una ligera turbidez es normal.

Los tubos y frascos con fondo denso son normales y deben homogeneizarse por agitación contundente justo antes de empezar los análisis.

Los frascos a [x2] (RPL054D) se preparan con 52,2 g/l de medio en polvo y 30 ml/l de Tween 80.

Otras combinaciones bajo pedido de al menos 180 u.

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO. AGITE EL BOTE ANTES DE USAR. MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO. DESHIDRATADO CODIGO: DMT217

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

DESHIDRATADO: Polvo grueso, Crema

PREPARADO: Estéril, Ámbar, con fondo precipitado. Artefactos: El fondo de los tubos preparados puede tener polisorbato precipitado: Agitar antes de usar.

EVALUACIÓN DEL RENDIMIENTO

s/ISO/TS 11133-2, 24-72 h a 35 ºC, aplicando el método indicado en el Manual MICROKIT actualizado:

  • Escherichia coli MKTA 25922*, Excelente: Tras 25 minutos a 25°C, resiembra en TSA y obtención de >50-150% de colonias respecto al número de ufc inoculadas, en concreto 86-93%. Tras 24-48h, turbidez de ligera a elevada.
  • Pseudomonas aeruginosa MKTA 9027*, Excelente: Tras 25 minutos a 25°C, resiembra en TSA y obtención de >50-150% de colonias respecto al número de ufc inoculadasm, en concreto 62%. Tras 24-48h, turbidez de ligera a elevada.
  • Staphylococcus aureus MKTA 6538P*, Excelente: Tras 25 minutos a 25°C, resiembra en TSA y obtención de >50-150% de colonias respecto al número de ufc inoculadas, en concreto 51%. Tras 24-48h, turbidez de ligera a elevada.
  • Candida albicans MKTA 10231*, Excelente: Tras 25 minutos a 25°C, resiembra en SDA y obtención de >50-150% de colonias respecto al número de ufc inoculadas, en concreto 66-104%. Tras 24-48h, turbidez de ligera a elevada.
  • Burkholderia cepacia Colección TIPO USA 25416*, Excelente: Tras 20-30 minutos a 20-30°C, resiembra en TSA y obtención de >50-150% de colonias respecto al número de ufc inoculadas, en concreto 51-57%. Tras 24-72h a 35ºC aprox, turbidez de ligera a elevada.
  • Pluralibater gergoviae MKTD 9245*, Excelente: Tras 20-30 minutos a 20-30°C, resiembra en TSA y obtención de >50-150% de colonias respecto al número de ufc inoculadas, en concreto 95%. Tras 24-72h a 35ºC aprox, turbidez de ligera a elevada.

*Las colecciones TIPO prohiben el uso de su referencia, por lo que indicamos la nuestra, directamente trazable a la colección TIPO.

PRESENTACION:

MEDIO DESHIDRATADO, TUBOS Y FRASCOS PREPARADOS CON Y SIN PERLAS DE VIDRIO Y A DIFERENTES CONCENTRACIONES

NOTA: Medio altamente recomendado para solución madre, diluciones y preenriquecimiento en muestra cuyos componentes interfieran con la flora:

La composición del medio permite asegurar una buena dispersión del inóculo.

Emulsiona las grasas e inactiva los derivados de amonio cuaternario, (únicos conservantes que inactivan los medios clásicos con Lecitina yTween),

y provoca una total inactivación de los demás conservantes modernos que pueda llevar en su fórmula el cosmético, el alimento o la muestra,

incluidos parabenes e incluso Isotiazolinona,

además de Compuestos fenólicos: fenoxietanol, feniletanol, anilidos…,

Amonios cuaternarios, Surfactantes catiónicos, Aldehidos, Formaldehido, glutaraldehido, compuestos liberadores de formol,

Compuestos oxidantes, peróxidos, halógenos (Flúor, Cloro, Bromo, Iodo…), lejía,

Imidazoles, Clohexidina, Biguanida,

Sales metálicas (Cu, Zn, Hg), compuestos organomercuriales…

Además inactiva los metabolitos generados en su crecimiento por parte de los microorganismos acompañantes, que en otros caldos pueden impedir o enmascarar el crecimiento del organismo buscado.

CRÉDITOS

En un estudio intercolaborativo realizado para comparar todos los caldos generales, es el que más flora total recupera y el segundo (tras el BHI Broth) que más patógenos recupera (“Estudio comparativo entre los distintos caldos de cultivo generales”. SANCHIS, J. XI Congreso Nacional de Microbiología de Alimentos. Pamplona, 9/1998).

En los servicios intercompartivos SEILAPARFUM y SEILALIMENTOS demuestra ser el mejor medio inicial para todo (diluciones para recuentos y revitalización/pre-enriquecimiento para búsqueda de patógenos).

Medio validado mediante intercomparación (puede bajarse la validación actualizada de microbiología cosmética, de la web www.microkit.es, pestaña publicacionesy validaciones).

SIEMBRA E INTERPRETACIÓN

Sembrar 1-25 gramos de muestra en 10-225 ml de medio.

Agitar y dejar reposar-actuar 20-30 minutos a temperatura ambiente.

Para realizar recuentos, sembrar en los agares adecuados sin previo enriquecimiento.

Si se desea investigar patógenos, enriquecer incubando a 32-35 ºC, 36-48 horas (ni menos, ni más) y después estriar en la superficie de las placas de los agares adecuados.

El usuario final es el único responsable de la destrucción de los organismos que se hayan desarrollado, según la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar en la basura.

https://www.microkit.es/fichas/LPT-NEUTRALIZINGBROTH-INCOLORO.pdf

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