CROMOKIT MAXIM TSA CROMOGÉNICO

CROMOKIT MAXIM TSA AGAR CROMOGÉNICO es un medio cromogénico general, dopado para recuperar el máximo posible de microorganismos

Recuento total con máxima recuperación en alimentos, aguas y cosméticos, basado en PCA (FIL,IDF,AOAC,APHA,ICMSF) y TSA (Farmacopea), que diferencia las colonias, incluso las más diminutas, de las partículas y del medio.
Recuperación superior (122%) al PCA y 116% respecto al TSA.

Cromokit Maxim-agar

COMPOSICIÓN

Triptona                                            5,0 g

Peptona de soja                              5,0 g

Extracto de levadura                      2,5 g

Glucosa                                            1,0 g

Factores doping MICROKIT           5,0 g

Agar‑agar                                      10,5 g

Cromógeno                                   c.s.

(Fórmula por litro)
pH final: 6,8 ± 0,2

 

PREPARACIÓN

Disolver 29 g de medio en 1 litro de agua destilada.
Calentar hasta ebullición, agitando para su completa disolución.
Repartir en tubos o frascos. Autoclavar a 121 ºC durante 15 min o preferiblemente a 116°C durante 15 minutos. No sobrecalentar ni mantener fundido mucho tiempo.

Refundir sólo una vez. El color final del medio es blanco-crema. A veces, por sobrecalentamiento, adquiere un tono rosado que retorna al crema cuando se vuelve a enfriar el medio, lo cual no afecta los resultados.

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO.
MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO.
AGITE EL BOTE ANTES DE USAR.
DESHIDRATADO CODIGO: BCD515

 

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO CROMOKIT MAXIM-AGAR CROMOGÉNICO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…).

DESHIDRATADO: Polvo grueso, Crema PREPARADO: Estéril, Crema

EVALUACIÓN DEL RENDIMIENTO ISO/TS 11133-2 24-48 h a 37 ºC o mejor 72 h a 30 ºC, aplicando el método ISO 4833, ISO 2293, o el indicado en el Manual MICROKIT: E. coli MKTA 25922, Excelente, colonias rojas, PR >70% en concreto 90-184 % * de colonias respecto al número de ufc certificadas e inoculadas en TSA.

Staphylococcus aureus MKTA 6538P, Excelente, colonias rojas, PR >70% en concreto 99-164 % * de colonias respecto al número de ufc certificadas e inoculadas en TSA. Bacillus subtilis MKTA 6633, Excelente, colonias rojas, PR >70% en concreto 99-129 % * de colonias respecto al número de ufc certificadas e inoculadas en TSA.

Micrococcus luteus MKTA 9341, Excelente, Colonias rojas en 48 h, crecen mucho más rápido y mejor que en TSA, y mejor a temperatura ambiente.

Enterococcus faecalis MKTA 29212, Excelente, colonias rojas, PR >70% en concreto 99-191 % *de colonias respecto al número de ufc certificadas e inoculadas en TSA.

Pseudomonas aeruginosa MKTA 9027, Excelente, colonias rojas.

* Esta variabilidad de la productividad depende de la composición y carga de la flora acompañante inoculada. Las colecciones TIPO prohiben el uso de su referencia por lo que indicamos la nuestra, directamente trazable a la colección TIPO.

 

PRESENTACIÓN

TUBOS 20 ml, FRASCOS 100 ml, MEDIO DESHIDRATADO.

Recuento total standard de bacterias aerobias en alimentos, aguas, productos farmacéuticos, cosméticos y otros productos.

Las colonias crecen en distintos tonos del rojo: rosa, naranja, purpura…. sobre el tono crema del medio (excepto ciertos acidolácticos y ciertas levaduras, que crecen con colonias blancas, sin viraje, por lo que este medio los distingue de los aerobios).

El color de las colonias no afecta a las pruebas de identificación posteriores que quisiera realizar.

 

MODO DE EMPLEO E INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS

Inocular 1 ml de muestra y su serie de diluciones decimales, en masa.

Incubar a 30 ºC aproximadamente durante 48 horas. Con flora psicotrofa, incubar a 6 ºC aproximadamente durante 10 días y con flora termófila, incubar a 55 ºC aproximadamente durante 48 horas.

Contar todas las colonias. La recuperación supera el 20% por encima de la obtenida en PCA y el 16% por encima de la obtenida en TSA, gracias a ciertos factores doping de aerobios descubiertos y agregados por MICROKIT.

Esta fórmula, con menos agar, aumenta la sensibilidad del medio frente a los aerobios más lábiles, al permitir una mejor oxigenación del fondo.

Este medio está diseñado para siembra en masa. Si desea sembrar en superficie, añada 3-5 g/l de Agar-Agar (BCB006), o utilice 30-32 g/l de este mismo medio.

Para minimizar la desecación en muestreos de aire y superficies, o para siembra en Spiral, añadir 2 gotas de antiburbujas (SBL001) por cada litro de agua, antes de añadir el medio y antes de autoclavar.

Para contar por separado las bacterias, de las levaduras y mohos, añadir a un duplicado, enfriado a 45°C, 0,05-0,5 g/l de Cicloheximida (SKM200): En la placa con CEX sólo crecerán las bacterias y en la placa sin CEX , la suma de bacterias + levaduras y mohos.

El usuario es el único responsable de la eliminación de los microorganismos según la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.

Si desea más información sobre nuestro CROMOKIT MAXIM-AGAR CROMOGÉNICO o cualquier otro producto no dude en contactar con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es.

Haga sus pedidos en pedidos@miccrokit.es

https://www.microkit.es/fichas/CROMOKIT-MAXIM-AGAR-CROMOGENICO.pdf

Prepárese para más de una sorpresa informativa cuando vea nuestro video sobre los medios Cromogénicos: https://www.youtube.com/watch?v=-JVPVWxY8ZE&t=271s

CAMPYLOBACTER SELECTIVE BOLTON ENRICHMENT BROTH (BASE)

CAMPYLOBACTER BROTH SELECTIVE BOLTON ENRICHMENT BROTH (BASE) es un caldo para enriquecinmiento selectivo de Campylobacter spp.   ISO 10272-1:2006

COMPOSICIÓN

Peptona de carne                    10,0 g
Hidrolizado de lactalbúmina        5,0 g
Extracto de levadura                  5,0 g
Cloruro sódico                           5,0 g
Hemina                                   10,0 mg
Piruvato sódico                         0,5 g
Ácido alfa-glutárico                   1,0 g
Metabisulfito sódico                  0,5 g
Carbonato sódico                     0,6 g
(Fórmula por litro)

pH final: 7,4 ± 0,2

Campy Selective Bolton

PREPARACIÓN

 Disolver 28 gramos de medio en 1 litro de agua bidestilada.
Calentar agitando hasta su disolución. Autoclavar a 121 ºC durante 15 minutos.Enfriar a 47 ºC y añadir asépticamente 2 viales de suplemento PRESTON (mejor que 1 vial de suplemento SKIRROW).

 PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO

AGITE EL BOTE ANTES USAR.MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO

DESHIDRATADO CODIGO: DMT024

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

DESHIDRATADO: Polvo, Ámbar.

PREPARADO: Estéril, Rojo (puntos negros)

EVALUACIÓN DEL RENDIMIENTO ISO/TS 11133-2 ISO 10272, 18 h a  42 ºC en microaerofilia:

(Aplicando el método indicado en el Manual MICROKIT actualizado)

Campylobacter jejuni MKTA 29428, con acompañantes (E.coli MKTA 25922 y P.mirabilis MKTA 29906). Tras estriar una alícuota en CAMPY Agar e incubar, aparecen más de 10 colonias típicas.

Escherichia coli MKTA 25922, totalmente inhibido: tras incubar, estriar en TSA e incubar, no aparece ni una colonia.

P.mirabilis MKTA 29906 totalmente inhibido: tras incubar, estriar en TSA e incubar, no aparece ni una colonia.

Pseudomonas aeruginosa MKTA 9027, Inhibido.

Las colecciones TIPO prohiben el uso de su referencia por lo que indicamos la nuestra, directamente trazable a la colección TIPO.

PRESENTACIÓN: MEDIO DESHIDRATADO (BASE) Y SUPLEMENTO, KITS P/A.

MODO DE EMPLEO E INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS

Inocular 25 gramos de muestra en 225 ml de medio.
Incubar 14-48 horas a 42-43 ºC aproximadamente (termófilos) sin agitar, para que en distintas profundidades se desarrolle un ambiente microaerófilo. Tomar muestras a distintas profundidades y sembrarlas en Agar Campylobacter.

 Para el uso del kit P/A concentrado, añadir el contenido de un tubo de éste a 500 ml de agua de muestra o bien a los 225 ml de agua de peptona tamponada con los 25 g del alimento. Tras enriquecer en las condiciones explicadas arriba, sembrar en estría en el Agar Campylobacter.

El usuario es el único responsable de la eliminación de los microorganismos según la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.

Si desea más información sobre nuestro MEDIO CAMPYLOBACTER SELECTIVE BOLTON ENRICHMENT BROTH  rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto o contacte a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o teléfono en el nº 91-897 46 16

https://www.microkit.es/fichas/CAMPYLOBACTER%20SELECTIVE%20BOLTON%20ENRICHMENT%20BROTH.pdf

BACTERIÓFAGOS-AGAR MODIFICADO SCHOLTEN

BACTERIOFAGOS

RD3/2023 virus bacteriófagos colífagos: agar para su recuento en aguas de consumo humano, 10-1-2023 por conteo de calvas
Detección y enumeración de bacteriófagos (colífagos) según ISO 10705:2001 y BOE-Aguas de consumo humano 10-1-2023 (Real Decreto 3-2023

 

COMPOSICIÓN

  • Peptona                                  10,00 g
  • Extracto de Levadura             3,00 g
  • Extracto de carne                   12,00 g
  • Cloruro Sódico                      3,00 g
  • Carbonato Sódico                  0,75 g
  • Cloruro Magnésico                0,60 g
  • Agar-agar                               12,00 g

(Fórmula por litro)´ pH final: 7,2 ± 0,2

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO. MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO. AGITE EL BOTE ANTES DE USAR.

 PREPARACIÓN

Disolver 41,1 gramos de medio en 1 litro de agua bidestilada. Calentar, agitando, hasta ebullición, para la total homogeneización. Autoclavar a 121 ºC durante 15 minutos.

PRESENTACION: DESHIDRATADO CODIGO: DMT802 

SIEMBRA

Seguir las directrices de la norma ISO 10705.

Usar también este mismo medio Agar (DMT802) en caldo (DMT801) y en semisólido (DMT803)

RD3/2023 virus bacteriófagos colífagos: agar para su recuento en aguas de consumo humano, 10-1-2023 por conteo de calvas

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AGAR-AGAR ALTA TRANSPARENCIA TIPO AMERICANO

AGAR AMERICANO

Este es un Agar bacteriológico de máxima transparencia y pureza, especial para investigación en bacteriología, en contraste con el más usado en control de calidad, el Agar Europeo, que actualmente es casi tan transparente pero más duro. Gelificación de medios de cultivo de gran pureza.

Debido a su firmeza y transparencia de gel, a su excelente solubilidad en agua, a su ausencia de componentes inhibidoresAgar-Agar-Americano y a causa de no ser metabolizado por las bacterias, el Agar-Agar es el soporte universal para aislamiento de microorganismos en microbiología.

Además: Se disuelve en agua hirviendo y solidifica al bajar la temperatura por debajo de 45°C pero, cuando se enfría, forma un gel que no se vuelve a fundir hasta superados los 85°C.

Esto permite incubar los medios incluso a 65 ºC y más sin que se pierda la dureza del gel.

Como contrapartida, hasta que no hierven no se pueden refundir. No necesita la adición de ningún producto químico para gelificar.

Tiene mayor consistencia de gel que cualquier otro hidrocoloide. Se puede utilizar en un amplio margen de pH. Se puede mezclar con carbohidratos y proteínas.

COMPOSICIÓN

El Agar-Agar es una mezcla de polisacáridos compuesta por moléculas neutras (Agarosas) y otras cargadas eléctricamente (Agaropectinas), obtenida de diversas especies de algas Rodofíceas. Polvo blanco-crema, inodoro e insípido.
pH (1,5%): <7,3 antes de autoclavar, >6,3 tras autoclavar
Ca <4000 ppm
Mg <1200 ppm
Sustancias inhibidoras/tóxicas: Negativo
Contaminación por esporas <50 ufc/g
Dureza de gel: 650 g/cm2 (550-730)
Punto de gelificación: 34-36 ºC
Punto de fusión: 85-91 ºC

PREPARACIÓN

Para la preparación de medios de cultivo puede usarse en una concentración comprendida entre un 1,3 y un 2%. A mayor concentración, menor penetración de aire (mejor para anaerobios y peor para aerobios estrictos).
MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO. AGITE EL BOTE ANTES DE USAR.
DESHIDRATADO CODIGO: DMT001

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO

CONTROL DE CALIDAD

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª,  cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…).
DESHIDRATADO: Polvo grueso, Blanco-crema, inodoro e insípido.
PREPARADO: Estéril, Blanco, traslúcido, homogéneo, duro.
Polvo blanco-crema, inodoro e insípido.
pH (1,5%): 7,2 antes de autoclavar – 6,8 tras autoclavar
Dureza de gel 630 g/cm2 (550-730)
Punto de gelificación 35 ºC
Punto de fusión 89 ºC
Contaminación por esporas <50 ufc/g
Sustancias inhibidoras/tóxicas: Negativo
Ca <4000 ppm
Mg <1200 ppm
PRESENTACION: EN POLVO DESHIDRATADO
El usuario es el único responsable de la eliminación de los microorganismos según la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.

Si desea más información sobre nuestro AGAR-AGAR ALTA TRANSPARENCIA TIPO AMERICANO  o cualquier otro producto no dude en contactar con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es, o en nuestro teléfono 91-897 46 16.

https://www.microkit.es/fichas/AGAR-AMERICANO.pdf

 

CAMPYLOBACTER BLOOD FREE MEDIUM AGAR (BASE) (mCCD Agar)

CAMPYLOBACTER AGAR BLOOD FREE MEDIUM AGAR

(BASE) (mCCD Agar) es el medio ISO 10272-1 para aislar Campylobacter spp. en alimentos   Aislamiento selectivo para Campylobacter s/ ISO 10272-1:2006

COMPOSICIÓN

Extracto de carne                   10,00 g
Peptona de carne                  10,00 g
Triptona                                   3,00 g
Cloruro sódico                         5,00 g
Carbón activo                          4,00 g
Desoxicolato sódico                 1,00 g
Sulfato ferroso                         0,25 g
Piruvato sódico                        0,25 g
Agar‑agar                               13,00 g

(Fórmula por litro)                 pH final: 7,4 ± 0,2

 PREPARACIÓN

Disolver 46 g en 1 litro de agua bidestilada. Calentar hasta ebullición, agitar hasta la completa disolución. Autoclavar a 121 ºC durante 15 minutos. Enfriar a 50 ºC y añadir asépticamente 1 vial de suplemento SKIRROW (SBH020) (mejor que 2 viales de suplemento PRESTON-BOLTON -SLM131-).

 PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO. AGITE EL BOTE ANTES DE USAR, PARA ASEGURAR  LA  HOMOGENEIZACIÓN DE LOS EVENTUALES GRADIENTES DE DENSIDAD DE LOS COMPONENTES. MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO.

DESHIDRATADO CODIGO: DMT184

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

DESHIDRATADO: Polvo fino, Negro    PREPARADO: Estéril, Negro.

  EVALUACIÓN DEL RENDIMIENTO ISO/TS 11133-2(Aplicando el método ISO 10272, 18-72 h a 42 ºC en microaerofilia o el indicado en el Manual MICROKIT actualizado):

Campylobacter jejuni MKTA 29428, con acompañantes (E.coli MKTA 25922 y P.mirabilis MKTA 29906). Tras estriar  e incubar, aparecen colonias típicas.

Campylobacter coli MKTA 43478, tras estriar  e incubar, aparecen colonias típicas.

Escherichia coli MKTA 25922, inhibido: tras incubar, estriar e incubar, no aparecen casi colonias.

Staphylococcus aureus MKTN 6571, totalmente inhibido: tras incubar, estriar e incubar, no aparece ni una colonia.

Las colecciones TIPO prohiben el uso de su referencia por lo que indicamos la nuestra, directamente trazable a la colección TIPO.

PRESENTACIÓN:

MEDIO DESHIDRATADO BASE + SUPLEMENTOS , TUBOS PREPARADOS INCLINADOS.

NOTA:

Campylobacter jejuni puede contaminar aguas y alimentos, provocando infecciones a menudo mal clasificadas como salmonelosis muy frecuentes en bebés y por contaminaciones cruzadas en la nevera de alimentos crudos con otros ya cocinados. Para su búsqueda en alimentos y aguas,  enriquecer 25 g de alimento o 500 ml de agua en Campy Broth (DMT024) + Suplemento PRESTON-BOLTON (SLM131), o bien añadir a 225 ml de Agua de Peptona Tamponada con 25 g de alimento, o a 500 ml del agua, el contenido de un tubo de CAMPY P/A concentrado (RPL332). Incubar 14-48 h a 43°C aproximadamente y sembrar en estría en la placa de Campy Agar.

 SIEMBRA

Inocular las placas preparadas sembrando la muestra o el enriquecimiento en estría a fin de aislar colonias. Incubar a durante 24‑48 horas a 43 ºC aproximadamente, en una atmósfera enriquecida en CO2 (5% de Oxígeno y 10% de Anhídrido Carbónico) mediante KKM101 (en jarras de anaerobiosis) o KKM037 (en bolsas), o con el método de la vela de microaerofilia. Normalmente, C. jejuni crece en 24 horas, pero es oportuno reincubar las placas negativas otras 24 horas. La flora acompañante no crece a 43 ºC.

INTERPRETACIÓN

Las colonias de C. jejuni no son hemolíticas y pueden presentarse como grises y planas, con el borde irregular, o bien elevadas y redondas con aspecto mucoso. Este aspecto depende del grado de humedad de la superficie del agar. Confirmar con M-IDENT CAMPYLOBACTER LÁTEX (KMB001).

El usuario es el único responsable de la eliminación de los microorganismos según la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.

Si desea más información sobre nuestro MEDIO CAMPYLOBACTER BLOOD FREE MEDIUM AGAR  rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto o contacte a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o teléfono en el nº 91-897 46 16.

https://www.microkit.es/fichas/CAMPYLOBACTER-BLOOD-FREE-MEDIUM-AGAR.pdf

 

ALKALINE VIBRIO ENRICHMENT BROTH, ALKALINE PEPTONE WATER

ALKALINE VIBRIO ENRICHMENT BROTH, ALKALINE PEPTONE WATER, caldo ISO/TS 21872-1:2007 para enriquecer muestras en busca de Vibrio cholerae

Caldo de enriquecimiento selectivo para Vibrio cholerae y otros Vibrio ligeramente halófilos (V.parahaemolyticus tras añadir otros 20 g/l ClNa s/ ISO 8914:1990). Para las especies más halófilas, añadir 20-50 g/l de ClNa o bien utilizar el Vibrio Hipersaline Broth (DMT137). Tambien muy útil en enriquecimiento de Aeromonas spp.

COMPOSICIÓN

  • Peptona trípsica de caseina 10,0 g
  • Cloruro sódico 10,0 g
  • (Fórmula por litro)
  • pH final: 8,5 ± 0,2

PREPARACIÓN
Disolver 20 g de medio en 1 litro de agua bidestilada. Un ajuste del pH suele ser necesario, a  causa del uso de aguas de calidad no excelente.
Autoclavar a 121 ºC durante 15 minutos.
Para seguir la ISO/TS 21872-1:2007 usar a doble concentración.
PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO. MANTENGA EL BOTE CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO. AGITE EL BOTE ANTES DE USAR
DESHIDRATADO CODIGO: DMT151

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO
Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)
DESHIDRATADO: Polvo fino, Beige PREPARADO: Estéril, Beige
CONTROL DE CRECIMIENTO a Tª ambiente (aproximadamente 21-28°C) ó bien aproximadamente a 37°C, durante 6-48 h:
Vibrio cholerae MKTA 14035, Correcto.
Vibrio parahaemolyticus MKTC 613, Correcto tras añadir 20-50 g/l de ClNa.

NOTA: Numerosas especies de Vibrio y de Aeromonas provocan enfermedades gastrointestinales y sistémicas en el hombre por ingesta de pescados y mariscos crudos o mal cocinados, ya que en el agua raramente alcanzan la dosis infectiva necesaria: V.cholerae, V.parahaemolyticus, V.mimicus, V.fluvialis, V. hollisae, V.furnisii,, Aeromonas hidrophylla… Otros como V. alginolyticus, V.damsela, V.vulnificus, V.metscnikovii… podrían también estar implicados. Todos estos Vibrios son marinos costeros, excepto V.cholerae y V.mimicus que viven en aguas continentales. La mayor frecuencia de sus toxiinfecciones se produce en verano.
Vibrio cholerae incluye el virulento biotipo clásico (que no hemoliza los hematíes de carnero y cabra pero si los de hombre y conejo), y el menos virulento pero pandémico biotipo El Tor (que sí hemoliza los hematíes de carnero y cabra). Aunque en la actualidad la mayoría de casos de esta
enfermedad son leves, puede ser mortal por deshidratación de hasta 20 litros de agua al día en la persona contagiada. También provoca otitis e infecciones de heridas. Se difunde por el agua y alimentos contaminados con ella, sobre todo con las heces de los individuos enfermos. Pero el agua continental es su reservorio natural.

MODO DE EMPLEO E INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS
Medio de transporte y enriquecimiento para Vibrio cholerae y Aeromonas hidrophylla. La llamada reacción roja del cólera puede analizarse en este medio tras incubación a aproximadamente 37 ºC durante 24 horas, aunque dicha reacción da demasiados falsos positivos.
Previamente pre-enriquecer en TSB para eliminar el stress (este preenriquecimiento permite la detección un 50% más veces que sin él). Pasar para enriquecer en caldo Alkaline Vibrio  Enrichment Broth. Sembrar este caldo, tras el enriquecimiento, en Agar TCBS. Confirmar en placa las colonias amarillas (Sacarosa positivas): A diferencia de las Enterobacterias, Vibrio cholerae es oxidasa positivo. A diferencia de los Coliformes, es lactosa negativo. A diferencia de otros Vibrio, no crece con >6% (60 g/l) de ClNa.
Ciertas cepas de Vibrio cholerae se detectan mejor incubando a aproximadamente 28°C, temperatura más acorde con su reservorio natural (peces).
El uso de este enriquecimiento en la investigación de Aeromonas spp. aumenta su frecuencia de detección hasta en un 40% de los casos.
El usuario es el único responsable de la eliminación de los microorganismos según la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.
NOTA: Ante la desaparición del mercado internacional del Teepol, los Vibrio halófilos pueden enriquecerse en este mismo medio tras añadirle 30-50 g/l de ClNa, o mejor utilizar el caldo diferencial Vibrio Hipersaline (DMT137).

Si desea más información sobre nuestro ALKALINE VIBRIO ENRICHMENT BROTH, ALKALINE PEPTONE WATER o cualquier otro producto, no dude en contactar con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es, o en nuestro teléfono 91-897 46 16.

https://www.microkit.es/fichas/ALKALINE-VIBRIO-ENRICHMENT-BROTH.pdf

Ver tambien Alkaline Saline Enrichment Broth para los Vibrios halófilos:

https://www.microkit.es/fichas/ALKALINE-SALINE-VIBRIO-ENRICHMENT-BROTH.pdf

https://www.microkit.es/monograficos/14-Vibrio-monograf–a.pdf

 

BACILLUS CEREUS MOSSEL AGAR (BASE)

BACILLUS CEREUS AGAR Detección y Enumeración de Bacillus cereus (CENAN, ICMSF, ISO 7932:2004, ISO 21871:2006)

COMPOSICIÓN

  • Hidrolizado de carne   1,00 gB CEREUS
  • Peptona de caseina    10,00 g
  • D-Mannitol                   10,00 g
  • Cloruro sódico             10,00 g
  • Rojo fenol                    25,0 mg
  • Agar-agar                    15,00 g

(Fórmula por litro)pH final: 7,2 ± 0,2

PREPARACIÓN

Disolver 46 g de medio en 900 ml de agua bidestilada.Calentar hasta ebullición, agitando, para su total homogeneización. Autoclavar a 121 ºC durante 15 minutos. El color final del medio es salmón. Enfriar a 50 ºC y añadir 10 ml de Polimixina B 106UI (SMS009) (reconstituidas en 100 ml de agua estéril) y 50 ml de emulsión de Yema de Huevo (SBH010) o bien 50 ml de Yema de Huevo con Polimixina B (SAJ001), asépticamente. Mezclar y repartir en placas, sin recalentar.

BOTE 500

DESHIDRATADO CODIGO: DMT015

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

DESHIDRATADO: Polvo grueso, Rosado

PREPARADO: Estéril, Asalmonado.

EVALUACIÓN DEL RENDIMIENTO ISO/TS 11133-2: 24-48 h a 30-37 ºC, aplicando el método ISO 7932, o el indicado en el Manual MICROKIT actualizado:

Bacillus cereus MKTA 10876, Excelente, grandes colonias céreas, rosas, con halo blanco, el medio vira a fucsia. PR > 0,7, en concreto >82-113% de colonias respecto al número de ufc certificadas e inoculadas en TSA; esta variabilidad de la productividad depende de la composición y carga de la flora acompañante inoculada.

E.coli MKTA 25922, Inhibición completa: Ni una sola colonia.

Bacillus subtillis MKTA 6633, crecen colonias amarillas, sin halo de precipitación.

Staphylococcus aureus MKTA 6538P, Escaso, (colonias 2mm blancas, precipitado, medio amarillo).

Pseudomonas aeruginosa MKTA 9027, Inhibido.   Las colecciones TIPO prohiben el uso de su referencia por lo que indicamos la nuestra, directamente trazable a la colección TIPO.

PRESENTACION:

TUBOS PREPARADOS (BASE) + SUPLEMENTO, FRASCOS PREPARADOS (BASE) + SUPLEMENTO, MEDIO DESHIDRATADO BASE + SUPLEMENTOS.

NOTA: Bacillus cereus es responsable de toxiinfecciones alimentarias (carne, arroz, vegetales…) debidas a dos toxinas, una termoestable y emética, la otra termolábil y causa de diarreas. El mannitol es el carbohidrato fermentable, el rojo fenol es el indicador de pH y la polimixina B es el agente selectivo. No confundir con el caldo Mossel para enriquecimiento de Enterobacterias.

 

SIEMBRA

Sembrar 0,1 ml de la muestra y su serie de diluciones decimales, en superficie, repartiendo con el asa de Digralsky (VRR154, desechables VCL155). Incubar a 30 ºC aproximadamente, durante (6-)18-24 (-48) horas.

 

INTERPRETACIÓN

Las colonias grandes, rosas e irregulares, con aspecto de gota de cera, con halo blanco de lísis de la yema alrededor (a veces no!), son presuntivamente, de Bacillus cereus. Identificar con M- Ident Bacillus cereus (KMT009) o, al menos, por fermentación de glucosa en DTA (DMT183, RPL086, TPL092), con viraje a amarillo tras incubar 24 h a 30 °C; por MRVP (DMT082), incubado 24-48 h a 30 °C, y tras 1 h de añadir Voges Proskauer (SRH083), viraje a rosa; y por reducción del Nitrato (DMT186), incubado 24 h a 30 °C, y tras 15 minutos de añadir los Reactivos de Nitratos (SMN001), color rojo o bien sin color rojo tras 10 minutos de añadir polvo de Zinc. O bien por hemólisis positiva.

Si desea más información sobre nuestros MEDIO BACILLUS CEREUS MOSSEL AGAR (BASE) rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

https://www.microkit.es/fichas/BACILLUS-CEREUS-MOSSEL-AGAR.pdf

Ver tambien su versión cromogénica:

https://www.microkit.es/fichas/CROMOKIT-B-CEREUS-AGAR.pdf

https://www.microkit.es/monograficos/10-Bacillus-monograf–a.pdf

 

ALGAE AGAR (BASE)

AGAR ALGAS ALGAE AGAR

(BASE) es un medio de cultivo para aislamiento y recuento de microalgas (verdes, rojas, diatomeas…), aislamiento y recuento de algas microscópicas.

Gracias a este medio se pueden aislar colonias de microalgas de la misma forma que se consigue con las bacterias y los hongos, aunque el modo de incubar es completamente diferente

PREPARACIÓN

Disolver 14 gramos del polvo en 1litro de agua bidestilada. Calentar agitando hasta ebullición hasta su completa homogeneización. Autoclavar durante 121 ºC, 15 minutos. Dejar enfriar a 50 ºC para añadir asépticamente, de forma imprescindible, 5ml/litro del suplemento SCN002 y, si se desea la detección específica de cianofíceas-cianobacterias, además, 0,5 ml de suplemento SCL001. PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO. MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO AGITE EL BOTE ANTES DE USAR. DESHIDRATADO

Algae AgarCODIGO: DMT005

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…) DESHIDRATADO: Polvo grueso, Crema PREPARADO: Estéril, Blanco, con precipitados. CONTROL DE CRECIMIENTO Tª ambiente (21-28°C aproximadamente), 1-3 semanas con fotoperiodo de aproximadamente 16 h luz/8 h oscuridad, tras añadir suplemento SCN002: Chlorella vulgaris MKTClor-1, Bueno, Pigmenta verde-amarillento a los 7-21 días. Spirulina subsalsa MKTCian-2, Bueno, Pigmenta verde-azulado a los 7-21 días. PRESENTACION: MEDIO DESHIDRATADO Y SUPLEMENTOS (CLOROFICEAS Y CIANOFICEAS)

MODO DE EMPLEO E INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS

Algae Agar2Sembrar en superficie 0,1 ml de muestra o una membrana filtrada. Incubar durante 3-21 días a temperatura primaveral (aproximadamente 21-28°C) a la luz indirecta del sol, con fotoperiodo de aproximadamente 16 horas de luz, 8 horas de oscuridad (si no es primavera o el laboratorio está en zona poco clara, ayudar con fluorescentes para acercarse lo más posible al fotoperiodo mencionado, clave de más rápidos resultados). El usuario es el único responsable de la eliminación de los microorganismos según la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.
NOTA: Laboratorios MICROKIT dispone de unas claves para la identificación de las algas y cianobacterias de aguas continentales, que ofrece gratuitamente a sus clientes.

Algae Agar3Si desea más información sobre nuestro ALGAE AGAR (BASE) o cualquier otro producto, no dude en contactar con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es, o en nuestro teléfono 91-897 46 16.

https://www.microkit.es/fichas/ALGAE-AGAR.pdf

https://www.microkit.es/monograficos/12-Cianobacterias-y-Microalgas-monograf–a.pdf

 

 

 

BACILLUS ANTHRACIS SELECTIVE AGAR

Bacillus anthracis selective Agar

o Antrax Agar es el medio selectivo para aislar este patógeno y sus esporas, selectivo para la detección y recuento de Bacillus anthracis en todo tipo de muestras (lana, tierra, superficies, aire, heridas…).

COMPOSICIÓN

  • Infusión de corazón           17,5 g
  • Peptona pancreát.gelatina   10,0 g
  • Triptosa                               10,0 g
  • Extracto de levadura             1,5 g
  • Cloruro sódico                     5,0 g
  • Glucosa                               10,0 g
  • Agar-Agar                           14,0 g

pH final: 7,3 ± 0,2

En suplemento pinchable aparte:

  • Factor Lz                              40 mg
  • Polimixina B                       30.000 UI

 

PREPARACIÓN

Disolver 68 gramos en 1 litro de agua  bidestilada. Agitar  calentando hasta ebullición.  Autoclavar a 121° C durante 15 minutos. El color final del medio es crema. No sobrecalentar. Enfriar a 47°C y añadir asépticamente 20 ml del suplemento selectivo para Bacillus anthracis SMT008 (Polimixina B + Factor Lz). Agitar hasta su completa solidificación para evitar grumos.

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO. AGITE EL BOTE ANTES DE USAR. MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO.

DESHIDRATADO CODIGO: DMT018

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO:

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…).

DESHIDRATADO: Polvo grueso, Crema           PREPARADO: Estéril, Crema

CONTROL DE CRECIMIENTO 48-72 h a 37°C aproximadamente, o bien 3-5 días a temperatura ambiente (21-28°C aproximadamente):

Bacillus anthracis MKTA 23445, Excelente.

Staphylococcus aureus MKTA 6538P, Crece, pero tras 48 horas, colonias redondas y discretas.

Pseudomonas aeruginosa MKTA 27853, Inhibido.

Escherichia coli MKTA 25922, Inhibido.

 

PRESENTACIÓN:

MEDIO DESHIDRATADO. PLAQUITAS HERMÉTICAS PREPARADAS (PLAQUIS ®).

SIEMBRA E INTERPRETACIÓN

Para evitar interferencias o inhibición del crecimiento por parte de ciertos componentes de la muestra (residuos de desinfectantes u otros inhibidores, flora interferente…), para lana, tierra, sobres, etc. es preferible realizar la suspensión inicial (1:10) en LPT Neutralizing Broth (deshidratado DMT217, frascos 90 ml RPL054) y dejar actuar 20-30 minutos.

Sembrar en superficie 0,1-0,3 ml de la suspensión inicial de la muestra y su serie de diluciones decimales.

Si se trata de controlar superficies, aplicar la placa de contacto durante 10 segundos, apretando sin restregar.

Si se analiza el aire, tomar 5 muestras de 200 litros cada una con muestreador de impacto con placa de contacto (MICROFLOW VAQ055) a fin de minimizar el efecto desecación y el efecto rebote, respectivamente.

Incubar 8-24 horas a 35 °C aprox.

B.anthracis crece con colonias grandes, a veces lobuladas.

Al microscopio se ven cadenas cortas de 2-4 bacilos Gram positivos con espora redonda, central, que no deforma la pared celular. La esporulación se ve inhibida con altas concentraciones de CO2, como las que hay en el interior del huésped.

Las cepas patógenas poseen una gran cápsula que se evidencia al teñir con tinta india.

NOTA:

Bacillus anthracis fué la primera bacteria detectada como patógena, en 1877 por Robert Kock.

La palabra antrax viene del griego, carbón, a causa de la lesión negra que provoca en la piel del ganado y el hombre.

La enfermedad se llama carbunco y es una zoonosis transmitida por herbívoros infectados a humanos expuestos, como los pastores, veterinarios…

Es frecuente en suelos alcalinos y de ahi pasa a la lana, piensos, etc.

Existen al menos 89 cepas conocidas, algunas altamente virulentas (como las empleadas en la guerra bacteriológica y terrorismo) y otras benignas, las cuales siempre carecen de cápsula.

La virulencia depende de la posesión de ciertos genes que producen un polipéptido capsular antifagocitario (substancia P, generada por el plásmido pX02) y una exotoxina (generada por el plásmido pX01).

Su diferenciación bioquímica de otras especies (B.cereus, B.coagulans, B.mycoides y B.thuringiensis) es imposible (todas ellas pueden crecer en agar anaerobio, a pH 5,7 y no acidifican la arabinosa) por lo que es probable que se trate de distintas formas de una misma especie.

Si desea más información sobre nuestros MEDIO BACILLUS ANTHRACIS SELECTIVE  AGAR  rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto .

O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

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AEROMONAS AGAR (BILE SALT IRGASAN BRILLIANT GREEN AGAR)

AEROMONAS BSI-BGA AGAR

(BILE SALT IRGASAN BRILLIANT GREEN AGAR) es un Agar selectivo para el aislamiento y la enumeración de Aeromonas spp. en alimentos, aguas,  ambiente y muestras clínicas.

PREPARACIÓN

Disolver 45,5 gramos en 1 litro de agua bidestilada. Agitar calentando hasta ebullición. No  autoclavar! No sobrecalentar! El color final del medio es púrpura. No refundir!

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO. AGITE EL BOTE ANTES DE USAR, PARA ASEGURAR LA HOMOGENEIZACIÓN DE LOS EVENTUALES GRADIENTES DE DENSIDAD DE LOS  OMPONENTES. MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO.

DESHIDRATADO CODIGO: DMT316

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª,  cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…).

DESHIDRATADO: Polvo grueso, púrpura PREPARADO: Estéril, púrpura
CONTROL DE CRECIMIENTO 18-24 horas a 37°C aproximadamente: Aeromonas hydrophila MKTA 49140, Excelente, colonias rosas traslúcidas de 0,5-3 mm. Pseudomonas aeruginosa MKTA 10662, Excelente, colonias rosas traslúcidas de 0,5-1 mm. Staphylococcus aureus MKT 6571, Inhibido. E.coli MKT 9001, Inhibido.

PRESENTACIÓN: MEDIO DESHIDRATADO.

NOTA:

Basando su selectividad en el verde brillante e irgasan, no inhibe las cepas de Aeromonas sensibles a la ampicilina que es empleada en otros medios.

SIEMBRA E INTERPRETACIÓN:

En muestras clínicas, sembrar en superficie, en estría para aislar colonias. En muestras ambientales de agua, sembrar la membrana filtrada evitando la aparición de burbujas o de pliegues.

Para muestras de alimentos incubar previamente 18-24 horas a 37°C en agua de peptona alcalina (DMT151) y sembrar después un inóculo enriquecido en estría. El uso de este enriquecimiento en la investigación de Aeromonas spp. aumenta su frecuencia de detección hasta en un 40% de los casos.

Incubar 18-24 horas a 37°C.

Examinar las colonias típicas de Aeromonas: rosas y transparentes de 0,5-3 mm de diámetro. Identificarlas mediante la oxidasa (KOT050) y el medio O/F (DMT095):

Aeromonas es oxidasa  positiva y muestra ambos metabolismos (oxidativo y fermentativo), mientras Pseudomonas, que también es oxidasa positivo, no tiene metabolismo fermentativo.

También pueden diferenciarse mediante TSI Agar (DMT127) porque Aeromonas crece con fondo ácido (amarillo) y pico alcalino (rojo) o inalterado (naranja), mientras Pseudomonas crece con fondo y pico inalterados (naranja).
Identificar la especie con galerías adecuadas.

NOTA:

Por lo general, las Aeromonas pueden crecer bien sobre los medios de cultivo convencionales en el laboratorio, tales como agar MacConkey, agar Hektoen, agar xilosa-lisina-desoxicolato (XLD), agar Salmonella-Shigella (SS) y agar nutriente sin adición de sales.

Sin embargo estos medios no son selectivos para ellas y los coliformes acompañantes enmascaran y dificultan su detección.

Diferentes medios de cultivo y métodos para el aislamiento de Aeromonas sp. de aguas se han propuesto: (APHA, 1989; Havelaar et al., 1987; Nishikawa y Kishi, 1987; Kersters et al., 1996), Agar Ampicilina Dextrina (ADA), Agar Sangre con Ampicilina (ASA), Agar CIN (Cefsulodina-Irgasan- Novobiocina, originalmenter creado para Yersinia enterocolitica).

Este ultimo permite el crecimiento de la mayoría de las especies y, en algunos estudios, consigue un incremento del 35% en las tasas de aislamiento.

OPTIMIZACIÓN

Sin embargo lo ideal para el estudio de las bacterias pertenecientes a la familia Aeromonadaceae es seguir los esquemas de Janda y col. y Satcher:

se inocula un tubo con agua peptonada alcalina a pH 8,4 (Ref: DMT151), con el fin de incrementar el desarrollo de especies de los géneros Aeromonas y Plesiomonas,

este caldo se incuba a 37°C durante 4 a 6 horas en condiciones de aerobiosis,

al cabo de ese tiempo se siembra en Agar Nutritivo, Agar Ampicilina-Almidón,

Agar Almidón-Sales Biliares-Verde Brillante (BBGS) según Nishikawa y Kishi

o mejor el presente agar Aeromonas Irgasan-Sales Biliares-Verde Brillante (Ref: DMT316), incubando a 37°C, en condiciones de aerobiosis durante 24 a 48 horas.

Se valoran las colonias obtenidas y se purifican las colonias de interés para su identificación bioquímica o molecular (Ref: SFI004+).

El usuario es el único responsable de la eliminación de los microorganismos según la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.

Si desea más información sobre nuestro AEROMONAS AGAR (BILE SALT IRGASAN BRILLIANT GREEN AGAR) no dude en contactar con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es, o en nuestro teléfono 91-897 46 16.

https://www.microkit.es/fichas/AEROMONAS-AGAR.pdf