LAURYL TRYPTOSE MANNITOL BROTH WITH TRYPTOPHAN es un caldo para la detección y recuento NMP de coliformes y E.coli (Indol +)

Detección y enumeración confirmativa de coliformes y E.coli en 24 horas por NMP (ISO 9308-1 y 2:1990)

COMPOSICIÓN

Izda: Sin crecimiento. Centro: Coliformes (gas y turbidez). Dcha: E.coli (coliformes con indol directo positivo)

Tryptose 20,00 g
Mannitol 5,00 g
Sodium Cloride 5,00 g
Monopotassium phosphate 2,75 g
Dipotassium phosphate 2,75 g
Sodium laurylsulfate 0,10 g
L-Tryptophane 0,20 g

(Fórmula por litro)
pH final: 6,8 ± 0,2

PREPARACIÓN

Disolver 35,8 gramos en 1 litro de agua bidestilada, evitando la agitación brusca para que no se forme excesiva espuma. Dispensar 5-9 ml en tubos con campana Durham.
Autoclavar a 121 ºC durante 10 minutos.
No sobrecalentar. Dejar enfriar .

MANTENER EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO.

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO.

DESHIDRATADO CODIGO: DMT212

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

DESHIDRATADO: Polvo grueso, Amarillo.
PREPARADO: Estéril, Pajizo.

EVALUACIÓN DEL RENDIMIENTO ISO/TS 11133-2 24-48 h a 30-37 y a 44°C ºC, aplicando el método ISO 4831, ISO 9308 o el indicado en el Manual MICROKIT actualizado:

• Escherichia coli MKTA 25922, 9 tubos turbios forman gas en 1/3 de la campana Durham, indol positivos tras añadir Kovacs a 37 ºC y a 44 ºC.
• Klebsiella oxytoca MKTA 13182, 9 tubos turbios con gas, Indol positivos tras añadir Kovacs (a 37ºC pero no a 44 ºC).
• Citrobacter freundii MKTA 43864, 9 tubos turbios forman gas en 1/3 de la campana Durham, indol negativos tras añadir Kovacs.
• Salmonella abony MKTN 6017, 9 tubos turbios pero sin gas.
• Enterococcus faecalis MKTA 29212, Inhibido, no hay turbidez ni gas.

Las colecciones TIPO prohiben el uso de su referencia por lo que indicamos la nuestra, directamente trazable a la colección TIPO.

PRESENTACIÓN: MEDIO DESHIDRATADO.

SIEMBRA E INTERPRETACIÓN

Añadir las colonias sospechosas de coliformes procedentes de Agar Chapman Tergitol u otro medio presuntivo o bien sembrar tubos con campana de acuerdo con el método NMP. Incubar hasta 48 horas para observar la producción de gas retenido en la campana Durham, que es confirmativa de coliformes a 37 ºC aproximadamente y presuntiva de E.coli a 44 ºC aproximadamente. La adición de triptófano permite confirmar E.coli con la prueba del indol, de forma más rápida.

El usuario es el único responsable de la eliminación de los microorganismos según la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.

Si desea más información sobre nuestros MEDIO LAURYL TRYPTOSE MANNITOL BROTH, rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

https://www.microkit.es/fichas/LAURYL-TRYPTOSE-MANNITOL-BROTH-WITH-TRYPTOPHAN.pdf

Cultivo de Hongos y bacterias consumidores de Nitrato sódico

COMPOSICION

Hongo del suelo (Mixomicete en fase de plasmodio)

Nitrato sódico 2,00 g
Cloruro potásico 0,50 g
Sulfato magnésico 0,50 g
Sulfato ferroso 0,01 g
Fosfato dipotásico 1,00 g
Sacarosa 30,00 g
Agar agar 12,00 g

(Fórmula por litro) pH final: 6,8 ± 0,2

PREPARACION

Disolver 46 g en 1 litro de agua destilada. Calentar y agitar hasta su completa disolución.
Autoclavar a 115 ºC durante 20 minutos.
Mezclar bien antes de verter en las placas.
Para ajustar el pH a 3’5, añadir 10 ml de solución estéril de ácido láctico al 10% por litro de medio.
No recalentar.

PARA USO EN LABORATORIO.
MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO.
DESHIDRATADO CODIGO: DMT040
AGITE EL BOTE ANTES DE USAR

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…).

DESHIDRATADO: Polvo fino, Blanco
PREPARADO: Estéril, Ambar precipitado

CONTROL DE CRECIMIENTO 1 semana a temperatura ambiente (21-28°C aproximadamente):
Aspergillus niger MKTA 16404, Correcto, Colonias negras y esporuladas en 5 días.
Candida albicans MKTA 10231, Correcto.

PRESENTACION: MEDIO DESHIDRATADO

NOTA: Se utiliza principalmente para el cultivo de bacterias y hongos del suelo. La única fuente de Carbono es la Sacarosa y la de Nitrógeno es el nitrato sódico. El tiempo y la temperatura de incubación varía según las especies buscadas, aunque pueden servir de guía 1 2 semanas a 15-25 ºC aproximadamente.

MODO DE EMPLEO E INTERPRETACION DE RESULTADOS

Sembrar en superficie 0,1 ml de muestra y su serie de diluciones decimales. Incubar 1-2 semanas a 15-25 ºC aproximadamente.

El usuario es el único responsable de la eliminación de los microorganismos según la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.

Si desea más información sobre nuestros MEDIO CZAPEK DOX AGAR, rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

https://www.microkit.es/fichas/CZAPEK-DOX-AGAR.pdf

ENDO: M‑ENDO BROTH en el caldo clásico de filtración de membrana para la detección y recuento de coliformes (Incl.E.coli) en aguas naturales

Detección y enumeración de Coliformes por el método de filtración de membrana

 COMPOSICIÓN

• Triptona                             5,000 g
• Peptona de carne             5,000 g
• Triptosa                            10,000 g
• Extracto de levadura        1,500 g
• Cloruro sódico                   5,000 g
• Lactosa                             12,500 g
• Fosfato dipotásico             4,375 g
• Fosfato monopotásico      1,375 g
• Sulfito sódico                      2,100 g
• Desoxicolato sódico          0,100 g
• Lauril sulfato sódico          0,050 g
• Fucsina básica                    1,050 g

(Fórmula por litro)      pH final: 7,2 ± 0,1

PREPARACIÓN

Disolver 48 g. en 1 litro de agua destilada fría conteniendo 20 ml. de etanol. Esterilizar por filtración o bien 1 minuto a 116 ºC. NO sobrecalentar.

PRECAUCION: La Fucsina básica es potencialmente cancerígena.

Proteger rigurosamente el medio preparado de la luz.

PARA USO EN LABORATORIO. TOXICO. Ensucia fácilmente y es difícil de limpiar (J usar lejía en caliente). MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO, EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO. AGITE EL BOTE ANTES DE USAR. DESHIDRATADO CODIGO: DMT168

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

DESHIDRATADO: Polvo grueso, Púrpura

PREPARADO: Estéril, Rosa, luego Rojo vino precipitado

CONTROL DE CRECIMIENTO 24-48 h a 37°C aproximadamente:

• Enterobacter aerogenes MKTA 9489, Negativo.
• Escherichia coli MKTA 25922, Moderado, Colonia rojo rosadas, centro negro y brillo metálico verdoso.
• Salmonella abony MKTN 6017, Moderado, colonias incoloras sin brillo metálico.
• Pseudomona aeruginosa MKTA 9027, Moderado, colonias incoloras sin brillo metálico.

PRESENTACIÓN: VIALES FM, MEDIO DESHIDRATADO

NOTA: Medio extraordinariamente selectivo para la enumeración de coliformes en agua y otros productos por la técnica de Filtración de Membrana (FM), de acuerdo con la APHA. Los coliformes viran el medio a púrpura, con mayor o menor brillo metálico (E. coli, máximo reflejo).

SIEMBRA

Añadir un vial o 2 ml de medio sobre un cartón absorbente previamente colocado dentro de una placa Petri estéril de 55 mm de diámetro, depositar encima la membrana de filtración (tras filtrar la muestra) con cuidado de que no se formen burbujas entre la membrana y el cartón con medio. Incubar a 35-37 ºC aproximadamente, durante 24-48 horas.

INTERPRETACIÓN

Las colonias rojo‑violáceas son de coliformes; las de otros colores son de otros microorganismos.  PRECAUCIONES: 1‑ La fucsina básica es potencialmente cancerígena: no tocar ni inhalar el medio en polvo o preparado. 2‑ Conservar a 4‑25 ºC protegido de la luz, para preservar su coloración característica. 3‑ No sobrecalentar. 4- El medio es excesivamente selectivo, por lo que recomendadmos su sustitución por MUGPLUS Cfs. Broth (viales y viales pinchables, no existe deshidratado

Si desea más información sobre nuestros ENDO BROTH, rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

https://www.microkit.es/fichas/ENDO-BROTH.pdf

CROSSLEY MILK MEDIUM es un medio para diferenciar Clostridios y otros anaerobios en comidas enlatadas y otras muestras

Detección de anaerobios en alimentos enlatados. Identificación de clostridios.

COMPOSICIÓN

Skim milk 100,0 g
Peptone 10,0 g
Bromcresol Purple 0,1 g
(Fórmula por litro)
pH final: 7,2 ± 0,2

Izda: Tubo parafinado, sin inocular .
Dcha: Tubo con Cl.perfringens, amarillo, cuajado y con gas que separa el tapón de parafina

PREPARACIÓN

Añadir a 110 g de medio un poco de agua destilada y remover hasta que se forme una pasta homogénea. Ir añadiendo agua destilada hasta 1 litro sin parar de remover. Esterilizar por vaporización a 121 ºC durante 5 minutos. Repetir tres veces para eliminar las esporas que pueda contener el medio.

MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO.
AGITE EL BOTE ANTES DE USAR.
PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO.
DESHIDRATADO CODIGO: DMT045

PRESENTACIÓN: MEDIO DESHIDRATADO, TUBOS PREPARADOS PARAFINADOS.

MODO DE EMPLEO E INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS

Fundir la parafina a 98 ºC. Inocular 1 g de muestra en un tubo con 9 ml y agitar vigorosamente. Reposar el tubo vertical para que la parafina forme un tapón de anaerobiosis. Incubar 3-4 días a 37 ºC aproximadamente.

• Clostridium perfringens produce viraje a amarillo y mucho gas (parafina muy separada del caldo).
• Clostridium centrosporogenes produce coagulación sin viraje y poco gas.
• Clostridium putrificum, Clostridium sporogenes, Clostridium novyi y Clostridium histolyticum producen suero parduzco sin acidificación y con sedimento negro.
• Clostridium sphenoides produce acidificación ligera (amarillo-pálido) con coágulo blanco y suero, y poco gas.
• Clostridium butyricum produce acidificación (amarillo brillante) con mucho gas y coágulo.
• Clostridium tertium produce acidificación y coagulación tumultuosa, con poco gas y suero espeso.
• Bacillus cereus, Bacillus coagulans y Bacillus megaterium producen ligera acidificación y coagulación.
• Bacillus subtilis produce alcalinización (violeta intenso).

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

DESHIDRATADO: Polvo grueso, cremoso
PREPARADO: Estéril, Verdoso-Parduzco-lila, precipitado.

CONTROL DE CRECIMIENTO 3-5 días a 37°C aproximadamente:

• Bacillus subtillis MKTA 6633, Bueno, Azul.
• Bacillus cereus MKTA 10876, Bueno, Azul.
• E.coli. MKTA 25922, Bueno, Amarillo y cuaja la leche.
• Clostridium perfringens MKTA 13124, Bueno (lento), Amarillo y cuaja la leche/ gas.

El usuario es el único responsable de la eliminación de los microorganismos según la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.

Si desea más información sobre nuestros MEDIO CROSSLEY MILK MEDIUM , rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

https://www.microkit.es/fichas/CROSSLEY-MILK-MEDIUM.pdf

M-ENDO AGAR

Versión sólida del Caldo M-Endo para detección y recuento de E. coli y coliformes por filtración de membrana (MF)
Medio selectivo y diferencial recomendado por la ICMSF

DESCRIPCIÓN GENERAL

El M-ENDO AGAR es la versión sólida del Caldo M-Endo, diseñada para la detección y enumeración de coliformes y Escherichia coli mediante el método de filtración por membrana (MF) en aguas y alimentos, según las recomendaciones de la ICMSF (International Commission on Microbiological Specifications for Foods).

Su formulación permite una detección rápida, selectiva y diferencial basada en la fermentación de lactosa y la reducción de sulfito, evidenciada por la aparición de colonias con brillo metálico característico en E. coli.

Es un medio altamente selectivo gracias a la presencia de fucsina básica y sulfito sódico, que inhiben parcialmente la flora acompañante Gram positiva y no fermentadora de lactosa.

COMPOSICIÓN (por litro)

pH final: 7,5 ± 0,2

PREPARACIÓN DEL MEDIO

1. Disolver 41,5 g de medio en 1 litro de agua destilada que contenga 20 ml de etanol al 95%.

2. Calentar con agitación hasta ebullición para asegurar su completa disolución.

3. Esterilizar 1 minuto a 116 ºC, minimizando los tiempos de subida y bajada de temperatura del autoclave.

4. Enfriar a 45–50 ºC antes de verter en placas de Petri estériles.

⚠️ Precaución:

• Medio tóxico (contiene fucsina básica).

• No inhalar ni tocar directamente.

• Limpiar derrames o manchas con lejía caliente.

• Proteger de la luz y no sobrecalentar.

CONDICIONES DE ALMACENAMIENTO

• Mantener el bote bien cerrado, en lugar seco, fresco y oscuro.

• Agitar antes de usar.

• Uso exclusivo en laboratorio.

Código: DMT051

Aspecto del producto:

• Deshidratado: Polvo grueso, color púrpura.

• Preparado: Medio estéril, rosáceo con posible precipitado.

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

El control de calidad se realiza en nuestro laboratorio. Se recomienda repetirlo en cada instalación cuando cambien las condiciones (p. ej. más de 3 meses sin uso, limpieza del laboratorio, exposición a altas temperaturas o alteración visual del producto).

Evaluación del rendimiento (24–48 h a 37 ºC):

PRESENTACIÓN DISPONIBLE

• Medio deshidratado, formato estándar de laboratorio.

MODO DE EMPLEO

Método de siembra:

1. Fundir el medio y verter en placas estériles.

2. Dejar enfriar hasta solidificar.

3. Opción A: Sembrar en superficie a partir de tubos positivos de:

   • Caldo Bilis Verde Brillante 2%

   • Caldo Lactosado

   • Caldo Lauril Sulfato Sódico.

4. Opción B: Depositar cuidadosamente la membrana filtrante sobre la superficie del agar, evitando burbujas.

5. Incubar a 35–37 ºC durante 24–48 horas.

INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS

⚠️ La fucsina básica es potencialmente cancerígena. Manipular con guantes, mascarilla y gafas de seguridad.
Medio altamente selectivo.
Alternativa menos tóxica y actualizada a la legislación actual de aguas de consumo y envasadas: MUG PLUS Cfs. Agar (DMT400-).

APLICACIONES PRINCIPALES

• Detección y recuento de coliformes totales y E. coli en:

  • Aguas potables, naturales y residuales (método de filtración de membrana).

  • Alimentos y bebidas.

  • Productos cosméticos o farmacéuticos con control microbiológico.

INFORMACIÓN ADICIONAL

Ficha técnica M-ENDO AGAR (PDF)
Correo: microkit@microkit.es
Teléfono: 91 897 46 16

MEDIOS CROMOGÉNICOS MICROKIT: CROMOKIT. DESDE QUE CREAMOS EL PRIMERO (1995), NO HEMOS PARADO, AHORA OFRECEMOS 30 AGARES Y 11 CALDOS EN 2023, Y SEGUIMOS INVESTIGANDO

CROMOKIT® Medios de cultivo cromogénicos

RAPIDTEST Broth
Diferentes tonos de viraje en función de la carga microbiana total y el tiempo de incubación

MUGPLUS Cfs.Agar
E.coli: colonias azul-violetas, demás coliformes: colonias rosas

MCC Broth
Coliformes: Caldo azul turquesa. E.coli: Fluorescente bajo luz UVA de 366 nm e indol (anillo rojo) positivo

CHROMOSALM Agar
Salmonella: colonias verde-azuladas
falsos positivos de otros medios (Proteus, Citrobacter y demás enterobacterias): colonias negras o incoloras

T.B.X. Agar
E.coli: colonias verde-azuladas

CHROMOCYTOGENES Agar
Listeria monocytogenes: colonias verdes con halo, Rhamnosa positivas y Xylosa negativas

PCA-Cromogenic Agar

YEA-Cromogenic Nutrient Agar

PCA-MILK-Cromogenic Agar
En los tres medios las colonias rojas contrastan con el color del medio, las partículas, las burbujas y la membrana.

Medios Cromogénicos MICROKIT® – Innovación y Precisión en Microbiología Desde 1991

En Laboratorios MICROKIT® somos pioneros en el diseño y fabricación de una de las gamas más amplias de medios cromogénicos del mercado mundial.
Desde los años 90, desarrollamos agares y caldos cromogénicos para el análisis microbiológico de alimentos, aguas, cosméticos, superficies y aire, fabricados íntegramente en España con la más alta calidad.

Ofrecemos nuestros productos tanto en versión deshidratada como en formato preparado, disponibles en múltiples presentaciones: tubos, frascos, ampollas MF, placas herméticas PLAQUIS® y kits Presencia/Ausencia (P/A).

Ventajas de los Medios Cromogénicos MICROKIT®

AGARES CROMOGÉNICOS

• Permiten una identificación visual clara y específica, ya que solo las colonias (y no el medio) se colorean con el cromógeno.
• Diferencian fácilmente colonias solapadas de microorganismos distintos.
• Utilizan sustratos enzimáticos, mucho más específicos que los colorantes bioquímicos tradicionales.

CALDOS CROMOGÉNICOS

• Ofrecen un rápido despistaje de muestras negativas con una sensibilidad superior a los medios clásicos.
• Detectan la presencia o ausencia del microorganismo diana en menos tiempo y con mayor fiabilidad.

Evolución de Nuestros Medios Cromogénicos

1991 – RAPIDTEST Broth

Nuestro primer caldo cromogénico, diseñado para la detección rápida de la carga microbiana aerobia mediante un viraje de color a rojo.
Ideal para la industria alimentaria y química, permite determinar el bioburden en solo 4 a 24 horas.

• 10⁶ ufc/g → viraje en 3–4 h
• 10⁵ ufc/g → viraje en 7–8 h
• 10⁴ ufc/g → viraje en 10–12 h
• 10³ ufc/g → viraje en 13–18 h

Si el producto no debe superar 10⁴ ufc/g, bastan 12 horas de incubación para confirmar su validez.
Incluso es posible detectar de forma precoz el viraje inicial (color rosado) antes del resultado final, dependiendo de la matriz.

1999 – MUGPLUS Cfs.Agar

Primer agar cromogénico MICROKIT®.

• E. coli: colonias azules (X-Glu)
• Coliformes: colonias rosas (Salmon-Gal)
  Resultados en 18–24 horas en una sola placa, tanto por filtración de membrana como por siembra directa.

Comparado con medios como Endo, M-FC, COLITAG o COLI-ID, MUGPLUS ofrece mayor sensibilidad, especificidad y precisión.
Cumple la Norma ISO 9308-1 y presenta correlación 100% con el medio validado de otra marca pionera.

2001 – MCC Broth

Caldo Lauryl-Sulfato con MUG y X-Gal que permite la detección simultánea de Coliformes y E. coli en 18–24 horas en un mismo tubo.

• E. coli: fluorescencia azul bajo luz UVA (366 nm) + indol positivo con reactivo de Kovacs.
• Coliformes: viraje a azul turquesa.

No requiere campanas Durham ni agua de triptona posterior.
Ideal para recuentos NMP o detección P/A en aguas y bebidas.
Validado por más de 15 años de estudios intercomparativos.

2002 – CHROMOSALM ABC Agar

El medio más específico y sensible para la detección de Salmonella.

• Salmonella: colonias verdes (X-α-Gal).
• Otras Enterobacterias: colonias incoloras o negras (CHE-Gal).

Evita interferencias de Proteus y Citrobacter, comunes en otros medios incluso cromogénicos.
Elimina la necesidad de kits de confirmación adicionales.
Cumple la Norma ISO 6579 y ha demostrado máxima eficiencia en estudios intercolaborativos.

2003 – T.B.X. Agar

Agar para la detección de E. coli con colonias verde-azuladas.
Basado en el T.B.A. (ISO 9308-1), al que se ha añadido el cromógeno X-Glu.
Cumple las Normas ISO/TC 34/SC9 e ISO/TS 16649-2.

2004 – CHROMOCYTOGENES Agar

Diseñado según la Norma ISO 11290-2004 para la detección de Listeria monocytogenes.
Fuimos los primeros en ofrecerlo en formato deshidratado, ampliando su vida útil frente a las placas preparadas.
Demuestra correlación 100% con los medios Ottaviani & Agosti (ALOA).

2006 – PCA-Cromogenic Agar, PCA-MILK-Cromogenic Agar, YEA-Cromogenic Nutrient Agar y TSA Maxim Agar

Cuatro medios diseñados para el recuento total de aerobios en diferentes matrices:

• PCA-Cromogenic: alimentos (ISO 4833, AOAC, APHA).
• PCA-MILK-Cromogenic: lácteos (FIL).
• YEA-Cromogenic: aguas (ISO 6222).
• TSA MAXIM Agar: cosméticos con visualización más rápida y evidente

Las colonias crecen rojas sobre fondo crema, aumentando la visibilidad y precisión del recuento (>110% de sensibilidad frente a medios clásicos).
El analista deja de forzar la vista y distingue fácilmente colonias de partículas, burbujas o la membrana filtrante.

Innovación Continua: Nuestro Departamento de I+D+i

En Laboratorios MICROKIT® seguimos desarrollando nuevos medios cromogénicos que optimizan la eficiencia y fiabilidad de los análisis.
Nuestros últimos lanzamientos incluyen medios específicos para la detección de:

• Candida albicans
• Burkholderia cepacia
• Pseudomonas aeruginosa
• Microorganismos UTI
• Patógenos emergentes en cosméticos
• Esporulados termoresistentes HRS
• Staphylococcus aureus
• Clostridium perfringens
• Campylobacter spp.
• Enterococos fecales
• E.coli O157
• Lactobacilos
• Levaduras y mohos
• Bacillus cereus
• Vibrio parahaemolyticus
• Enterobacter (Cronobacter) sakazakii

Nuestra innovación es suya: desarrollamos soluciones prácticas, seguras y eficientes para los laboratorios del presente y del futuro.

Todas las publicaciones y estudios que avalan los resultados mencionados están disponibles en nuestra web oficial:
http://www.microkit.es

Desde que se editó esta noticia hemos diseñado numerosos medios cromogénicos nuevos. El folleto más actualizado es este, pero nuestro I+D es mucho más rápido que nuestras entradas al blog (y por supuesto muchísimo más rápida que la Normalización de métodos):

https://www.microkit.es/pdf/CROMOKIT-2021.pdf

Prepárese para más de una sorpresa informativa cuando vea nuestro video sobre los medios Cromogénicos: https://www.youtube.com/watch?v=-JVPVWxY8ZE&t=271s

Si desea más información y precios actualizados sobre nuestros MEDIOS póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

https://www.microkit.es/monograficos/17-Medios-cromog–nicos-monograf–a.pdf

LACTOSE SULFITE BROTH BASE, caldo para la confirmación bioquímica de Clostridium  perfringens (ISO y Farmacopea)

PHARMACOPEA MEDIO R
Confirmación bioquímica de Clostridium  perfringens (ISO 7937:1997, UNE- EN  13401:2000, ISO/CD 6461-2:2002).

COMPOSICIÓN

De izquierda a derecha: Lactose Sulfite Broth sin inocular,
Cl. sporogenes (turbio sin gas), Cl. perfringens (turbio con gas).

Digestato enzimático de caseína 5.00 g
Extracto de Levadura 2.50 g
Cloruro Sódico 2.50 g
Lactosa 10.00 g
L-Cisteína 0.30 g

(Fórmula por litro)
pH final: 7.1 ± 0,2

PREPARACIÓN

Disolver 20,3 gramos de medio en 1 litro de agua bidestilada. Repartir en tubos con campana. Autoclavar a 121 ºC durante 15 minutos. Añadir 0,75 g de Metabisulfito de sodio (SDA006) y 0,63 g de Citrato-ferro-amónico (SDA007), o bien dos viales estériles de suplemento de ambos componentes (VMT136). Para elaborar menor cantidad de medio, se pueden realizar alícuotas de un vial disuelto en agua estéril (los precipitados negros son normales, agitar inmediatamente para repartir lo más homogéneo posible), pero éstas no se deben autoclavar, todo lo más calentar un instante a 87°C para que pierdan su oxigenación tras su almacenamiento e inmediatamente antes de añadir al medio.

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO.
AGITE EL BOTE ANTES DE USAR. MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO.
DESHIDRATADO CODIGO: DMT140

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

DESHIDRATADO: Color marfil
PREPARADO: Paja-ámbar

CONTROL DE CRECIMIENTO 24-48 h a 44-46°C aproximadamente, sin aerobiosis:

• Cl. perfringens MKTA 13124, perfecto, SH2 + (ennegrecimiento), con producción de gas
• Cl. sporogenes MKTA 11437, perfecto, SH2 + (ennegrecimiento), sin producción de gas
• Staphylococcus aureus MKTA 6538P, inhibido
• Bacillus subtilis MKTA 6633, Inhibido

PRESENTACION: MEDIO DESHIDRATADO, TUBOS PREPARADOS CON CAMPANA DURHAM.

MODO DE EMPLEO E INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS

Inocular, en cada tubo, 5 gotas del cultivo crecido en FTM (DMT122) con una pipeta estéril. Incubar a 46 ºC aproximadamente, durante 18-24 h. La aparición de precipitado negro y la formación de gas que queda retenido en la campana Durham, es prueba positiva. Las bacterias que formen colonias características en TSC Agar (DMT175, TPL137) o TSN Agar (DMT175) y que den resultado positivo en este medio se consideran Clostridium perfringens.

El usuario final es el único responsable de la eliminación de los microorganismos de acuerdo con la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura

Si desea más información sobre nuestros MEDIO LACTOSE SULFITE BROTH BASE rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

https://www.microkit.es/fichas/LACTOSE-SULFITE-CLOSTRIDIUM-BROTH.pdf

EMB LEVINE AGAR es un medio de cultivo clásico para detección y recuento de E.coli/coliformes en lácteos (y ahora en cosméticos por ISO)

Detección y diferenciación de coliformes (USP, APHA, ICMSF, ISO 21150 cosméticos)

COMPOSICIÓN

• Peptona pancreática gelatina 10,0 g
• Lactosa                                       10,0 g
• Fosfato dipotásico                      2,0 g
• Eosina                                           0,4 g
• Azul de metileno                    65,0 mg
• Agar‑agar                                   15,0 g

(Fórmula por litro)   pH final: 7,1 ± 0,2

PREPARACIÓN

Disolver 37,5 g de medio en 1 litro de agua destilada. Calentar hasta ebullición, agitando para su completa disolución. Repartir en tubos o frascos. Autoclavar a 121 ºC durante 15 minutos.

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO. AGITE EL BOTE ANTES DE USAR. MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO.

DESHIDRATADO CODIGO: DMT050

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

DESHIDRATADO: Polvo grueso, Rojizo   PREPARADO: Estéril, Rojo vino

CONTROL DE CRECIMIENTO 24-48 h a 37°C aproximadamente:

• Enterobacter aerogenes MKTA 9489, Bueno.
• Salmonella abony MKTN 6017, Bueno, Colonia incolora.
• Staphylococcus aureus MKTA 6538P, Pobre, Colonia incolora.
• Escherichia coli MKTA 25922, Excelente, Colonia verde‑metálica

PRESENTACIÓN: TUBOS PREPARADOS 20 ml, FRASCOS PREPARADOS, MEDIO DESHIDRATADO.

NOTA: Medio para el aislamiento e identificación de E. coli, Enterobacter y otras bacterias intestinales Gram ‑. También es útil para el cultivo de Acinetobacter, Aeromonas, Pseudomonas, Plesiomonas, Yersinia, Candida albicans y estafilococos coagulasa positivos. La mayoría de flora contaminante queda inhibida a causa de los colorantes.

SIEMBRA

Preparar placas con los tubos 20 ml o con los frascos 100 ml, fundiéndolos y agitándolos para oxidar el azul de metileno. Sembrar en estría e incubar a 37 ºC aproximadamente, durante 24 h. 

INTERPRETACION 

E. coli: Colonias violetas de 2‑3 mm y con brillo metálico verdoso bajo luz reflejada. Enterobacter: Colonias de 2‑3 mm con centro pardo‑grisáceo bajo luz transmitida. Citrobacter: Colonias violetas con ligero reflejo metálico. Klebsiella: Colonias pardas mucosas. Salmonella y Shigella: Colonias transparentes, ambarinas. Candida albicans: Colonias en forma de telaraña o de pluma. Estafilococos coagulasa +: Colonias en punta de alfiler.

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