MANNITOL SALT BROTH es la versión en caldo del Mannitol Salt Agar de Chapman, y sirve para enriquecimiento selectivo de Staphylococcus aureus

Caldo de enriquecimiento selectivo para estafilococos. Enumeración por los métodos NMP ó MF.

COMPOSICIÓN

• Extracto de carne 1,000 g
• Peptocomplex 10,000 g
• Cloruro sódico 75,000 g
• Mannitol 10,000 g
• Rojo fenol 0,025 g

Colonias amarillas de Staphylococcus aureus, en cartón absorbente, con medio virado del rojo al amarillo.

(Fórmula por litro)
pH final: 7,4 ± 0,2

PREPARACIÓN

Disolver 96 gramos en 1 litro de agua destilada.
Autoclavar a 121 ºC durante 15 minutos.

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO
AGITE EL BOTE ANTES DE USAR.
MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO

DESHIDRATADO CODIGO: DMT165

Mannitol Salt Broth en kits P/A: Izquierda, presunto positivo,
Derecha negativo

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

DESHIDRATADO: Polvo fino, Rosa
PREPARADO: Estéril, Rojo

CONTROL DE CRECIMIENTO 24-48 h a 37°C aproximadamente:

• Staphylococcus aureus MKTA 6538P, Correcto, Medio amarillo.
• Staphylococcus epidermidis MKTA 12228, Correcto, Medio anaranjado.

PRESENTACIÓN: TUBOS PREPARADOS, FRASCOS PREPARADOS, VIALES MF, KITS P/A, MEDIO DESHIDRATADO.

MODO DE EMPLEO E INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS

Sembrar 1 ml de la muestra en un tubo de 9 ml. O bien 10 ml en un frasco de 100 ml. O bien verter un vial de 2 ml en un cartón absorbente colocado en una placa Petri de 55 mm Ø y después depositar la membrana de filtración utilizada. Incubar a 37 ºC aproximadamente, 24-48 horas.

Los tubos amarillos contienen presuntamente S. aureus. Los tubos turbios no amarillos contienen presuntamente otros estafilococos. Sembrar en agar Mannitol para aislar colonias e identificarlas. En filtración de membrana, las colonias amarillas son presuntos S. aureus y las rojas son presuntamente otros estafilococos. Confirmar la coagulasa con el látex inmediato KWD094.

https://www.microkit.es/fichas/MANNITOL-SALT%20BROTH.pdf

El usuario final es el único responsable de eliminar los microorganismos de acuerdo con la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.

Si desea más información sobre nuestros MANNITOL SALT BROTH, rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

MANNITOL SALT AGAR (CHAPMAN MANNITOL) es el medio de cultivo más clásico para la detección selectiva de Staphylococcus aureus por fermentación del mannitol, empleado en microbiología clínica, en medicamentos y en cosméticos

Aislamiento de Estafilococos (USP 31armonizada), ISO 22718 (cosméticos)

COMPOSICIÓN

• Triptona 5,0 g
• Peptona de carne 5,0 g
• Extracto de carne 1,0 g
• Cloruro sódico 75,0 g
• D-Mannitol 10,0 g
• Rojo fenol 25,0 mg
• Agar agar 15,0 g

Staphylococcus aureus: colonias amarillas con gran halo de viraje a amarillo del medio rojo.

(Fórmula por litro)
pH final: 7,4 ± 0,2

PREPARACIÓN

Disolver 111 g de medio en 1 litro de agua destilada.
Calentar hasta ebullición,agitando para su disolución.
Autoclavar a 121 ºC durante 15 minutos.

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO. AGITE EL BOTE ANTES DE USAR, PARA ASEGURAR LA HOMOGENEIZACIÓN DE LOS EVENTUALES GRADIENTES DE DENSIDAD DE LOS COMPONENTES. MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO.
DESHIDRATADO CODIGO: DMT078

Manitol Salt Agar , rojo, con Staphylococcus aureus: colonias amarillas con gran halo
amarillo del medio que inicialmente era rojo.

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

DESHIDRATADO: Polvo grueso, Rosado PREPARADO: Estéril, Rojo

CONTROL DE CRECIMIENTO CUANTITATIVO 48 h a 37°C aprox:

• Staphylococcus aureus MKTA 6538P, Correcto, Colonias blancas, Medio amarillo. Con respecto a TSA standarizado*, recuento 66-84 %, pero de forma más selectiva.
• Staphylococcus epidermidis MKTA 12228, Aceptable, Colonias rosas-blancas, Medio rosa. Respecto a TSA standard*, recuento 122 %, pero más selectivamente.
• E.coli MKTA 25922, Inhibido.

* El que cumple con recuperación superior al 92-125% con respecto a cepas cuantitativas trazables a la cepa tipo.

PRESENTACIÓN: TUBOS 20 ml, FRASCOS,
MEDIO DESHIDRATADO, PLAQUITAS HERMÉTICAS MF.

NOTA: Medio indicado para aislamiento e identificación presuntiva de Staphylococcus aureus. Se trata de un medio hipersalino (7,5%) que inhibe el crecimiento de la mayoría de microorganismos acompañantes. La producción de ácido por fermentación del manitol hace virar el rojo fenol a amarillo. Los estafilococos patógenos, coagulasa positivos, crecen óptimamente con colonias grandes, amarillas y rodeadas por un halo amarillo. Los demás estafilococos crecen con colonias pequeñas y de otros colores. Medio recomendado por la USP XXXI armonizada.

SIEMBRA

Fundir tubos 20 ml y frascos para elaborar placas. Sembrar en la superficie de placas, 0,1 ml de muestra, extendiéndola con un triángulo de vidrio estéril (VRR154) o con asas de Digralsky desechables (VCL155). Incubar a 37 ºC aproximadamente, 36 horas. Si se incuba más tiempo, en caso positivo, el viraje amarillo de S.aureus se extenderá a toda la placa y no se distinguirá visualmente de sus acompañantes.

INTERPRETACIÓN

S. aureus: Colonias grandes y amarillas, con halo amarillo. S. epidermidis: Colonias pequeñas no amarillas y sin halo. Confirmar la coagulasa con látex inmediato KWD094. Para mayor selectividad usar Agar Baird Parker, pero sólo en muestras con alta flora acompañante (ciertos alimentos, nunca en aguas o cosméticos) o mejor Cromokit-X-Staph. Para descartar los falsos positivos de Micrococos, realizar una citocromo-oxidasa (con las tiras estables KOT050), ya que los Staphylococcus spp. son oxidasa negativos pero los Micrococcus spp. son oxidasa positivos.

El usuario final es el único responsable de eliminar los microorganismos de acuerdo con la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.

Si desea más información sobre nuestros MANNITOL SALT AGAR (CHAPMAN MANNITOL), rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

https://www.microkit.es/fichas/MANNITOL-SALT%20AGAR.pdf

LISTERIA PALCAM AGAR (BASE) es un medio de cultivo para aislamiento de Listeria, basado en la esculina (viraje a negro) y muy mejorado desde 2004 por el medio Ottaviani & Agosti (Cromocytogenes en MICROKIT)

Aislamiento selectivo de Listeria en alimentos, preferiblemente en carnes, pescados, vegetales y otros productos. (ISO 11290-1:1997, ISO 11290-2:2000)

COMPOSICIÓN

Listeria monocytogenes

• Polipeptona 10,00 g
• Tryptosa 10,00 g
• Extracto de carne 3,00 g
• Extracto de levadura 3,00 g
• Almidón de maíz 1,00 g
• Cloruro sódico 5,00 g
• Glucosa 0,50 g
• Mannitol 10,00 g
• Aesculina 0,80 g
• Citrato férrico amónico 0,50 g
• Cloruro de Litio 15,00 g
• Rojo de fenol 0,08 g
• Agar-agar 15,00 g

(Fórmula por litro)
pH final: 7,2 ± 0,1.

PREPARACIÓN

Disolver 37 gramos en 500 ml de agua bidestilada. Calentar, agitando, hasta ebullición, para la total homogeneización. Autoclavar a 121 ºC durante 15 minutos. Enfriar a 50 ºC y añadir 10 ml de Suplemento PALCAM estéril (SBH259) (= 25 mg). Mezclar bien y verter en placas Petri.

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO
AGITE EL BOTE ANTES DE USAR.
MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO
DESHIDRATADO CODIGO: DMT195

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)
DESHIDRATADO: Polvo grueso, Naranja
PREPARADO: Estéril, Naranja

EVALUACIÓN DEL RENDIMIENTO ISO/TS 11133-2: 24-48 h a 37 ºC, aplicando el método UNE EN ISO 11290, o el indicado en el Manual MICROKIT actualizado)

• Listeria monocytogenes MKTA 7644, Crecimiento correcto, Colonias grises-verdes con halo negro. PR > 0,5, en concreto >93-119% de colonias respecto al número de ufc certificadas e inoculadas en TSA; esta variabilidad de la productividad depende de la composición y carga de la flora acompañante inoculada.
• Escherichia coli MKTA 25922, Inhibido completamente: Ni una sola colonia.
• Enterococcus faecalis MKTA 29212, Inhibido completamente: Ni una sola colonia

Las colecciones TIPO prohiben el uso de su referencia por lo que indicamos la nuestra, directamente trazable a la colección TIPO.

PRESENTACIÓN: MEDIO DESHIDRATADO (BASE) CON SUPLEMENTOS, DESINFECTEST-STAF/LIS, FRASCOS PREPARADOS.

MODO DE EMPLEO E INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS

Sembrar en superficie. Incubar 24-48 horas a 30 ó 37ºC aproximadamente, mejor en microaerofilia (KKM037, KKM101). Se consideran positivas las colonias verde-grisáceas con halo marrón-negro. Confirmar L.monocytogenes con látex KMB402 y con hemólisis. Si la densidad de colonias es elevada, el medio vira a pardo. Pueden crecer enterococos y estafilococos, pero sus colonias son amarillas con halo negro o amarillo.

Ver medios más modernos, rápidos y efcicientes de la actuialidad, como el Cromocytogenes Agar

El usuario final es el único responsable de eliminar los microorganismos de acuerdo con la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.

Si desea más información sobre nuestros LISTERIA PALCAM AGAR (BASE) , rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

https://www.microkit.es/fichas/LISTERIA-PALCAM-AGAR.pdf

https://www.microkit.es/monograficos/3-Listeria-monocytogenes-monograf–a.pdf

Medio recomendado por Nordisk Metodkkommité för Livsmedil, para enumeración de bacterias productoras de SH₂ y recuento total de bacterias heterotróficas en pescado no cocinado o sus derivados, incluidas las bacterias fosforescentes. 

COMPOSICIÓN 

• Polipeptona                            20,00 g
• Extracto de carne                   3,00 g
• Extracto de levadura              3,00 g
• Citrato férrico                          0,30 g
• Tiosulfato sódico                     0,30 g
• Cloruro sódico                         5,00 g
• L-Cisteina                                 0,60 g
• Agar-agar                                12,00 g

(Fórmula por litro)     pH final: 7.4 ± 0.2

AGITE EL BOTE ANTES DE USAR. MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO. PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO.

CÓDIGO: DMT097 

PREPARACIÓN

 Disolver 44,2 g de medio en 1 l de agua bidestilada. Para bacterias fosforescentes, potencia la emisión de luz agregar al agua 100 ml de caldo filtrado en el que se haya hervido una cigala triturada. Calentar hasta ebullición agitando para su completa disolución. Autoclavar a 121 ºC durante 15 minutos. 

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

CONTROL DE CRECIMIENTO 2-5 días a temperatura ambiente (21-28°C aproximadamente):

• Aeromonas hydrophila MKTA 49141, Correcto
• Pseudomonas fluorescens MKTA 13525, no crece

 PRESENTACIÓN: MEDIO DESHIDRATADO

SIEMBRA E INTEPRETACIÓN DE RESULTADOS

Homogeneizar 10 g de muestra en 90 ml de un medio para diluciones y hacer diluciones decimales.

Sembrar 1 ml de las diluciones en una placa Petri y añadir el Agar Hierro enfriado a unos 45 ºC. Mezclar y dejar solidificar. Añadir después una segunda capa de Agar Hierro para minimizar la oxidación del sulfuro ferroso. Incubar a 25 ºC aproximadamente, durante 2-5 días. Contar colonias negras como productoras de SH₂. Contar todas las colonias para el recuento total. Si la segunda capa es fina, las colonias negras pueden perder rápidamente su color.

No confundir los precipitados negros con colonias!

Si desea más información sobre nuestros MEDIO HIERRO AGAR (LYNGBY) rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

https://www.microkit.es/fichas/HIERRO-AGAR-LYNGBYE.pdf

MALT EXTRACT CLORANFENICOL AGAR es un agar al extracto de malta para detección y recuento selectivo de hongos (levaduras y mohos)

COMPOSICIÓN

• Extracto de malta 30 g
• Peptona de Soja 3 g
• Cloranfenicol 0,1 g
• Agar agar 15 g

(Fórmula por litro)
pH final: 5,4 ± 0,2 tras ajustarlo con ácido láctico

PREPARACIÓN

Disolver 48,1 g en 1 litro de agua destilada. Calentar agitando hasta ebullición. Autoclavar a 121ºC durante 15 minutos (o mejor aún, 116 °C, 15 minutos).

El cloranfenicol inhibe el crecimiento de bacterias, pero para un óptimo crecimiento fúngico, enfriar a 55°C tras autoclavar y acidificar con Ácido Láctico estéril al 10% (SAJ003). No recalentar el medio.  Se puede añadir 1 ml/l de glicerol (SDA073) para evitar el desecamiento de placas con cultivos lentos.

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN  LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO.  AGITE EL BOTE ANTES DE USAR.

DESHIDRATADO CODIGO: DMT221

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

DESHIDRATADO: Polvo fino, Tostado
PREPARADO: Estéril, Ámbar

CONTROL DE CRECIMIENTO 3-5 días a temperatura ambiente (21-28°C aproximadamente):

• Aspergillus niger MKTA 16404, Correcto, Colonias negras y esporuladas en 5 días. Con respecto a PCA standarizado*, recuento 129 %, pero de forma selectiva.
• Candida albicans MKTA 10231, Correcto. Con respecto a PCA standarizado*, recuento 83 %, pero de forma selectiva.
• Saccharomyces cerevisiae MKTA 9763, Correcto. Con respecto a PCA standarizado*, recuento 109 %, pero de forma selectiva.
• Staphylococcus aureus MKTA 6538P, Inhibido.
• E.coli MKTA 25922, Inhibido.

* El que cumple con recuperación superior al 92-125% con respecto a cepas cuantitativas trazables a la cepa tipo.

PRESENTACIÓN: MEDIO DESHIDRATADO

MODO DE EMPLEO E INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS

Agite bien la muestra segundos antes de la siembra. Inocular 0,1 ml de muestra y su serie de diluciones decimales, en superficie, repartiendo con triángulo de vidrio (VRR154) o asas desechables de Digralsky (VCL155). Incubar 3-5 días a 21-25ºC aproximadamente. Contar las colonias no filamentosas de levaduras y filamentosas de mohos.

https://www.microkit.es/fichas/MALT-EXTRACT-CAF-AGAR.pdf

El usuario final es el único responsable de eliminar los microorganismos de acuerdo con la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.

Si desea más información sobre nuestros MALT EXTRACT CLORANFENICOL AGAR, rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

LISTERIA OXFORD AGAR (BASE) es un medio de Aislamiento selectivo de Listeria en alimentos, sobre todo en lácteos (ISO 11290-1, ISO 11290-2)

Aislamiento selectivo de Listeria en alimentos, preferiblemente en lácteos (ISO 11290-1:1997, ISO 11290-2:2000)

COMPOSICIÓN

Listeria monocytogenes

• Peptona de carne 23,00 g
• Almidón de maíz 1,00 g
• Cloruro sódico 5,00 g
• Esculina 1,00 g
• Citrato férrico amónico 0,50 g
• Cloruro de Litio 15,00 g
• Agar-agar 14,00 g

(Fórmula por litro)
pH final: 7,0 ± 0,2.

PREPARACIÓN

Disolver 29,2 gramos en 500 ml de agua bidestilada. Calentar, agitando, hasta ebullición, para la total homogeneización. Autoclavar a 121 ºC durante 15 minutos. Enfriar a 50 ºC y añadir 10 ml de Suplemento Oxford estéril (SBH258) (=437 mg). Mezclar bien y verter en placas Petri.

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO
AGITE EL BOTE ANTES DE USAR.
MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO

DESHIDRATADO CODIGO: DMT194

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

DESHIDRATADO: Polvo fino, crema
PREPARADO: Estéril, crema

EVALUACIÓN DEL RENDIMIENTO ISO/TS 11133-2: 24-48 h a 37 ºC, aplicando el método UNE EN ISO 11290, o el indicado en el Manual MICROKIT actualizado)

• Listeria monocytogenes MKTA 7644, Crecimiento correcto, Colonias grises-negras con halo negro. PR > 0,5, en concreto >80-108% de colonias respecto al número de ufc certificadas e inoculadas en TSA; esta variabilidad de la productividad depende de la composición y carga de la flora acompañante inoculada.
• Escherichia coli MKTA 25922, Inhibido completamente: Ni una sola colonia.
• Enterococcus faecalis MKTA 29212, Inhibido completamente: Ni una sola colonia
• Candida albicans MKTA 10231, Inhibido completamente: Ni una sola colonia

Las colecciones TIPO prohiben el uso de su referencia por lo que indicamos la nuestra, directamente trazable a la colección TIPO.

PRESENTACIÓN: MEDIO DESHIDRATADO

Recomendado por FIL e IDF para lácteos.

MODO DE EMPLEO E INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS

Sembrar en superficie. Incubar 24-48 horas a (30) 37 ºC aproximadamente, en aerobiosis o en microaerofilia (KKM037, KKM101). Listeria crece con colonias menores de 1 mm, negras y con halo pardo-negruzco, (y cóncavas). Tomar 5 colonias típicas (esculina positiva) para realizar confirmaciones inmunológicas (KMB402) y ver si producen -hemólisis en agar sangre (L.monocytogenes).

https://www.microkit.es/fichas/LISTERIA-OXFORD-AGAR.pdf

Ver medios más modernos, rápidos y efcicientes de la actualidad, como el Cromocytogenes Agar (O&A)

El usuario final es el único responsable de eliminar los microorganismos de acuerdo con la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.

Si desea más información sobre nuestros LISTERIA OXFORD AGAR (BASE) , rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

https://www.microkit.es/monograficos/3-Listeria-monocytogenes-monograf–a.pdf

HEKTOEN ENTERIC AGAR es un medio clásico para la detección y diferenciación de Enterobacterias (UNE-EN ISO 6579:2003)

COMPOSICIÓN  

• Peptona de carne                12,00 g
• Extracto de levadura            3,00 g
• Sales biliares                          9,00 g
• Lactosa                                 12,00 g
• Sacarosa                              12,00 g
• Salicilina                                2,00 g
• Cloruro sódico                     5,00 g
• Tiosulfato de sodio             5,00 g
• Citrato férrico amoniacal   1,50 g
• Azul de bromotimol            0,06 g
• Fucsina ácida                       0,04 g
• Agar‑agar                           15,00 g

(Fórmula por litro)    pH final: 7,4 ± 0,2.

PREPARACIÓN

Disolver 76´5 g de medio en 1 litro de agua destilada. Calentar agitando hasta ebullición. Mantener la ebullición durante 2 minutos. Se puede autoclavar a 116 ºC durante 5 minutos, enfriando rápidamente. Si queda lleno de precipitados, desaparecerán en 48 h de contacto con el aire, funcionando perfectamente.

PRECAUCIÓN: CONTIENE SALES BILIARES.

MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO,

FRESCO Y OSCURO. AGITE EL BOTE ANTES DE USAR. PARA USO EN LABORATORIO. DESHIDRATADO CODIGO: DMT059

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

DESHIDRATADO: Polvo fino, Verdoso

PREPARADO: Estéril, Verde‑pardorojizo

EVALUACIÓN DEL RENDIMIENTO ISO/TS 11133-2 (Aplicando el método ISO 6579, ISO 12824, o el indicado en el Manual MICROKIT actualizado), 24-48 h a 37 ºC:

Salmonella abony MKTN 6017, Colonias negras, medio azul. PR > 0,5, en concreto >50-96% de colonias respecto al número de ufc certificadas e inoculadas en TSA; esta variabilidad de la productividad depende de la composición y carga de la flora acompañante inoculada. Si procede de enriquecimiento, buen crecimiento en estría.

• Shigella flexneri MKTA 12022, colonias incoloras, medio verde, buen crecimiento.
•  E.coli MKTA 25922, Inhibición parcial o total, colonias y medio color salmón.
• Enterococcus faecalis MKTN 775, Inhibición completa: Ni una sola colonia.
• Staphylococcus aureus MKTA 6538P, Inhibición completa: Ni una sola colonia.

Las colecciones TIPO prohiben el uso de su referencia por lo que indicamos la nuestra, directamente trazable a la colección TIPO.

PRESENTACIÓN: FRASCOS 100 ml, MEDIO DESHIDRATADO, DESINFECTEST-EC

NOTA: Medio de aislamiento diferencial de las enterobacterias patógenas. Excelente para la detección de Salmonella‑Shigella.Proteus no invade la placa. La Fucsina Acida y el Azul de Bromotimol permiten una diferenciación muy evidente. Para mayor selectividad de Salmonella y Shigella es más recomendable usar SS Agar y XLD Agar.

SIEMBRA

Aplicar la Placa de Contacto sobre la superficie durante un instante y sin mover, o bien introducirla en un aparato para control del aire. Fundir los frascos para preparar placas. Estas se siembran en superficie. Incubar a 37 ºC aproximadamente, durante 24‑48 horas.

INTERPRETACIÓN

La fermentación de la Lactosa, Sacarosa y Salicina, y la producción de H₂S permiten diferenciar: Colonias amarillo‑salmón: Escherichia, Citrobacter, Klebsiella, Enterobacter, Arizona, Serratia. Idem con centro negro: Proteus vulgaris. Verdes o azules: Shigella, Salmonella, Providencia, Proteus morganii, Proteus rettgeri. Idem con centro negro: Proteus mirabilis, Salmonella. Azules o pardas, pequeñas: Pseudomonas.

https://www.microkit.es/fichas/HEKTOEN-ENTERIC-AGAR.pdf

https://www.microkit.es/monograficos/5-Salmonella-y-Shigella-monograf–a.pdf

MALT EXTRACT AGAR es un agar extracto de malta para la detección, enumeración y aislamiento de levaduras y mohos.

COMPOSICIÓN

• Extracto de malta 30 g
• Peptona de Soja 3 g
• Agar agar 15 g

(Fórmula por litro)
pH final: 5,4 ± 0,2 tras ajustarlo con ácido láctico

PREPARACIÓN

Disolver 48 g en 1 litro de agua destilada. Calentar agitando hasta ebullición. Autoclavar a 121ºC durante 15 minutos (o mejor aún, 116 °C, 15 minutos).Para un óptimo crecimiento fúngico, enfriar a 55°C tras autoclavar y acidificar con Ácido Láctico estéril al 10% (SAJ003). No recalentar el medio.  Se puede añadir 1 ml/l de glicerol (SDA073) para evitar el desecamiento de placas con cultivos lentos.

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN  LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO.  AGITE EL BOTE ANTES DE USAR.

DESHIDRATADO CODIGO: DMT226

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

DESHIDRATADO: Polvo fino, Tostado
PREPARADO: Estéril, Ámbar

CONTROL DE CRECIMIENTO 3-5 días a temperatura ambiente (21-28°C aproximadamente):

• Aspergillus niger MKTA 16404, Correcto, Colonias negras y esporuladas en 5 días. Con respecto a SDA standarizado*, recuento 129 %, pero de forma selectiva.
• Candida albicans MKTA 10231, Correcto. Con respecto a SDA standarizado*, recuento 83 %, pero de forma selectiva.
• Saccharomyces cerevisiae MKTA 9763, Correcto. Con respecto a SDA standarizado*, recuento 109 %, pero de forma selectiva.
• Staphylococcus aureus MKTA 6538P, Parcialmente Inhibido.
• E.coli MKTA 25922, Parcialmente Inhibido.

* El que cumple con recuperación superior al 92-125% con respecto a cepas cuantitativas trazables a la cepa tipo.

PRESENTACIÓN: MEDIO DESHIDRATADO

MODO DE EMPLEO E INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS

Agite bien la muestra segundos antes de la siembra. Inocular 0,1 ml de muestra y su serie de diluciones decimales, en superficie, repartiendo con triángulo de vidrio (VRR154) o asas desechables de Digralsky (VCL155). Incubar 3-5 días a 21-25ºC aproximadamente. Contar las colonias no filamentosas de levaduras y filamentosas de mohos.

El usuario final es el único responsable de eliminar los microorganismos de acuerdo con la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.

Si desea más información sobre nuestros MALT EXTRACT AGAR, rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

https://www.microkit.es/fichas/MALT-EXTRACT-AGAR.pdf

Ver tambien este mismo medio en versión selectiva (con cloranfenicol) para evitar los falsos positivos de bacterias