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ESPONJAS ABRASIVAS TOMAMUESTRAS

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Esponjas abrasivas tomamuestras superficies para detectar microorganismos (bacterias, levaduras y mohos) con la máxima eficiencia

https://www.microkit.es/fichas/ESPONJAS-ABRASIVAS-VMT037.pdf

ESTERILIZADAS por irradiación a 25 KGy

-CONTROLADAS con ausencia de inhibidores del crecimiento de los principales patógenos: Salmonella, Listeria monocytogenes, E.coli, Staphylococcus aureus…

Producto diseñado para cumplir con la Directiva 2073/2005 de 15/11/2005 y posteriores Normativas (ANSES, ISO 18593).

Cada esponja viene en una bolsa unitaria autosellable, que posteriormente ha sido esterilizada. Tamaño: 5×10 cm. CONSERVAR: 8-25°C ¡EN OSCURIDAD! CÓDIGO: VMT037

Material necesario NO incluido:

-Spray pulverizador (humectante) de Solución Ringer 1/4 sin nutrientes para ablandar el biofilm y que la esponja lo arrastre mejor (ref. MICROKIT: KMT035)

-Caja 20 Tubos 9 ml LPT Neutraling Broth para revitalizar los microorganismos una vez están arrastrados en la esponja. No usar para humectar la superficie a muestrear, ya que contienen nutrientes que la contaminarían y serían foco que alimentaría las próximas bacterias que cayeran allí (ref. MICROKIT: TPL053S)

-Caja 100 pares de Guantes estériles para tomar las muestras sin contaminarlas (ref. MICROKIT: VMT040 -talla pequeña-, VMT041 -talla grande-)

MODO DE EMPLEO:

1-Añadir a la bolsa el contenido de un tubo LPT Neutraling Broth (TPL053S) para inactivar residuos de cualquier tipo de desinfectante que pueda tener la superficie de muestra, cerrar y apretar para embeber. Si utiliza otro caldo inactivador no respondemos de la efectividad del producto. Este paso previo no es necesario para muestrear canales.

2-Con guantes estériles (VMT040, VMT041), extraer la esponja de la bolsa, y escurrir en ella el exceso de líquido inactivador.

3-Raspar 100 cm² (o la superficie que sea necesario) de la superficie.

4-Devolver a la bolsa y cerrar. Si se muestrean canales, añadir ahora el caldo TPL053S.

5-Tras un mínimo de 20 minutos para revitalización, y un máximo de 24 horas de transporte hasta el laboratorio, llevar la esponja con todo el líquido a un homogeneizador con 100-225 ml del caldo de pre-enriquecimiento adecuado para el microorganismo buscado (Salmonella spp., Listeria monocytogenes, E.coli, Staphylococcus aureus, Legionella pneumophila…). Si no se agita bien y no se utiliza un caldo de arrastre adecuado como el TPL053S propuesto, la retención (y consecuente no detección) de células en los poros de la esponja, puede llegar a ser del 50% de la población. Expresar los resultados como presente o ausente en 100 cm².

CONTENIDO:

100 ESPONJAS ESTÉRILES, DESHIDRATADAS Y NO INHIBIDORAS que, con TPL053S, arrastran la población e inactivan residuos de amonios cuaternarios, fenol, compuestos bencénicos (incluidos parabenes), formol, iodo, cloro y demás halógenos, lejía, compuestos mercuriales, glutaraldehido…

USO EXCLUSIVO PARA LABORATORIO, para control microbiológico de superficies en industria alimentaria y otros sectores.

esponjas abrasivas tomamuestras superficies para detectar microorganismos (bacterias, levaduras y mohos) con la máxima eficiencia

¿Por qué usar estas esponjas y no bayetas? Numerosos laboratorios acreditados ISO 17025 que buscan Listeria monocytogenes en fábricas porque saben que hay focos que contaminan el alimento final, nos han comunicado que eligen nuestras esponjas abrasivas porque rascan el biofilm y detectan donde los demás métodos no son capaces de encontrar el foco de contaminación.

Aquí puedes ver cómo se usan:

https://youtu.be/TFT1VBA6IKY

Para consultas o aclaraciones sobre éste o cualquiera de nuestros productos no dude en ponerse en contacto con nosotros en el número de teléfono 91- 897 46 16 o a través del correo electrónico microkit@microkit.es.

ANAEROBIOSIS: KITS GENERADORES

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Kits Generadores y Controladores de Atmósfera de Anaerobiosis

ANAEROKIT y ANAEROTEST: Soluciones para la Anaerobiosis y el Control

Estos kits son esenciales para el cultivo de microorganismos que requieren ambientes con bajo o nulo contenido de oxígeno (anaerobios estrictos, facultativos o microaerófilos).

Principio de Funcionamiento de los Generadores (Anaerocult, AnaeroKIT)

Los generadores contienen componentes químicos (Tierra de diatomeas, Hierro, Ácido Cítrico y Carbonato Sódico) que:

Fijan químicamente el oxígeno del aire dentro del recipiente o bolsa.
Generan anhídrido carbónico ( $CO_{2}$ ).
Velocidad: El nivel máximo de atmósfera deseada se alcanza en aproximadamente 30 minutos y se mantiene durante varias horas.

A. Kits Generadores de Anaerobiosis Completa

Estos productos generan un ambiente totalmente anaerobio para el cultivo de anaerobios estrictos y facultativos.

1. ANAEROCULT A (Para Jarras)

Referencia	Formato	Uso	Capacidad de la Jarra
KKM036	Caja de 10 unidades	Generador de atmósfera en un recipiente de $2.5 litros$ .	Hasta 25 Plaquis, 20 Ecoplaquis o 7 placas de $90 mm$ .

Modo de Empleo:

Preparar Control: Humedezca una tira de Anaerotest (KKM039) con una gota de agua y fíjela en la gradilla de las placas.
Cargar la Jarra: Introduzca las placas con el Anaerotest en la jarra de anaerobiosis.
Activar el Generador: Añada $35 ml$ de agua al papel de una bandeja de Anaerocult A, distribuyéndolos homogéneamente.
Sellar: Antes de 20 segundos, coloque la bandeja verticalmente en la jarra (con la cara mojada mirando hacia las placas) y cierre la jarra inmediatamente.
Incubar y Controlar:
- Introduzca la jarra en la estufa.
- Después de $4 horas$ , compruebe que el Anaerotest haya virado de azul a blanco (indicando anaerobiosis correcta), sin abrir la jarra.
- Conservación: Bien cerrado y al abrigo de la humedad, entre $15$ y $25^{\circ} C$ .

2. ANAEROKIT (Para Bolsas Individuales)

Referencia	Formato	Uso
KKT001	Caja de 25 unidades	Generador de atmósfera para bolsas individuales (placas de Petri).

Modo de Empleo:

Preparar Control: Humedezca una tira de Anaerotest (KKM039) con una gota de agua y fíjela en el exterior de la placa, sobresaliendo la zona reactiva.
Activar el Generador: Introduzca un bote de Anaerokit en una bolsa de incubación y humedézcalo con $20 ml$ de agua.
Sellar: Introduzca inmediatamente las placas con el Anaerotest y cierre la bolsa herméticamente con un Anaeroclip (KKM100).
Incubar y Controlar:
- Incube en la estufa.
- Después de $4 horas$ , controle que el Anaerotest haya virado de azul a blanco (anaerobiosis correcta).
- Conservación: Al abrigo de la humedad, entre $15$ y $25^{\circ} C$ .
- Nota: Solicite un Anaeroclip sin cargo con su primer pedido de Anaerokit.

B. Kits Generadores de Microaerofilia

Estos productos crean una atmósfera pobre en oxígeno, ideal para microorganismos microaerófilos como Campylobacter.

Producto	Referencia	Modo de Empleo
ANAEROCULT C	KKM101 (Caja 10 u)	Usar siguiendo las instrucciones del Anaerocult A (Para Jarra).
ANAEROCULT C-MINI	KKM037 (Caja 25 u)	Usar siguiendo las instrucciones del Anaerokit (Para Bolsa).

C. Control de Anaerobiosis

ANAEROTEST (Indicador Químico)

Referencia	Formato	Uso
KKM039	Caja de 50 tiras	Indicador de Azul de Metileno para verificar la correcta anaerobiosis.

Modo de Empleo:

Humedezca la zona reactiva con $\mathbf{1\,\text{gota de agua destilada}$.
Introduzca la tira en la jarra o bolsa junto al generador ( $ANAEROCULT-A$ , $ANAEROKIT$ , etc.).
Cierre e incube.
Verificación: Confirme a las $\mathbf{4-6\,\text{horas}$ que el indicador ha virado de azul a blanco, señalando que se ha alcanzado la anaerobiosis.
Conservación: Bien cerrado en su tubo, en zona seca.

Recordatorio Importante

Si utiliza el TSC o el SPS Agar en formato kit Quanti P/A-Clostricult, no necesita incubar en atmósfera de anaerobiosis, ya que el medio en polvo ya incluye esta característica.

Contacto: Para consultas y conocer los precios actualizados, llame al 91-897 46 16 o escriba a microkit@microkit.es

https://www.microkit.es/fic

E COLI-COLIFORMES MCC® +/- EN TUBO:

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E COLI-COLIFORMES MCC® +/- EN TUBO: NUEVO KIT DE DETECCIÓN Kit para la detección positiva o negativa

Detección rápida E.coli: tubos MCC P/A para control de su presencia o ausencia en 1 gramo ó mililitro de muestra

La detección de E.coli en microbiología alimentaria e industrial es un proceso

necesario y, a menudo, poco sencillo. El Mercado Internacional es rico en kits que identifican E.coli, pero a partir de colonias que han tardado 1 ó 2 días en crecer previamente en medios de cultivo sólidos. Con ello, la confirmación de la presencia/ausencia de E.coli necesita de varias manipulaciones y, además viene a tardar 48-72 horas, tiempo que, a menudo, resulta excesivo en productos perecederos y que obliga a la industria a una fuerte inversión en stock de producto acabado (lotes de 2-3 días esperando el visto bueno microbiológico).

Presentamos el KIT DE DETECCION POSITIVOS/NEGATIVOS elaborado en España por MICROKIT que permite la confirmación de E.coli en las primeras 4‑24 horas a partir de la muestra inicial. Además, permite la detección de coliformes en el mismo tiempo, dato que, a menudo, también exige la legislación de nuestro país. Si necesita hacer recuento de E.coli, nos remitimos a nuestro Kit de Recuento E coli – MUG PLUS (Ver más adelante). También disponemos de viales de 2 ml con caldo MUG PLUS, para la técnica de Filtración de Membrana (FPL400), así como de los medios deshidratados con MUG en caldo y en agar: MICROKIT COLICULT MCC (DMT900-) ( con el que se elabora el Kit E coli MCC +/- en tubo) y MUG PLUS AGAR (DMT400-) (con el que se elabora el KIT de recuento E. coli-MUG-PLUS).

PRINCIPIO, EFECTIVIDAD Y LIMITACIONES

Adicionado a los medios de cultivo selectivos para coliformes, el compuesto fluorogénico 4‑metil‑umbeliferil‑beta‑D‑glucurónido (MUG) posibilita la detección directa de E.coli. El MUG, hidrolizado por el enzima beta‑glucuronidasa, presente en la mayor parte de las cepas de E.coli (97%), libera el compuesto 4‑metil‑umbeliferona, fuertemente fluorescente cuando se observa bajo luz ultravioleta de 366 nm (suministrada en cómoda y económica linterna por MICROKIT).

Todas las cepas analizadas por FENG & HARTMAN (1982, Fluorogenic Assay For Inmediate Confirmation of E.coli, App.Env.Microbiol., 43, 1320) de E.coli enteropatógenos han sido beta-glucuronidasa positivas, incluido el patógeno E.coli O124 que con el método clásico no se detecta, al ser anaerogénico.

Se ha definido a los coliformes como las enterobacterias capaces de fermentar la lactosa produciendo gas. Un método más moderno es el sustrato cromogénico X-Gal, que vira el medio a azul turquesa en presencia de coliformes.

Con el primer componente del kit, los tubos de E.coli MCC +/- Broth MUG, se analiza la fluorescencia (excelente dada la falta de color del medio), y la reacción de coliformes por viraje a azul tras la incubación. El medio no necesita temperatura selectiva de 44,5º durante 24‑48 horas, aunque puede usarse si se desea. Una sóla célula de E.coli queda detectada en menos de 24 horas. Además, se pueden obtener resultados positivos desde las 4 horas de incubación, dependiendo de la concentración inicial de E.coli.

No hay falsos negativos: Se detectan el 100% de las cepas de E.coli enterotoxigénicas, aunque no produzcan gas ni fermenten la lactosa y aunque sean sensibles a altas temperaturas de incubación y a medios selectivos. Se detectan las cepas anaerógenas, que representan el 5% de las cepas de E.coli aislado en alimentos. No interfiere la presencia de Proteus vulgaris, que en las técnicas conveccionales puede suprimir la producción de gas por E.coli. Tampoco interfiere la presencia de otras enterobacterias. Por tanto, NO HAY falsos negativos. El 3% de E.coli es beta-glucuronidasa negativo, por lo que no da fluorescencia, pero virará el medio a azul por ser coliformes.

La debilidad de algunas cepas de E.coli en la emisión de fluorescencia con MUG hace recomendable la utilización del MUG REVELATION REAGENT, que se incorpora en el kit como segundo componente.

Añadiendo una gota a los tubos de E.coli MCC +/- Broth, se realza la fluorescencia de los tubos positivos de forma sorprendente e inmediata.

Según VAIANI et.col. (1985, Identificazione di E.coli su terreni contenenti MUG, Comunicazione Convegno AMCLI Lombarda, Varenna, 21/6/1985), existen cepas de Citrobacter, Klebsiella, Enterobacter, Serratia, Salmonella y Shigella, capaces de dar falsos positivos con MUG, es decir, fluorescencia. Por ello deben confirmarse los caldos fluorescentes con la prueba del indol, incorporada en el kit como tercer componente. Sólo E.coli es indol positivo.

MODO DE EMPLEO

Sembrar en un tubo de E.coli MCC +/- Broth:

1 ml de la muestra líquida.
1 gramo desmenuzado de la muestra sólida.
1 membrana de filtración enrollada por la que se hayan filtrado 100‑250 ml de muestra de agua (VAC073)
1 escobillón (MICROKIT VSN251) humedecido con agua destilada estéril (MICROKIT TPL001) con el que se haya barrido una superficie de trabajo de 25 cm cuadrados.
1 colonia que deseemos identificar.

2. Incubar a 37 ºC durante 18-24 horas (sólo 4-24 h. si partimos de colonia).La turbidez y el viraje a azul son indicadoras de presencia de coliformes.

3. Leer en completa oscuridad con la luz de 366 nm, preferiblemente añadiendo al tubo una gota de MUG REVELATION REAGENT. Este reactivo debe añadirse SIEMPRE que no haya fluorescencia, y cuando la fluorescencia es dudosa.

La presencia de fluorescencia azulada demuestra la presencia de E.coli de forma presuntiva. Un tubo no inoculado sirve como control negativo de fluorescencia. Se adjunta un tubo control positivo de fluorescencia que, aunque no tiene E.coli, sino productos químicos fluorogénicos, no debe abrirse para evitar su contaminación.

La ausencia de fluorescencia tras 24 horas de incubación descarta la presencia de E.coli.

4. Confirmar añadiendo 0,5 ml del reactivo INDOL Kovacs.

La aparición de un anillo rojo cereza en superficie en unos segundos es prueba confirmativa de presencia de E.coli. Es el conjunto de los tres test (viraje de X-Gal a azul, MUG e INDOL) y no cada uno por separado, lo que hace de este kit el método más cómodo, rápido y fiable del mercado para la detección de E.coli.

PRESENTACION

Kit completo de detección +/- de E.coli (KMT099+):

20 tubos de E. coliMCC+/-Broth (TPL637).
1 frasco de 5 ml de MUG REVELATION REAGENT (KBH064).
1 frasco de 5 ml de reactivo INDOL (SDA056).
1 tubo de control positivo de fluorescencia (VMT056).
1 linterna ultravioleta de 366 nm (VMT050).

MATERIAL NECESARIO NO INCLUÍDO:

Ø Estufa a 35-37 ºC (VRP001), Linterna UVA para E.coli (VMT050).
ØZona aséptica: Lámpara de alcohol (VLM068) y Envirostéril (VJM002) si no se dispone de cabina de flujo laminar.
ØCepas de referencia, de trabajo o cuantitativas para validar los reactivos una vez llegados a fábrica o tras almacenamientos prolongados o inadecuados. Como control positivo puede usar una cepa de E.coli (CRIOSTRAIN MKTA 25922).
ØParticipación en servicios intercomparativos como SEILA para validar los procedimientos y los operarios.

Si se desea, los componentes se proporcionan por separado. Los tubos MCC +/- Broth en pedidos de 200 unidades ó más, resultan mucho más económicos. La caducidad es de un año. La duración del fluorescente de luz ultravioleta de 366 nm es de 100 horas; en la práctica, y por cuestión de ahorro de pilas, de varios años.

Para más información no dude en ponerse en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

https://www.microkit.es/fichas/MCC-COLICULT-CHROMOFLUOROGENIC-BROTH.pdf?v=2023

AUTOCLAVE: PRODUCTOS AUXILIARES IV: VIALES DE ESPORAS PARA CONTROL BIOLÓGICO Y VALIDACIÓN DEL CICLO DEL AUTOCLAVE:

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Control Biológico de Ciclo de Autoclave: Viales EZ Test

Los Viales EZ Test son indicadores biológicos diseñados para garantizar el correcto funcionamiento del ciclo de autoclavado en la esterilización de medios de cultivo, material de laboratorio y conservas. Son especialmente útiles para comprobar que los autoclaves operan sin oscilaciones de temperatura peligrosas, según las normativas USP. A diferencia de otras marcas, permiten validar el ciclo del autoclave específico de los medios de cultivo (y no sólo el del material fungible)

Características Clave

Componente	Especificación
Microorganismo Indicador	*Bacillus stearothermophilus* ( $10^{6}$ esporas/ml), el más resistente al calor húmedo.
Medio	Caldo de cultivo con indicador de $pH$ de color lila (original).
Resistencia Mínima	Las esporas resisten $121^{\circ} C$ durante $\mathbf{5\,\text{minutos}$.
Esterilización Objetivo	La población de esporas es destruida tras $15 minutos$ a $121^{\circ} C$ .

Ventajas sobre otros Indicadores

Seguridad y Riesgo Cero: A diferencia de las ampollas, no contienen vidrio frágil que pueda romperse al caer, eliminando el riesgo de contaminación por esporas. El filtro del tapón también impide cualquier fuga.
Viraje Biológico: A diferencia de las tiras indicadoras químicas, el resultado se basa en la viabilidad del microorganismo (crecimiento vs. muerte), lo que ofrece una prueba más robusta de esterilización.
Fácil Manejo: Solo se recomienda para ciclos estándar de $15 minutos$ a $121^{\circ} C$ .

MODO DE EMPLEO

1. Preparación y Autoclavado

Colocación: Coloque dos viales (se recomienda duplicado) en la zona menos caliente del autoclave. Si el autoclave es grande ( $\geq 250 litros$ ), use varios viales espaciados.
Procesar: Proceda con el ciclo de autoclavado deseado.
Control Negativo: Prepare un vial de control no autoclavado pero sí activado.

2. Activación e Incubación

Activación: Tras el ciclo de autoclavado, apriete cada vial (incluido el control) hasta que el vidrio interno se rompa, liberando el medio de cultivo.
Incubación:
- Incube todos los viales en posición vertical a $60 \pm 5^{\circ} C$ .
- Tiempo: $\mathbf{4-48\,\text{horas}$.

3. Interpretación de Resultados

Vial	Resultado Correcto (Esterilización $✓$ )	Resultado Incorrecto (Fallo ✖)
Vial Autoclavado	Permanece lila (color original).	Gira a amarillo y se enturbia (crecimiento de esporas supervivientes).
Vial Control	Debe virar a amarillo (confirma la viabilidad inicial de las esporas).	Permanece lila (Test no válido; esporas caducadas o muertas prematuramente).

Precauciones y Almacenamiento

Temperatura de Incubación: No incubar a $37 - 43^{\circ} C$ , ya que el Bacillus stearothermophilus no crece a esa temperatura.
Posición de Incubación: No incubar más de 48 horas ni en posición horizontal para evitar la evaporación del caldo a través del filtro del tapón.
Almacenamiento: Mantener a $4 - 8^{\circ} C$ . Desechar cualquier vial que esté amarillo o turbio de origen.
Desecho: Elimine los viales usados mediante un autoclavado final de, al menos, $\mathbf{15\,\text{minutos}$ a $\mathbf{121\,^\circ\text{C}$.
Control Físico: Se recomienda controlar en paralelo con un termómetro de máxima, ya que muchos fallos del autoclave se deben a no alcanzar los $121^{\circ} C$ .

Opciones Adicionales

Viales para Ciclos Suaves: También están disponibles viales con esporas de Bacillus subtilis (caldo color naranja) para validar ciclos de autoclave menos agresivos (ej. $116^{\circ} C$ durante $15 minutos$ ), ideales para proteger azúcares y vitaminas en medios de cultivo.
Otros Usos: Existen viales equivalentes para control de esterilización por óxido de etileno (Ref. VG24802).

Formatos: Cajas de 20 unidades (Ref. VMT292-). Incubador disponible (Ref. 573714).

https://www.microkit.es/fichas/AUTOCLAVE-PRODUCTOS-AUXILIARES.pdf

Para más información y precios actualizados no dude en ponerse en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

M-IDENT®-Bacillus cereus

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Kit de Confirmación de Bacillus cereus en Alimentos

Referencia: Kit de 6 Test.

Este kit está diseñado para la confirmación de colonias sospechosas de Bacillus cereus aisladas en Agar Mossel, siguiendo los criterios de la Norma ISO 7932:1998.

Ventaja Principal: Extremadamente larga caducidad, de 1 año asegurado.

Contenido del Kit (Para 6 Pruebas)

El kit proporciona todos los medios y reactivos necesarios para realizar 6 pruebas completas de confirmación:

Componente	Tipo de Medio	Formato	Cantidad	Observaciones
1. Agar DTA-Polimixina	Sólido inclinado	Tubo violeta	6	Para la prueba de $pH$ /crecimiento.
2. Caldo MRVP	Líquido	Tubo incoloro-paja	6	Para la prueba Voges-Proskauer ( $VP$ ).
3. Medio Nitratos-Movilidad	Semisólido	Tubo incoloro	6	Para las pruebas de Nitratos y Movilidad.
4. Reactivos Voges-Proskauer ( $VP$ )	Reactivos $VP$ 1 + 2	Goteros ($\mathbf{5\,\text{ml}$ c/u)	1 kit	Irritante.
5. Reactivos de Nitratos	Reactivos Nitratos $A$ + $B$	Goteros ($\mathbf{5\,\text{ml}$ c/u)	1 kit	Irritante.

Componentes NO Incluidos

El kit no incluye cepas de control ( $CRIOSTRAINS$ o $SALVAJES$ ) ni la participación en servicios intercomparativos ( $SEILALIMENTOS$ ) para la validación de procedimientos y operarios.

MODO DE EMPLEO e Interpretación

1. Inoculación e Incubación

Muestra: Utilice una porción de una colonia pura y sospechosa de B. cereus procedente de Agar Mossel.
Inoculación:
- DTA-Polimixina: Inocular en estría.
- MRVP: Inocular por dilución.
- Nitratos-Movilidad: Inocular por picadura (punción central).
Incubación: Incubar los tres tubos a $30 \pm 2^{\circ} C$ durante $21 \pm 3 horas$ en condiciones aerobias.

2. Lectura e Interpretación

Después de la incubación, se añaden los reactivos para obtener los resultados:

Prueba	Medios / Reactivos	Adición de Reactivo	Resultado Positivo (B. cereus)	Observación
Glucosa (DTA)	DTA-Polimixina	N/A	Viraje de violeta a amarillo	Crecimiento y acidificación del medio.
Voges-Proskauer ( $VP$ )	Caldo MRVP	$\mathbf{0.5\,\text{ml}$ de VP 1 + 2	Viraje a rosa	Observar $\mathbf{1\,\text{hora}$ después de la adición.
Nitratos	Nitratos-Movilidad	$\mathbf{0.5\,\text{ml}$ de Nitratos $A$ + $B$	Viraje a rojo	Observar $\mathbf{15\,\text{minutos}$ después de la adición.
Movilidad	Nitratos-Movilidad	N/A	Crecimiento difuso desde la línea de picadura.	Observación visual directa.

Criterios de Confirmación (ISO 7932:1998 Adaptada)

Bacillus cereus se confirma si la colonia sospechosa cumple simultáneamente los siguientes cuatro criterios:

Crecimiento en DTA-Polimixina con viraje del medio de violeta a amarillo.
Test VP positivo (viraje a rosa).
Test de Nitratos positivo (viraje a rojo).
Movilidad positiva (crecimiento difuso a partir de la picadura).

Nota: Se utiliza la versión $ISO 7932 : 1998$ adaptada, ya que la versión más moderna clasifica los resultados como «presuntos B. cereus».

Control de Calidad del Kit

Es prudente repetir el Control de Calidad en su laboratorio, especialmente después de períodos sin uso (más de 3 meses), desinfección del laboratorio, almacenamiento a altas temperaturas o si el aspecto de los tubos cambia antes de la caducidad teórica.

Control de Crecimiento (24 h a $30^{\circ} C$ en aerobiosis) con Bacillus cereus (MKTA 10876):

Medio / Prueba	Resultado Esperado
DTA-Polimixina	Viraje a amarillo-crema.
MRVP Broth ( $VP$ )	Crecimiento, y viraje a rosa tras añadir los reactivos $VP$ .
Nitratos-Movilidad	Crecimiento con movilidad/difusión y reducción del nitrato (viraje a rojo tras añadir reactivos de Nitratos).

Control de Calidad visual de los Componentes

Tubos Preparados: Estériles, listos para su uso.
Kits de Reactivos ( $VP$ y Nitratos): No estériles, IRRITANTES.
Conservación: Seguir las condiciones de almacenamiento para cada componente.
Movilidad/Nitratos: Semisólido, incoloro.
MRVP: Líquido, incoloro-paja.
DTA-Polimixina: Sólido inclinado, violeta-púrpura.

Para más información y precios actualizados no dude en ponerse en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

https://www.microkit.es/fichas/BACILLUS-CEREUS-M-IDENT-KIT-ISO-7932-UE-2-2019-ALIMENTOS.pdf

https://www.microkit.es/monograficos/10-Bacillus-monograf–a.pdf

M-IDENT®-Clostridium perfringens

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Kit de confirmación de Clostridium perfringens en aguas por Filtración de Membrana s/Norma ISO/CD 6461-2:2002 y en alimentos según FDA.

Confirmación C.perfringens mediante M-Ident ISO de MICROKIT: Lactosa-Gelatina- Nitratos-Movilidad, sin reactivos cancerígenos, Caducidad 1 año

CONTROL DE CALIDAD DEL KIT

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

TUBOS PREPARADOS BUFFERED NITRATE-MOTILITY MEDIUM: Estéril, crema, semisólido
TUBOS PREPARADOS LACTOSE-GELATIN MEDIUM: Estéril, rojo, gelatinoso

CONTROL DE CRECIMIENTO a 37°C durante 24 horas, en anaerobiosis:

En el tubo crema de Buffered Nitrate-Motility Medium, Clostridium perfringens MKTA 13124 (=MKTN 8237), crece sin difusión/movilidad y reduce el nitrato a nitrito.

En el tubo rojo de Lactose-Gelatin Medium, Clostridium perfringens MKTA 13124 (=MKTN 8237), crece con viraje del medio a amarillo y licúa la gelatina.

PRESENTACION:

KIT DE 9 TEST para la confirmación de colonias sospechosas de Cl.perfringens:

9 tubos 10 ml color crema de Buffered Nitrate-Motility Medium
9 tubos 10 ml color rojo de Lactose-Gelatin Medium
1 kit de Reactivos de Nitratos A + B de 5 ml cada uno, suficiente para las 9 pruebas

EL KIT NO INCLUYE:

Ø Zinc en polvo (solicítenos SRO001)
Ø Cepas de reserva (CRIOSTRAINS), de trabajo o cuantitativas para validar los reactivos una vez llegados a fábrica o tras almacenamientos prolongados inadecuados.
Ø Participación en servicios intercomparativos como SEILAGUA, SEILALIMENTOS o SEILAPARFUM para validar los procedimientos y los operarios

MODO DE EMPLEO E INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS

Inmediatamente antes de su uso, regenerar un tubo preparado de cada uno de los dos medios, hirviéndolos 15 minutos para eliminar su oxigenación. Enfriar rápidamente a 70-80°C o mejor hasta su solidificación.

Inocular la colonia sospechosa, procedente de TSC o del medio elegido, en picadura, en el tubo crema de Buffered Nitrate-Motility Medium. Incubar a 36 ± 2 °C durante 21 ± 3 horas, en anaerobiosis. Observar la movilidad, positiva si hay crecimiento difuso desde la línea de picadura. Añadir 0,5 ml de Reactivo de Nitratos A y otro tanto de Reactivo de Nitratos B. Observar la reducción de Nitrato a Nitrito, que se considera positiva cuando hay viraje a rosa-rojo antes de 15 minutos tras añadir los reactivos de Nitratos A y B. Si no hay viraje, añadir un poco de Zinc en polvo (SRO001), esperar 10 minutos y considerar tambien positiva la prueba si TAMPOCO hay viraje a rosa-rojo.
Al mismo tiempo que se inocula el tubo crema de Buffered Nitrate-Motility Medium, inocular otra colonia sospechosa, procedente de TSC o del medio elegido, en picadura, en el tubo rojo de Lactose-Gelatin Medium.

Incubar a 36 ± 2 °C durante 21 ± 3 horas, en anaerobiosis. Observar la producción de ácido por viraje a amarillo. Enfriar los tubos en una nevera a 5 ± 3°C durante 1-2 horas y comprobar si hay liquefacción de la gelatina. Si han solidificado, reincubar a 36 ± 2°C durante 21 ± 3 horas y volver a comprobar si hay liquefacción de la gelatina.

Se considera Clostridium perfringens, según Norma ISO/CD 6461-2:2002, toda colonia negra, marrón o gris procedente de TSC Agar, no móvil en el medio crema Buffered Nitrate-Motility Medium, que reduce el nitrato a nitrito en el medio Buffered Nitrate-Motility Medium, que produce ácido a partir de la lactosa en el medio rojo Lactose-Gelatin Medium y que licúa la gelatina en el medio rojo Lactose-Gelatin Medium en menos de 44 ± 4 horas.

Para más información no dude en ponerse en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

https://www.microkit.es/fichas/CL-PERFRINGENS-M-IDENT-ISO-6461-UE-2-2019.pdf

ANTIBURBUJAS, ANTIDESECANTE Y ANTIESPUMANTE PARA LA PREPARACIÓN DE MEDIOS DE CULTIVO

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*Izda: medio sin antiburbujas. Dcha: el mismo con antiburbujas*

ANTIBURBUJAS ANTIDESECANTE CULTIVOS MICROBIANOS: Evita las burbujas, la espuma y la desecación de los medios preparados

Reactivo (sin actividad frente al crecimiento microbiano) para la eliminación de burbujas en la preparación de medios de cultivo agarizados, que al solidificar quedan como «agujeros» en la superficie del agar.

Previene además el «splash» al utilizar sistemas de siembra o preparación automáticos.

También es útil para alargar la caducidad de las placas de contacto que han de someterse a un elevado número de litros de impacto de aire, por su efecto retardante de la desecación de la superficie del medio.

Y la de las placas que se dejan abiertas al aire para el método de sedimentación pasiva.

Además, elimina las burbujas en las plaquitas para filtración de membrana.

Y también es un excelente antiespumante para caldos de cultivo en fermentaciones industriales.

En producción de Laboratorios MICROKIT, se emplea desde hace décadas en ENVIROCOUNT, Placas preparadas, PLAQUIS ®, y en ciertos tubos de agar inclinado, sobre todo.

MODO DE EMPLEO

Añadir 2-4 gotas por cada litro de agua (en medios Tergitol y Bilis Esculina, la dosis ideal son 3 gotas/litro) y agitar ANTES de la adición y esterilización del medio de cultivo.

Cada laboratorio establecerá por si mismo la cantidad que debe añadir en cada medio de cultivo, ya que la viscosidad del medio varía ampliamente en función de sus nutrientes y demás componentes.

PRECAUCIÓN

Si aparece un brillo en la superficie del medio, la cantidad añadida es excesiva, y debe ser reducida en próximos lotes. El reactivo, incluso con brillo, no afecta las características de crecimiento del medio.

No añadir en medios calientes, porque se producirán aglomeraciones y la dispersión será absolutamente imposible.

El único medio no recomendable para usar con antiburbujas es el agar sangre, ya que lo hemoliza.

La estabilidad es de tres años mientras se almacene entre 2-5°C.

PRESENTACIÓN

Botes con gotero de 5 ml o Frascos cuentagotas 100 ml. Referencia SBL001.

ANTIBURBUJAS ANTIDESECANTE CULTIVOS MICROBIANOS: Evita las burbujas, la espuma y la desecación de los medios preparados

https://www.microkit.es/fichas/ANTIBURBUJAS-ANTIDESECANTE-ANTIESPUMANTE.pdf

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VIALES PINCHABLES

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VIALES PINCHABLES PARA MICROBIOLOGIA DE AGUAS POR FILTRACION DE MEMBRANA

filtración de membrana barata mediante medios de cultivo en vial pinchable de 100 mL en lugar de las clásicas ampollas de 2 ml

MICROKIT le ofrece la gama más completa de medios preparados para análisis microbiológicos de aguas por filtración de membrana, mediante sus ya clásicas UFM (Unidades de Filtración Microkit) y sus conocidos viales de 2 ml. (Véanse, también los medios deshidratados y los kits de Presencia/Ausencia).

Ahora todos los parámetros pueden también se analizados mediante los cómodos estandarizados y extraordinariamente económicos VIALES PINCHABLES de 100 ml.

Se trata de frascos estériles con 100 ml de caldos de cultivo especiales (por su composición y concentración) para el método de análisis por filtración de membrana (MF) con cartones absorbentes. Su tapón pinchable permite realizar tantas introducciones de aguja como se desee sin riesgo de contaminación, por lo que 100 ml de medio permiten realizar desde 50 análisis en el mismo día hasta los 50 análisis a lo largo de un año, que es su periodo de caducidad desde fabricación.

El protocolo de trabajo simplifica la manipulación y además reduce el material de desecho que originan los viales de 2 ml. Frente a las placas preparadas, ofrecen una muy superior caducidad (1-2 años desde fabricación).

Todas las cajas de 10 viales pinchables del mismo medio (500 test) incluyen el certificado de control de calidad del lote y con las cepas crecidas y las inhibidas. Se incluyen jeringas y agujas estériles si se solicitan, sin coste adicional.

filtración de membrana barata

https://www.microkit.es/fichas/VIALES-PINCHABLES-MF.pdf

BRETANOMYCES SELECTIVE MICROKIT AGAR

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Agar para Detección de Brettanomyces/Dekkera

Nombre del Agente: Brettanomyces intermedius (también conocido como Dekkera bruxellensis).

Este medio de cultivo selectivo y diferencial, desarrollado en colaboración con una tesis doctoral de la Universidad de Salamanca y optimizado por Laboratorios MICROKIT, está diseñado específicamente para la detección y el recuento de B. intermedius en vinos, barricas y otras fuentes de infección.

Brettanomyces intermedius crecido por siembra en estría a partir del biofilm de una barrica: Rosa y con halo rojo.

La Amenaza del Olor a Ratón en un buen vino

Brettanomyces/Dekkera es la levadura de deterioro más temida en bodegas actualmente. Es tristemente conocida por producir un desagradable olor a ratón, establo o cuero en los vinos, un defecto causado por los fenoles volátiles que genera, especialmente al final de la fermentación alcohólica o durante la crianza. Este deterioro puede llevar a la pérdida total del producto y a la necesidad de quemar barricas enteras para detener su propagación.

Ventajas del Medio MICROKIT

Selectividad y Diferenciación Superior: La formulación (basada en una tesis doctoral) contiene agentes nutritivos, selectivos y diferenciales que mejoran significativamente la recuperación y la selectividad en comparación con otros medios y kits comerciales.
Larga Caducidad: Se ofrece una caducidad extraordinariamente larga.

Formato de Comercialización

Debido a la dificultad de su preparación y la volatilidad de algunos de sus componentes, este agar no puede comercializarse en formato deshidratado ni en viales líquidos:

Tubos Preparados: Diseñados para refundir y elaborar placas en el momento de la siembra.
Plaquis® Herméticas: Placas de cultivo pre-preparadas y selladas.

Interpretación de Resultados

Las colonias que confirman la presencia de Brettanomyces intermedius tienen las siguientes características:

Característica	Descripción
Color de Colonia	Rosa.
Halo	Rodeado por un halo transparente y rojo (debido a la redisolución del carbonato). Este halo se observa mejor sin membrana.
Olor	La placa o el cultivo puede desprender un olor característico a vinagre, ratón, establo o cuero.

Conclusión: La alta selectividad y recuperación de esta fórmula la convierten en la herramienta más útil y cómoda para el control de este patógeno a nivel internacional

Dado el gran acierto de sus componentes, la recuperación es muy superior y mucho más selectiva a la de los otros medios comerciales.

Dar como confirmativas las colonias rosas, rodeadas de un halo transparente y rojo (por redisolución del carbonato) que se ve mejor sin membrana y con olor a vinagre, ratón, establo o cuero.

Bretanomyces intermedius Dekkera bruxellensis: agar de tesis doctoral de la Universidad de Salamanca para el mal del olor a ratón del vino

https://www.microkit.es/fichas/BRETANOMYCES-SELECTIVE-MICROKIT-AGAR.pdf

Para consultas y precios actualizados sobre éste o cualquiera de nuestros productos no dude en ponerse en contacto con nosotros en el número de teléfono 91- 897 46 16 o a través del correo electrónico microkit@microkit.es.

AUTOCLAVE: PRODUCTOS AUXILIARES III. TIRAS PARA CONTROL QUÍMICO:

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TIRAS CONTROL CICLO AUTOCLAVE, CICLO DE CALOR SECO Y CICLO DE IRRADIACIÓN CORRECTOS, POR VIRAJE QUÍMICO (NO BIOLÓGICO)

Con las tiras de control de autoclavado correcto, la esterilización se pone en evidencia por el viraje de toda la flecha rosa a pardo. Virajes incompletos o parciales indican esterilizaciones pobres. Su gran ventaja sobre los viales de control biológico es que no precisan incubación posterior, con lo que la lectura de resultados es inmediata. Además, controlan un amplio rango de combinaciones Temperatura/tiempo:

100 ºC, 500 minutos
110 ºC, 80 minutos
116 ºC, 30 minutos
121 ºC, 15 minutos
126 ºC, 10 minutos
133 ºC, 2 minutos

Cajas de 250 unidades,

referencia VKV041.

Y su gran ventaja sobre la cinta de autoclave es que sólo viran cuando se ha alcanzado el ciclo completo, mientras la cinta vira en cuanto hierve el ambiente en donde está, por lo que su uso debe quedar limitado exclusivamente para saber qué material ha pasado por el autoclave (lo cual también pueden hacer las tiras colocando una en cada gradilla, pero las tiras además nos dirán si el ciclo ha sido completo). Las tiras son muy económicas, por lo que no es un despilfarro emplear una por cada gradilla.

¡NUEVO!: Tiras para control de esterilización por calor seco (estufas), 180°C-30 minutos, 170°C-1 hora, 160°C-2 horas, Caja 250 u, Ref. VKV037

¡NUEVO!: Tiras para control de esterilización por irradiación (( o $) con ESPORAS de B.pumilus, Cajas 20 u: Ref.VSN91071:10⁷, VSN91072: 10⁶ , VSN91073: 10⁵ ,VSN91074: 10⁴ ,VSN91075:10³ .

TIRAS CONTROL CICLO AUTOCLAVE, CICLO DE CALOR SECO Y CICLO DE IRRADIACIÓN CORRECTOS, POR VIRAJE QUÍMICO (NO BIOLÓGICO)

https://www.microkit.es/fichas/AUTOCLAVE-PRODUCTOS-AUXILIARES.pdf