Archivo de la categoría: KITS DE ANÁLISIS MICROBIOLÓGICO

Kits para análisis microbiológicos (ISO 17381)

DryPlates® CAN

DryPlates® CAN: Detección Precoz de Candida albicans

Códigos: DPP016- (caja 60 u) y DPP016+ (caja 1200 u).

DryPlates® CAN son placas de cultivo preparadas con el medio Agar Biggy-Nickerson en un disco deshidratado estéril. Están listas para su uso inmediato, eliminando los largos procesos de preparación de medios agarizados.

Beneficios Clave y Detección Rápida

Detección Precoz (16 h): Permite detectar Candida albicans en solo 16 horas, en comparación con los 1-2 días necesarios con el medio Biggy-Nickerson clásico. Esto es crucial para la liberación rápida de lotes en la industria farmacéutica y cosmética.
Ahorro de Tiempo: Elimina el hervido, fusión y enfriado a $45^{\circ} C$ de agares, ahorrando aproximadamente 2 horas de trabajo.
Medio Selectivo y Diferencial: El Agar Biggy-Nickerson es normativo (ISO 18416) para la detección y recuento selectivo de C. albicans en muestras cosméticas y clínicas.
Alta Recuperación: DryPlates® CAN logra recuperaciones incluso superiores a las obtenidas en el Agar Biggy tradicional y supera a los modernos medios cromogénicos.
Larga Caducidad: 1 año desde su fabricación.

Identificación

Las colonias de Candida albicans crecen de color pardo, pequeñas y a menudo con márgenes lobulados. No hay difusión del pigmento al medio.

MODO DE EMPLEO

La inoculación de DryPlates® ocurre por hidratación del disco nutriente con la muestra líquida a temperatura ambiente.

A. Para Muestras Líquidas (1 ml)

Preparar: Retire un disco nutriente con pinzas y colóquelo en la tapa de la placa recién abierta.
Añadir la Muestra: Vierta 1 ml de la muestra líquida tratada en el centro de la base de la placa.
- Nota: Si la muestra es espesa, realice diluciones decimales hasta que sea acuosa.
Cerrar e Inocular: Cierre la placa, permitiendo que el disco caiga sobre la muestra.
- Importante: Nunca añada la muestra sobre el disco, ya que esto reducirá la muestra captada y dará lugar a recuentos subestimados.

B. Para Muestras Líquidas Filtradas (100 ml, 250 ml, etc.)

Prehidratar el Disco: Hidrate el disco nutriente de la placa con 1 ml de agua estéril. (Recuerde: disco sobre el agua, no al revés).
Filtrar: Filtre la muestra (ej. $100 ml$ ) a través de una membrana estéril ( $0.45 μ m$ o $0.22 μ m$ ).
Revitalizar (Recomendado): Para evitar estresar las células de C. albicans, revitalice la membrana recién filtrada pasando a continuación $100 ml$ de un tampón adecuado (ej. Buff. Peptone $ClNa$ Solution $pH 7.0$ ).
Transferir: Deposite la membrana sobre el disco prehidratado de la DryPlates® CAN, evitando la formación de burbujas.

C. Para Ambientes Interiores (Superficies y Aires)

Prehidratar: Hidrate la DryPlates® con 1 ml de agua estéril antes de la siembra (disco sobre el agua, no al revés).
Superficies: Estríe sobre la placa un escobillón con el que haya barrido la superficie de la muestra.
Aires: Deje la DryPlates® abierta durante 10-15 minutos en puntos críticos para una estimación «de campo» de la flora ambiental.
- (Para recuentos precisos por $m^{3}$ de aire, se recomienda mejor usar un muestreador com o MBS o Microflow).

Incubación y Lectura

Incubación

Condiciones Estándar: $35 - 37^{\circ} C$ durante $1 - 5 d ı ˊ as$ .
Posición: Sin voltear (disco abajo) para evitar fugas.
Humedad (IMPORTANTE): Incubar en atmósfera húmeda (basta con un vaso de agua lleno en la estufa).
Precaución: Nunca coloque la DryPlates® directamente sobre la bandeja metálica de la estufa. Intercale una placa vacía para evitar el secado por exceso de calor.

Detección Precoz y Revitalización

Detección Rápida: Las cepas viables de $C . a l bi c an s$ crecerán desde las 16 horas como pequeñas colonias pardas y lobuladas.
Revitalización: Si no aparecen estas minicolonias a las 16 horas, continúe incubando hasta 48 horas para permitir la revitalización de células dañadas o sub-letalmente estresadas.

Lectura de Resultados

Busque únicamente las colonias diana: C. albicans crece con colonias pardas, pequeñas, lobuladas, sin difusión del pigmento al medio.

Conservación y Precauciones de Uso

Almacenamiento: Almacenar a temperatura ambiente (ideal $15 - 25^{\circ} C$ ).
- ¡No refrigerar! La humedad de la nevera puede prehidratar y dañar los discos.
Condiciones: Almacenar en un lugar muy seco y oscuro para proteger los medios deshidratados de la humedad y la luz.
Alta Humedad: En zonas de alta humedad atmosférica, guarde las DryPlates® cerradas en su bolsa original dentro de un recipiente hermético («tupper») con sacos antihumedad.

Diseño y fabricación 100% españoles. Derechos de explotación de la PATENTE concedidos a dos empresas: Laboratorios MICROKIT, S.L. (Madrid) y BC Aplicaciones Analiticas, S.A (Barcelona) tras más de 8 años de ensayos y mejoras en sinergia para poder ofrecerle el mejor y más versátil producto de estas características.

DryPlates® es marca registrada por Laboratorios MICROKIT, S.L.

Para más información no dude en ponerse en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

https://www.microkit.es/fichas/Dry-Plates-CANDI-Prospecto.pdf

Haga sus consultas de este medio en: microkit@microkit.es

Haga sus pedidos de este medio en: pedidos@microkit.es

En este vídeo puedes entender mejor la hazaña de las DryPlates® y cómo usarlas:

https://www.youtube.com/watch?v=vkdRD5ulpSY&t=29s

DESINFECCION EN EL HOGAR

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LABORATORIOS MICROKIT LE OFRECE UNA AMPLIA GAMA DE PRODUCTOS PARA QUE DESINFECTE EL AIRE Y LAS SUPERFICIES EN SU PROPIO HOGAR, CON LAS MISMAS HERRAMIENTAS CON LAS QUE LO HACEN LOS PROFESIONALES DEL LABORATORIO.

DESINFECCIÓN EN EL HOGAR

toallitas y sprays para que su casa no acumule microbios en las superficies ni en el aire

¿Sabía que el laboratorio microbiológico es uno de los mayores focos de riesgos biológicos? Sin embargo no es el único: La casa, con su baño y su cocina, las camas, los aires acondicionados, con sus filtros mal limpios o inaccesibles, los teléfonos públicos, los teléfonos móviles, el interior del coche, los bares, los cubos de la basura, las habitaciones de los hoteles, los almacenes, los consultorios médicos, las salas de espera, y muchos de los lugares y objetos más cotidianos de nuestra vida, son lugares donde nuestra salud y la de los nuestros corre peligro a causa de los microorganismos patógenos que proliferan en ellos. Ya sabe que la mayoría de infecciones las cogemos en estos lugares o por estas vías….

Llévese a su vida cotidiana el hábito de desinfectar, de la mano de los 3 grandes aliados MICROKIT que usan los laboratorios de toda España:

AIRESANO-300, spray para uso diario por pulsación (como los insecticidas habituales) en la cocina y aires acondicionados del hogar: bactericida-fungicida, de agradable aroma mentolado. Desinfectante atmosférico de aire y superficies de alta eficacia. Indicado para la eliminación de bacterias y hongos en todo tipo de locales. Pulverizar 10 segundos por cada 16 m² aproximadamente. No entrar hasta pasados 15 minutos. REFERENCIA: DYBAC3

AIRESANO-PLUS pack, para uso diario por descarga totalinsecticida atmosférico de alta eficacia. Spray de agradable aroma. Indicado para la eliminación de bacterias, hongos e insectos (ácaros, pulgas, piojos…) en todo tipo de locales. Pulsar hasta el fondo, salir y esperar un minuto a su descarga total. No entrar hasta pasados 15 minutos. Ref: DYBAC4

TOALLITAS MICROKIT para uso diario por barrido. Habitúese al uso de las toallitas en los micrófonos de los teléfonos (públicos o no), en los baños, en las encimeras de la cocina, en sus propias manos cuando está fuera de casa, en las duchas públicas… Las toallitas MICROKIT combinan su agradable aroma con una elevada efectividad microbicida. Ref: VMT094.
DESINFECCIÓN EN EL HOGAR

Para más información no dude en ponerse en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

https://www.microkit.es/pdf/Airesano-2021.pdf

Autorizado por Sanidad para uso doméstico

https://www.microkit.es/fichas/DESINFECCION-CASA.pdf

ESPONJAS ABRASIVAS TOMAMUESTRAS

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Esponjas abrasivas tomamuestras superficies para detectar microorganismos (bacterias, levaduras y mohos) con la máxima eficiencia

https://www.microkit.es/fichas/ESPONJAS-ABRASIVAS-VMT037.pdf

ESTERILIZADAS por irradiación a 25 KGy

-CONTROLADAS con ausencia de inhibidores del crecimiento de los principales patógenos: Salmonella, Listeria monocytogenes, E.coli, Staphylococcus aureus…

Producto diseñado para cumplir con la Directiva 2073/2005 de 15/11/2005 y posteriores Normativas (ANSES, ISO 18593).

Cada esponja viene en una bolsa unitaria autosellable, que posteriormente ha sido esterilizada. Tamaño: 5×10 cm. CONSERVAR: 8-25°C ¡EN OSCURIDAD! CÓDIGO: VMT037

Material necesario NO incluido:

-Spray pulverizador (humectante) de Solución Ringer 1/4 sin nutrientes para ablandar el biofilm y que la esponja lo arrastre mejor (ref. MICROKIT: KMT035)

-Caja 20 Tubos 9 ml LPT Neutraling Broth para revitalizar los microorganismos una vez están arrastrados en la esponja. No usar para humectar la superficie a muestrear, ya que contienen nutrientes que la contaminarían y serían foco que alimentaría las próximas bacterias que cayeran allí (ref. MICROKIT: TPL053S)

-Caja 100 pares de Guantes estériles para tomar las muestras sin contaminarlas (ref. MICROKIT: VMT040 -talla pequeña-, VMT041 -talla grande-)

MODO DE EMPLEO:

1-Añadir a la bolsa el contenido de un tubo LPT Neutraling Broth (TPL053S) para inactivar residuos de cualquier tipo de desinfectante que pueda tener la superficie de muestra, cerrar y apretar para embeber. Si utiliza otro caldo inactivador no respondemos de la efectividad del producto. Este paso previo no es necesario para muestrear canales.

2-Con guantes estériles (VMT040, VMT041), extraer la esponja de la bolsa, y escurrir en ella el exceso de líquido inactivador.

3-Raspar 100 cm² (o la superficie que sea necesario) de la superficie.

4-Devolver a la bolsa y cerrar. Si se muestrean canales, añadir ahora el caldo TPL053S.

5-Tras un mínimo de 20 minutos para revitalización, y un máximo de 24 horas de transporte hasta el laboratorio, llevar la esponja con todo el líquido a un homogeneizador con 100-225 ml del caldo de pre-enriquecimiento adecuado para el microorganismo buscado (Salmonella spp., Listeria monocytogenes, E.coli, Staphylococcus aureus, Legionella pneumophila…). Si no se agita bien y no se utiliza un caldo de arrastre adecuado como el TPL053S propuesto, la retención (y consecuente no detección) de células en los poros de la esponja, puede llegar a ser del 50% de la población. Expresar los resultados como presente o ausente en 100 cm².

CONTENIDO:

100 ESPONJAS ESTÉRILES, DESHIDRATADAS Y NO INHIBIDORAS que, con TPL053S, arrastran la población e inactivan residuos de amonios cuaternarios, fenol, compuestos bencénicos (incluidos parabenes), formol, iodo, cloro y demás halógenos, lejía, compuestos mercuriales, glutaraldehido…

USO EXCLUSIVO PARA LABORATORIO, para control microbiológico de superficies en industria alimentaria y otros sectores.

esponjas abrasivas tomamuestras superficies para detectar microorganismos (bacterias, levaduras y mohos) con la máxima eficiencia

¿Por qué usar estas esponjas y no bayetas? Numerosos laboratorios acreditados ISO 17025 que buscan Listeria monocytogenes en fábricas porque saben que hay focos que contaminan el alimento final, nos han comunicado que eligen nuestras esponjas abrasivas porque rascan el biofilm y detectan donde los demás métodos no son capaces de encontrar el foco de contaminación.

Aquí puedes ver cómo se usan:

https://youtu.be/TFT1VBA6IKY

Para consultas o aclaraciones sobre éste o cualquiera de nuestros productos no dude en ponerse en contacto con nosotros en el número de teléfono 91- 897 46 16 o a través del correo electrónico microkit@microkit.es.

ANAEROBIOSIS: KITS GENERADORES

11 respuestas

Kits Generadores y Controladores de Atmósfera de Anaerobiosis

ANAEROKIT y ANAEROTEST: Soluciones para la Anaerobiosis y el Control

Estos kits son esenciales para el cultivo de microorganismos que requieren ambientes con bajo o nulo contenido de oxígeno (anaerobios estrictos, facultativos o microaerófilos).

Principio de Funcionamiento de los Generadores (Anaerocult, AnaeroKIT)

Los generadores contienen componentes químicos (Tierra de diatomeas, Hierro, Ácido Cítrico y Carbonato Sódico) que:

Fijan químicamente el oxígeno del aire dentro del recipiente o bolsa.
Generan anhídrido carbónico ( $CO_{2}$ ).
Velocidad: El nivel máximo de atmósfera deseada se alcanza en aproximadamente 30 minutos y se mantiene durante varias horas.

A. Kits Generadores de Anaerobiosis Completa

Estos productos generan un ambiente totalmente anaerobio para el cultivo de anaerobios estrictos y facultativos.

1. ANAEROCULT A (Para Jarras)

Referencia	Formato	Uso	Capacidad de la Jarra
KKM036	Caja de 10 unidades	Generador de atmósfera en un recipiente de $2.5 litros$ .	Hasta 25 Plaquis, 20 Ecoplaquis o 7 placas de $90 mm$ .

Modo de Empleo:

Preparar Control: Humedezca una tira de Anaerotest (KKM039) con una gota de agua y fíjela en la gradilla de las placas.
Cargar la Jarra: Introduzca las placas con el Anaerotest en la jarra de anaerobiosis.
Activar el Generador: Añada $35 ml$ de agua al papel de una bandeja de Anaerocult A, distribuyéndolos homogéneamente.
Sellar: Antes de 20 segundos, coloque la bandeja verticalmente en la jarra (con la cara mojada mirando hacia las placas) y cierre la jarra inmediatamente.
Incubar y Controlar:
- Introduzca la jarra en la estufa.
- Después de $4 horas$ , compruebe que el Anaerotest haya virado de azul a blanco (indicando anaerobiosis correcta), sin abrir la jarra.
- Conservación: Bien cerrado y al abrigo de la humedad, entre $15$ y $25^{\circ} C$ .

2. ANAEROKIT (Para Bolsas Individuales)

Referencia	Formato	Uso
KKT001	Caja de 25 unidades	Generador de atmósfera para bolsas individuales (placas de Petri).

Modo de Empleo:

Preparar Control: Humedezca una tira de Anaerotest (KKM039) con una gota de agua y fíjela en el exterior de la placa, sobresaliendo la zona reactiva.
Activar el Generador: Introduzca un bote de Anaerokit en una bolsa de incubación y humedézcalo con $20 ml$ de agua.
Sellar: Introduzca inmediatamente las placas con el Anaerotest y cierre la bolsa herméticamente con un Anaeroclip (KKM100).
Incubar y Controlar:
- Incube en la estufa.
- Después de $4 horas$ , controle que el Anaerotest haya virado de azul a blanco (anaerobiosis correcta).
- Conservación: Al abrigo de la humedad, entre $15$ y $25^{\circ} C$ .
- Nota: Solicite un Anaeroclip sin cargo con su primer pedido de Anaerokit.

B. Kits Generadores de Microaerofilia

Estos productos crean una atmósfera pobre en oxígeno, ideal para microorganismos microaerófilos como Campylobacter.

Producto	Referencia	Modo de Empleo
ANAEROCULT C	KKM101 (Caja 10 u)	Usar siguiendo las instrucciones del Anaerocult A (Para Jarra).
ANAEROCULT C-MINI	KKM037 (Caja 25 u)	Usar siguiendo las instrucciones del Anaerokit (Para Bolsa).

C. Control de Anaerobiosis

ANAEROTEST (Indicador Químico)

Referencia	Formato	Uso
KKM039	Caja de 50 tiras	Indicador de Azul de Metileno para verificar la correcta anaerobiosis.

Modo de Empleo:

Humedezca la zona reactiva con $\mathbf{1\,\text{gota de agua destilada}$.
Introduzca la tira en la jarra o bolsa junto al generador ( $ANAEROCULT-A$ , $ANAEROKIT$ , etc.).
Cierre e incube.
Verificación: Confirme a las $\mathbf{4-6\,\text{horas}$ que el indicador ha virado de azul a blanco, señalando que se ha alcanzado la anaerobiosis.
Conservación: Bien cerrado en su tubo, en zona seca.

Recordatorio Importante

Si utiliza el TSC o el SPS Agar en formato kit Quanti P/A-Clostricult, no necesita incubar en atmósfera de anaerobiosis, ya que el medio en polvo ya incluye esta característica.

Contacto: Para consultas y conocer los precios actualizados, llame al 91-897 46 16 o escriba a microkit@microkit.es

https://www.microkit.es/fic

AUTOCLAVE: PRODUCTOS AUXILIARES IV: VIALES DE ESPORAS PARA CONTROL BIOLÓGICO Y VALIDACIÓN DEL CICLO DEL AUTOCLAVE:

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Control Biológico de Ciclo de Autoclave: Viales EZ Test

Los Viales EZ Test son indicadores biológicos diseñados para garantizar el correcto funcionamiento del ciclo de autoclavado en la esterilización de medios de cultivo, material de laboratorio y conservas. Son especialmente útiles para comprobar que los autoclaves operan sin oscilaciones de temperatura peligrosas, según las normativas USP. A diferencia de otras marcas, permiten validar el ciclo del autoclave específico de los medios de cultivo (y no sólo el del material fungible)

Características Clave

Componente	Especificación
Microorganismo Indicador	*Bacillus stearothermophilus* ( $10^{6}$ esporas/ml), el más resistente al calor húmedo.
Medio	Caldo de cultivo con indicador de $pH$ de color lila (original).
Resistencia Mínima	Las esporas resisten $121^{\circ} C$ durante $\mathbf{5\,\text{minutos}$.
Esterilización Objetivo	La población de esporas es destruida tras $15 minutos$ a $121^{\circ} C$ .

Ventajas sobre otros Indicadores

Seguridad y Riesgo Cero: A diferencia de las ampollas, no contienen vidrio frágil que pueda romperse al caer, eliminando el riesgo de contaminación por esporas. El filtro del tapón también impide cualquier fuga.
Viraje Biológico: A diferencia de las tiras indicadoras químicas, el resultado se basa en la viabilidad del microorganismo (crecimiento vs. muerte), lo que ofrece una prueba más robusta de esterilización.
Fácil Manejo: Solo se recomienda para ciclos estándar de $15 minutos$ a $121^{\circ} C$ .

MODO DE EMPLEO

1. Preparación y Autoclavado

Colocación: Coloque dos viales (se recomienda duplicado) en la zona menos caliente del autoclave. Si el autoclave es grande ( $\geq 250 litros$ ), use varios viales espaciados.
Procesar: Proceda con el ciclo de autoclavado deseado.
Control Negativo: Prepare un vial de control no autoclavado pero sí activado.

2. Activación e Incubación

Activación: Tras el ciclo de autoclavado, apriete cada vial (incluido el control) hasta que el vidrio interno se rompa, liberando el medio de cultivo.
Incubación:
- Incube todos los viales en posición vertical a $60 \pm 5^{\circ} C$ .
- Tiempo: $\mathbf{4-48\,\text{horas}$.

3. Interpretación de Resultados

Vial	Resultado Correcto (Esterilización $✓$ )	Resultado Incorrecto (Fallo ✖)
Vial Autoclavado	Permanece lila (color original).	Gira a amarillo y se enturbia (crecimiento de esporas supervivientes).
Vial Control	Debe virar a amarillo (confirma la viabilidad inicial de las esporas).	Permanece lila (Test no válido; esporas caducadas o muertas prematuramente).

Precauciones y Almacenamiento

Temperatura de Incubación: No incubar a $37 - 43^{\circ} C$ , ya que el Bacillus stearothermophilus no crece a esa temperatura.
Posición de Incubación: No incubar más de 48 horas ni en posición horizontal para evitar la evaporación del caldo a través del filtro del tapón.
Almacenamiento: Mantener a $4 - 8^{\circ} C$ . Desechar cualquier vial que esté amarillo o turbio de origen.
Desecho: Elimine los viales usados mediante un autoclavado final de, al menos, $\mathbf{15\,\text{minutos}$ a $\mathbf{121\,^\circ\text{C}$.
Control Físico: Se recomienda controlar en paralelo con un termómetro de máxima, ya que muchos fallos del autoclave se deben a no alcanzar los $121^{\circ} C$ .

Opciones Adicionales

Viales para Ciclos Suaves: También están disponibles viales con esporas de Bacillus subtilis (caldo color naranja) para validar ciclos de autoclave menos agresivos (ej. $116^{\circ} C$ durante $15 minutos$ ), ideales para proteger azúcares y vitaminas en medios de cultivo.
Otros Usos: Existen viales equivalentes para control de esterilización por óxido de etileno (Ref. VG24802).

Formatos: Cajas de 20 unidades (Ref. VMT292-). Incubador disponible (Ref. 573714).

https://www.microkit.es/fichas/AUTOCLAVE-PRODUCTOS-AUXILIARES.pdf

Para más información y precios actualizados no dude en ponerse en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

M-IDENT®-Bacillus cereus

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Kit de Confirmación de Bacillus cereus en Alimentos

Referencia: Kit de 6 Test.

Este kit está diseñado para la confirmación de colonias sospechosas de Bacillus cereus aisladas en Agar Mossel, siguiendo los criterios de la Norma ISO 7932:1998.

Ventaja Principal: Extremadamente larga caducidad, de 1 año asegurado.

Contenido del Kit (Para 6 Pruebas)

El kit proporciona todos los medios y reactivos necesarios para realizar 6 pruebas completas de confirmación:

Componente	Tipo de Medio	Formato	Cantidad	Observaciones
1. Agar DTA-Polimixina	Sólido inclinado	Tubo violeta	6	Para la prueba de $pH$ /crecimiento.
2. Caldo MRVP	Líquido	Tubo incoloro-paja	6	Para la prueba Voges-Proskauer ( $VP$ ).
3. Medio Nitratos-Movilidad	Semisólido	Tubo incoloro	6	Para las pruebas de Nitratos y Movilidad.
4. Reactivos Voges-Proskauer ( $VP$ )	Reactivos $VP$ 1 + 2	Goteros ($\mathbf{5\,\text{ml}$ c/u)	1 kit	Irritante.
5. Reactivos de Nitratos	Reactivos Nitratos $A$ + $B$	Goteros ($\mathbf{5\,\text{ml}$ c/u)	1 kit	Irritante.

Componentes NO Incluidos

El kit no incluye cepas de control ( $CRIOSTRAINS$ o $SALVAJES$ ) ni la participación en servicios intercomparativos ( $SEILALIMENTOS$ ) para la validación de procedimientos y operarios.

MODO DE EMPLEO e Interpretación

1. Inoculación e Incubación

Muestra: Utilice una porción de una colonia pura y sospechosa de B. cereus procedente de Agar Mossel.
Inoculación:
- DTA-Polimixina: Inocular en estría.
- MRVP: Inocular por dilución.
- Nitratos-Movilidad: Inocular por picadura (punción central).
Incubación: Incubar los tres tubos a $30 \pm 2^{\circ} C$ durante $21 \pm 3 horas$ en condiciones aerobias.

2. Lectura e Interpretación

Después de la incubación, se añaden los reactivos para obtener los resultados:

Prueba	Medios / Reactivos	Adición de Reactivo	Resultado Positivo (B. cereus)	Observación
Glucosa (DTA)	DTA-Polimixina	N/A	Viraje de violeta a amarillo	Crecimiento y acidificación del medio.
Voges-Proskauer ( $VP$ )	Caldo MRVP	$\mathbf{0.5\,\text{ml}$ de VP 1 + 2	Viraje a rosa	Observar $\mathbf{1\,\text{hora}$ después de la adición.
Nitratos	Nitratos-Movilidad	$\mathbf{0.5\,\text{ml}$ de Nitratos $A$ + $B$	Viraje a rojo	Observar $\mathbf{15\,\text{minutos}$ después de la adición.
Movilidad	Nitratos-Movilidad	N/A	Crecimiento difuso desde la línea de picadura.	Observación visual directa.

Criterios de Confirmación (ISO 7932:1998 Adaptada)

Bacillus cereus se confirma si la colonia sospechosa cumple simultáneamente los siguientes cuatro criterios:

Crecimiento en DTA-Polimixina con viraje del medio de violeta a amarillo.
Test VP positivo (viraje a rosa).
Test de Nitratos positivo (viraje a rojo).
Movilidad positiva (crecimiento difuso a partir de la picadura).

Nota: Se utiliza la versión $ISO 7932 : 1998$ adaptada, ya que la versión más moderna clasifica los resultados como «presuntos B. cereus».

Control de Calidad del Kit

Es prudente repetir el Control de Calidad en su laboratorio, especialmente después de períodos sin uso (más de 3 meses), desinfección del laboratorio, almacenamiento a altas temperaturas o si el aspecto de los tubos cambia antes de la caducidad teórica.

Control de Crecimiento (24 h a $30^{\circ} C$ en aerobiosis) con Bacillus cereus (MKTA 10876):

Medio / Prueba	Resultado Esperado
DTA-Polimixina	Viraje a amarillo-crema.
MRVP Broth ( $VP$ )	Crecimiento, y viraje a rosa tras añadir los reactivos $VP$ .
Nitratos-Movilidad	Crecimiento con movilidad/difusión y reducción del nitrato (viraje a rojo tras añadir reactivos de Nitratos).

Control de Calidad visual de los Componentes

Tubos Preparados: Estériles, listos para su uso.
Kits de Reactivos ( $VP$ y Nitratos): No estériles, IRRITANTES.
Conservación: Seguir las condiciones de almacenamiento para cada componente.
Movilidad/Nitratos: Semisólido, incoloro.
MRVP: Líquido, incoloro-paja.
DTA-Polimixina: Sólido inclinado, violeta-púrpura.

Para más información y precios actualizados no dude en ponerse en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

https://www.microkit.es/fichas/BACILLUS-CEREUS-M-IDENT-KIT-ISO-7932-UE-2-2019-ALIMENTOS.pdf

https://www.microkit.es/monograficos/10-Bacillus-monograf–a.pdf

M-IDENT®-Clostridium perfringens

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Kit de confirmación de Clostridium perfringens en aguas por Filtración de Membrana s/Norma ISO/CD 6461-2:2002 y en alimentos según FDA.

Confirmación C.perfringens mediante M-Ident ISO de MICROKIT: Lactosa-Gelatina- Nitratos-Movilidad, sin reactivos cancerígenos, Caducidad 1 año

CONTROL DE CALIDAD DEL KIT

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

TUBOS PREPARADOS BUFFERED NITRATE-MOTILITY MEDIUM: Estéril, crema, semisólido
TUBOS PREPARADOS LACTOSE-GELATIN MEDIUM: Estéril, rojo, gelatinoso

CONTROL DE CRECIMIENTO a 37°C durante 24 horas, en anaerobiosis:

En el tubo crema de Buffered Nitrate-Motility Medium, Clostridium perfringens MKTA 13124 (=MKTN 8237), crece sin difusión/movilidad y reduce el nitrato a nitrito.

En el tubo rojo de Lactose-Gelatin Medium, Clostridium perfringens MKTA 13124 (=MKTN 8237), crece con viraje del medio a amarillo y licúa la gelatina.

PRESENTACION:

KIT DE 9 TEST para la confirmación de colonias sospechosas de Cl.perfringens:

9 tubos 10 ml color crema de Buffered Nitrate-Motility Medium
9 tubos 10 ml color rojo de Lactose-Gelatin Medium
1 kit de Reactivos de Nitratos A + B de 5 ml cada uno, suficiente para las 9 pruebas

EL KIT NO INCLUYE:

Ø Zinc en polvo (solicítenos SRO001)
Ø Cepas de reserva (CRIOSTRAINS), de trabajo o cuantitativas para validar los reactivos una vez llegados a fábrica o tras almacenamientos prolongados inadecuados.
Ø Participación en servicios intercomparativos como SEILAGUA, SEILALIMENTOS o SEILAPARFUM para validar los procedimientos y los operarios

MODO DE EMPLEO E INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS

Inmediatamente antes de su uso, regenerar un tubo preparado de cada uno de los dos medios, hirviéndolos 15 minutos para eliminar su oxigenación. Enfriar rápidamente a 70-80°C o mejor hasta su solidificación.

Inocular la colonia sospechosa, procedente de TSC o del medio elegido, en picadura, en el tubo crema de Buffered Nitrate-Motility Medium. Incubar a 36 ± 2 °C durante 21 ± 3 horas, en anaerobiosis. Observar la movilidad, positiva si hay crecimiento difuso desde la línea de picadura. Añadir 0,5 ml de Reactivo de Nitratos A y otro tanto de Reactivo de Nitratos B. Observar la reducción de Nitrato a Nitrito, que se considera positiva cuando hay viraje a rosa-rojo antes de 15 minutos tras añadir los reactivos de Nitratos A y B. Si no hay viraje, añadir un poco de Zinc en polvo (SRO001), esperar 10 minutos y considerar tambien positiva la prueba si TAMPOCO hay viraje a rosa-rojo.
Al mismo tiempo que se inocula el tubo crema de Buffered Nitrate-Motility Medium, inocular otra colonia sospechosa, procedente de TSC o del medio elegido, en picadura, en el tubo rojo de Lactose-Gelatin Medium.

Incubar a 36 ± 2 °C durante 21 ± 3 horas, en anaerobiosis. Observar la producción de ácido por viraje a amarillo. Enfriar los tubos en una nevera a 5 ± 3°C durante 1-2 horas y comprobar si hay liquefacción de la gelatina. Si han solidificado, reincubar a 36 ± 2°C durante 21 ± 3 horas y volver a comprobar si hay liquefacción de la gelatina.

Se considera Clostridium perfringens, según Norma ISO/CD 6461-2:2002, toda colonia negra, marrón o gris procedente de TSC Agar, no móvil en el medio crema Buffered Nitrate-Motility Medium, que reduce el nitrato a nitrito en el medio Buffered Nitrate-Motility Medium, que produce ácido a partir de la lactosa en el medio rojo Lactose-Gelatin Medium y que licúa la gelatina en el medio rojo Lactose-Gelatin Medium en menos de 44 ± 4 horas.

Para más información no dude en ponerse en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

https://www.microkit.es/fichas/CL-PERFRINGENS-M-IDENT-ISO-6461-UE-2-2019.pdf

ANTIBURBUJAS, ANTIDESECANTE Y ANTIESPUMANTE PARA LA PREPARACIÓN DE MEDIOS DE CULTIVO

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*Izda: medio sin antiburbujas. Dcha: el mismo con antiburbujas*

ANTIBURBUJAS ANTIDESECANTE CULTIVOS MICROBIANOS: Evita las burbujas, la espuma y la desecación de los medios preparados

Reactivo (sin actividad frente al crecimiento microbiano) para la eliminación de burbujas en la preparación de medios de cultivo agarizados, que al solidificar quedan como «agujeros» en la superficie del agar.

Previene además el «splash» al utilizar sistemas de siembra o preparación automáticos.

También es útil para alargar la caducidad de las placas de contacto que han de someterse a un elevado número de litros de impacto de aire, por su efecto retardante de la desecación de la superficie del medio.

Y la de las placas que se dejan abiertas al aire para el método de sedimentación pasiva.

Además, elimina las burbujas en las plaquitas para filtración de membrana.

Y también es un excelente antiespumante para caldos de cultivo en fermentaciones industriales.

En producción de Laboratorios MICROKIT, se emplea desde hace décadas en ENVIROCOUNT, Placas preparadas, PLAQUIS ®, y en ciertos tubos de agar inclinado, sobre todo.

MODO DE EMPLEO

Añadir 2-4 gotas por cada litro de agua (en medios Tergitol y Bilis Esculina, la dosis ideal son 3 gotas/litro) y agitar ANTES de la adición y esterilización del medio de cultivo.

Cada laboratorio establecerá por si mismo la cantidad que debe añadir en cada medio de cultivo, ya que la viscosidad del medio varía ampliamente en función de sus nutrientes y demás componentes.

PRECAUCIÓN

Si aparece un brillo en la superficie del medio, la cantidad añadida es excesiva, y debe ser reducida en próximos lotes. El reactivo, incluso con brillo, no afecta las características de crecimiento del medio.

No añadir en medios calientes, porque se producirán aglomeraciones y la dispersión será absolutamente imposible.

El único medio no recomendable para usar con antiburbujas es el agar sangre, ya que lo hemoliza.

La estabilidad es de tres años mientras se almacene entre 2-5°C.

PRESENTACIÓN

Botes con gotero de 5 ml o Frascos cuentagotas 100 ml. Referencia SBL001.

ANTIBURBUJAS ANTIDESECANTE CULTIVOS MICROBIANOS: Evita las burbujas, la espuma y la desecación de los medios preparados

https://www.microkit.es/fichas/ANTIBURBUJAS-ANTIDESECANTE-ANTIESPUMANTE.pdf

Para más información no dude en ponerse en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

AUTOCLAVE: PRODUCTOS AUXILIARES III. TIRAS PARA CONTROL QUÍMICO:

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TIRAS CONTROL CICLO AUTOCLAVE, CICLO DE CALOR SECO Y CICLO DE IRRADIACIÓN CORRECTOS, POR VIRAJE QUÍMICO (NO BIOLÓGICO)

Con las tiras de control de autoclavado correcto, la esterilización se pone en evidencia por el viraje de toda la flecha rosa a pardo. Virajes incompletos o parciales indican esterilizaciones pobres. Su gran ventaja sobre los viales de control biológico es que no precisan incubación posterior, con lo que la lectura de resultados es inmediata. Además, controlan un amplio rango de combinaciones Temperatura/tiempo:

100 ºC, 500 minutos
110 ºC, 80 minutos
116 ºC, 30 minutos
121 ºC, 15 minutos
126 ºC, 10 minutos
133 ºC, 2 minutos

Cajas de 250 unidades,

referencia VKV041.

Y su gran ventaja sobre la cinta de autoclave es que sólo viran cuando se ha alcanzado el ciclo completo, mientras la cinta vira en cuanto hierve el ambiente en donde está, por lo que su uso debe quedar limitado exclusivamente para saber qué material ha pasado por el autoclave (lo cual también pueden hacer las tiras colocando una en cada gradilla, pero las tiras además nos dirán si el ciclo ha sido completo). Las tiras son muy económicas, por lo que no es un despilfarro emplear una por cada gradilla.

¡NUEVO!: Tiras para control de esterilización por calor seco (estufas), 180°C-30 minutos, 170°C-1 hora, 160°C-2 horas, Caja 250 u, Ref. VKV037

¡NUEVO!: Tiras para control de esterilización por irradiación (( o $) con ESPORAS de B.pumilus, Cajas 20 u: Ref.VSN91071:10⁷, VSN91072: 10⁶ , VSN91073: 10⁵ ,VSN91074: 10⁴ ,VSN91075:10³ .

TIRAS CONTROL CICLO AUTOCLAVE, CICLO DE CALOR SECO Y CICLO DE IRRADIACIÓN CORRECTOS, POR VIRAJE QUÍMICO (NO BIOLÓGICO)

https://www.microkit.es/fichas/AUTOCLAVE-PRODUCTOS-AUXILIARES.pdf

ANTISUEROS PARA ANTÍGENOS COLONIALES

4 respuestas

ANTISUEROS CONFIRMACIÓN COLONIAS : IDENTIFIQUE Y SEROGRUPE/SEROTIPE LAS COLONIAS DE SALMONELLA, SHIGELLA, VIBRIO, E.COLI…

ANTISUEROS PARA ANTÍGENOS COLONIALES: Salmonella, E.Coli, Vibrio, Shigella.

INTRODUCCION

Para uso en identificaciones inmunológicas de los miembros del género Salmonella (o Escherichia coli, Vibrio cholerae, Shigella, para los que también sirve lo dicho a partir de aquí). Basados en el test de aglutinación bacteriana.

El género Salmonella contiene una amplia variedad de especies patógenas que afectan al hombre y a los animales en todo el mundo. Sin embargo, la identificación completa de Salmonella requiere aislamiento en cultivos, caracterización bioquímica y serotipado.

Los antisueros PROLAB y MUREX polivalentes se preparan mezclando el antisuero no absorbido de modo que den fuertes reacciones de aglutinación con las cepas correspondientes. Estos antisueros polivalentes sirven para guiar el diagnóstico, pero la identificación del grupo sólo puede realizarse con los antisueros monovalentes somáticos (O ó Vi) adicionales.

El serotipo de las Salmonella tambien se determina con el uso de antisueros polivalentes flagelares (H) en test de aglutinación, al contener éstos los anticuerpos contra antígenos flagelares asociados con el grupo somático del aislamiento. Los antisueros monovalentes flagelares (H) se utilizan para establecer la fórmula antigénica del aislamiento.

OTROS DATOS

Todos estos antisueros se fabrican en conejos, de acuerdo con la WHO (World Health Organization) utilizando cultivos específicos de referencia y absorbidos por otros cultivos heteroespecíficos, para eliminar anticuerpos que reaccionan con antígenos homólogos.

El principio utilizado es la mezcla del microorganismo sospechoso con el antisuero que contiene aglutininas específicas de Salmonella. Las bacterias aglutinarán («CLUMPING») en presencia del antisuero homólogo y no aglutinarán en presencia de otros antisueros heterólogos.

Los antisueros contienen 0,01% de thiomerosal como conservante y se comercializan en goteros de 2 ó 3 ml listos para su empleo.

La estabilidad es de hasta cerca de dos años desde fabricación, y viene marcada en cada gotero. Éste debe mantenerse bien cerrado, al abrigo de la luz y a 2-5°C. Si se enturbia es porque algunos microorganismos han sido capaces de crecer con los antígenos como fuente de alimentación y en presencia del conservante. En tal inusual caso, filtrar de forma aséptica por 0,2 µm para recuperar la esterilidad y controlar la eficacia con cepas de referencia.

Más de 100 referencias disponibles (ver catálogo actualizado de precios MICROKIT)

MATERIAL NECESARIO NO SUMINISTRADO

Portaobjetos de vidrio desengrasados
Pipetas
Solución Salina (0,85% ClNa en agua) (FPL112)
Tubos
Asas de siembra de plástico o palillos de madera
Cepas de referencia CRIOSTRAINS, de trabajo o cuantitativas para validar los reactivos una vez llegados a fábrica o tras almacenamientos prolongados o inadecuados.
Participación en servicios intercomparativos como SEILA para validar los procedimientos y los operarios.

PREPARACION DE LAS MUESTRAS

Las colonias aisladas en medios selectivos o diferenciales para Enterobacterias, que tengan las características típicas de Salmonella se clasifican clásicamente con screening de pruebas bioquímicas. Si los antisueros que se van a usar son flagelares (H) es mejor partir de medios no agarizados, donde las bacterias hayan desarrollado mejor sus flagelos.

MODO DE EMPLEO Y LECTURA DE RESULTADOS

A-Identificación de antígenos somáticos O y Vi en porta

1- Añada dos gotas separadas de solución salina en un portaobjetos de vidrio bien limpio.

2- Mezcle con un palillo o asa, sendas colonias de no más de 24 horas, para obtener una suspensión homogénea en cada gota.

3- Añada una gota de antisuero cerca de una de las suspensiones, sin tocarla para no contaminar el gotero. En la otra suspensión añada una gota de solución salina, que servirá como control negativo.

4- Mezcle la primera suspensión con la gota de antisuero, mediante un palillo.

5- Agite en forma de vaivén el porta durante 1 minuto. Se consideran positivos los resultados cuando se forman, bajo condiciones normales de buena luz, gránulos en la gota con antisuero y no se forman en la gota control.

B-Identificación de antígenos flagelares H en porta

El procedimiento es el mismo que en el caso anterior, con la única salvedad de que se utilizará como muestra la fase líquida de un medio semisólido o de un agar inclinado. Si se usa a partir de un medio líquido, no hay necesidad de utilizar solución salina.

C-Identificación de antígenos somáticos (O), Vi y flagelares (H) en tubo

1- Prepare una suspensión densa de la bacteria en solución salina. Hervir 10 minutos para la identificación con antisueros O o Vi. Prepare caldos de cultivo para la identificación de antígenos H añadiendo 0,5% de formol en solución salina, y diluya hasta alcanzar una concentración ligera, alrededor de 10 E9 bacterias/ml.

2- Antes de usar, diluya los antisueros en solución salina a razón 1:5.

3- Añada una o dos gotas de solución salina en un tubo de vidrio y otro tanto del suero diluido en otro tubo. Los tubos serán de fondo redondo, de 9 x 85 mm aproximadamente.

4- Añada el mismo volumen de la suspensión bacteriana a cada uno de los dos tubos.

5- Incubar en un baño de agua a 51°C durante 2 horas, en el caso de identificación flagelar, y durante 5-8 horas en el caso de identificación somática o del antígeno Vi.

6- Observar la aglutinación en los tubos, contra un fondo negro y bajo luz intensa. Los precipitados o aclaramientos del líquido no son positivos. Considerar positiva sólo la aparición de gránulos

7- Remitirse al esquema de Kauffman-White (1.966, The bacetriology of Enterobacteriaceae. The Williams & Wilkins Co., Baltimore) para identificar el serotipo.

LIMITACIONES Y PRECAUCIONES

1- La muestra puede contener microorganismos patógenos y debe manejarse como material potencialmente infeccioso.

2- Un control salino debe ser incluido en cada prueba para asegurar la especificidad de la reacción.

3- Ciertas cepas sufren autoaglutinación en el test de porta. Estos falsos positivos suelen aglutinar en el control de solución salina.

4- Se recomienda chequear la correcta actividad del antisuero con cepas control de referencia, de estructura antigénica conocida.

NOTAS SOBRE LOS ANTISUEROS DE VIBRIO

El antisuero polivalente se usará en test en porta, los monovalentes se pueden usar, además, en test en tubo, aunque en porta dan menos reacciones cruzadas entre ambos. No se pueden distinguir las variedades El Tor de otros Vibrio cholerae. El conservante utilizado es 0,5% de fenol.

https://www.microkit.es/fichas/ANTISUEROS-para-ANTIGENOS-COLONIALES.pdf

https://www.microkit.es/fichas/Antisueros-Salmonella-tablas.pdf