Archivo de la categoría: KITS DE ANÁLISIS MICROBIOLÓGICO

Kits para análisis microbiológicos (ISO 17381)

CEPAS CUANTITATIVAS EN LENTÍCULAS

CEPAS EN LENTÍCULAS CUANTITATIVAS

CEPAS CUANTITATIVAS EN LENTÍCULAS: siga la Norma ISO 11133-2 de Control de calidad de medios de cultivo, realice sus validaciones y sus Challenge Test, gracias a las diferentes concentraciones de estas cepas cuantitativas.

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Las lentículas cuantitativas de MICROKIT contienen cantidades precisas de cepas microbianas (de colección o salvajes-nativas-in house), cantidades que se indican (exactitud y precisión del lote) en su certificado de control de calidad. Y todo ello en 2 (y a veces hasta 3) medios de cultivo diferentes (TSA o SDA como medio general y el medio selectivo o cromogénico más usado para la cepa en cuestión). En el mismo certificado aparece la trazabilidad y el pase desde la cepa TIPO (1, 2 ó 3), el color de las lentículas del lote y otros muchos datos de interés sobre la cepa.

Empleamos la nomenclatura de la ISO 11133-2: WDCM (colección Universal).

La caducidad

de estas cepas desde fabricación es excepcionalmente larga (2 años en casi todas ellas), lo cual hemos conseguido gracias al proceso de fabricación, que no las estresa como sucede con las cepas liofilizadas. Excepto en 2 cepas que solo tienen 1 año de caducidad, si se acerca la caducidad del lote (< 6 meses) y aun no hemos elaborado otro más reciente, le regalamos el 50% del valor en la misma cepa.

Vendemos docenas a precio de decena, para que las dos sobrantes las invierta en controlar con qué concentración han llegado a sus instalaciones, para que si hubiera variado significativamente con respecto a la concentración que certificamos, pueda calcular y aplicar su propio factor de corrección.

El espacio que ocupan

en el congelador de la nevera es ínfimo: cada lentícula está dentro de un tubito Eppendorf con silicagel, los 12 tubitos dentro de un tubo hermético con tapón de silicagel, y éste en sobrecito Faraday de aluminio de sólo 12 x 18 cm. Así, con este minimalismo en su packaging, en un cajón de congelador normal de nevera caben perfectamente hasta 100 cepas diferentes.

Ofrecemos la gama completa

que necesitará para seguir la Norma ISO 11133-2 (si no encuentra la cepa que busca, la podemos fabricar).

Tambien fabricamos lotes especialmente para algunos clientes que necesitan lentículas especiales para sus intercomparativos; así como cuantificadas a partir de sus microorganismos aislados de monitorización ambiental para realizar el test de promoción de crecimiento tal y como se indica en el Anexo 1 de fabricación de medicamentos estériles de las NCF.

Podemos fabricar a tres rangos: BAJO (aprox 1.000 ufc/lentícula, diluyéndola en 10 mL obtendremos 10 inóculos de <100 ufc/mL), MEDIO (>1.000 Y < 100.000 ufc/lentícula) y ALTO (>100.000 y <100.000.000 ufc/lentícula, para Challenge test y validaciones donde se emplean muchos inóculos en un mismo día de trabajo)

CEPAS CUANTITATIVAS EN LENTÍCULAS

https://youtu.be/4WJ8FQl6GIE

 

SEILASESORIA – VALIDACIÓN (Servicio de consultoría práctica con validación in situ)

SEILASESORIA – VALIDACIÓN (Servicio de consultoría práctica con validación in situ)

SEILASESORIA – VALIDACIÓN, CURSO de Formación que incluye la validación in situ del parámetro microbiológico que desee, por el método de pares

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Hay clientes, auditores e inspectores que le exigirán la validación de cualquier método, kit o medio de cultivo alternativo que emplee, AUNQUE YA ESTÉ VALIDADO por su diseñador y fabricante.

Esto implica realizar un experimento con un número concreto de muestras previamente contaminadas con los microorganismos diana, interferentes y acompañantes. En su propio laboratorio. Realizado por sus propios analistas. Comparando el método, kit o medio nuevo con el clásico universalmente aceptado. Y también implica aplicar estadística para evaluar parámetros muy concretos:

-En métodos cualitativos (detección o presencia/ausencia): sensibilidad, especificidad, eficacia, límite de detección, conformidad, concordancia…

-En métodos cuantitativos (recuentos): Límites de cuantificación o rango, Exactitud, Precisión, Linealidad, Inclusividad, Exclusividad, Robustez del parámetro, Incertidumbre de las medidas…

Nadie nos ha enseñado , ni en la carrera ni en masters o cursos posteriores, a validar correctamente.

Microkit lleva 3 décadas validando sus diseños (kits, medios y procedimientos) y por ello es de las únicas entidades que encontrará, capacitadas para impartir estos cursos prácticos, en los que además de formarse, tendrá validado el parámetro que elija, sea cualitativo, sea cuantitativo.

Es importante no confundir una validación microbiológica con una validación química, ya que no se parecen en nada, de modo que intentar realizar una validación microbiológica desde el punto de vista químico, con herramientas y mentalidad química, como propone la Norma ISO 16140, es perder el tiempo y el dinero.

Nuestros cursos de formación (iniciación, auditorías de optimización y validaciones) están avalados en el alcance de nuestro certificado ISO 9001 desde 1999.

En MICROKIT le ayudamos a demostrar, con pruebas estadísticamente significativas y con limites de aceptabilidad bien claros y argumentados, si el método que desea emplear o seguir empleando es válido porque detecta o enumera adecuadamente:

1-Diseñamos el experimento

2-Nos desplazamos a guiarle durante el mismo en una jornada completa de trabajo

3-Elaboramos el informe completo de hasta 40 páginas con los resultados del experimento, en el que se refleja todo lo indicado y las conclusiones absolutas.

4-Le enviamos un diploma externo que avala su participación en la validación

No lo piense más, contrátenos este servicio: sus análisis no tienen  por qué volver a ser sometidos a técnicas del siglo pasado. Avance con el I+D de sus proveedores de kits, medios y procedimientos.

http://SEILASESORIA-Validaciones-in-situ.pdf

EL METODO P/A (PRESENCIA/AUSENCIA) PARA ANALISIS DE AGUAS:  KITS PREPARADOS Y CONVERSIÓN A RECUENTO NMP

EL MÉTODO P/A (PRESENCIA AUSENCIA) Y RECUENTO NMP MEDIANTE LOS KITS P/A DE MICROKIT PARA TODOS LOS PARÁMETROS. NMP-RACKS

1- POTABILIDAD MICROBIOLOGICA DE LAS AGUAS MEDIANTE EL METODO DE PRESENCIA/AUSENCIA (Kits preparados sin necesidad de Filtración de Membrana ni de Número Más Probable)

Extraído de la Directiva Europea sobre aguas de consumo humano, (obligada desde el 3/XI/2001, y sobre todo desde su transcripción a B.O.E. 45 de fecha 21/2/2003).

Esta Normativa, además de afectar a las aguas potables y envasadas, también afecta a todas las aguas de uso en industrias alimentarias, para producción, lavado, etc.:

TIPO DE ANÁLISIS  PARÁMETRO                      NIVEL GUIA KIT P/A MICROKIT

Desde la publicación de estos datos, la técnica MPN para controlar la potabilidad de aguas queda obsoleta, quedando relegada sólo a recuento en productos no filtrables;

en efecto, al hablar la legislación de ausencia en 100 ml no se puede utilizar la técnica de MPN y extrapolar resultados a partir de una muestra significativamente inferior (33 ml) a los 100 ml requeridos.

Los recuentos en 100 ml pueden realizarse con la técnica de MF, pero en el caso que nos ocupa podemos utilizar las MPN-RACKS (Ref: 1001020) para convertir cualquier kit P/A en Número Más Probable.

Por todo ello surge con fuerza la nueva técnica de Presencia /Ausencia (P/A), útil tanto para trabajo de campo como para Laboratorio, cuando lo que se precisa no es recuento, sino detección de un microorganismo en grandes muestras.

Todos los kits P/A de MICROKIT en frascos preparados incorporan inactivadores de la eventual presencia de cloro en el agua, que actuaría como bacteriostático y enmascararía los resultados como falsos negativos.

El método P/A es mucho más sensible (tienen muchos menos falsos negativos) que el método MF, pero es menos específico (tienen más falsos positivos).

Por ello es tan útil como screening negativo, para poder procesar un gran número de muestras.

Si el kit da negativo, el resultado es negativo y no hace falta hacer nada más.

Y si el kit sale positivo, hay que confirmar esa muestra estriando en placa e identificando colonias aisladas.

Nuestros kits están validados para uso en aguas continentales, no marinas ni salinas.

NOTA: Para analizar agua de mar, se debe diluir ésta a razón 1:10 en agua destilada estéril, ya que la salinidad del mar (3,7-4,5%) sería excesiva para los kits.

Todos nuestros kits P/A permiten ahorrar 4-8 horas de incubación si, antes de inocularlos, se precalienta a 37°C la muestra de agua en un baño María.

 

EL MÉTODO P/A (PRESENCIA AUSENCIA) Y RECUENTO NMP MEDIANTE LOS KITS P/A DE MICROKIT PARA TODOS LOS PARÁMETROS. NMP-RACKS

1-A  KIT P/A DE DETECCION DE COLIFORMES (TOTALES Y/O FECALES) Y E.COLI EN 100 ml DE AGUA (Caldo MICROKIT® P/A MCC-COLICULT ® Cromofluorogénico) Referencia: RPL303

La legislación española (BOE 21/2/03) exige la ausencia de E.coli y de Coliformes totales en 100 ml de agua de consumo humano (la clásica potable y además la de uso en industria alimentaria).

Las dos posibilidades contempladas hasta ahora para este análisis (Número Más Probable ‑NMP‑ y Filtración de Membrana ‑FM‑) eran tediosas en su manipulación (9 tubos la primera, aparato de filtración la segunda)

y los resultados obtenidos en Coliformes implicaban un alto porcentaje de resultados falsamente negativos (18 % en el primer caso y 36 % en el segundo

según JACOBS & Co., Mayo ’86, Comparison of Membrane Filter, Multiple Fermentation Tube and Presence/Absense (P/A) Techniques for detecting Total Coliforms in Small Community Water Systems, App. Env. Microbiol., Vol. 51, n.º 5, pp. 1007-1012).

Con el nuevo método de Presencia/Ausencia, que ya es oficial en U.S.A., el porcentaje de falsos negativos se reduce considerablemente,

ya que la muestra es de 100 ml (muy superior que en la técnica NMP) y las bacterias no sufren como en la técnica de FM.

Además de su mayor sensibilidad, el método P/A es el más cómodo de inocular y el más simple de interpretar.

Cada vez son más los autores que coinciden en que no hay mejor parámetro indicador de la contaminación fecal de las aguas que la especie Escherichia coli.

Efectivamente, las enterobacterias son un grupo demasiado extenso que contiene muchos representantes naturales en las aguas, que no indican contaminación fecal.

Y los coliformes también cuentan con especies naturales en las aguas, además de ser un grupo artificial (hay especies como el mismo E. coli con cepas que son coliformes y con cepas que al no producir gas al fermentar la lactosa, ni tener galactosidasa, no son coliformes).

Su división en coliformes totales y coliformes fecales (parámetro éste más selectivo) no resolvía  totalmente el problema.

Por ello el kit de Coliformes y E. coli P/A resulta de gran interés para análisis de potabilidad como parámetro más estricto que el descrito en la legislación anterior a Febrero de 2003,

y cumple perfectamente con la nueva legislación, al haberse validado en ensayos intercolaborativos y en el intercomparativo SEILAGUA, realizados en España durante 1999-2003,

donde demuestra un 10% más de sensibilidad (escasez de falsos negativos) que el método MF para el parámetro E.coli.

El kit se basa en la moderna y reconocida técnica del MUG, o fluorescencia indicadora de E. coli.

Se incuba a 35 ó 44,5 ºC (según se busquen, además de E. coli, coliformes totales o fecales, respectivamente) durante sólo 24 (-48) horas.

Y del X-Gal que hace que los coliformes viren el agua a azul turquesa a aprtir de la fermentación del sorbitol, con lo cual no se escapan los coliformes lactosa negativos.

Haya o no coliformes (hay cepas de E. coli que no fermentan la lactosa ni el sorbitol ni, por tanto, pueden considerarse coliformes strictu sensu), observar en la oscuridad completa con luz U.V.A. de 366 nm (linterna MICROKIT).

Si aparece fluorescencia azul claro (comparar con un control positivo -kit inoculado con cepa de E. coli– y con un control negativo -kit inoculado con agua estéril-), añadir  1 ml de reactivo de Indol Kovacs (MICROKIT SBH056).

Si tras unos segundos aparece en superficie un anillo de color rojo-cereza, la presencia de E. coli es absolutamente confirmativa, por lo que no son necesarias identificaciones posteriores.

Como control positivo puede utilizarse la cepa E. coli en cómodas lentículas de MICROKIT.

Recomendamos asimismo la participación en servicios intercomparativos como SEILAGUAS FARMACOSMÉTICAS, para validar los procedimientos y los operarios.

MODO DE EMPLEO

  1. Añadir 100 ml de agua de muestra abriendo el tapón o bien pinchando en el obturador.
  2. Cerrar el tapón sin apretar a fondo (para que escape el exceso de gas que se pueda generar).
  3. Agitar para mezclar.
  4. Incubar en posición vertical a 35 ºC  0,5 durante 24‑48 horas.
  5. Si se buscan específicamente Coliformes fecales, incubar a 44,5 ºC (aunque si no había Coliformes totales, lógicamente tampoco habrá Coliformes fecales).

INTERPRETACION DE RESULTADOS

Observar la producción de turbidez (crecimiento bacteriano inespecífico),

el viraje del medio incoloro a azul (reacción positiva ONPG-XGal, típica de los coliformes)

y la fluorescencia en la oscuridad con luz ultravioleta de 366 nm (reacción positiva del MUG, típica de E.coli).

En este último caso añadir unas gotas de Kovacs (SBH056) directamente, para confirmar E.coli (formación de anillo rojo) con la prueba del indol.

PRESENTACION

Cajas con 10 frascos. Caducidad desde fabricación: 1 año.

Conservar entre 4 y 25 ºC, en la oscuridad.

Este kit sustituye, desde principios de 1998, al antiguo RPL303 de Coliformes + E.coli con campana Durham y al antiguo RPL300 de Coliformes totales + Coliformes Fecales con campana Durham.

Validación: Realizada durante 7 años de intercomparación de 70 laboratorios de toda España en más de 700 muestras duplicadas.

Se demuestra comparado con filtración de membrana en el medio oficial (Tergitol Chapman TTC Agar), una sensibilidad del 100% frente al 97,7% del método oficial para coliformes, así como una sensibilidad del 100% para E.coli frente al 95,65% del método oficial.

Una especificidad del 100% para coliformes frente al 94,25% del método oficial y del 100% para E.coli frente al 94,57% del método oficial.

Y un límite de detección de hasta 3±2 ufc/100 ml frente a 5±2 ufc/100 ml del método oficial.

Si analiza muchas muestras al día, vea las versiones viales P/A y Botes P/A.

 

EL MÉTODO P/A (PRESENCIA AUSENCIA) Y RECUENTO NMP MEDIANTE LOS KITS P/A DE MICROKIT PARA TODOS LOS PARÁMETROS. NMP-RACKS

1-B  KIT AUXILIAR PARA RECUENTO TOTAL EN 1 ml DE AGUA: TUBOS NUTRIENT AGAR TTC + PLACAS Petri (Agar Nutritivo TTC, Agar Común TTC)                   Referencia: RPL305

Según el B.O.E. 226 de 20/09/90, en un agua potable no han de aparecer más de 10 bacterias aerobias por mililitro (incubando a 37 ºC) ni más de 100 bacterias aerobias por mililitro (incubado a 22 ºC).

El recuento en 1 ml puede realizarse con la técnica MF (MICROKIT UFM006, UFM012), pero resulta más lógico utilizar la técnica tradicional como en alimentos,

dado que la técnica MF encuentra sus ventajas cuando el tamaño de la muestra es muy superior a 1 ml (de hecho, si se utiliza MF para 1 ml hay que añadir al menos 25 ml de Agua Peptonada estéril para que la filtración sea homogénea en toda la membrana).

Con el Kit que presentamos, Ud. ya no necesita autoclavar medios deshidratados, ni realizar recuentos aproximados.

El medio esta estéril y listo para su empleo, y el recuento es exacto.

Las colonias crecen rojas sobre el medio, blanquecino. No hace falta tratar la muestra contra el cloro, el medio ya incorpora Tiosulfato Sódico.

La caducidad de 2 años, permite mantener un stock sin riesgo de echar a perder reactivos, ventaja importante sobre las placas preparadas.

Para seguir más estrictamente el BOE 21/2/2003 (ISO 6222) usar tubos de Yeast Extract Agar (TPL060).

MODO DE EMPLEO E INTERPRETACION DE RESULTADOS

  1. Fundir 2 tubos al Baño María (98 ºC aproximadamente). No sobrecalentar o el medio virará a rosa-rojo.
  2. Añadir 1 ml de agua de muestra en una placa Petri estéril. Duplicar la operación.
  3. Trabajar junto a la llama de un mechero para conseguir unas condiciones asépticas en el ambiente.
  4. Verter el contenido de un tubo (atemperado hasta que no queme la mano), a una de las placas con muestra. Duplicar la operación en la otra placa con muestra.
  5. Cerrar las placas y hacerlas girar 10 veces en cada sentido para mezclar la muestra con el medio. Dejar solidificar.
  6. Incubar las placas con el agar arriba, una a 37 ºC durante 24 horas y otra a 22 ºC durante 72 horas.
  7. Contar todas las colonias, que habrán virado a rojo, contrastando estupendamente con el medio de cultivo y haciendo el recuento sumamente fácil.
  8. No deben aparecer más de 10 colonias en la primera placa, ni más de 100 en la segunda.

PRESENTACION

Kits de 40 tubos + 40 placas para 20 análisis dobles de recuento total en 1 ml de agua. Caducidad desde fabricación: 1 año. Conservar entre 2 y 25 ºC, en la oscuridad.

Como control positivo puede utilizarse una cepa de E.coli (CRIOSTRAIN MKTA 25922) o de

Como control positivo puede utilizarse la cepa E. coli, de Pseudomonas aeruginosa y/o de Enterococcus faecalis en cómodas lentículas de MICROKIT.

Recomendamos asimismo la participación en servicios intercomparativos como SEILAGUAS FARMACOSMÉTICAS, para validar los procedimientos y los operarios.

Material necesario no incluido: Estufa a 35-37 ºC (VRP001), Pipetas estériles 1 ml (VFR273), Zona aséptica:

Si no dispone de cabina de flujo laminar, puede usar el Portabunsen de MICROKIT.

NOTA: Desde la creación de las DryPlates®-TC-Water,

estas plaquitas resultan mucho más adecuadas para recuento total en 1 ml de agua porque absorben directamente el ml de muestra de agua sin necesidad de fundir medios como sucede en el método clásico, incluido el kit mencionado arriba.

Los resultados de la validación para aguas no pueden ser más alentadores y demuestran que la siembra por fusión en masa de agares calientes es un punto crítico más importante de lo que se cree.

Nos remitimos al folleto de las DryPlates®-TC y al certificado de validación intercolaborativa de Microkit sobre las mismas.

 

EL MÉTODO P/A (PRESENCIA AUSENCIA) Y RECUENTO NMP MEDIANTE LOS KITS P/A DE MICROKIT PARA TODOS LOS PARÁMETROS. NMP-RACKS

1-C KIT P/A PARA LA DETECCION DE ENTEROCOCOS FECALES GRUPO D DE LANCEFIELD EN 100 ml DE AGUA (ENTEROCULT MICROKIT® P/A modificado) Ref: RPL301

Bilis Aesculina Azida (BEA) es un medio ISO para detección de enterococos fecales en muestras de aguas.

Aplicado a la concentración adecuada, y con ciertas modificaciones (pasarlo de agar a caldo), permite la utilización en kits P/A.

MODO DE EMPLEO

  1. Añadir 100 ml del agua de muestra.
  2. Cerrar sin apretar a fondo.
  3. Agitar para mezclar.
  4. Incubar a 37 ºC (41°C) durante 24‑48 horas.

Como control positivo puede utilizarse la cepa Enterococcus faecalis en cómodas lentículas de MICROKIT.

Recomendamos asimismo la participación en servicios intercomparativos como SEILAGUAS FARMACOSMÉTICAS, para validar los procedimientos y los operarios.

INTERPRETAClON DE RESULTADOS

La aparición de turbidez con ennegrecimiento indica que la muestra tiene estreptococos fecales, sobre todo si el medio pierde su fluorescencia natural bajo luz de 366 nm (linterna MICROKIT). Además se vuelve opaco.

PRESENTACION: Cajas con 10 frascos. Caducidad desde fabricación: 1 año.

Conservar entre 2 y 25 ºC, en la oscuridad.

Validación: Realizada durante 7 años de intercomparación de 70 laboratorios de toda España en más de 700 muestras duplicadas.

Se demuestra comparado con filtración de membrana en el medio oficial para enterococos fecales (Slanetz-Bartley Agar + Bilis Esculina Azida Agar), una sensibilidad del 100% frente al 95,6%  del método oficial.

Una especificidad del 100%  frente al 61,0% del método oficial.

Y un límite de detección coincidente en ambos métodos.

Si analiza muchas muestras al día, vea las versiones viales P/A y Botes P/A.

 

EL MÉTODO P/A (PRESENCIA AUSENCIA) Y RECUENTO NMP MEDIANTE LOS KITS P/A DE MICROKIT PARA TODOS LOS PARÁMETROS. NMP-RACKS

1-D KIT AUXILIAR PARA RECUENTO DE CLOSTRIDIOS SULFITO REDUCTORES EN 20‑50 ml DE AGUA (Agar SPS parafinado modificado concentrado)                   Referencia: RPL062

Los anaerobios no crecen muy bien con el método de Filtración de Membrana (MICROKIT UFM014, UFM011) y el método P/A no es válido en muchas legislaciones, que admiten 1 UFC de Clostridio Sulfito-Reductor en 20-50 ml de agua.

Por ello, hemos diseñado un kit especialmente preparado para poder realizar recuento y P/A en muestras de gran volumen (hasta 50 ml).

MODO DE EMPLEO E INTERPRETACION DE RESULTADOS:

  1. Fundir al Baño María a 98 ºC.
  2. Inocular en profundidad, mediante una pipeta caliente, los 20-50 ml de agua de muestra calentada a 75 ºC (si la parafina solidifica antes de sacar la pipeta, recalentar el conjunto a 75 ºC durante el mínimo tiempo necesario para que la parafina vuelva a licuar).
  3. El shock térmico elimina las formas vegetativas y activa la germinación de las esporas.
  4. Voltear sin agitar para mezclar sin airear el medio, una sola vez.
  5. Incubar a 35‑37 ºC durante 24‑48 horas.

PRESENTACION: Cajas con 10 frascos. Caducidad desde fabricación: 1 año.

Como todos los kits para anaerobios, NO debe guardarse en nevera, para impedir que el medio se oxigene con el frío.

Conservar a 21-25 ºC, en la oscuridad.

Como control positivo puede utilizarse la cepa Clostridium perfringens en cómodas lentículas de MICROKIT.

Recomendamos asimismo la participación en servicios intercomparativos como SEILAGUAS FARMACOSMÉTICAS, para validar los procedimientos y los operarios.

NUEVO KIT:

Emplee Quanti-P/A Clostricult para detección y recuento de Clostridium perfringens con TSC (o bien de Clostridium sulfito redutores con SPS) y sus esporas, sin neesidad de alentar medios.

 

EL MÉTODO P/A (PRESENCIA AUSENCIA) Y RECUENTO NMP MEDIANTE LOS KITS P/A DE MICROKIT PARA TODOS LOS PARÁMETROS. NMP-RACKS

1-E KIT PARA P/A DE CLOSTRIDIUM PERFRINGENS Y SUS ESPORAS CLOSTRICULT MICROKIT® P/A Referencia: RPL 308

Elaborado a partir de caldo TSC (CLOSTRICULT-2) para adaptarse a las optimizaciones observadas mediante los servicios SEILAGUA®, desde Octubre de 2005, se optimiza de nuevo en Mayo 2007 para facilitar la anaerobiosis con más agentes reductores y con parafina líquida.

Añadir 100 ml de agua de muestra, dejando una cámara de aire de 5 cm de altura.

Cerrar el tapón sin apretar a fondo.

Voltear sin agitar, para mezclar sin oxigenar.

Incubar a (37 ºC) 44-46 ºC durante 18-48-(72) horas.

Si busca sólo esporas, realizar un shock térmico de 5-10 minutos a 86 ºC.

El viraje a negro (que suele expandirse de abajo arriba) a 44-46 ºC indica presencia de Clostridium perfringens (o de sus esporas si se realizó shock térmico).

El viraje a negro a 37 ºC indica sólamente presencia de Clostridios sulfito-reductores (o de sus esporas si se realizó shock térmico).

Como control positivo puede utilizarse la cepa Clostridium perfringens en cómodas lentículas de MICROKIT.

Recomendamos asimismo la participación en servicios intercomparativos como SEILAGUAS FARMACOSMÉTICAS, para validar los procedimientos y los operarios.

El usuario final es el único responsable de la destrucción de los microorganismos que se hayan multiplicado en el interior de cada tubo o frasco, de acuerdo con la legislación medioambiental vigente.

Añada cloro o lejía hasta el borde con cuidado de no tocar ni derramar el cultivo (si al abrir los botes sale gas a presión o líquido, lavar bien las manos con agua corriente y jabón), o bien autoclavar, antes de desechar a la basura.

Validación: Realizada durante 7 años de intercomparación de 70 laboratorios de toda España en más de 700 muestras duplicadas.

Se demuestra comparado con filtración de membrana en el medio oficial para Clostridium perfringens y sus esporas (mCP Agar y también frente a TSC Agar), una sensibilidad del 77,3 % frente al 14,33%  del método oficial y al 56,0% del TSC.

Una especificidad del 100%  frente al 100% del método oficial y del 95,8% del TSC.

Y un límite de detección de 3 a 10 veces más cercano a 1 ufc/100 ml que el método oficial: 2±1 ufc/100 ml con un 85% de detecciones frente a 8±7 ufc/100 ml en TSC Agar con sólo un 40% de detecciones.

Si analiza muchas muestras al día, vea las versiones viales P/A y Botes P/A de polvo estéril.

 

2- EL METODO MICROKIT® P/A PARA OTROS PARAMETROS (Kits preparados sin necesidad de Filtración de Membrana ni de número Más Probable)

Además del parámetro de POTABILIDAD en las aguas, existen otros de gran importancia en la industria y medio ambiente.

Presentamos los kits P/A diseñados especialmente para todos ellos.

Todos cuentan con 1 año de caducidad desde fabricación en frascos preparados, se presentan en cajas de 10 unidades e incorporan inactivadores de la eventual presencia de cloro en el agua.

Si analiza muchas muestras al día, vea las versiones viales P/A y Botes P/A de polvo estéril.

Se almacenan entre 2 y 25 ºC al abrigo de la luz.

El modo de empleo también es común a todos ellos: Añadir hasta 100 ml del agua o del líquido de muestra, agitar e incubar.

Se describen a continuación la utilidad, las condiciones de incubación y la interpretación de resultados de todos ellos:

 

EL MÉTODO P/A (PRESENCIA AUSENCIA) Y RECUENTO NMP MEDIANTE LOS KITS P/A DE MICROKIT PARA TODOS LOS PARÁMETROS. NMP-RACKS

2-A  MICROKIT® P/A PARA LA DETECCION DE PSEUDOMONAS sp. (Y AEROMONAS / PLESIOMONAS) EN 100 ml DE AGUA (Caldo GSP modificado)      Referencia: RPL309

La presencia de estos microorganismos es indicadora de infiltración de aguas naturales, residuales o no, y puede provocar la formación de limos obstructores de circuitos.

En ciertos países, como Holanda, la legislación exige la ausencia de Aeromonas en las aguas potables.

La aparición de Pseudomonas diminuta en aguas filtradas por 0,22 µm implica la rotura de los filtros.

Además distintas especies como Pseudomonas aeruginosa son patógenas para el hombre;

ciertas especies de Aeromonas son patógenos animales muy indeseables en piscifactorías:

y algunas cepas de Aeromonas hydrophila han provocado enfermedad en el hombre;

y Plesiomonas shigelloides provoca en el hombre cuadros gastroenteríticos similares a los de Shigella o Vibrio.

Este kit es útil para análisis de aguas purificadas en laboratorios cercanos al mar, a cauces de ríos y lagos, a pozos…, así como para análisis de aguas de piscinas y playas, aguas de barcos, acuicultura, etc.

El kit se incuba a 30-37 ºC durante 24-72 horas.

El viraje a naranja o amarillo es indicador presuntivo de Aeromonas/Plesiomonas.

El viraje a azulado o violáceo es indicador presuntivo de especies de Pseudomonas.

Cualquier turbidez sin viraje es sospechosa.

Turbidez y/o viraje deben confirmarse sembrando una gota del líquido del kit en la superficie de una placa de GSP Agar (MICROKIT DMT148) e identificando las colonias crecidas (MICROKIT KBH262).

Como control positivo puede utilizarse la cepa Pseudomonas aeruginosa en cómodas lentículas de MICROKIT.

Recomendamos asimismo la participación en servicios intercomparativos como SEILAGUAS FARMACOSMÉTICAS, para validar los procedimientos y los operarios.

 

EL MÉTODO P/A (PRESENCIA AUSENCIA) Y RECUENTO NMP MEDIANTE LOS KITS P/A DE MICROKIT PARA TODOS LOS PARÁMETROS. NMP-RACKS

2-B  MICROKIT® P/A PSEUDOCULT PARA LA DETECCION DE PSEUDOMONAS AERUGINOSA EN 100 ml DE AGUA (Caldo Cetrimida altamente selectivo y muy modificado, con cromógenos)

Referencia: RPL302

Este patógeno debe estar ausente en el agua de cualquier laboratorio, sobre todo si es de una fábrica de medicamentos o productos cosméticos, de aguas envasadas o en quirófanos y uvis en los hospitales.

El frasco se cierra, se pincha en la parte elástica del tapón una aguja provista de filtro y se introduce a incubar en estufa a 37±1ºC de 18 horas a 5 días.

El viraje a rosa en 18-24h, con fluorescencia en 48h bajo luz UVA de 366 nm (linterna MICROKIT VMT050) es altamente presuntivo de Pseudomonas aeruginosa, aunque tras las 48h puede virar a rojo.

El viraje a salmón es presuntivo de Burkholderia cepacia.

Un viraje a rojo intenso, opaco y rápido (24h), puede ser ocasionado por E.coli y, en aguas marinas, por ciertas especies de Aeromonas y de Vibrio.

Debe confirmarse aislando colonias, estriando en Agar Cetrimida (MICROKIT DMT034, PPL011, TPL100, RPL010) e identificando las mismas (MICROKIT 245000).

Como control positivo puede utilizarse la cepa Pseudomonas aeruginosa en cómodas lentículas de MICROKIT.

Recomendamos asimismo la participación en servicios intercomparativos como SEILAGUAS FARMACOSMÉTICAS, para validar los procedimientos y los operarios.

La validación interna del kit demuestra su excelente capacidad de detección, que resulta incluso del 100% de sensibilidad para inóculos de 1-2 ufc de P.aeruginosa/100-250 ml de agua, lo cual es un límite de detección inmejorable.

En 7 años de intercomparación de 70 laboratorios de toda España en más de 700 muestras duplicadas, se demuestra comparado con filtración de membrana en el medio oficial (Cetrimida CN Agar) una sensibilidad y una especificidad del 100% frente al 73,4%  y al 91,3% respectivamente del método oficial,

así como un límite de detección 50 veces más cercano a 1 ufc/100 ml que el método oficial.

Si analiza muchas muestras al día, vea las versiones viales P/A y Botes P/A.

 

EL MÉTODO P/A (PRESENCIA AUSENCIA) Y RECUENTO NMP MEDIANTE LOS KITS P/A DE MICROKIT PARA TODOS LOS PARÁMETROS. NMP-RACKS

2-B-BIS: MICROKIT® P/A PARA LA DETECCION DE BURKHOLDERIA CEPACIA EN 100 ml DE AGUA (Caldo BCPT  selectivo, color anaranjado) Referencia: RPL323

Este oportunista del biofilm del agua se detecta incubando el kit a 35 ºC durante 24 horas.

Sólo B.cepacia es capaz de crecer tan deprisa en este caldo cromogénico, provocando el viraje a rojo tinto.

Como siempre, confirme los positivos estriando en placa de agar selectivo  e identificando las colonias (MICROKIT 245000).

A las 48-72 horas otros microorganismos pueden provocar falsos positivos con virajes tardíos del mismo tono.

Puede conseguir que el kit sea muy selectivo añadiendo a cada frasco 0,14 ml del suplemento SMT301.

Como control positivo puede utilizarse la cepa Burkholderia cepacia en cómodas lentículas de MICROKIT.

Recomendamos asimismo la participación en servicios intercomparativos como SEILAGUAS FARMACOSMÉTICAS, para validar los procedimientos y los operarios.

Si analiza muchas muestras al dia, vea las versiones viales P/A y Botes P/A.

 

EL MÉTODO P/A (PRESENCIA AUSENCIA) Y RECUENTO NMP MEDIANTE LOS KITS P/A DE MICROKIT PARA TODOS LOS PARÁMETROS. NMP-RACKS

2-C  MICROKIT® P/A PARA LA DETECCION DE VIBRIO HALÓFILOS  EN 100 ml DE AGUA (Caldo Alcalino HiperSalino MICROKIT)          Referencia: RPL310P

Las especies Vibrio alginolyticus, Vibrio vulnificus y Vibrio parahaemolyticus pueden producir intoxicaciones alimentarias e infecciones graves en heridas.

Por ello, este kit es muy necesario para análisis de aguas de piscifactorías, ríos, cetareas, viveros, barcos, playas, piscinas y demás aguas naturales.

El kit se incuba antes de que transcurran 8 horas desde la inoculación, a 35 ºC durante 24 horas para los Vibrio halófilos.

El viraje del medio de azul oscuro a azul-verdoso es presuntivo, por lo que debe confirmarse aislando en TCBS Agar (MICROKIT DMT119, PPL048) y Vibrio Saline TSAT ISO 8914 (MICROKIT DMT172).

Las colonias verdes, azules y amarillas en TCBS y rojas en TSAT son de distintas especies patógenas de Vibrio, que se identificarán con kits adecuados (MICROKIT KBH262).

En TSAT, Vibrio parahaemolyticus crece con colonias de 2-3 mm y color rojo oscuro.

Confirmar con TSI Agar: Vibrio parahaemolyticus provoca pico rojo, fondo amarillo, sin ennegrecimiento ni gas.

Vibrio alginolyticus crece con colonias rojas o blancas, pero muy grandes y lobuladas.

Vibrio cholerae y V.vulnificus crecen con colonias incoloras-crema.

 

EL MÉTODO P/A (PRESENCIA AUSENCIA) Y RECUENTO NMP MEDIANTE LOS KITS P/A DE MICROKIT PARA TODOS LOS PARÁMETROS. NMP-RACKS

2-C Bis  MICROKIT® P/A PARA LA DETECCION DE VIBRIO CHOLERAE EN 100 ML DE AGUA (Caldo TCBS modificado) Referencia: RPL312

Vibrio choleare es el agente causal del cólera, desgraciadamente cada vez más extendido en su cepa menos conocida y peligrosa a países desarrollados.

Otras muchas especies de Vibrio son inocuas y muy didácticas.

Este patógeno es frecuente en países tropicales y en la ruta de inmigración de africanos a Francia a través de España.

El  kit se incuba 24 horas a  28 ºC, que es la temperatura ideal para este microorganismo, cuyo hábitat son los peces, de sangre fría. El viraje a amarillo es presuntivo de Vibrio cholerae.

Confirmar en Agar TCBS (DMT119, TPL503) e identificar las colonias con KBH262 y antisueros (ZM05, ZM06, ZM07, BAA001).

El servicio SEILAGUA 2002-2003 demuestra que este kit es infinitamente más sensible (ausencia total de falsos negativos) que el método MF en TCBS Agar (con 100% de falsos negativos!!!).

Sin embargo es poco específico, con frecuentes falsos positivos (por ej. E.coli), de ahi la necesidad de confirmar en placa:

A diferencia de las Enterobacterias, Vibrio cholerae es oxidasa positivo.

Como diferencia de los Coliformes, es lactosa negativo.

A diferencia de otros Vibrio, no crece con >6% (60 g/l) de ClNa.

NUEVO: V.cholerae P/A Cromogénico,

los positivos viran a rojizo (naranja, púrpura, ámbar) en 36h (y hasta en  5 dias para detectar los casos de estress extremo). Referencia: RPL312C

 

EL MÉTODO P/A (PRESENCIA AUSENCIA) Y RECUENTO NMP MEDIANTE LOS KITS P/A DE MICROKIT PARA TODOS LOS PARÁMETROS. NMP-RACKS

2-D  MYCOKIT P/A PARA LA DETECCION DE HONGOS (LEVADURAS Y MOHOS) EN 100 ml DE AGUA (Caldo Rosa Bengala Cloranfenicol modificado)      Referencia: RPL315

Izda: Mohos en superficie y fondo, Dcha: Levaduras enturbiando

Los laboratorios, industrias de refrescos y las aguas naturales pueden verse invadidas por distintas especies de hongos que a menudo son alterativas de las propiedades organolépticas de los productos fabricados.

Por ello, este kit resulta de gran interés en industria alimentaria y cosmética, sobre todo, así como en aguas de baños (hongos dermatofitos), como piscinas, playas, duchas…

Conviene que la muestra de agua sea de la superficie, sobre todo si hay espuma o suciedad, pues es ahí donde se acumulan estos microorganismos y sus esporas.

El kit se incuba a 21-25 ºC durante 3-7 días.

La turbidez demuestra presencia de levaduras, al ser el medio selectivo contra bacterias.

Los fieltros superficiales o floculantes indican presencia de mohos.

Si se desea, se pueden identificar las especies de levaduras (Rapid-Yeast) y de mohos (microscopio y claves MICROKIT).

Como control positivo puede utilizarse la cepa Candida albicans como levadura y Aspergillus niger como moho, en cómodas lentículas de MICROKIT.

Recomendamos asimismo la participación en servicios intercomparativos como SEILAGUAS FARMACOSMÉTICAS, para validar los procedimientos y los operarios.

NUEVO: MYCOKIT P/A Cromogénico,

los positivos viran a verde desde las primeras 48h (y hasta 3 dias para los más lentos). Ref: Viales FPA950 (no se puede elaborar en frascos preparados tomamuestras P/A)

 

EL MÉTODO P/A (PRESENCIA AUSENCIA) Y RECUENTO NMP MEDIANTE LOS KITS P/A DE MICROKIT PARA TODOS LOS PARÁMETROS. NMP-RACKS

2-E  MICROKIT® P/A PARA LA DETECCION DE ESTAFILOCOCOS EN 100 ml DE AGUA (Caldo Mannitol hipersalino muy modificado)      Referencia: RPL320

La presencia de estafilococos en agua es muy frecuente en aguas de baño, que pueden quedar contaminadas por personas portadoras.

Por ello, este kit es necesario para completar el análisis de aguas de piscinas, playas y baño en general, según la legislación actual, además de su interés en Laboratorios Farmacéuticos y cosméticos.

El kit se incuba a 37 ºC durante 24-48 horas.

La turbidez prueba la presencia de estafilococos.

El viraje de rojo a naranja o amarillo es presuntivo de presencia de Staphylococcus aureus, con cepas patógenas del hombre.

Dada la posible presencia de falsos positivos (y a pesar de la adición de numerosos agentes selectivos al caldo Mannitol, que se ha optimizado en Mayo de 2007 mediante la adición de más agentes reductores y parafina líquida, que disminuyen el nivel de falsos positivos de micrococos y otros aerobios halófilos)…

…confirmar estriando en Agar Baird Parker (MICROKIT DMT016, PPL002, TPL125, RPL003, MBN106)

y si aparecen colonias negras con borde blanco y halo, se trata de S. aureus;

o bien en Agar Mannitol (DMT078, TPL066, RPL023, PPL907…) y si aparecen colonias amarillas, se trata de S.aureus.

Confirmar si es cepa patógena con la prueba de la coagulasa (MICROKIT KWD094).

El servicio SEILAGUA 2002-2003 demostró que este kit, incluso antes de su optimización de Mayo de 2007, es sumamente más sensible (ausencia total de falsos negativos) que el método MF en  Baird Parker o en Mannitol Salt Agar (con 29% de falsos negativos!!!).

Sin embargo es poco específico, con frecuentes falsos positivos, de ahi la necesidad de confirmar estriando en placa selectiva.

Como control positivo puede utilizarse la cepa Staphylococcus aureus, en cómodas lentículas de MICROKIT.

Recomendamos asimismo la participación en servicios intercomparativos como SEILAGUAS FARMACOSMÉTICAS, para validar los procedimientos y los operarios.

Validación: En 7 años de intercomparación de 70 laboratorios de toda España en más de 700 muestras duplicadas, se demuestra comparado con filtración de membrana en el medio oficial (Baird Parker Agar y Mannitol Salt Agar)…

…una sensibilidad del 100% frente al 71,0%  y al 60,0% respectivamente del método oficial,

así como una especificidad 96,0% frente al 65,0% y 83,0% respectivamente.

El límite de detección resulta un 70% más cercano a 1 ufc/100 ml que el del método oficial.

 

EL MÉTODO P/A (PRESENCIA AUSENCIA) Y RECUENTO NMP MEDIANTE LOS KITS P/A DE MICROKIT PARA TODOS LOS PARÁMETROS. NMP-RACKS

2-F  FICOKIT (MICROKIT® P/A PARA LA DETECCION DE ALGAS MICROSCOPICAS EN 100 ml DE AGUA) (Caldo Algas Modificado) Referencia: RPL307

Para la detección de todo tipo de algas microscópicas en aguas (Cianofíceas, Clorofíceas, Diatomeas, etc.), desarrollamos FICOKIT, test de presencia / ausencia en 100 ml de muestra.

De gran interés en acuicultura, piscinas, aguas envasadas, aguas naturales, aguas de refrigeración y lavado, etc,

FICOKIT contiene un caldo de cultivo especialmente formulado para microorganismos fotosintéticos en general, a alta concentración, estéril y listo para su uso,

al que se han añadido agentes que aceleran el crecimiento vegetal.

Tomar la muestra de agua (50‑100 ml) rascando las superficies bañadas por la misma y agitando.

Es recomendable que la muestra sea lo más representativa posible, por lo que pueden añadirse pequeños trozos del medio ambiente cercano

y, si el agua de muestra es muy limpia, un filtro enrollado de 0,45 um de poro por el que se hayan filtrado 5 litros o más del agua de muestra.

Pero siempre añadiendo directamente al kit un mínimo de 50 ml de agua, ya que el medio está a alta concentración y un máximo de 100 ml de agua, ya que hay que dejar una cámara de aire.

Incubar junto a una ventana con cortina traslúcida donde no incida directamente la luz del sol,

durante 2‑30 días (los resultados serán siempre más rápidos en primavera, dado el fotoperiodo ideal).

La temperatura ambiente ideal es de 21‑25 ºC.

Sobre todo en lugares poco soleados y en invierno, pueden reproducirse artificialmente estas condiciones…

…con fotoperiodo de 16 horas de luz/8 horas de oscuridad

mediante fluorescentes de menos de 3.200 LUX situados a 4,5 metros de los frascos de FICOKIT.

La aparición de fieltros, mucosidades, filamentos o turbidez con los colores  propios de la fotosíntesis (verde, verde azulado, verde amarillento, rojizo, pardo…), indica presencia de microorganismos fotosintéticos en la muestra.

Estos microorganismos alteran las propiedades organolépticas, producen limos obturadores y en algunos casos (cianobacterias) son tóxicos.

Solicite con su pedido de FICOKIT las claves de microalgas MICROKIT para diferenciar cianofíceas, clorofíceas, diatomeas, etc. al microscopio y poder identificar incluso a nivel de géneros.

Como control positivo puede pedir a MICROKIT la cepa Chlorella vulgaris.

No se pierda nuestro video de Ficokit y Cianokit:

https://www.youtube.com/watch?v=TZYC3ZKcSQM&t=252s

 

EL MÉTODO P/A (PRESENCIA AUSENCIA) Y RECUENTO NMP MEDIANTE LOS KITS P/A DE MICROKIT PARA TODOS LOS PARÁMETROS. NMP-RACKS

2-G  CIANOKIT (MICROKIT® P/A PARA LA DETECCION DE ALGAS CIANOFICEAS O CIANOBACTERIAS Y OTRAS BACTERIAS FOTOSINTETICAS EN 100 ml DE AGUA)    (Caldo Algas con suplemento para cianobacterias)   Referencia: RPL306

De gran interés para acuicultura, piscinas, aguas minerales, aguas estancadas, aguas de abastecimiento, etc., este kit diseñado por MICROKIT, contiene un medio de cultivo especial para cianofíceas, estéril y listo para su uso.

Las cianofíceas/cianobacterias son algas/bacterias muy primitivas que pueden provocar problemas de toxicidad en las aguas donde proliferan.

Oscillatoria erythraea, especie planctónica marina, produce una toxina mortal para los peces, cuando su concentración es elevada, y que intoxica la cadena alimenticia, pudiendo ser mortal para el hombre (enfermedad tropical «ciguatera»).

Lyngbya majuscula puede provocar dermatitis necrótica a los bañistas de playas contaminadas por ella.

En aguas continentales, sobre todo, Aphanizomenon flos-aquae, Anabaena flos-aquae, Schizothrix calcicola, Lyngybya gracilis, Oscillatoria nigroviridis, Calothrix crustacea, Nostoc muscorum, Symploca muscorum, Tolypothrix byssoidea y Microcoleus lyngbyaceus son varias especies que se ha comprobado producen una amplia gama de cianotoxinas.

Anabaena circinalis, Symploca hydroides y algunas especies de Microcystis, provocan dermatitis por simple baño en aguas donde proliferan.

Recientemente Paul R. Hunter (Sept.1995, Cyanobacteria in fresh waters, Microbiology Europe Vol. 3, Nº 5) recopila los ultimos casos de mayor relevancia internacional,

con dolor de cabeza, diarrea, vómitos, conjuntivitis, otitis, fiebre, urticaria, asma…

provocados en personas tras 2-48 horas del contacto

(a veces simple baño, ni siquiera consumo) con aguas donde se ha dado un bloom algal de cianofíceas en Inglaterra.

En cualquier caso, un agua con abundantes cianofíceas jamás debe ser consumida.

Incluso deben cerrarse las aguas con blooms de cianofíceas a las actividades recreativas, pues se han dado casos de neumonía a canoistas que navegaban sobre un bloom algal de Microcystis aeruginosa.

Se establece una clasificación de la polución de las aguas, en función de los grupos de cianocífeas existentes:

En aguas extremadamente polutas, proliferan especies de Spirulina y Anabaena.

En cambio en aguas polutas, proliferan especies de Oscillatoria y Phormidium.

Y en aguas moderadamente polutas, proliferan Anabaena flos-aquae, Aphanizomenon flos-aquae, y diversas especies de Nostoc y Oscillatoria.

Se consideran puras las aguas ricas en especies de la Stigonematácea Hapalosiphon.

En aguas estancadas de verano, sobre todo, las sustancias nitrogenadas se agotan y las cianofíceas, capaces de fijar nitrógeno atmosférico (con heterocistes, sobre todo), libres de competencia, proliferan.

Esto es más frecuente en aguas continentales que en aguas marinas.

Y cada vez más frecuente en aguas europeas, por el aporte fosfatado que proporcionan los vertidos de fertilizantes en agricultura.

Con CIANOKIT puede detectarse la presencia de cianofíceas antes de que sea demasiado tarde.

Con las claves de identificación de géneros de cianobacterias que pueden solicitarse a MICROKIT con sus pedidos de CIANOKIT, puede, además, avanzarse en el pronóstico de la toxicidad del agua.

Las algas acuáticas pueden encontrarse en superficie, flotando como NEUSTON (sus proliferaciones se denominan «flores de agua» y pueden crear anoxia en las aguas inferiores);

o bien en la masa de agua, formando el PLANCTON;

o bien adheridas a superficies y en el fondo, o BENTOS.

A menudo colorean el agua de diversos tonos azulados (cianofíceas),

rojos (dinofíceas-mareas rojas- y cianofíceas),

pardos (diatomeas)

o verde-amarillentos (clorofíceas) cuando se encuentran en grandes concentraciones.

Una buena recolección de muestras, debe incluir los tres tipos de hábitats descritos: El NEUSTON se recoge dejando entrar agua superficial en un bote, sin agitar. Si es visible se toma con pinzas.

El PLANCTON se puede coger con una red de 20-60µm de poro, aunque si su concentración es suficientemente alta, bastará con tomar una muestra de 250 ml en un frasco, entre dos aguas, sin agitar y sin rapidez.

El BENTOS se tomará rascando la superficie sólida con una navaja o pasando un tubo de recolección suavemente por la zona superficial del sedimento.

Sembrar cada tipo de muestra (Neuston, Plancton y Bentos) en un frasco de CIANOKIT.

El Plancton es preferible sembrarlo tras dejar sedimentar el frasco de muestra de 3 a 24 horas, y tomando la muestra del fondo con una pipeta o jeringa.

Dejar una buena cámara de aire (medio frasco). Cerrar. Agitar para mezclar la muestra con el medio de cultivo.

La incubación se realizará junto a una ventana.

En zonas poco soleadas y en invierno, se hará mejor en una habitación con una temperatura de 20ºC,

con fluorescentes de luz blanca fría, situados a 4’5 metros de los frascos (intensidad jamás superior a 3.200 LUX),

con un fotoperiodo de 16 horas de luz/8 horas de oscuridad,

durante 2-30 días.

Nunca se debe dejar que la luz directa del sol incida sobre los frascos, aunque si es indirecta ayudará a acelerar los resultados.

Debe realizarse, al menos, un análisis semanal, para que la prevención sea eficaz.

Las cianofíceas se denominan también «algas azules», pero muchas especies son verdes, rojas, violetas, negras…

Cualquiera de estos colores, desarrollado en el líquido o en las paredes y fondo de CIANOKIT, son indicadores de presencia de cianofíceas,

independientemente del aspecto afieltrado, mucoso, turbio o filamentoso que pueda adquirir.

Debe confirmarse al microscopio, pues otras algas pueden dar lugar a falsos positivos.

Otras bacterias fotosintéticas también pueden proliferar en CIANOKIT, aunque es difícil porque precisan las condiciones anaerobias que consiguen en los sedimentos de los lagos.

NOTA: PARA RECUENTO, UTILICE EL MEDIO DESHIDRATADO O LAS PLAQUIS® HERMETICAS DE CIANAGAR.

Control de calidad positivo:  Pida el mix e cianobacterias de MICROKIT.

https://www.microkit.es/fichas/PRESENCIA-AUSENCIA-KITS-INTRODUCCION.pdf

 

EL MÉTODO P/A (PRESENCIA AUSENCIA) Y RECUENTO NMP MEDIANTE LOS KITS P/A DE MICROKIT PARA TODOS LOS PARÁMETROS. NMP-RACKS

PUEDE CONVERTIR TODOS LOS KITS P/A DE MICROKIT EN RECUENTO NMP GRACIAS A LAS CUBETAS NMP-RACKS  https://www.microkit.es/fichas/MPN-RACK.pdf

El usuario final es el único responsable de la destrucción de los microorganismos que se hayan multiplicado en el interior de cada frasco, de acuerdo con la legislación medioambiental vigente. Añada cloro o lejía hasta el borde, con cuidado de no tocar ni derramar  el cultivo, antes de desechar a la basura. Si al abrir los botes sale gas a presión o líquido y se salpica, lavar las manos con agua corriente y jabón.

¿Necesita asesoría sobre los kits y formatos (frascos, viales o botes) que se adaptan mejor a su caso? consulte en el email consultastecnicas@microkit.es

Si desea más información sobre nuestros KITS P/A, póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es

Haga sus pedidos de kits P/A en pedidos@mirokit.es

https://www.microkit.es/monograficos/21-Monograf–a-M–todos-alternativos-en-Control-microbiol–gico-de-aguas.pdf1

No se pierda nuestro vídeo de los viales P/A:

https://youtu.be/6OfsD7zU_8U

 

LEGIONELLA GVPC, BCYE (con Fe y Cys), BCYE-Cys, (AGAR BASE)

LEGIONELLA GVPC, BCYE (con Fe y Cys), BCYE-Cys, (AGAR BASE)

LEGIONELLA GVPC

Aislamiento selectivo de Legionella por el método MF o por siembra directa

(ISO 11731:2017, ISO 11731-2:2004)

COMPOSICIÓN

Medio BASE:

  • Carbón activado                              2,0 g
  • Extracto de levadura                        10,0 g
  • Agar‑Agar                                        22,0 g
  • Alfa-ketoglutarato (sal  mono-K) *  1,0 g
  • (Fórmula por litro)
  • pH final: 6,9 ± 0,1

GVPC Suplemento Selectivo+Nutritivo estéril en solución 200 ml SBL604

Agite contundentemente y añada en asepsia 40 ml a 500 ml de medio enfriado a 50 ºC (o bien 8 ml a 100 ml de medio).

Puede contener precipitados por su elevada concentración pero desaparecen al diluir en el medio BCYE base. c.s.p. 2’5 l de medio.

Contiene las proporciones precisas, según ISO 11731, de: Tampón ACES, «-Cetoglutarato, KOH, Clorhidrato de L-Cisteina, Pirofosfato férrico, Vancomicina, Cicloheximida, Polimixina y Glicina.

Contiene elementos tóxicos, evitar el contacto con la piel.

NOTA 1: La ref. SBL609 es idéntica al suplemento GVPC (con Fe y Cys) pero sin los tres antibióticos del GVPC selectivo, para elaborar el BCYE (con Fe y Cys).

La ref. SBL605 es idéntica al suplemento GVPC pero sin la Cisteína, para elaborar el BCYE-Cys, aunque éste se puede sustituir por simple TSA.

NOTA 2: EL caldo GVPC para preenriquecimiento revitalizador, es idéntico al Agar GVPC pero sin Agar-Agar y con el carbón granulado (ver kit P/A Legionella en tubos preparados, ref.RPL330).

Ideal para usar antes de la ISO 11731 y encontrar de forma mucho más eficaz la Legionella tras revitalización.

PREPARACIÓN (conversión del medio deshidratado en medio preparado)

Disolver 17 gramos de medio en 500 ml de agua bidestilada.

Calentar hasta hervir para la total disolución.

Autoclavar a 121 ºC, 15 minutos.

El color final del medio es negro.

Enfriar a 45-50 ºC y, para el medio selectivo GVPC, añadir asépticamente 40 ml de Legionella Supplement-200 ml (SBL604, tampón ACES/KOH; nutritivo con α-ketoglutarato, clorhidrato de L-cisteina y pirofosfato férrico;

y selectivo, con Vancomicina, Polimixina, Cicloheximida y Glicina);

para el medio no-selectivo BCYE con Fe y Cys, añadir 40 ml de SBL609 (con Fe y Cys pero sin los antibióticos).

Para el medio BCYE-Cys,  añadir 40 ml de Legionella-Cys Supplement-200 ml (SBL605, tampón ACES/KOH, α-ketoglutarato y pirofosfato férrico), aunque como es para ver que en él no crecen las Legionellas, se puede sustituir por simple TSA, donde tampoco crecen.

Mezclar muy bien y verter 20 ml/placa cuando el medio esté a punto de solidificar, para que la distribución del carbón activo sea lo más homogénea posible.

No sobrecalentar o el agar se volverá demasiado blando: Es posible que sea necesario añadir aún más Agar-agar (BCB006)  para minimizar la friabilidad del agar,  si se va a sembrar con asa (aceptado en ISO 11731).

PARA USO EXCLUSIVO

EN LABORATORIO.

MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO

EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO.

DESHIDRATADO CODIGO: DMT007

CONTROL DE CALIDAD DE LOS MEDIOS GVPC y BCYE + Fe + Cys

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio,

tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

DESHIDRATADO: Polvo, Negro

PREPARADO: Estéril, Negro.

CONTROL DE CRECIMIENTO 2 semanas a 37°C aproximadamente:

Legionella pneumophila MKTN 12821 serogrupo1, Correcto, colonias gris-azuladas, cristalinas, mucosas, en 2-15 días, en medio suplementado GVPC y en BCYE+Fe+Cys.

No crece en medio BCYE-Cys, sin suplemento nutritivo de hierro y cisteína.

En el medio BCYE con suplemento nutritivo pero sin antibióticos, crece aproximadamente el doble de población que en el GVPC.

Con respecto a PCA estandarizado y suplementado,* recuento 126 %, pero de forma selectiva.

Legionella pneumophila serogrupo 2-15, MKTLeg-2, Idem.

Escherichia coli, MKTA 25922 parcialmente inhibido. Con respecto a PCA estandarizado y suplementado,* recuento 27 %.

Micrococcus luteus MKTA 9341, inhibido en el GVPC selectivo.

* El que cumple con recuperación superior al 92-125% con respecto a cepas cuantitativas trazables a la cepa tipo. Incertidumbres detectadas entre todos los lotes a lo largo de un año (la mayoría de la incertidumbre se debe a la cepa y a la proporción de cepas acompañantes inoculadas, no al medio).

PRESENTACION: MEDIO DESHIDRATADO (BCYE BASE) Y SUPL. GVPC / BCYE+Fe+Cys,

KITS P/A caldo revitalizante,

PLAQUIS HERMÉTICAS Y PLACAS MF GVPC,

FRASCOS PREPARADOS 100 ml (BCYE-BASE) + SUPL. GVPC / BCYE+Fe+Cys.

Suplemento selectivo + nutritivo para GVPC (SBL604).

El suplemento sin Cysteina para BCYE-Cys.

Suplemento nutritivo Fe + Cys sin antibióticos para BCYE.

Nuevo: Placa preparada GVPC (con glicina, cisteína, hierro, ACES y antibióticos) pH 6,8 s/ISO 11731:2017 (Ref: PPLM60) y placa preparada BCYE (idem sin antibióticos ni glicina)  pH 6,8 s/ISO 11731:2017 (Ref: PPLM61)

MODO DE EMPLEO E INTERPRETACION DE RESULTADOS

Medio selectivo GVPC:

Inocular  una membrana de filtración de 0’22 µm (VAC022,  no usar de 0,45 µm), o mejor 0´1 ml de un extracto del fondo del tubo tras la centrifugación a 2500 r.p.m., 20′ de una muestra rascada,

o bien 0’1 ml del fondo del caldo de enriquecimiento concentrado (RPL330) sobre una placa.

O aplicar una placa de contacto sobre la superficie, o bien introducirla en un aparato de control de aire.

Preincubar estrictamente 30 minutos a 50 ºC para eliminar flora competitiva acompañante.

Incubar a 35 ºC aproximadamente, en atmósfera húmeda de 2 a 14 días.

Las colonias de Legionella pneumophila son blanco-azuladas, brillantes, mucosas, de 1-2 mm Ø, circulares, lisas, algo elevadas y con los bordes enteros,

fluorescentes (verde mate a menudo teñido de amarillo) en la oscuridad bajo luz UVA (linterna MICROKIT VMT050).

Subcultivar 3 colonias en  BCYE+Fe+Cys  (sin antibióticos)  y en BCYE-Cys (o TSA), al menos 2 días a 36 ± 1°C.

Legionella crece en BCYE (con Fe y Cys) sin antibióticos (y en GVPC), pero no crece en BCYE-Cys (ni en medios generales tipo TSA, agar sangre, PCA, YEA, Nutrient Agar…).

Las colonias deben confirmarse con oxidasa positivo, a menudo lento (KOT050), catalasa positiva (KMT299) y serotipado (M-IDENT-LEGIONELLA-VIRAPID VR002, QUE PUEDE USARSE DIRECTAMENTE EN EL PRIMER AISLAMIENTO DE GVPC Y AHORRARSE ASÍ EL TIEMPO Y COSTE DE LAS OTRAS PLACAS DE BCYE (con Fe y Cys) y BCYE-Cys (o TSA).

Contar sólo la placa de GVPC con más colonias de Legionella pneumophila.

Si no se encuentra, expresar los resultados como “no detectada”, ya que a veces está presente y no crece.

Peligro, microorganismos de alto riesgo para inmunodeprimidos, por inhalación de aerosoles (pero no llega a considerarse de Clase III).

NOTA:

Los otros dos medios mencionados en la ISO 11731:2017 (BCYE con suplementos selectivos: BCYE+AB, Modified Wadowsky Yee: MWY) son alternativos, no son necesarios.

Esta nueva versión 2017 de la Norma describe la fluorescencia de otras especies de Legionella:

L.anisa, L.bozemanii, L.cherrii, L.dumoffii, L.gormanii, L.gratiana, L.parisiensis, L.steigerwaltii y L.tucsonensis) tienen autofluorescencia blanca brillante;

L.erythra y L.rubrilucens aparecen rojas;

L.pneumophila verde mate, a menudo teñido de amarillo .

El usuario final es el único responsable de la destrucción de los organismos que se hayan multiplicado, según la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.

Si desea más información sobre nuestro  LEGIONELLA GVPC, BCYE (con Fe y Cys), BCYE-Cys, (AGAR BASE) rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto.

O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

https://www.microkit.es/fichas/LEGIONELLA-GVPC-y-BCYE-AGAR-BASE.pdf

https://www.microkit.es/monograficos/9-Legionella-monograf–a.pdf

 

Quanti-P/A Clostricult – Clostridium perfringens

Quanti-P/A Clostricult – Clostridium perfringens KIT

Quanti-P/A Clostricult – Clostridium perfringens KIT para detección y recuento optimizados, ya que no oxigena las células durante el análisis

Recuento de Clostridium perfringens y/o de Clostridios sulfito-reductores  en 1 g, 50 ml, 100 ml ó 250 ml de muestra

Quanti-P/A-Clostricult-TSC para detección y recuento fiables de Clostridium perfringens en 100 ml de muestra de aguas potables o en 1 gramo/ml de muestra de alimentos. Ref: QPA-CP (caja  20 u)

Quanti-P/A-Clostricult-SPS para detección y recuento fiables de Clostridium sulfito-reductores en 1 gramo/ml de muestra de alimentos/cosméticos o en 50 ml de muestra de aguas envasadas. Ref: QPA-CSR (caja  40 u)

Dos premisas importantes

Clostridium perfringens es un anaerobio estricto que por el método destructivo de filtración de membrana, aunque sea el método oficial, ve reducida su concentración a niveles inaceptables (baja al 10% e incluso al 1% respecto al valor inóculo, cuando debería recuperarse al menos un 50-95 % del valor inóculo) y además es incapaz de ofrecer una sensibilidad adecuada (el 49% de las aguas con este microorganismo, casi la mitad,  dan falso negativo con dicho sistema, cuando deberían dar como máximo un 5% de falsos negativos; y no sólo con el medio de la Directiva 2003 de aguas de consumo, el Agar m-CP, también con el medio de la Nueva Directiva 2015 de aguas de consumo, el Agar TSC).

Por otra parte el sistema DryPlates para recuento de microorganismos, por inclusión en masa de 1 ml de muestra, sin necesidad de calentar/enfriar agares, no puede emplearse en anaerobios estrictos, porque la fina capa de medio los oxigena demasiado. Desde la invención de las DryPlates en 2014, MICROKIT ha estado intentando encontrar el método idóneo para hacer recuentos de  Clostridium perfringens y de Clostridium sulfito-Reductores en 1 ml de muestra de alimento o cosmético, en 50 ml de aguas envasadas y en 100 ml de aguas de consumo humano. Y tras 3 años, en Junio de 2017 por fin lo ha conseguido!

La solución

Damos la bienvenida al futuro a los pioneros, con criterio propio, que no se dejan cegar por la ortodoxia normativa! Sin duda pasarán años hasta que este nuevo método sea el oficial, pero de ninguna manera eso significa que no deba emplearlo desde ya y adelantarse al futuro normativo, que siempre es tan lento. La fiabilidad de resultados es lo más importante. Y actualmente, esta fiabilidad está gravemente comprometida en los recuentos de anaerobios.

Empleando el mismo hidragar de las DryPlates diseñado y patentado por MICROKIT, mezclado con el medio de cultivo TSC  (QPA-CP para Clostridium perfringens) o SPS (QPA-CSR para Clostridios sulfito-reductores) en bolsas transparentes, rígidas y herméticas, con tapón a rosca, se consigue una recuperación muy cercana al 100% del valor inóculo y una sensibilidad también muy cercana al 100% de las muestras realmente positivas. Hemos bautizado este nuevo método patentado por MICROKIT con el nombre Quanti P/A, porque utilizamos los mismos caldos P/A que diseñamos hace décadas, pero con el hidragar de las DryPlates para poder hacer recuentos.

Se añaden como ventajas a la fiabilidad mediante estos excelentes resultados, la comodidad del método (ahorro de filtraciones de membrana, que además son destructivas para las células subletales; siembra en masa sin necesidad de calentar y enfriar agares) y su extraordinaria caducidad (3 años desde fabricación). Además, se ahorra el empleo de jarras y de costosas atmósferas de anaerobiosis, ya que se incuba hermético en ausencia de aire (semivacío).

El Agar TSC

es el medio Normativo para análisis de Clostridium perfringens, tanto en muestras de alimentos (ISO 13401), como de aguas de consumo humano (ISO 14189).

El Agar SPS

es el medio Normativo (AOAC) para análisis de Clostridium sulfito-Reductores, tanto en muestras de alimentos, como de aguas envasadas.

¡Enhorabuena por utilizar el mejor método para recuento de anaerobios en aguas (o en alimentos y cosméticos) sin necesidad de calentar/enfriar agares, sin oxigenar por filtración y sin necesidad de atmósferas de anaerobiosis, sustituto del Siglo XXI de los medios deshidratados, de los medios preparados hidratados en tubo, frasco o botella y del método destructivo de Filtración de Membrana!

MODO DE EMPLEO

(ver tutorial en  https://www.youtube.com/watch?v=A8WifR8mZ1k ):

1) para detección y recuento de Clostridium perfringens y sus esporas en 100 ml de muestra de aguas de consumo humano:
A) Incluir la muestra

Tome un Quanti-P/A-CP, dele la vuelta para que el medio salga del fondo, doble el fondo de la bolsa para que no vuelva a depositarse allí, ponga la bolsa vertical con el fondo doblado, abra el tapón y añada por el orificio, con pulso para evitar derrames, 100 ml de la muestra de agua (tratada con Na TioSulfato si es clorada). Si lo que busca son esporas, caliente el agua de muestra a 75 ºC antes de añadirla al kit. Lo ideal es analizar una muestra de 100 ml a temperatura ambiente para formas vegetativas y un duplicado de 100 ml de la misma muestra a 75ºC para esporas. Los eventuales  artefactos negros, púrpura o rosados no afectan los resultados: son de contorno irregular, no crecen al incubar, es más: desaparecen, a diferencia de las colonias. Apriete para que el agua llegue casi al borde del tapón y quede muy poco aire.

B) Mezclar bien

Cierre con fuerza el tapón. Amase el conjunto con las dos manos unas 10-30 veces (o bien con stomacher-masticator) para mezclar el medio con los 100 ml de muestra de agua. Si queda polvo o algún grumo de más de 1 cm, pellízquelo hasta que se disuelva o parta. No se preocupe por los pequeños grumos que queden, desaparecerán durante la incubación. Cuanto mejor amase mejores resultados obtendrá, al separar mejor las ufcs. Aplane la bolsa contra la poyata y planche el medio hidratado con la muestra, en toda la superficie interna de la bolsa, para que la capa de medio sea lo más homogénea y fina posible, y así luego pueda contar mejor las colonias al trasluz. Puede ayudarse con una caja de frascos MICROKIT llena de frascos de 100 mL (peso ideal para el mejor planchado). El agua fría se disuelve peor.

C) Incubar

Deposite la bolsa horizontal en la estufa de cultivos, verificando que el tapón sigue herméticamente cerrado. Puede apilar numerosas bolsas, alternando su posición (tapones al N en una capa, al S en otra, al E en otra, al W en otra…)

Incube 24-48 horas a 35-45ºC (a 35ºC puede haber falsos positivos de colonias negras de fermentadores facultativos: Staphylococcus, Salmonella, Proteus, Klebsiella, Citrobacter…). Si se prolonga la incubación, las colonias se agrandan, se solapan y en caso extremo todo el medio ennegrece, impidiendo así el recuento que, por este motivo, debe hacerse entre 24 y 48 h desde iniciada la incubación. Si a las 24 h no hay crecimientos, espere a leer a las 48h. Durante la incubación, en caso positivo extremo, la bolsa se podría hinchar del gas generado.

D) Interpretar resultados

Extraiga la bolsa y cuente al trasluz todas las colonias o burbujas negras, que serán el número de ufc de Clostridium perfringens en 100 ml de muestra de agua. Cuente primero por una cara y repita el recuento por la otra, ya que el medio es traslúcido: Sume los recuentos de ambas caras evitando contar dos veces la misma colonia. En este sistema se cuentan perfectamente entre 0 y 200 colonias. Puede confirmar las colonias con el kit KMT008 (ISO 6461 y FDA) pinchando a través de la bolsa.

2) para detección y recuento de Clostridium perfringens y sus esporas en 1 g ó ml de muestra de alimentos o cosméticos (u otras matrices):

Siga exactamente los mismos pasos descritos en el apartado anterior, con las siguientes salvedades:

  1. Mezcle su ml ó gramo de muestra con 100 ml de medio estéril FTM (puede emplear agua peptonada tamponada, Ringer, Solución marina al 0,9 %, agua…, aunque FTM es lo ideal para conseguir los más óptimos resultados en anaerobios).
  2. Cuente todas las colonias o burbujas negras, que serán el número de ufc de Clostridium perfringens en 1 ml ó gramo de muestra de alimento, cosmético o la matriz que sea (aumenta x10 el límite inferior). En este sistema se cuentan perfectamente entre 1 y 100 colonias.
3)  para detección y recuento de Clostridium sulfito-reductores en 50-100 ml de muestra de aguas envasadas:

Siga exactamente los mismos pasos descritos en el apartado 1), con las siguientes salvedades:

  1. En este caso use la bolsa Quanti-P/A-CSR.
  2. Añada 100 ml del agua de muestra (o 50 ml de su agua de muestra más 50 ml de agua estéril) y amase sobre la pila para prevenir posibles derrames. Siga los demás pasos indicados en el apartado 1)
  3. Incube 24 horas a 35ºC aprox.
  4. Cuente todas las colonias o burbujas negras, que serán el número de ufc de Clostridium sulfito-reductores en 50-100 ml de agua envasada. En este sistema se cuentan perfectamente entre 1 y 100 colonias.
4)  para detección y recuento de Clostridium sulfito-reductores en 1 g ó ml de muestra de alimentos o cosméticos (u otras matrices):

Siga exactamente los mismos pasos descritos en los apartados 1) y 3), con las siguientes salvedades:

  1. Mezcle su ml o gramo de muestra con 100 ml de medio estéril FTM (puede emplear agua peptonada tamponada, Ringer, Solución marina al 0,9 %, agua,…, aunque FTM es la mejor opción en anaerobios). Aumenta x10 el límite inferior de cuantificación, al emplear directamente 1 g de alimento diluido en 100 ml de caldo: leerá ufc/g, no las hasta ahora habituales ufc/0,1 g.

CONSERVACIÓN Y PRECAUCIONES DE USO

Almacenar a temperatura ambiente (ideal 15-25ºC) ¡no en nevera!, ya que en ésta la humedad es más fácil que prehidrate y estropee los medios. Es imprescindible almacenar en lugar muy seco y oscuro, ya que la humedad y la luz dañan irreversiblemente los medios de cultivo deshidratados. Si trabaja en zonas de alta humedad atmosférica, almacene las Quanti-P/A, bien cerradas en su bolsa, dentro de una caja hermética “tupper” con sacos antihumedad (ej: VRB747).

VER FOTOGRAFIAS EXPLICATIVAS EN FOLLETO ANEXO

Con este sistema, con la destreza que da la experiencia, un analista puede controlar (de la muestra a la estufa incubadora) hasta 50 muestras por hora. Tambien en este mismo método, el Quanti-P/A-Enterocult (QPA-ETC) para recuento de Enterococos fecales (colonias pardas-negras) en 100-250 ml de muestra de agua, conseguido mezclando nuestro clásico P/A Enterocult con Hidragar en este tipo de envase. Para cuantificar Coliformes-E.coli y Pseudomonas aeruginosa emplee nuestros caldos P/A (MCC Colicult y Pseudocult, respectivamente) en las cubetas NMP. Esto ahorrará los elevados porcentajes de falsos negativos que también implica el método de filtración de membrana en estos tres parámetros (21% en E.coli-Coliformes, 6% en Enterococos fecales y 33% en P.aeruginosa).

El usuario final es el único responsable de la eliminación de los microorganismos según la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.

Validado en base a la Norma UNE-EN-ISO 16140. Exactitud del 87,5 % al 100 % de ufcs, en función de lo correctos que sean el amasado- planchado de la muestra al mezclarla con el medio. Precisión de duplicados a 35-45ºC, medida en CV: 24,2%. Exclusividad a 45ºC: 100%. Inclusividad en muestras no calentadas a 75ºC: 100% (no disponíamos de esporas para evaluar a 75ºC). Límite inferior de cuantificación: 1-3 ufc/100 ml en muestras tanto frías como calientes (75ºC).

Si desea más información sobre nuestro  Quanti-P/A Clostricult rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

https://www.microkit.es/monograficos/7-Clostridium-perfringens-y-Clostridios-sulfito-reductores-monograf–a.pdf

https://www.microkit.es/monograficos/21-Monograf–a-M–todos-alternativos-en-Control-microbiol–gico-de-aguas.pdf

M-IDENT®- Burkholderia cepacia

M-IDENT® Burkholderia cepacia

Burkholderia cepacia: Kit de confirmación en aguas y cosméticos

La confirmación de colonias de Burkholderia cepacia se ha convertido en el gran hándicap de los laboratorios cosméticos y a menudo la única solución era enviar las colonias a Identificación molecular (MICROKIT SFI004). Aunque ésta siga siendo la mejor opción, el mercado pedía un kit con el que poder orientarse antes de decidir.

El Agar BCPT 

se basa en la asimilación del piruvato como fuente de C y el rojo fenol como indicador de la acidificación, por crecimiento de B.cepacia con viraje del medio de naranja a fucsia alrededor de las colonias diana.

El Agar OFPBL es un O/F modificado con lactosa como fuente de C y azul de bromotimol como indicador de la acidificación por crecimiento de B.cepacia con viraje de azul a amarillo. Es menos selectivo que el Agar BCPT.

El BCPT Cromogénico de MICROKIT es un BCPT al que se ha añadido un cromógeno que permite un mayor contraste de las colonias, que crecen de color rojo intenso, con los mismos virajes del medio que el BCPT clásico.

El Agar BCSA es el recomendado por USP, pero en él las colonias crecen con menos potencia que en BCPT

PASO PREVIO

Antes de emplear el kit M-Ident-B.cepacia, cercíorese que las colonias son oxidasa positivas y no son fluorescentes bajo luz UV de 366 nm

Burkholderia cepacia es citocromo-oxidasa positiva (viraje a azul de las tiras estables MICROKIT KOT050)

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Burkholderia cepacia no provoca fluorescencia (luz azul-verde-amarilla) en BCPT ni en OFPBL ni siquiera cuando se observa bajo luz UVA de 366 nm (linterna MICROKIT VMT050)

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

BASE DE DATOS BACDIVE

Según Bacdive, estas son las pruebas que distinguen las cepas que hemos detectado capaces de crecer en BCPT o que podrían ser confundidas con B.cepacia al ser también oxidasa positivas:

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

El kit M-IDENT B.cepacia

distingue no solo la B.cepacia, sino además todas las Burkholderias declaradas como patógenas, con las mismas características de B.cepacia: Ox+ ADH- MNE+ PAC+ (B.ambifaria, B.arboris, B.cenocepacia, B.contaminans, B.diffusa, B.dolosa, B.gladioli, B.latens, B.metallica, B.multivorans, B.pseudomultivorans, B.seminalis, B.stabilis) y también las patógenas que a diferencia de las demás, son  ADH+ (B.oklahomensis, B.thailandensis y B.ubonensis).

En nuestros controles, la prueba que distingue claramente las especies de Burkholderia de las de Pseudomonas es el ADH: Pseudomonas deja el medio rojo mientras Burkholderia lo vira  a naranja o amarillo, según la cepa (por ejemplo la B.cepacia DSMZ 50181 vira a amarillo, mientras la B.cepacia ATCC™ 25416 y la B.cepacia NCTC 10743 viran a naranja, en 24 horas de incubación.

PRESENTACION:

M-IDENT®-Burkholderia cepacia, kit 4 test para confirmar 5 colonias sospechosas de este patógeno y otras Burkholderias patógenas en agares BCPT/BCSA/OFPBL. Todas ellas coinciden en estas pruebas diferenciales: Oxidasa + (azul), ADH- (amarillo), MNE+ (amarillo), PAC+ (amarillo).

Kit 4 test suficiente para confirmar 5 colonias. Caducidad 1 año

– 5 tiras estables para el test de la Citocromo-oxidasa (KOT0505)

– 5 tubos  líquidos de Caldo ADH (rojo).

– Y 5 tubos  líquidos de Caldo MNE (verde).

– 5 tubos  líquidos de Caldo PAC  (verde).

CODIGO: KMT006

EL KIT NO INCLUYE:

  • Cepas cuantitativas MICROKIT para validar los reactivos una vez llegados a fábrica o tras almacenamientos prolongados o inadecuados.
  • Participación en servicios intercomparativos como SEILAGUA® y SEILAPARFUM para validar los procedimientos y los operarios
  • Lámpara de luz ultravioleta de 366 nm (ver Linterna MICROKIT VMT050)

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO. MANTENGA LA CAJA CERRADA, EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO

VENTAJA: Su extremadamente larga caducidad, de 1 año asegurado.

CONTROL DE CALIDAD DEL KIT

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

TIRAS Citocromo-oxidasa: NO estéril, color rosa pálido

TUBOS PREPARADOS de Caldo ADH: Estéril, líquido, rojo, transparente.

Y TUBOS PREPARADOS de Caldo MNE: Estéril, líquido, verde, transparente.

TUBOS PREPARADOS de Caldo PAC: Estéril, líquido, verde, transparente.

CONTROL DE CRECIMIENTO a 37°C durante 24 horas, en aerobiosis:

  • Tiras oxidasa: Burkholderia cepacia ATCC™ 25416 vira a azul oscuro de inmediato.
  • Caldo ADH: Pseudomonas aeruginosa WDCM00026, crece con turbidez y permanece de color rojo. Burkholderia cepacia ATCC™ 25416, crece con turbidez y vira de rojo a naranja o amarillo.
  • Caldo MNE: Pseudomonas aeruginosa WDCM00026, crece con turbidez y permanece de color verde. Burkholderia cepacia ATCC™ 25416, crece con turbidez y permanece de color verde, igual que Burkholderia cepacia NCTC 10743. Algunas otras cepas de Burkholderia cepacia (ej: ATCC™ 17759, DSMZ 50181) viran de verde a amarillo.
  • Caldo PAC: Pseudomonas aeruginosa, WDCM00114 crece con turbidez y permanece de color verde. Otras cepas de Pseudomonas aeruginosa (ej: WDCM00026) viran de verde a amarillo. Burkholderia cepacia ATCC™ 25416, crece con turbidez y vira de verde a verde-amarillento o amarillo, igual que Burkholderia cepacia NCTC 10743. Algunas otras cepas de Burkholderia cepacia (ej: DSMZ 50181) permanece verde.

IZQDA: P.aeruginosa WDCM00114
DCHA: B.cepacia ATCC™ 25416

MODO DE EMPLEO E INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS

-Inocular una porción de la colonia sospechosa, procedente de Agar BCPT  o OFPBL, en la zona reactiva de la tira de oxidasa.

-Sembrar por dilución otra porción de colonia en un tubo de caldo ADH, otra en un tubo de caldo MNE y otra en un tubo de caldo PAC.

-Incubar a 36 ± 2º C durante 20 ± 4 horas, en aerobiosis.

-Burkholderia cepacia es toda colonia típica en BCPT o en OFPBL, no fluorescente, oxidasa positiva (viraje a azul oscuro), ADH positivo (vira de rojo a naranja o amarillo). Además, según sea la cepa, virará o no de verde a amarillo en MNE y en PAC.

El usuario es el único responsable de la eliminación de los microorganismos según la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.

Si desea más información sobre nuestro  M-IDENT®- Burkholderia cepacia rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

https://www.microkit.es/monograficos/8-Burkholderia-cepacia-complex-monograf–a.pdf

 

Quanti-P/A Enterocult

Quanti-P/A Enterocult

Quanti-P/A-Enterocult para el recuento de enterococos fecales en 100 mL de agua sin necesidad de equipos de filtración de membrana

Quanti-P/A-Enterocult-BEA para detección y recuento fiables de Enterococos fecales en 100/250 ml de muestra de aguas potables o en 1 gramo/ml de muestra de alimentos. Ref: QPA-ETC (caja  20 u)

Mediante este nuevo método de recuento por inclusión en masa de muestras grandes (ej: 100/250 mL de agua, o bien 1 g de alimento) sin tener que fundir ni enfriar medios de cultivo agarizados, puede Ud. enumerar las colonias crecidas como ufc/100-250 mL de agua (o en 1 g de alimento en vez de en 0,1 g) sin necesidad de filtración de membrana en aguas (ni de diluciones en alimentos, que impedían el auténtico recuento en 1 g completo y obligaban a expresar los resultados como “<10 ufc/g”). Incluso en trabajos de campo.

 

 

 

 

 

 

Damos la bienvenida al futuro a los pioneros, con criterio propio, que no se dejan cegar por la ortodoxia normativa! Sin duda pasarán años hasta que este nuevo método sea el oficial, pero de ninguna manera eso significa que no deba emplearlo desde ya y adelantarse al futuro normativo, que siempre es tan lento. La fiabilidad de resultados es lo más importante. ¿Por qué conformarse con un recuento en 0,1 g de muestra, cuando ahora ya puede hacerse en 1 g completo?

QPA

Empleando el mismo hidragar de las DryPlates diseñado y patentado por MICROKIT, mezclado con el medio de cultivo Bilis Esculina Azida Agar (BEA) en bolsas transparentes, rígidas y herméticas, con tapón a rosca, se consigue una recuperación muy cercana al 100% del valor inóculo y una sensibilidad también muy cercana al 100% de las muestras realmente positivas. Hemos bautizado este nuevo método patentado por MICROKIT con el nombre Quanti P/A, porque utilizamos los mismos caldos P/A que diseñamos hace décadas, pero con el hidragar de las DryPlates para poder hacer recuentos.

Se añaden como ventajas a la fiabilidad mediante estos excelentes resultados, la comodidad del método (ahorro de filtraciones de membrana, que además son destructivas para las células subletales; siembra en masa sin necesidad de calentar y enfriar agares) y su extraordinaria caducidad (3 años desde fabricación). A pesar de la hermeticidad del kit, los enterococos crecen perfectamente, dejemos o no cámara de aire.

El Agar BEA

es el medio Normativo para confirmación de Enterococos fecales, tanto en muestras de alimentos (KAA CENAN modificado), como de aguas de consumo humano (ISO 7899). En la validación del método de Noviembre de 2017,  demostramos que se puede acortar el tiempo de incubación de la Norma ISO 7899 de 48 h (Slanetz-Bartley Agar) +2 h (Bilis Esculina Azida Agar) a sólo 18-24 h (directamente en Bilis Esculina Azida Agar, sea en versión placa tras filtración de membrana, sea en versión Quanti-P/A ETC sin necesidad de filtrar). Y obteniendo incluso exactitudes y precisiones superiores a las del método convencional.

¡Enhorabuena por utilizar el mejor método para recuento de anaerobios en aguas (o en alimentos y cosméticos) sin necesidad de calentar/enfriar agares, sin oxigenar por filtración y sin necesidad de atmósferas de anaerobiosis, sustituto del Siglo XXI de los medios deshidratados, de los medios preparados hidratados en tubo, frasco o botella y del método destructivo de Filtración de Membrana!

 

MODO DE EMPLEO

(ver tutorial en  https://www.youtube.com/watch?v=A8WifR8mZ1k  y en https://youtu.be/9ACxFVKJhrM):

1) para detección y recuento de Enterococos fecales en 100/250 ml de muestra de aguas de consumo humano, envasadas, baño…:
A) Añadir el agua de muestra

Tome un Quanti-P/A-ETC, dele la vuelta para que el medio salga del fondo, doble el fondo de la bolsa para que no vuelva a depositarse allí, ponga la bolsa vertical con el fondo doblado, abra el tapón y añada por el orificio, con pulso para evitar derrames, 100 ml/250 ml de la muestra de agua (tratada con Na TioSulfato si es clorada).

B) Cerrar

Cierre con fuerza el tapón. Coloque la bolsa horizontal sobre la superficie de trabajo.

C) Amasar

Amase el conjunto con las manos unas 30 veces (o bien vertical con stomacher-masticator) para mezclar el medio con los 100 ml de muestra de agua. Dele la vuelta y repita la operación. Si queda polvo o algún grumo de más de 1 cm, pellízquelo hasta que se disuelva o parta. No se preocupe por los pequeños grumos que queden, desaparecerán durante la incubación.

D) Eliminar el aire

Ponga la bolsa de pie –tapón arriba-, abra el tapón, golpee el fondo de la bolsa contra la poyata para que el medio interno que se haya colocado cerca del tapón, caiga dentro; deje escapar el aire con cuidado, apretando desde abajo del todo con las manos el medio con muestra, que burbujeará, hasta que el medio hidratado suba hasta el borde del tapón y desaparezca todo el aire.

E) Amasar más

Cierre entonces de nuevo el tapón con fuerza, sin dejar cámara de aire y vuelva a amasar para repartir, esta vez sin bolsitas de aire (con las manos o con stomacher-masticator). Cuanto mejor amase mejores resultados obtendrá, por separar mejor las ufcs. No se preocupe por los grumos que todavía quedarán, ya que se reabsorberán durante la incubación.

F) Incubar

Deposite la bolsa horizontal en la estufa de cultivos, verificando que el tapón sigue herméticamente cerrado. Si lo desea, hágalo en una cubeta para prevenir eventuales vertidos. Extienda el medio con muestra en toda la superficie interna de la bolsa para que la capa de medio sea lo más homogénea posible, y así luego pueda contar mejor las colonias al trasluz.

Incube 18-24 horas a 35-45ºC (dada la selectividad del medio BEA, se puede incubar a 35ºC aprox, aunque los protocolos oficiales digan que es mejor a 44ºC aprox).

G) Interpretar resultados

Extraiga la bolsa, déjela horizontal y cuente todas las colonias color beige (rodeadas o no de ennegrecimiento), que serán el número de ufc de Enterococos fecales en 100 ml de muestra de agua. Cuente al trasluz la colonias opacas. O bien cuente primero por una cara y repita el recuento por la otra, ya que el medio es traslúcido: Sume los recuentos de ambas caras. En este sistema se cuentan perfectamente entre 1 y 100 colonias. Si lo desea, según nuestros datos de validación, puede aplicar el siguiente factor de corrección, calculado a causa de la opacidad del medio: Recuento < 50 colonias, no corregir. Recuento >50 colonias, multiplicar por 1,3. La presencia de artefactos negros de Citrato Férrico-Amónico no afecta los resultados, al ser de contorno irregular y no confundirse con colonias. Puede extraer colonias para confirmarlas, simplemente pinchando a través de la bolsa.

2) para detección y recuento de Enterococos fecales en 1 g ó ml de muestra de alimentos, cosméticos u otras matrices:

Siga exactamente los mismos pasos descritos en el apartado anterior, con las siguientes salvedades:

  1. Mezcle su ml ó gramo de muestra con 100 ml de agua peptonada tamponada neutralizante, Ringer, Solución marina al 0,9 %, agua…
  2. Cuente todas las colonias color beige (rodeadas o no de ennegrecimiento), que serán el número de ufc de Enteroccos fecales en 1 ml ó gramo de muestra de alimento, cosmético o la matriz que sea (aumenta x10 el límite inferior de cuantificación/detección). En este sistema se cuentan perfectamente entre 1 y 100 colonias.

CONSERVACIÓN Y PRECAUCIONES DE USO

Almacenar a temperatura ambiente (ideal 15-25ºC) ¡no en nevera!, ya que en ésta la humedad es más fácil que prehidrate y estropee los medios. Es imprescindible almacenar en lugar muy seco y oscuro, ya que la humedad y la luz dañan irreversiblemente los medios de cultivo deshidratados. Si trabaja en zonas de alta humedad atmosférica, almacene las Quanti-P/A, bien cerradas en su bolsa, dentro de una caja hermética “tupper” con sacos antihumedad (ej: VRB747).

Con este sistema, una vez alcanzada la destreza que da la experiencia, un analista puede controlar (de la muestra a la estufa incubadora) hasta 50 muestras por hora. Ver también Quanti-P/A Clostricult-TSC (QPA-CP) para Clostridium perfingens y sus esporas y Quanti-P/A Clostricult-SPS (QPA-CSR) para Clostridium Sulfito-Reductores, conseguidos mezclando (TSC Agar y SPS Agar, respectivamente) con Hidragar en este tipo de envase. Para cuantificar Coliformes-E.coli y Pseudomonas aeruginosa emplee nuestros caldos P/A (MCC Colicult y Pseudocult, respectivamente) en las cubetas NMP. Esto ahorrará los elevados porcentajes de falsos negativos que también implica el método de filtración de membrana en estos tres parámetros (21% en E.coli-Coliformes, 6% en Enterococos fecales y 33% en P.aeruginosa).

El usuario final es el único responsable de la eliminación de los microorganismos según la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.

Validado en base a la Norma UNE-EN-ISO 16140. Exactitud del 99,59 % respecto a Slanetz-Bartley Agar (SB) en placa por filtración de membrana (117,42 % en el rango bajo de recuento, 103,78 % en el rango medio y 77,58 % en el rango alto). Precisión CV 22% (20,79% en el rango bajo, 24,26 % en el rango medio y 21% en el rango alto), frente al 29,7 % en SB. Exclusividad: 100%. Inclusividad: 100 %. Límite inferior de cuantificación: 1-5 ufc/100 ml.

Si desea más información sobre nuestro  Quanti-P/A Enterocult rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

https://www.microkit.es/monograficos/21-Monograf–a-M–todos-alternativos-en-Control-microbiol–gico-de-aguas.pdf

AIRESANO

AIRESANO purifica el aire del laboratorio:

AIRESANO: purifica aire laboratorio.

El spray que genera niebla para eliminar las bacterias, hongos y virus del aire y de las superficies

Spray de uso único (una vez se pulsa, se queda pulsado hasta vaciarse), que purifica el ambiente…

…arrastrando hasta el suelo (en forma de niebla que cae), las células de bacterias y de hongos presentes en el aire y en las superficies de la sala, donde las destruye.

A diferencia de las luces ultravioleta, no quedan sombras en la sala, ya que la niebla penetra tras los equipos y bajo los mismos, entra en ranuras y escondrijos…

Airesano es único

Es el único sistema oficialmente autorizado para uso en laboratorio sin necesidad de carnet de manipulador de plaguicidas, incluso está autorizado para uso doméstico y en los talleres para desinfectar y desodorizar los aires acondicionados de los coches.

Eso sí, debe aplicarse en ausencia de personas y respetar las 2 h de acción sin entrar a la sala, por lo que es ideal emplearlo al irnos a casa después de trabajar.

Ud. tambien puede desinfectar sus aires acondicionados (y el de su coche): Active un airesano junto al aire acondicionado encendido y vuelva dentro de 2 horas.

Además deja un agradable aroma a menta-limón y no mancha ni engrasa las superficies ni los equipos.

AIRESANO: purifica aire laboratorio

Frecuencia de uso de Airesano

Es aconsejable una dosis de choque inicial de 5 días seguidos empleando airesano;

después y en función de los resultados que obtenga con su muestreador de aire (Ver MBS y Microflow), y de sus necesidades en materia de RRLL-inhalación de microorganismos por parte del personal de su laboratorio, podrá reducir el empleo de Airesano a sólo 1-2 veces por semana.

La Norma ISO100012 establece que un aire con más de 800 ufc/m3 de bacterias + hongos, es irrespirable y puede provocar Síndrome del Edificio Enfermo (SEE, SBS), además de enfermedades localizadas.

Verá como su dpto. de Riesgos Laborales impone el uso de Airesano en cuanto conozca que existe (a no ser que tenga detectores de humo, ya que saltarían al activar la niebla).

https://www.microkit.es/pdf/Airesano-2021.pdf

En este video lo entenderás mejor:

https://www.youtube.com/watch?v=rruGElrCBqk&t=12s

y este es el simpático vídeo de nuestro proveedor exclusivo CARAMBA: 

https://youtu.be/FFxYkSf60cI

Spray de etanol puro de 70º

Para desinfectar las superficies en presencia de personas, use tantas veces como sea necesario el spray de etanol 70º sin aditivos (ni mancha ni deja nada pegajoso).

También útil y muy cómodo para las manos y la ropa. A menudo las grandes ideas surgen en las peores épocas, como este spray creado por Caramba durante la pandemia:

 

https://www.microkit.es/fichas/Alcohol-etilico-70-spray-CARAMBA.pdf

MICROKIT es el distribuidor exclusivo de estos dos productos en Laboratorios y Hospitales.

https://www.youtube.com/watch?v=FFxYkSf60cI

Si desea más información sobre nuestro  Airesano o nuestro Spary de etanol 70º, rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

Quanti-P/A Clostricult (QPA-CP y QPA-CSR)

Quanti-P/A Clostricult (QPA-CP y QPA-CSR)

Quanti-P/A-Clostricult para el recuento fiable de clostridios y sin necesidad de filtración de membrana ni de atmósfera de anaerobiosis

Vea también el video del modo de empleo: https://www.youtube.com/watch?v=A8WifR8mZ1k

3 fases de la disolución de un artefacto negro, después convertido, mediante amasado con pellizcos, en una nube azul oscuro, y luego bien disuelto, sin residuos.

Necesidad de contar por ambas caras (cara 1: 15 colonias, cara 2: 32 colonias). La destreza en su uso permite distinguir con el tiempo las colonias que solo se ven por una cara, de las que se ven por ambas, permitiendo así un recuento más exacto.

En muestras de alimentos, se puede incluir 1 g del alimento completo y analizarlo junto con los 99-100 ml del diluyente, no es necesario emplear bolsas Stomacher con filtro. Las partículas del alimento (en la foto, salmón) se distinguen perfectamente de las 4 colonias negras.

Colocación durante su incubación.

Linealidad en QPA-CPy tambien: 

y también este otro:  https://youtu.be/9ACxFVKJhrM

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Si desea más información sobre nuestro MICROKIT® P/A CLOSTRICULT rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

https://www.microkit.es/pdf/Quanti-PA-Clostricult.pdf

https://www.microkit.es/monograficos/21-Monograf–a-M–todos-alternativos-en-Control-microbiol–gico-de-aguas.pdf

Vídeo del modo de empleo en su primer cliente de aguas de consumo (potabilizadora ETAP):

https://www.youtube.com/watch?v=A8WifR8mZ1k

Otro vídeo del modo de empleo en cliente de aguas envasadas:

https://www.youtube.com/watch?v=9ACxFVKJhrM

MICROKIT® P/A COLICULT-MCC

MICROKIT® P/A COLICULT-MCC

MICROKIT® P/A COLICULT-MCC para la detección Presencia/Ausencia de E.coli y demás coliformes en 100 mL de muestra de agua

Detección Presencia / Ausencia (P/A) en 100 (250) ml de agua

   INTRODUCCIÓN:

Medio estéril COLICULT Cromofluorogénico (MCC Broth DMT900) para detección P/A (o recuento NMP empleando cubetas NMP Ref:1001020) de E.coli (fluorescente azul bajo luz de 366 nm VMT050 e indol + con reactivo de Kovacs SBH056) y demás

coliformes (viraje a azul), que puede elegir en tres formatos diferentes:

  1. RPL303 Frascos tomamuestras con caldo estéril hidratado y tapón a rosca para añadir en ellos 100 mL de la muestra de agua. Cajas 10u ó 9x10u
  2. FPA900 Viales prepesados de polvo estéril con tapón a rosca para añadir a 100 mL de la muestra de agua (no incluido bote 100 mL VML155 o bolsa standup 100 mL B2787B estériles). Cajas 40u ó 10x40u
  3. DMTI900- Botes 100 g de polvo estéril y cucharilla dosificadora para añadir a 100 mL de la muestra de agua (no incluido bote 100 mL VML155 o bolsa standup 100 mL B2787B estériles), Bote para 100 test

De gran utilidad como screening negativo de muestras rutinarias, al ser un método más fácil de emplear que la filtración de membrana y más fiable (escasez de falsos positivos y de falsos negativos, que en filtración de membrana es de nada menos que el 21% de las muestras analizadas en el mundo, por el estrés provocado durante la filtración).

 

También muy útil para que las potabilizadoras no dejen de analizar en festivos y fines de semana, ya que este método puede ser empleado por personal no especialista en microbiología, el mismo guarda de la depuradora puede hacerlo. La única precaución es que el operario no toque ni el agua ni el polvo con sus manos, para evitar contaminaciones artificiales.

 

MODO DE EMPLEO:

Es necesario tratar previamente el agua clorada, mediante Tiosulfato Sódico, para que las células dañadas subletalmente se recuperen, excepto en los frascos tomamuestras RPL303, que ya lo incluyen.

Añadir los 100 mL de agua de muestra en el frasco o en el recipiente estéril que se va a utilizar; en el caso de los viales, añadir todo el contenido sobre el agua; en el caso de los botes de 100g, añadir una cucharadita rasa sobre el agua y cerrar el bote con la cucharilla dentro para los posteriores usos. Agitar para homogeneizar. Incubar 8-48 horas a 35-37° C (Coliformes totales y E.coli) ó a 44° C (Coliformes Fecales y E.coli). La muestra inoculada sirve también de medio de transporte, por lo que no es necesario incubar inmediatamente después de la toma de la muestra, pudiendo transcurrir varias horas entre toma e incubación.

Para aguas envasadas o de baño, se analizan 250 mL, por lo que debe añadir 2 viales ó dos cucharaditas por muestra (no se pueden usar los frascos RPL303 para 250 mL, al haber sido diseñados sólo para 100 mL). El medio funciona correctamente desde mitad hasta el doble de concentración, por lo que no es necesario afinar 2,5 viales ó 2,5 cucharaditas)

 

INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS:

El viraje a color azul (XGal) demuestra la Presencia de Coliformes (totales o fecales según la Tª  de incubación) en la muestra de agua. La Fluorescencia azul (luz azul por MUG) que se observa en la oscuridad bajo U.V.A. de 366 nm (linterna VMT050) demuestra la presencia de E.coli en la muestra de agua (confirmar con 0,5 ml de KOVACS-SBH056): anillo rojo de Indol en superficie es prueba positiva. E.coli   O157 H7 se detecta por ser XGal + (vira a azul), de acuerdo con la definición moderna de coliforme;  MUG – (no fluorescente a pesar de ser E.coli) e indol + (anillo rojo).

Es necesaria la ausencia (no viraje), que equivale a 0 ufc/100 mL (ó en 250 mL). Sólo en caso positivo debería repetirse la muestra por método cuantitativo si se requiere un recuento concreto, aunque la legislación exige 0 y por tanto no importa si hay 2 ó 950, en ambos casos el agua no es potable.

 

Material necesario no incluído:

Tiosulfato Sódico para eliminar el cloro (SMT976) excepto en los frascos tomamuestras RPL303, que ya lo incluyen. Bote estéril 100ml (VML155), o bolsa estéril autosellable Stand-Up (B2787B). Estufa o incubador 35-37ºC (SIL12AR ó SIL24AR).

En homenaje a nuestro querido amigo, el Dr. Juan José Marcén, que falleció antes de conocer el éxito mundial de la fantástica idea que nos regaló en los años 90, este kit se regala a todas las ONGs que nos los pidan junto con otros parámetros P/A.

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO O PARA ANÁLISIS DE CAMPO. MANTENER FUERA DEL ALCANCE Y DE LA VISTA DE LOS NIÑOS Y ANIMALES.

EXTREMADAMENTE HIGROSCÓPICO: MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO. AGITE EL BOTE ANTES DE USAR. EN ZONAS DE ELEVADA HUMEDAD AMBIENTAL, GUARDAR EL BOTE BIEN CERRADO EN UN TUPPER HERMÉTICO CON SILICAGEL.

 

CONTROL DE CALIDAD:

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras largos fletes, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

DESHIDRATADO: Polvo crema    PREPARADO: Paja

CONTROL DE CRECIMIENTO 8-24 h a 37°C aproximadamente:

  • E.coli WDCM 000013, vira a azul, da fluorescencia azul en la oscuridad bajo 366 nm y genera anillo rosa de indol, en 8h si el inóculo es alto y no procede de muestras estresadas, en 18-24h en caso contrario.
  • Enterobacter aerogenes  WDCM 00175: Vira a azul-turquesa en 18 h. No da fluorescencia con 366 nm. Indol – (no rojo en superficie)
  • Pseudomonas aeruginosa WDCM 00026, no vira a azul, no da fluorescencia azul en la oscuridad bajo 366 nm y no genera anillo rosa de indol.
  • Enterococcus faecalis WDCM 00009: Inhibido.

El usuario es el único responsable de la eliminación de los microorganismos según la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.

Si desea más información sobre nuestro MICROKIT® P/A COLICULT rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

https://www.microkit.es/fichas/P-A-COLICULT-UE-2-2019.pdf

https://www.microkit.es/monograficos/11-E.coli-y-dem–s-coliformes-monograf–a.pdf

https://www.microkit.es/monograficos/21-Monograf–a-M–todos-alternativos-en-Control-microbiol–gico-de-aguas.pdf

No se pierda nuestro vídeo de los viales P/A:

https://youtu.be/6OfsD7zU_8U