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MICROKIT® P/A Burkholderia cepacia

MICROKIT® P/A Burkholderia cepacia

Detección Presencia / Ausencia (P/A) en 100 ml de agua

INTRODUCCIÓN:

Medio estéril Cromogénico diseñado por MICROKIT en base al BCA (BCPT), para detección P/A (o recuento NMP empleando cubetas NMP Ref:1001020 ó Quantitry de Idexx) de Burkholderia cepacia (viraje del agua a rojo burdeos en sólo 18-24h e indol – con reactivo de Kovacs SBH056), que puede elegir en tres formatos diferentes:

  1. RPL323 Frascos tomamuestras con caldo estéril hidratado y tapón a rosca para añadir en ellos 100 mL de la muestra de agua. Cajas 10u ó 9x10u

  1. FPA904 Viales prepesados de polvo estéril con tapón a rosca para añadir a 100 mL de la muestra de agua (no incluido bote 100 mL VML155 o bolsa standup 100 mL B2787B estériles). Cajas 40u ó 10x40u.DMTI904- Botes 100 g de polvo estéril y cucharilla dosificadora para añadir a 100 mL de la muestra de agua (no incluido bote 100 mL VML155 o bolsa standup 100 mL B2787B estériles), Bote para 50 test. De gran utilidad como screening negativo de muestras rutinarias, al ser un método más fácil de emplear que la filtración de membrana y más fiable (escasez de falsos positivos y de falsos negativos, que en filtración de membrana es de nada menos que el 33% de las muestras analizadas en el mundo, por el estrés provocado durante la filtración).

También muy útil para que las potabilizadoras no dejen de analizar en festivos y fines de semana, ya que este método puede ser empleado por personal no especialista en microbiología, el mismo guarda de la depuradora puede hacerlo. La única precaución es que el operario no toque ni el agua ni el polvo con sus manos, para evitar contaminaciones artificiales.

MODO DE EMPLEO:

            Es necesario tratar previamente el agua clorada, mediante Tiosulfato Sódico, para que las células dañadas subletalmente se recuperen, excepto en los frascos tomamuestras RPL302, que ya incluyen el tiosulfato.

Añadir los 100 mL de agua de muestra en el frasco o en el recipiente estéril que se va a utilizar; en el caso de los viales, añadir todo el contenido sobre el agua; en el caso de los botes de 100g, ponerse guantes estériles para no contaminar el medio y usarlo en cabina de flujo laminar; añadir 3 cucharaditas rasas sobre el agua y cerrar el bote con la cucharilla dentro para los posteriores usos. Agitar para homogeneizar. El color resultante es naranja, transparente. Incubar 18-48 horas (la rapidez del viraje depende del estado metabólico/estrés de la cepa, aun que casi siempre vira en 18h) a 35-37° C. La muestra inoculada sirve también de medio de transporte, por lo que no es necesario incubar inmediatamente después de la toma de la muestra, pudiendo transcurrir hasta horas entre toma e incubación.

Monitorice todos los puntos necesarios para el análisis preventivo de tendencias.

INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS:

El viraje del agua a color rojo burdeos (vino tinto) y opaco demuestra la Presencia de B.cepacia en la muestra de agua. La ausencia de fluorescencia azul que se observa en la oscuridad bajo U.V.A. de 366 nm (linterna VMT050) confirma que no se trata de P.aeruginosa. Además, con 0,5 ml de KOVACS-SBH056, no hay anillo rojo de Indol en superficie, lo que descarta falsos positivos de coliformes. Ya que hay otros microorganismos  capaces de virar a rojo, pero son más lentos, fluorescentes o indol +. Puede conseguir que el kit sea muy selectivo añadiendo a cada frasco 0,14 ml del suplemento MICROKIT SMT301 (Ticarcilina + Polimixina). Preferimos ofrecer el kit sin suplemento porque algunas cepas de B.cepacia subletales podrían no crecer (por ejemplo la DSMZ 50181 no crece bien con los antibióticos).

Es necesaria la ausencia (no viraje), que equivale a       0 ufc/100 mL. Sólo en caso positivo debería repetirse la muestra por método cuantitativo si se requiere un recuento concreto, aunque la legislación exige 0 y por tanto no importa si hay 2 ó 950, en ambos casos el agua no es aceptable para fabricación de medicamentos y cosméticos.

Como siempre en microbiología, resiembre los positivos en estría en agar selectivo BCA (BCPT) e identifique las colonias con galerías bioquímicas (MICROKIT 245000) o con nuestro servicio de identificación molecular (SFI004).

Material necesario no incluído: Tiosulfato Sódico para eliminar el cloro (SMT976) excepto en los frascos tomamuestras RPL323, que ya lo incluyen. Bote estéril 100ml (VML155), o bolsa estéril autosellable Stand-Up (B2787B). Estufa o incubador 35-37ºC (SIL12AR ó SIL24AR).

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO O INCLUSO PARA ANÁLISIS DE CAMPO. MANTENER FUERA DEL ALCANCE Y DE LA VISTA DE LOS NIÑOS Y ANIMALES.

Los viales FPA904 y botes DMTI904- son extremadamente higroscópicos: manténgalos bien cerrados en lugar seco, fresco y oscuro (no en nevera). Agite el bote antes de usar. En zonas de elevada humedad ambiental, guardar bien cerrados en un tupper hermético con silicagel. Los frascos RPL323 tampoco precisan nevera, sólo oscuridad.

CONTROL DE CALIDAD:

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras largos fletes, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

DESHIDRATADO: Polvo, rosado, sólo existe versión agarizada y versión irradiada.

PREPARADO: Estéril, crema-anaranjado a menudo con precipitados negros de hierro

CONTROL DE CRECIMIENTO 18 h a 35°C aproximadamente:

  • Burkholderia cepacia MKTA 25416, Viraje a rojo burdeos, opaco
  • Burkholderia cepacia MKTN 10743, Viraje a rojo burdeos, opaco
  • Burkholderia cepacia MKTD 50181, Viraje a rojo burdeos, opaco
  • Pseudomonas aeruginosa MKTA 9027 (WDCM00026), Inhibido, Viraje ocasional a rojizo tras 24h
  • Escherichia coli MKTA 25922, Inhibido, Viraje ocasional a rojizo tras 24h
  • Staphylococcus aureus MKTA 6538, Inhibido

El usuario es el único responsable de la eliminación de los microorganismos según la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.

Si desea más información sobre nuestro MICROKIT® P/A Burkholderia cepacia rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

BACILUS SPOROTHERMODURANS CROMOKIT AGAR (HRS CROMOGENIC AGAR)

BACILLUS SPOROTHERMODURANS CROMOKIT AGAR (HRS CROMOGENIC AGAR)

La presencia de esporas altamente resistentes al calor de Bacillus sporothermodurans en leche pasterizada por el método Ultra Hight Temperature (UHT) se ha convertido en un problema importante en la industria láctea. Su presencia se considera indeseable, ya que obstaculizan los requisitos de esterilidad comercial. En un estudio (APPLIED AND ENVIRONMENTAL MICROBIOLOGY, Mar. 2005, p. 1480–1494), se han evaluado, mediante el uso de un selectivo tratamiento térmico de 30 minutos a 100°C, la presencia, fuentes, y naturaleza de las esporas potencialmente muy resistentes al calor en la leche cruda. Se detectaron altos números de estas esporas en la tela del filtro del equipo de ordeño y en muestras de cultivos y forrajes verdes. Se aislaron aproximadamente 700 cepas después del calentamiento selectivo. La colección de cepas mostró una notable diversidad, con representantes de siete géneros que forman esporas aerobias. Las más frecuentes esporas aisladas de leche UHT han sido Bacillus sporothermodurans (aerobio facultativamente anaerobio), Brevibacillus borstelensis, Paenibacillus lactis, Bacillus sphaericus, Bacillus licheniformis, y Brevibacillus brevis. El 23% de las 603 cepas formadoras de esporas pertenecen a 18 nuevas especies. La reducción de esta carga de esporas por buenas medidas higiénicas durante el ordeño probablemente podría reducir aún más el nivel de contaminación de la leche cruda, y de esta manera reducir al mínimo el recuento aeróbico de formadores de esporas de bacterias que podrían conducir al deterioro de la leche y los productos lácteos.

Las HRS (Heat Resistant Spores) o más coloquialmente “termorresistentes”, aparecen en muestras de leche UHT, sobre todo si el método de tratamiento térmico es “indirecto” (intercambiador de calor). Los métodos “directos” con inyección de vapor sobrecalentado son más eficaces, pero estas esporas también aparecen de vez en cuando. No son un problema para la salud (son microorganismos de riesgo biológico 1: sin riesgo para la salud) y aparentemente no alteran la leche, de modo que nos hemos acostumbrado a beber leche contaminada por estos microorganismos. El problema no es para el consumidor sino para la imagen de la industria.

MICROKIT ha desarrollado un medio de cultivo cromogénico, derivado del Plate Count Agar ISO 4833, con factores “doping” que permiten la visión de estas esporas germinadas en forma de colonias, que suelen ser diminutas y rojas, gracias a un cromógeno termoestable. El medio no es selectivo para B. sporothermodurans, de modo que también crecen en el mismo Bacillus licheniformis, Bacillus sphaericus y los demás esporulados alterativos de la leche UHT: las esporas termorresistentes (HRS). Pero se denomina así por el mayor conocimiento que tiene la industria láctea de la denominación “B. sporothermodurans” que de las siglas HRS.

COMPOSICIÓN

  • Triptona                                      5,0 g
  • Extracto de Levadura                  2,5 g
  • Glucosa                                       1,0 g
  • Factores doping MICROKIT          8,0 g
  • Agar‑agar                                   10,5 g
  • Cromógeno termoestable          c.s.
  • (Fórmula por litro)
  • pH final: 6,8 ± 0,2

Obsérvese la forma de volcán de las colonias, rojas, de Bacillus sporother-modurans

PREPARACIÓN

Disolver 27 g de medio en 1 litro de agua destilada.

Calentar hasta ebullición, agitando para su completa disolución.

Repartir en tubos o frascos. Autoclavar a 121 ºC durante 15 min o preferiblemente a 116°C durante 15 minutos. No sobrecalentar ni mantener fundido mucho tiempo. Refundir sólo una vez. El color final del medio es blanco-crema. A veces, por sobrecalentamiento, adquiere un tono rosado que retorna al crema cuando se vuelve a enfriar el medio, lo cual no afecta los resultados. Si lo desea, puede añadir trazas de vitamina B12 cuando el medio se está enfriando a 47-50ºC, aunque ya están incorporadas en el medio deshidratado. Si prefiere obtener colonias grandes, añada 37 g/L de BHI Broth (MICROKIT DMT022). Si desea una cierta selectividad en leche cruda, añada a 1 L de medio, cuando se está enfriando a 47-50ºC,  10 ml de un frasco pinchable de polimixina B (MICROKIT SMS009). O mejor someta a la leche cruda a un calentamiento UHT para eliminar toda la flora acompañante.

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO. MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO. AGITE EL BOTE ANTES DE USAR.

DESHIDRATADO CODIGO: DMT532

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…). DESHIDRATADO: Polvo grueso, Crema    PREPARADO: Estéril, Crema

EVALUACIÓN DEL RENDIMIENTO ISO/TS 11133-2   24-72 h a 37-55 ºC  o bien 3-5 días a 30 ºC, aplicando el método ISO 4833, ISO 2293, o el indicado en el Manual MICROKIT:

  • Bacillus sporothermodurans MKTD 10599, Excelente, pequeñas colonias rojas o fucsia, redondas, con forma de volcán (boina), PR >90% de colonias respecto al TSA.
  • Bacillus subtilis WDCM 00003, Excelente, colonias grandes, rojo burdeos, lobuladas, PR >90% de colonias respecto al número de ufc certificadas e inoculadas en TSA.
  • Bacillus cereus WDCM 00001, Excelente, colonias céreas, fucsia, enormes, lobuladas, PR >90% de colonias respecto al número de ufc certificadas e inoculadas en TSA.
  • Enterococcus faecalis WDCM 00009, Excelente, colonias pequeñas, rojas, redondas, con márgenes incoloros, PR >90% de colonias respecto al TSA.
  • Staphylococcus aureus WDCM 00032, Excelente, colonias rojo burdeos, grandes, redondas, mucosas, PR >90% de colonias respecto al TSA.

Las colecciones TIPO prohíben el uso de su referencia, por lo que indicamos la Universal WDCM según ISO 11133-2:2014 y la Colección de Cepas Nativas Tropicales.

PRESENTACIÓN: MEDIO DESHIDRATADO (100 g, 500 g, 5 Kg).

Recuento total de bacterias esporuladas en leche UHT y otros alimentos UHT (lácteos, gelatina, forraje…). Las colonias crecen en distintos tonos del rojo: rosa, naranja, púrpura…. sobre el tono crema del medio (excepto ciertos acidolácticos y ciertas levaduras, que crecen con colonias blancas, sin viraje, por lo que este medio los distingue de los aerobios). El color de las colonias no afecta a las pruebas de identificación posteriores que quisiera realizar.

 MODO DE EMPLEO E INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS

Inocular 1 ml de muestra de leche y su serie de diluciones decimales, en masa, para detectar precozmente la posible contaminación del lote, con esporas de este microorganismo (o bien estriar en superficie muestras ya alteradas).

Si se desea analizar la leche antes de la UHT, añada a cada L de medio 10 ml de Polimixina B (frascos pinchables MICROKIT SMS009), cuando está enfriándose a 47-50ºC, para eliminar buena parte de la flora acompañante. La polimixina es un antibiótico polipeptídico producido por una cepa de Bacillus polymyxa, activo frente a Gram negativos, ya que rompe violentamente su membrana plasmática. Atención: los iones Ca++ inhiben su acción. Aunque el mejor agente selectivo es el calor UHT, para buscar sólo sus supervivientes, con este medio (sin suplementos de antibióticos). De modo que para analizar leche cruda, es mejor someterla a un calentamiento similar a UHT antes de sembrarla en el medio de cultivo, a fin de eliminar la flora acompañante.

Incubar una placa a 30 ºC aproximadamente durante 3-5 días, e incubar otra placa a 37 y/o 55 ºC aproximadamente, durante 48-72 horas. Buscar las colonias rojas y pequeñas típicas de B.sporothermodurans, aunque cualquier otro tipo de colonia que aparezca, también demuestra una UHT deficiente. La recuperación supera el 20% por encima de la obtenida en PCA y el 16% por encima de la obtenida en TSA, gracias a ciertos factores doping descubiertos y agregados por MICROKIT. Esta fórmula, con menos agar, aumenta la sensibilidad del medio frente a los aerobios más lábiles, al permitir una mejor oxigenación del fondo de la placa. Este medio está diseñado para siembra en masa de productos que han sufrido esterilización UHT, de modo que los resultados no son concluyentes en productos no-UHT, con numerosos falsos positivos (sobre todo si no se añade polimixina B). Si desea sembrar en superficie, utilice 32 g/l de este mismo medio, en lugar de 27 g/l. Para minimizar la desecación en muestreos de aire y superficies, o para siembra en Spiral, añadir 2 gotas de antiburbujas (MICROKIT SBL001) por cada litro de agua, antes de añadir el medio y antes de autoclavar.

ANEXO FOTOGRÁFICO

B.sporothermodurans en Maxim Agar Cromogénico (MICROKIT BCD515) en 3 días a 35ºC

B.sporothermodurans en HRS cromogénico (MICROKIT DMT532). Obsérvese el mayor tamaño de las colonias en 3 días a 35ºC, que con lupa ya muestran su forma de volcán

B.sporothermodurans en HRS cromogénico (MICROKIT DMT532) al que hemos añadido 37 g/L de BHI Broth (MICROKIT DMT022). Obsérvese el espectacular tamaño de las colonias en 3 días a 35ºC, que muestran a simple vista su forma de volcán

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Mix de Acidolácticas en HRS cromogénico con polimixina (MICROKIT DMT532+SMS009): Colonias blancas o muy ligeramente rosadas

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Bacillus cereus en HRS cromogénico con polimixina (MICROKIT DMT532+SMS009): Colonias céreas, enormes, fucsia, lobuladas

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Bacillus subtilis en HRS cromogénico con polimixina (MICROKIT DMT532+SMS009): Colonias grandes, rojo burdeos, lobuladas

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Bacillus subtilis en HRS cromogénico con polimixina (MICROKIT DMT532+SMS009) al que hemos añadido 37 g/L de BHI Broth (MICROKIT DMT022): Colonias enormes, fucsia, lobuladas

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Enterococcus faecalis en HRS cromogénico con polimixina (MICROKIT DMT532+SMS009): Colonias pequeñas, redondas, con centro rojo y borde incoloro, aspecto similar a Listeria monocytogenes

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Listeria monocytogenes en HRS cromogénico con polimixina (MICROKIT DMT532+SMS009): Colonias pequeñas, redondas, con centro rojo y borde incoloro, aspecto similar a Enterococcus faecalis

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Staphylococcus aureus en HRS cromogénico con polimixina (MICROKIT DMT532+SMS009): Colonias grandes, rojo burdeos, mucosas, redondas

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Shigella flexneri en HRS cromogénico con polimixina (MICROKIT DMT532+SMS009): único Gram negativo testado que crece, con colonias enormes, fucsia, lobuladas

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

El usuario es el único responsable de la eliminación de los microorganismos según la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.       

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Aflatoxin B1 Test Strip

Aflatoxin B1 Test Strip

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Introducción

Las aflatoxinas son micotoxinas generadas en su mayor parte por el moho Aspergillus flavus cuando crece sobre maíz, otros cereales, frutos secos, especias y demás alimentos. La Aflatoxina B1 es la más común de estas micotoxinas y raramente hay otras aflatoxinas que no vayan acompañadas de la B1, por lo que detectar si ésta está por encima o por debajo de los niveles permitidos en cada país, se convierte en un screening negativo que ahorra mucho tiempo y trabajo a los laboratorios. Sólo las muestras positivas de este kit deben pasarse a HPLC, lo que ahorra ésta en la inmensa mayoría de muestras.

Aflatoxin B1 Test Strip es un immunocromatograma en tiras que detecta un nivel cualitativo de la presencia de aflatoxina B1 y se ha diseñado para emplear en granos, alimentos y materiales de uso alimentario (para buscar aflatoxina M1 en leche, solicite el kit KRBW003). La extracción es mucho más sencilla que en el método HPLC. El test completo se realiza en 15-20 minutos. Permite la realización de análisis in situ.

Límite de Detección: 5 μg/kg—20 μg/kg –50μg/kg (5-20-50 ppb

 Contenido del kit (Referencia MICROKIT: KRMY001, kits para 96 Test

  1. 96 Tiras para Aflatoxina B1 (12 tubos con 8 tiras cada tubo)
  2. Cubeta microtiter con 96 pocillos con reactive incluido contra Aflatoxina B1
  3. Solución diluyente para la muestra (2 viales por kit)
  4. NaOH 2 mol/L (1 vial por kit)

Materiales Necesarios no incluidos

  1. Balanza (sensibilidad: 0.1g) 2. Micropipeta (20µl-200µl, 100µl-1000µl)
  2. Tubos de Centrífuga (2ml, 50ml) 4. Metanol (AR)
  3. Agua desionizada o destilada 6. Vortex
  4. Centrifuga 8. Reloj avisador

Preparación de la Solución de Extracción de la muestra (80% methanol)

Mezclar 80 mL de metanol con 20mL de agua desionizada/destillada

Preparación/Extracción de la muestra (2 métodos según el nivel de detección que desee):

Método 1 (LOD: 5μg/kg-20μg/kg)

  1. Moler la muestra y pasarla a través de una pantalla de malla 20;
  2. Pesar 5,0 g de muestra molida en un tubo de centrífuga de 50 ml;
  3. Agregue 80% de solución de extracción de metanol al tubo (el volumen de adición de la solución de extracción se determina por los puntos de corte, consulte la tabla a continuación) y apriete la tapa
Línea de corte ( μg/kg) 5 10 20
Volumen de la solución de extracción (mL) 10 20 40

 

  1. Agite vigorosamente, mezcle o agite en vórtex durante 3 minutos;
  2. Centrifugue durante 5 minutos a 4,000 rpm. Si no dispone de centrífuga, puede dejar precipitar durante unas horas.
  3. Transfiera 100μL de la capa superior de extracto a un tubo nuevo y agregue 200μL de solución de dilución de muestra, mezcle bien incluido lo del fondo.

Nota: Para las muestras de DDGS, harina de germen de maíz, polvo de proteína de maíz y algunos productos de alimentación, ajuste el valor de pH del extracto, con solución de NaOH (2.0mol / l) a 7.0-8.0 antes de diluir.

Método 2 (LOD: 20μg/kg-50μg/kg)Moler la muestra y pasar a través de un pedregal de malla 20;

  1. Pesar 5,0 g de muestra triturada en un tubo de centrífuga de 50 ml;
  2. Agregue 40 ml de solución de extracción de metanol al 80% al tubo y apriete la tapa;
  3. Agite vigorosamente, mezcle o agite en vórtex durante 3 minutos;
  4. Centrifugar durante 5 minutos a 4.000 rpm. Si no dispone de centrífuga, puede dejar precipitar durante unas horas.
  5. Transfiera 1 ml de la capa superior de extracto a un tubo nuevo y agregue 80% de solución de extracción de metanol al tubo (el volumen de adición de la solución de extracción se determina por los puntos de corte, consulte la tabla a continuación), mezcle incluso;
Línea de corte ( μg/kg) 20 30 40 50
Volumen de la solución de extracción (mL) 0 0.6 1.2 1.8

Transfiera 100μL de la capa superior de extracto a un tubo nuevo y agregue 200μL de solución de dilución de muestra, mezcle bien incluido lo del fondo.

Nota: Para las muestras de DDGS, harina de germen de maíz, proteína de maíz en polvo y algunos productos de alimentación, ajuste el valor de pH del extracto, con solución de NaOH (2.0mol / L) a 7.0-8.0 antes de diluir.

 Modo de empleo: (leer completamente antes de usar)

Todos los reactivos deben haber sido atemperados a Temperatura ambiente (20-25ºC) antes de su empleo

  1. Retire la tapa del tubo y tome la cantidad adecuada de tiras de prueba y micropocillos; coloque los micropocillos en un soporte de micropocillos e inmediatamente cierre el tubo.
  2. Usando una pipeta de un solo canal, agregue 150μL de diluyente de ensayo a cada micropocillo. Disuelva el conjugado de recubrimiento en el micropocillo pipeteando el contenido hacia arriba y hacia abajo de 5 a 6 veces.
  3. Mantenga durante 3 minutos a temperatura ambiente (20-25 ºC) y coloque una tira reactiva en un pocillo.
  4. Permita que la tira reactiva desarrolle color durante 8 minutos a temperatura ambiente (20-25 ºC).
  5. Interprete los resultados de la prueba inmediatamente dentro de 1 minuto.

Interpretación de Resultados

Siempre debe aparecer una línea de color en la sección superior de la tira reactiva para indicar que la tira reactiva está funcionando correctamente. Esta línea es la Línea de Control (C). Una línea en la sección inferior de la tira reactiva indica los resultados de la prueba. Esta línea es la línea de prueba o Test (T).

 Muestra Negativa (-): 2 lineas visibles. Esto indica que la muestra contiene menos aflatoxina B1 que el límite buscado. En cuanto aparecen dos líneas debe considerarse negative la muetsra.

Muestra Positiva (+): solo se puede ver la línea control (C). Esto indica que la muestra contiene aflatoxina B1 por encima (o igual) al límite buscado.

Resultados Inválidos:

Si no aparece la línea de Control el test es inválido y hay que repetir el análisis con otra tira y otro pocillo.

Precauciones

  1. Siga las instrucciones de los procedimientos de extracción y del test.
  2. No utilizar más allá de la fecha de vencimiento.
  3. No toque la membrana en las tiras.
  4. Levante el sellador de micropocillos suavemente, para evitar que el polvo se libere de los pozillos.
  5. No vuelva a utilizar las tiras de test o los micropocillos una vez empleados.
  6. Los micropocillos sin sellar deben usarse dentro de 1 hora.
  7. Evite la luz solar directa o dar soplidos, tos, estornudos… al realizar los test.
  8. No use agua del grifo, agua destilada o agua desionizada como control negativo.
  9. El metanol es inflamable. Se debe tener precaución en su uso y almacenamiento.
  10. Considere que todos los materiales, contenedores y dispositivos que están expuestos a la muestra están contaminados con toxina. Use guantes protectores y gafas de seguridad cuando use el kit.
  11. Los componentes en este kit de prueba han sido probados en control de calidad como una unidad de lote estándar. No mezcle componentes de diferentes números de lote.

Almacenamiento y vida útil

  1. Almacenamiento: la temperatura de almacenamiento para los kits es de 4-30 ºC. ¡NO CONGELAR!
  2. Vida útil: 12 meses desde fabricación.
  3. Fecha de producción, fecha de vencimiento y número de lote, consulte la etiqueta en el paquete.

Fabricado en exclusiva para España y para MICROKIT, desde Abril de 2018, bajo Norma ISO 9001. Origen: Canadá.

Si desea más información sobre nuestros Aflatoxin B1 Test Strip rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

TODD HEWITT BROTH

TODD HEWITT BROTH

Detección de estreptococos hemolíticos (APHA)

COMPOSICIÓN

  • Infusión de corazón 10,0 g
  • Triptona                  20,0 g
  • Glucosa                     2,0 g
  • Cloruro sódico          2,0 g
  • Bicarbonato sódico   2,0 g
  • Fosfato disódico        0,4 g
  • (Fórmula por litro)
  • pH final: 7,8 ± 0,2

PREPARACIÓN

Disolver 36,4 g de medio en 1 litro de agua destilada.

Autoclavar a 115 ºC durante 20 minutos.

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO

MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO. AGITE EL BOTE ANTES DE USAR

DESHIDRATADO CODIGO: DMT123

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

DESHIDRATADO: Polvo fino, Beige

PREPARADO: Estéril, Ambar

CONTROL DE CRECIMIENTO 24-48 h a 37°C aproximadamente:

  • Streptococcus agalactiae (grupo B) MKTA 13813, Correcto.
  • Streptococcus pyogenes (grupo A) MKTA 19615, Correcto.

PRESENTACIÓN: MEDIO DESHIDRATADO.

NOTA: Ver tubos con Gentamicina y  Ac.Nalidíxico, selectivos para gr.B, en el medio Todd Hewitt Selective Broth.

MODO DE EMPLEO E INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS

Inocular 1 ml de muestra en un tubo con 9 ml de medio. Incubar a 35 ºC aproximadamente, durante 18-24 horas y dar como positivos los tubos turbios.

El usuario final es el único responsable de la eliminación de los microorganismos según la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.

Si desea más información sobre nuestro TODD HEWITT BROTH rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

TODD HEWITT SELECTIVE BROTH

TODD HEWITT SELECTIVE BROTH

Enriquecimiento selectivo de estreptococos del grupo B para mejora de su detección en mujeres y animales en período de gestación.

COMPOSICIÓN

  • Infusión de corazón     10,0 g
  • Triptona                      20,0 g
  • Glucosa                         2,0 g
  • Cloruro sódico              2,0 g
  • Bicarbonato sódico       2,0 g
  • Fosfato disódico           0,4 g
  • Gentamicina              0,008 g
  • Ácido Nalidíxico     0,0015 g
  • (Fórmula por litro)
  • pH final: 7,8 ± 0,2

Streptococcus agalactiae

PREPARACIÓN

Disolver 36,4 g de medio base en 1 litro de agua destilada.

Autoclavar a 115 ºC durante 20 minutos.

Añadir asépticamente la gentamicina y el ácido nalidíxico, previamente esterilizados por filtración.

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO

MANTENGA LOS TUBOS BIEN CERRADOS EN SU CAJA, EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO.

TUBO PREPARADO CODIGO: BCT118. No existe versión deshidratada.

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

DESHIDRATADO: Polvo fino, Beige

PREPARADO: Estéril, Ambar

CONTROL DE CRECIMIENTO:

La respuesta típica tras 24 horas de incubación a 37°C aproximadamente y resiembra en agar sangre es:

  • Streptococcus agalactiae MKTA 13813: Crecimiento excelente
  • Escherichia coli MKTA 25922: Parcial o completamente inhibido
  • Staphylococcus aureus MKTA 25923: Parcial o completamente inhibido

PRESENTACIÓN: Tubos preparados con Gentamicina y  Ac.Nalidíxico, selectivos para gr.B (BCT118).

MODO DE EMPLEO E INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS

Atemperar los tubos antes de su inoculación. Realizar ésta con escobillón a partir de la muestra o con asa de platino a partir de colonias crecidas en medios primarios de aislamiento. Incubar 24 horas a 37 ºC aproximadamente. La muestra debe ser procesada rápidamente o transportada en medio de conservación.

Subcultivar con escobillón o asa de platino sobre agar sangre para detectar colonias de estreptococos ß-hemolíticos y poder realizar posteriores estudios identificativos (látex, pigmentación naranja en medio New GBS Fast,…).

El usuario final es el único responsable de la eliminación de los microorganismos según la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.

Si desea más información sobre nuestro TODD HEWITT SELECTIVE BROTH rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

THIOGLICOLATO FLUIDO CON RESAZURINA (FTM)

THIOGLICOLATO FLUIDO CON RESAZURINA (FTM)

Control de esterilidad (USP) (UNE 13401)

COMPOSICIÓN

  • Triptona                  15,000 g
  • Glucosa                   5,500 g
  • Extracto de levadura 5,000 g
  • Cloruro sódico         2,500 g
  • L‑Cistina                  0,500 g
  • Tioglicolato sódico  0,500 g
  • Resazurina               0,001 g
  • Agar‑agar                0,750 g
  • (Fórmula por litro)
  • pH final: 7,1 ± 0,2

De izquierda a derecha: FTM sin inocular, transparente; con anaerobios, turbio; con aerobios, turbio y rojo.

 

 

 

PREPARACIÓN

Disolver 30 g de medio en 1 litro de agua bidestilada. Calentar, agitando, hasta ebullición  (al contener agar-agar)  para su total  homogeneización. Repartir en tubos o frascos y autoclavar a 121 ºC durante 15 minutos. El color final del medio es paja claro, con banda roja arriba tras agitar. Enfríe suavemente para que la gelificación del Agar-Agar no provoque aspectos grumosos u opalescentes que podrían confundirse con crecimientos microbianos.

PARA USO EXCLUSIVO EN EL LABORATORIO.

MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO. AGITE EL BOTE ANTES DE USAR.

DESHIDRATADO CODIGO: DMT122

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

DESHIDRATADO: Polvo, Beige    PREPARADO: Estéril, Paja opalescente, Fluido denso (las burbujas, al agitar, suben lentamente)

EVALUACIÓN DEL RENDIMIENTO s/ISO/TS 11133-2,  1-7 días a 37 ºC, aplicando el método ISO 7937, UNE EN 13401: 2000, 2ª Real Farmacopea Española y 4ª Farmacopea Europea, o el indicado en el Manual MICROKIT actualizado):

  • Clostridium perfringens MKTA 13124, Excelente: Tras 24 h a 37°C, turbidez de ligera a elevada.
  • Bacillus subtilis MKTA 6633, Excelente.
  • Candida albicans MKTA 10231, Excelente.
  • Micrococcus luteus MKTA 9341, Excelente.
  • Streptococcus pyogenes MKTA 19615, Excelente.
  • Staphylococcus aureus MKTA 6538P, Excelente.

Las colecciones TIPO prohiben el uso de su referencia, por lo que indicamos la nuestra, directamente trazable a la colección TIPO.

PRESENTACIÓN: TUBOS PREPARADOS, FRASCOS PREPARADOS, MEDIO DESHIDRATADO.

NOTA: Utilizado para el test de esterilidad bacteriana en material farmacéutico y para cultivar microorganismos anaerobios, aerobios y microaerófilos. El agar, presente en un 0,75%, permite un buen crecimiento de los anaerobios, al retardar la difusión del oxígeno en el medio y al permitir sólo una lenta liberación del medio de las sustancias reductoras producto de los microorganismos y del anhídrido carbónico.

El tioglicolato sódico, ejerce como agente reductor y elimina el oxígeno del medio, evitando la formación de peróxidos letales. Además neutraliza el efecto bacteriostático de los compuestos mercuriales que puedan estar presentes en las muestras. La resazurina es el indicador de óxido‑reducción en vez del azul de metileno, más tóxico, presente en la fórmula original de Brewer.

MODO DE EMPLEO E INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS

Desoxigenar el medio, si está rosado, calentando unos segundos a 98 ºC, enfriar e inocular la muestra con rigurosa asepsia. Incubar a 35 ºC aproximadamente, durante 7-14 días. Una turbidez mayor a la del frasco control o la presencia de colonias floculadas indica que la muestra no es estéril. Para seguimiento de la Norma UNE-EN 13401 de Cl.perfringens, se utiliza como paso previo a la confirmación de colonias procedentes de TSC Agar (DMT175+SMT252):  Incubar 5 colonias en FTM, 18-24 h a 35-37°C aproximadamente, en anaerobiosis. Confirmar inoculando 5 gotas en Caldo Lactose Sulfite (DMT140+VMT136, tubos TPL018).

El usuario final es el único responsable de la eliminación de los microorganismos según la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.         

Si desea más información sobre nuestro THIOGLICOLATO FLUIDO CON RESAZURINA (FTM) rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

 

THIOGLICOLATO ALTERNATIVO)

THIOGLICOLATO ALTERNATIVO)

Control de esterilidad en productos turbios (USP)

COMPOSICIÓN

  • Triptona                  15,0 g
  • Glucosa                   5,5 g
  • Extracto de levadura 5,0 g
  • Cloruro sódico         2,5 g
  • L‑Cistina                  0,5 g
  • Tioglicolato sódico  0,5 g
  • (Fórmula por litro)
  • pH final: 7,1 ± 0,2

PREPARACIÓN

 

 

 

 

 

Disolver 29 g de medio en 1 litro de agua bidestilada. Calentar, agitando, hasta  su total  homogeneización. Repartir en tubos o frascos y autoclavar a 121 ºC durante 15 minutos. El color final del medio es paja claro, completamente transparente y sin banda roja (al no contener resazurina). Si no se utiliza el mismo día de la preparación, volver a hervir momentos antes de usar para eliminar el oxígeno del interior del medio.

PARA USO EXCLUSIVO EN EL LABORATORIO.

MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO. AGITE EL BOTE ANTES DE USAR.

DESHIDRATADO CODIGO: DMT208

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

DESHIDRATADO: Polvo, Beige    PREPARADO: Estéril, Paja transparente.

EVALUACIÓN DEL RENDIMIENTO s/ISO/TS 11133-2,  1-7 días a 37 ºC, aplicando el método Farmacopea, o el indicado en el Manual MICROKIT actualizado):

  • Clostridium perfringens MKTA 13124, Excelente: Tras 24 h a 37°C, turbidez de ligera a elevada.
  • Bacillus subtilis MKTA 6633, Excelente: Tras 24 h a 37°C, turbidez de ligera a elevada.
  • Candida albicans MKTA 10231, Excelente: Tras 24 h a 37°C, turbidez de ligera a elevada.
  • Micrococcus luteus MKTA 9341, Excelente: Tras 24 h a 37°C, turbidez de ligera a elevada.
  • Streptococcus pyogenes MKTA 19615, Excelente: Tras 24 h a 37°C, turbidez de ligera a elevada.
  • Staphylococcus aureus MKTA 6538P, Excelente: Tras 24 h a 37°C, turbidez de ligera a elevada.

Las colecciones TIPO prohiben el uso de su referencia, por lo que indicamos la nuestra, directamente trazable a la colección TIPO.

PRESENTACIÓN: MEDIO DESHIDRATADO, FRASCOS PREPARADOS.

 NOTA: Utilizado para detectar microorganismos anaerobios, aerobios y microaerófilos en el test de esterilidad bacteriana en material farmacéutico turbio o viscoso, en el mçétodo de filtración por membrana y también para lavado del material.

El tioglicolato sódico, ejerce como agente reductor y elimina el oxígeno del medio, evitando la formación de peróxidos letales. Además neutraliza el efecto bacteriostático de los compuestos mercuriales que puedan estar presentes en las muestras.

MODO DE EMPLEO E INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS

Desoxigenar el medio, si no está recién preparado, calentando unos segundos a 98 ºC, enfriar e inocular la muestra con rigurosa asepsia. Incubar a 30-35 ºC aproximadamente, hasta 7-14 días. La turbidez, la presencia de flóculos, de artefactos flotando en superficie o de sedimento en el fondo son  indicadores de crecimiento microbiano y por tanto, la muestra no es estéril.

El usuario final es el único responsable de la eliminación de los microorganismos según la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura. 

Si desea más información sobre nuestro THIOGLICOLATO ALTERNATIVO rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16               

TETRATHIONATE BRILLIANT GREEN BROTH (T.B.G.)

TETRATHIONATE BRILLIANT GREEN BROTH (T.B.G.) Enriquecimiento de Salmonella (Pharmacopoea medio I)

COMPOSICIÓN

  • Carbonato cálcico        20.0 g
  • Tetrationato potásico   20.0 g
  • Peptona                       8.6 g
  • Cloruro sódico             6.4 g
  • Sales biliares                8.0 g
  • Verde Brillante            70 mg
  • (Fórmula por litro)
  • pH final: 7.0 ± 0,2.

Izquierda: Tetrationate TBG Broth estéril
Derecha: con Salmonella, aclaramiento del color.

PREPARACIÓN

Disolver 63 g de medio en 1 litro de agua destilada. Calentar hasta ebullición. Esterilizar a 121 ºC, 20 minutos o mejor mantener a 100 ºC durante 2 minutos y no autoclavar. El precipitado o enturbiamento de Carbonato Cálcico es normal. Enfriar a unos 45 ºC. Distribuir en tubos o frascos estériles. No volver a calentar. Instantes antes de usar, se puede añadir 19 ml de solución yodo-yodurada (VCC4023). Para inhibir los Proteus añadir Novobiocina al 0,4% o bien bajar el pH a 6,5.

PRECAUCIÓN: CONTIENE SALES BILIARES, IRRITANTE.

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO. AGITE EL BOTE ANTES DE USAR, PARA ASEGURAR  LA  HOMOGENEIZACIÓN DE LOS EVENTUALES GRADIENTES DE DENSIDAD DE LOS COMPONENTES. MUY HIGROSCÓPICO: MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR SECO, FRESCO Y OSCURO

DESHIDRATADO CODIGO: DMT304

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

DESHIDRATADO: Polvo fino, Verdoso

PREPARADO: Estéril, Precipitado, verde.

CONTROL DE CRECIMIENTO 24-48 h a 37°C

aproximadamente:

  • Bacillus subtillis MKTA 6633, Inhibido.
  • Staphylococcus aureus MKTA 6538P, Inhibido.
  • E.coli MKTA 25922, Bueno, medio azul-verdoso.
  • Pseudomonas aeruginosa MKTA 9027, Bueno, medio azul-verdoso.
  • Salmonella abony  MKTN 6017, Bueno, medio claro.

Izda: Salmonella (turbidez y pérdida de color), Centro: Shigella (turbidez y turquesa), Dcha: otras Enterobacterias (sin turbidez)

 

 

 

 

 

 

 

 

PRESENTACIÓN:  MEDIO DESHIDRATADO. Tubos preparados con Verde Brillante y solución Yodo-Iodurada. Frascos preparados con Verde Brillante, pero sin solución Yodo-Iodurada, que debe añadirla el usuario instantes antes del uso definitivo del medio (s/Pharmacopea).

 NOTA: Medio para enriquecimiento de Salmonella en medicamentos, aguas y alimentos. Se utiliza en paralelo a otros caldos de enriquecimiento, para evitar falsos negativos de ciertas cepas de Salmonella. El Carbonato cálcico actúa como neutralizante que absorbe los metabolitos tóxicos. Las sales biliares, el verde brillante y la temperatura de incubación lo hacen muy selectivo ante los Gram positivos (incluso los Clostridios) y muchos Gram negativos. Los microorganismos que tienen la enzima tetrationato-reductasa se multiplican de forma preferente en este medio.

PRECAUCIÓN

Este medio no es válido para Salmonella typhi.

 MODO DE EMPLEO E INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS

Inocular 1/10 ml del caldo de pre-enriquecimiento en 10/100 ml de este medio. Incubar a 35-38 (42) ºC durante 21-27 horas. Tras agitar, sembrar en placas de medios selectivos.

El usuario final es el único responsable de la eliminación de los microorganismos de acuerdo con la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.

Si desea más información sobre nuestro TETRATHIONATE BRILLIANT GREEN BROTH (T.B.G.) rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

TETRATHIONATE BROTH MUELLER KAUFFMAN (BASE)

 

TETRATHIONATE BROTH MUELLER KAUFFMAN (BASE)

Enriquecimiento de Salmonella (UNE 34-818:1985, UNE 34-554:1983)

COMPOSICIÓN

  • Triptona                  7.0 g
  • Tiosulfato sódico 40.7 g
  • Peptona de soja      2.3 g
  • Cloruro sódico        2.3 g
  • Carbonato cálcico   25.0 g
  • Sales biliares           4.75 g

(Fórmula por litro)

pH final: 7.0 ± 0,2.

 

De izquierda a derecha: Tetrationate Broth MK Base, suplementado con Verde Brillante, y con Salmonella.

PREPARACIÓN

Disolver 82 g de medio en 1 litro de agua destilada. (41 gramos para menor selectividad, como Tetrationato clásico). Calentar hasta ebullición. Esterilizar a 121 ºC, 20 minutos o mejor mantener a 100 ºC durante 2 minutos y no autoclavar. El precipitado o enturbiamento de Carbonato Cálcico es normal. Enfriar a unos 45 ºC, añadir 9.5 ml de solución de verde brillante al 0.1% (VCC4634). Distribuir en tubos estériles. No volver a calentar. Instantes antes de usar, añadir 19 ml de solución yodo-yodurada (VCC4023).

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO

PRECAUCIÓN: CONTIENE SALES BILIARES.

MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR

SECO, FRESCO Y OSCURO. AGITE EL BOTE ANTES DE USAR.

DESHIDRATADO CODIGO: DMT086

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

DESHIDRATADO: Polvo fino, Crema

PREPARADO: Estéril, Precipitado, blanco.

EVALUACIÓN DEL RENDIMIENTO ISO/TS 11133-2, 24-48 h a 37-41,5 ºC:

(Aplicando el método UNE EN ISO 6579: 2003 mejorada, o el indicado en el Manual MICROKIT actualizado)

  • Salmonella abony MKTN 6017 con acompañantes (E.coli MKTA 25922 y Ps.aeruginosa MKTA 9027). Tras estriar una alícuota en XLD e incubar, aparecen más de 10 colonias típicas.
  • Escherichia coli MKTA 25922, totalmente inhibido: tras incubar, estriar en TSA e incubar, no aparecen colonías
  • Enterococcus faecalis MKTA 29212, parcialmente inhibido: tras incubar, estriar en TSA e incubar, aparecen menos de 10 colonías.
  • Bacillus subtilis MKTA 6633, Parcialmente inhibido.
  • Pseudomonas aeruginosa MKTA 9027, Parcialmente inhibido.
  • Staphylococcus aureus MKTA 6538P, Inhibido.

Las colecciones TIPO prohiben el uso de su referencia por lo que indicamos la nuestra, directamente trazable a la colección TIPO.

Izda: Salmonella (turbidez y pérdida de color), Centro: Shigella (turbidez y turquesa), Dcha: otras Enterobacterias. (sin turbidez)

PRESENTACIÓN: MEDIO DESHIDRATADO. Tubos preparados con Verde Brillante y solución Yodo-Iodurada. Frascos preparados con Verde Brillante, pero sin solución Yodo-Iodurada, que debe añadirla el usuario instantes antes del uso definitivo del medio (s/Pharmacopea).

 NOTA: Medio para enriquecimiento de Salmonella en alimentos y aguas. Se utiliza en paralelo al Caldo Rappaport Vassiliadis (mejor con SS Broth) y, en versiones antiguas de la Norma ISO 6579, junto al Selenito Cistina Broth.

PRECAUCIÓN

Este medio no es válido para Salmonella typhi. Resulta más selectivo que el caldo tetratrionato a mitad de concentración para las demás Salmonella. Medio alternativo recomendado: SS Broth.

 MODO DE EMPLEO E INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS

Inocular 1/10 ml del caldo de pre-enriquecimiento en 10/100 ml de este medio. Incubar a 36-38 (42) ºC durante 21-27 horas.Tras agitar, sembrar en placas de medios selectivos.

El usuario final es el único responsable de la eliminación de los microorganismos de acuerdo con la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.

Si desea más información sobre nuestro TETRATHIONATE BROTH MUELLER KAUFFMAN rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16

TETRATHIONATE BROTH MUELLER KAUFFMAN VERDE BRILLANTE (BASE)

TETRATHIONATE BROTH MUELLER KAUFFMAN VERDE BRILLANTE (BASE)

Enriquecimiento de Salmonella (ISO 6579)

COMPOSICIÓN

  • Extracto de carne            4,3
  • Dig.enzimático caseína    8,6
  • Cloruro sódico                2,6
  • Carbonato cálcico           38,7
  • Tiosulfato sódico-5-h      47,8
  • Bilis de buey                   4,78
  • Verde Brillante          0,0096

(Fórmula en gramos por litro)

pH final: 8.0 ± 0,2.

 

De izquierda a derecha: Tetrationate Broth MK con Verde Brillante, y con Salmonella.

PREPARACIÓN
 

Disolver 106,8 g de medio en 1 litro de agua destilada. Calentar hasta ebullición. Esterilizar a 121 ºC, 20 minutos o mejor mantener a 100 ºC durante 2 minutos y no autoclavar. El precipitado o enturbiamento de Carbonato Cálcico es normal. Distribuir en tubos estériles. No volver a calentar. Instantes antes de usar, se puede añadir 19 ml de solución yodo-yodurada (VCC4023).

 

PARA USO EXCLUSIVO EN LABORATORIO

PRECAUCIÓN: CONTIENE SALES BILIARES.

MANTENGA EL BOTE BIEN CERRADO EN LUGAR

SECO, FRESCO Y OSCURO. AGITE EL BOTE ANTES DE USAR.

DESHIDRATADO CODIGO: DMT177

CONTROL DE CALIDAD DEL MEDIO

Realizado en nuestro laboratorio; es prudente repetirlo en su laboratorio siempre que varíen las condiciones (más de 3 meses sin usar, tras desinfectar laboratorio, tras conservar a alta Tª, cuando adquiere aspectos extraños aunque no haya llegado la fecha de caducidad teórica de la etiqueta,…)

DESHIDRATADO: Polvo fino, Crema

PREPARADO: Estéril, Precipitado, blanco.

EVALUACIÓN DEL RENDIMIENTO ISO/TS 11133-2, 24-48 h a 37-41,5 ºC:

(Aplicando el método UNE EN ISO 6579: 2003 mejorada, o el indicado en el Manual MICROKIT actualizado)

  • Salmonella abony MKTN 6017 con acompañantes (E.coli MKTA 25922 y Ps.aeruginosa MKTA 9027). Tras estriar una alícuota en XLD e incubar, aparecen más de 10 colonias típicas.
  • Escherichia coli MKTA 25922, totalmente inhibido: tras incubar, estriar en TSA e incubar, no aparecen colonías
  • Enterococcus faecalis MKTA 29212, parcialmente inhibido: tras incubar, estriar en TSA e incubar, aparecen menos de 10 colonías.
  • Bacillus subtilis MKTA 6633, Parcialmente inhibido.
  • Pseudomonas aeruginosa MKTA 9027, Parcialmente inhibido.
  • Staphylococcus aureus MKTA 6538P, Inhibido.

Las colecciones TIPO prohiben el uso de su referencia por lo que indicamos la nuestra, directamente trazable a la colección TIPO.

Izda: Salmonella (turbidez y pérdida de color), Centro: Shigella (turbidez y turquesa), Dcha: otras Enterobacterias. (sin turbidez)

 

PRESENTACIÓN: MEDIO DESHIDRATADO.

 

NOTA: Medio para enriquecimiento de Salmonella en alimentos y aguas. Se utiliza en paralelo al Caldo Rappaport Vassiliadis (mejor con SS Broth) y, en  la Norma ISO 6579 (en versiones antiguas junto al Selenito Cistina Broth).

 

PRECAUCIÓN

Este medio no es válido para Salmonella typhi. Resulta más selectivo que los otros caldos Tetratrionato (DMT086 y DMT304) para las demás Salmonella. Medio alternativo recomendado por MICROKIT por sus mayores sensuibilidad y especificidad: SS Broth.

MODO DE EMPLEO E INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS
Inocular 1/10 ml del caldo de pre-enriquecimiento en 10/100 ml de este medio. Incubar a 36-38 (42) ºC durante 21-27 horas. Tras agitar, sembrar en placas de medios selectivos.

El usuario final es el único responsable de la eliminación de los microorganismos de acuerdo con la legislación medioambiental vigente. Autoclavar antes de desechar a la basura.

Si desea más información sobre nuestro TETRATHIONATE BROTH MUELLER KAUFFMAN VERDE BRILLANTE rellene nuestro formulario de contacto http://www.medioscultivo.com/contacto . O si lo prefiere póngase en contacto con nosotros a través de nuestro correo electrónico microkit@microkit.es o por teléfono en el nº 91-897 46 16